2016年12月10日
ここでは、固定された細胞内小胞体とミトコンドリアの間に内因性の相互作用を視覚化し、高感度で定量化するための手順について説明します。プロトコルは、ミトコンドリア関連膜界面での75 /電位依存性アニオンチャネル/シクロフィリンD複合体イノシトール1,4,5-三リン酸受容体/グルコース調節タンパク質を標的と現場での近接連結アッセイに最適化されています。
この実験の全体的な目標は、固定細胞でのin situ近接ライゲーションアッセイを使用して、小胞体ミトコンドリアの相互作用を視覚化および定量化することです。この方法は、生物医学分野における重要な質問に答えるのに役立ち、単純な免疫蛍光法を使用して固定細胞内のERミトコンドリア相互作用をより適切に分析できます。うまくいけば、新しい治療戦略を提案します。この技術の主な利点は、固定細胞内のERミトコンドリアの相互作用を視覚化および定量化できることであり、この技術は患者のパラフィン包埋組織生検に適用できることです。このビデオで紹介したin situ近接ライゲーションアッセイを用いて、ミトコンドリア外膜のVDAC1に対するマウス一次抗体と小胞体膜のIP3R1に対するウサギ一次抗体を、ミトコンドリア関連膜界面の近接したエピトープに結合します。DNAエンドテールが付着し、マウスおよびウサギのIgGに対抗する近接ライゲーションプローブを添加し、コネクターオリゴのライゲーションのテンプレートを形成でき、Texas Red Oligonucleotidesを使用して増幅および可視化することができます。これは、2つの標的タンパク質が40ナノメートル未満の距離にある場合にのみ発生します。ミトコンドリア関連膜界面における両方の細胞小器官膜間の距離と一致しています。in situ近接ライゲーションアッセイのために細胞を固定し、ブロックするためには、コード化されていない35mmガラスボトムディッシュあたり150, 000細胞でヒトH7細胞をプレート化します。翌日、培地を取り出し、PBS1 mLを使用して細胞を洗浄します。次に、バッファーを吸引し、10%ホルムアルデヒド1mLを加えます。プレートを室温で10分間攪拌しながらインキュベートし、細胞を固定します。反応を停止するには、1 mLの1 Mグリシンを加え、プレートを回転させて混合します。グリシン溶液を取り出し、1XPBSを1mL加えます。次に、プレートを短時間攪拌し、バッファーを吸引します。次に、100 mMグリシン1 mLを細胞に加えます。プレートを室温で15分間撹拌しながらインキュベートします。溶液を吸引した後、PBSに0.1%triton-X100 1 mLを添加して細胞を透過化します。そしてインキュベーションを繰り返します。洗剤を吸引し、PBSを1mL加えて細胞を洗浄します。緩衝液を取り出した後、細胞の各皿に40マイクロリットルのブロッキング溶液を加え、37°Cの湿ったチャンバーでサンプルを30分間インキュベートします。次に、ブロッキング溶液を皿からタップし、スライドを乾燥させないようにしながら、各スライドに等しい量のバッファーの残留量を取得しようとします。近接ライゲーションアッセイを実施するには、PBSを使用して一次抗体を希釈します。渦を巻いて、皿に溶液を加えます。サンプルを4でインキュベートします
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本記事では、固定細胞における小胞体とミトコンドリア間の相互作用を高感度に可視化および定量化する手順を紹介します。この手法では、最適化されたin situ近接結紮アッセイ(proximity ligation assay)を用いて、ミトコンドリア結合膜(mitochondria-associated membrane)界面における特定のタンパク質複合体を標的とします。
内因性の小胞体(ER)-ミトコンドリア相互作用を定量化することは、細胞シグナル伝達および代謝調節に関連する初期探索段階の仮説におけるリスクを低減するために極めて重要です。in situ 近接結紮アッセイ(proximity ligation assay)を用いることで、タンパク質の過剰発現を行うことなく、細胞小器官の接触部位を高感度かつマルチプレックスに検出することが可能となり、疾患に関連する系における予測の信頼性が向上します。この機能は、ターゲットバリデーションとメカニズム的な経路解析の接点におけるポートフォリオ決定を強化します。
このin situ近接結紮アッセイ(proximity ligation assay)は、固定した細胞および組織におけるER-ミトコンドリア相互作用の堅牢な定量化を可能にすることで、初期探索と前臨床研究を橋渡しします。