Name: 使用して報酬を求める行動の変化を測定するための簡単な方法キイロショウジョウバエ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 57 s
Description: 学ぶ：Drosophila melanogasterを用いて、報酬状態の変化をエタノール自己投与で測定する簡便な神経科学手法。このプロトコルは動機づけと行動変容の研究に有用です。

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我々は長期的な議論や技術的助言のためにU. HeberleinとA. Devineniに感謝します。我々はまた、方法を実証するとヘルプは、Shohat-オフィールラボメンバー、A. Benzur、L. Kazaz、およびO.シャロームに感謝します。特別な感謝は、ラボでのフライ・システムを確立するためのエリエゼルCostiに行きます。この作品は、イスラエル科学財団（14分の384）とマリー・キュリーのキャリアの統合補助金（CIG 631127）によってサポートされていました。

注：実験計画の概要：実験計画は、雄ハエが4日間にわたって3回連続トレーニングセッションにやりがいとnonrewarding経験にさらされている求愛抑制7-9のための適応プロトコルが含まれています。 4 - D経験フェーズの終了時に、ハエは3のための2つの選択肢の自発的エタノール消費アッセイで試験されています。他の実験（ 表1）の開始前に適時に行われるべきであるプロトコルは、本明細書中に、複数の実験に使用される事前に行うことができるいくつかのいくつかの準備ステップを含んでいます。 1.準備手順<ol><li>毛細管フィーダシステムの準備<ol><li> 27 G針を熱し、バイアル（ 図1）に沿って小さな穴を穿刺するために使用します。 </li><li>カミソリの刃を使用して半分（横）にバイアルのプラグをカット。プラグの表面上のマーク4点、squarを作成しますE形は、毛細管ホルダーに位置決めします。プラグ（ 図1b）を介して4つの穴を作るために18 G針を使用してください。 </li><li>彼らはしっかりとアダプタとして機能し、5μLのガラスキャピラリーを、保持することができるように、マイクロピペットをカットするためにカミソリの刃を使用してください。 </li><li>準備されたプラグに4キャピラリアダプタを挿入します。 </li><li>プラグ上の2エタノールと2 nonethanol含有毛細血管の位置をマークします。 注：すべてのバイアル間で一貫性の毛細血管の2種類のポジションを維持することが推奨されています。大きな穴がバイアルからハエの脱出を可能にするように、穴の大きさに注意してください。プラグを切断すると、ハエがで絡まことができますいくつかの小さな、緩い繊維を作成するように加えて、バイアルに挿入されたときに下向き側として（通常はカット側の反対側）プラグの滑らかな側面を使用することをお勧めします。 </li><li>毛管フィーダシステム（CAFE）のために使用されるバイアルおよびアダプターを多数準備ステップ2.3で説明した実験。 </li></ol></li><li>小さなガラス食品バイアルの準備<ol><li>日ハエ（ステップ1.4）を収集する前に、マイクロチューブのラックに200ガラスバイアルを手配。溶融物は、マイクロ波を用い（コーンミール糖蜜レシピに従って、 材料の表を参照）食べ物を飛びます。ガラスバイアル（バイアル壁の上に食べ物を汚すしないようにしてください）に、フライ食品の2ミリリットルを注ぎます。食品の硬化をしてみましょう、とラップでバイアルをカバーしています。 注：食品を含有するガラスバイアルを数週間4℃で保持することができます。 </li><li>ハエ収集の日には、冷蔵庫から出しバイアルを取り、彼らはハエを収容するためにそれらを使用する前に、RTに到達させます。 注：食品のバイアルは数週間古い場合は、ハエが食品とガラスとの間の亀裂に捕捉することができるよう食品は、まだ無傷でバイアルから切り離されていないことを確認してください。 </li></ol></li><li>毛細管フィーダーアッセイ用のストック食品のソリューションを作ります<ol><li>事前にするにはストック食品溶液（5％スクロースおよび5％酵母エキス）を削減する、酵母エキス5.88 gの蒸留水100mL中のスクロース5.88グラム溶解します。 注：原液を汚染に非常に傾向があります。したがって、それをオートクレーブすることが推奨（121℃、30分、および乾燥サイクルなし）、アリコート作業850μLにアリコートは、さらなる使用まで4℃で保存されます。ストック溶液中の成分の濃度は5.88％であり、単に、ステップ2.3において、使用前に15％エタノールまたは水（既成食品液850μLに150μL）を加えた後、5％の最終濃度に到達します。 </li></ol></li><li>実験的なハエの収集<ol><li> CO 2パッドを使用して200ナイーブ男性のハエを収集します。 注意：実験的な質問に関連する任意の研究室株を使用してください。 250ハエが容易に羽化ピック相におけるハエの5瓶から採取することができます。ハエを収集する場合、列に細心の注意を払います最近eclosedいる択ハエ（バージン-探しハエ：自分の腹部に胎便スポットと明るいハエ）。実験に使用される前に4日齢 - 実験ハエは3に食べ物や高齢者を含む小さなガラスバイアルに単独で維持されるべきです。 </li><li>バイアルを閉じるには、ソフトのプラグを使用してください。 注：経験フェーズ中に内外へのバイアルのメスを挿入するために、口の吸引を使用しているときと同じソフトプラグは、トレーニングフェーズのために非常に有用であろう。 </li></ol></li><li>トレーナーのハエの収集 注：すべての収集されたハエは、25℃及び70％相対湿度（RH）で12時間/ 12時間の明/暗インキュベータ中に保持されるべきです。 12時間/ 12時間の明/暗サイクル便利開始時間に変更することができます。 <ol><li>ヴァージン女性トレーナーのハエ<ol><li> 500処女の女性トレーナーがWT株や処女受容雌として使用するためのvirginatorストックから飛ぶ収集します。レギュラーサイズの食品バイアル当たり25のグループで女性のハエを維持し、すべての実験でそれらを使用する前に、4日齢 - 3歳にしてOW。 </li></ol></li><li>交配女性トレーナーのハエ<ol><li>訓練段階（ステップ1.6.1）の前に交配を受けるWT株やvirginatorストックから300処女雌ハエを収集します。 注：女性ハエは、通常のサイズの食品バイアルあたり10人の女性のグループに保管し、3歳されている - 実験に使用される前に4日齢。 </li></ol></li><li>男性ハエは交尾した雌トレーナーのハエを生成するために使用されます<ol><li> 150雄のハエ（必ずしも処女）を収集します。 注：ハエは、通常のサイズの食品バイアルあたり15人の男性のグループに保管し、3歳されている - 処女雌は交尾トレーナー雌を作成するために飛ぶと対にされる前の旧4日間。 </li></ol></li></ol></li><li>交配女性トレーナーのハエの生成<ol><li> 15男性が女性コンタに1人の男性を含むバイアルを反転することによりハエと交配メスを生成するにはトレーナーとして使用されるように飛ぶ、10処女雌のペアグループが飛びます訓練段階（ステップ2.1）10前に18時間-バイアル16をining。 注：これは、通常のトレーニングセッションの前に夜場所を取る必要があります。 1.5：男性の間の1の比率は、すべての女性が交配されることを保証する女性のハエに飛びます。 </li><li>実験の日に、口の吸引器を使用して、バイアルから男性を吸引することにより、男性から交配した雌を分離します。各訓練日の開始前にこの権利を実行します。 </li></ol></li></ol> 2.実験手順<ol><li>経験の位相を設定します<ol><li>インキュベーターの光フェーズの開始にできるだけ近い実験を開始します。行動チャンバー内（処女と交配両方）トレーナー女性を配置します。 注：これは、動作チャンバ内の実験、または静かで25℃、60に設定されている任意の人里離れた環境を実行することをお勧めします - 65％RHを。 50％以上の湿度を保つことは求愛と交尾行動するので、非常に重要ですSは湿度に敏感であることが知られているフェロモン感知、に依存します。 </li></ol></li><li>やりがいとnonrewarding経験に男性のハエを公開します<ol><li>ラックの縁に沿ってバイアルを配置する、微量ラック上の単一のオスのハエを含有するガラスバイアルを配置します。 注：この構成は、実験者が簡単にラックからバイアルを取らずに交尾を受けるハエのペアを観察することができます。 </li><li>やりがいとnonrewarding交配の経験を受けて、男性用に別のラック（ すなわち拒否され、交配）に飛ぶ（ステップ2.2.1で説明したように）単一の男性を含む100ガラスバイアルの2群準備します。 </li><li>吸引トレーナー雌と雄のハエを含む各バイアルに追加します。 1時間のタイマーを設定します。拒否されたグループから開始し、各バイアルに交配メスを追加します。その後、交配する男性に移動し、各バイアルに処女雌を追加します。 </li><li>密接に嵌合出会いを見ます処女雌との相互作用雄が1時間以内と以前に交配した雌との相互作用雄が交尾しないことを正常にかみ合うことを確認します。 1時間かけて拒否されたコホートを監視するには、15分間の第二のタイマを設定し、男性を15分ごとに監視します。 </li><li>最初のトレーニングセッションの終了により交配を終了しなかった交配集団から拒絶嵌合するように管理さコホート、男性から男性を放電してください。 </li><li>定期的なフライ食品のバイアルに、以前に交配女性トレーナーを吸引することにより、最初のトレーニングセッションを終了し、次のコンディショニングセッションのために保管してください。優しく交配男性グループからメスを吸引することによって、この手順に従ってください。 </li><li>ハエは1時間休憩しましょう。 </li><li>二回2.2.7 - を繰り返して、2.2.3を繰り返します。 </li><li>さらに3日間毎日2.2.8 - 手順2.2.3でトレーニングセッションを繰り返します。 </li></ol></li><li>録音消費（CAFE） <ol><li>最後conditioninの終わりにグラムセッション（四日）、キャピラリーフィーダーバイアルに単一の男性とのグループにそれらを吸引します。ハエを挿入しながらキャピラリフィーダーバイアルをカバーするために、ソフトプラグを使用し、すべてのハエが挿入された後既製キャピラリー給電プラグをすぐに交換してください。条件ごとに劣ら8以上のバイアルを作成するバイアルに、実験群のそれぞれから8ハエ、 - グループ6。 </li><li>静かにプラグの上部に水5mLを添加することにより、プラグを濡らします。バイアルに流出を避けるために、水を添加しながら注意してください。各バイアルに同量の水を追加します。 注：この手順は、毛細血管からの蒸発を減らすために行われます。したがって、実験の残りのために毎日繰り返されます。相対湿度に応じて、次の日は、プラグに追加するより少ない水を必要とし得ます。 </li><li> 15％の最終濃度を作成する在庫食品アリコートにエタノールまたは水を加えることによって、2つの別個の食品溶液を調製します。 </li><li> capillを埋めるために、2食のソリューションと牡羊座、5μLを作成する液状食品は、実験用フィルムストリップに低下し、それが5μLマークに達するまで溶液が毛管を充填することを可能にします。 5μLブラックマークラインの近くにある毛細血管の明確な終わりを使用してください。 注： - 一緒に8キャピラリアダプタおよび毛細血管を保持するためにインサートとして使用し、一度に複数のキャピラリーを満たすためには、6を接続することが可能です。 </li><li>ブラックマークで正確に食品のソリューションを配置するためにパラフィンストリップ上にそっと毛細血管をタップします。鉱物油の小滴に各キャピラリーの端部を浸漬することによってキャピラリーをシール。このステップでは、食品・ソリューションの潜在的な蒸発を最小限に抑えることができます。 </li><li>毛細血管の露出した側面がかろうじてバイアルの内部（プラグ表面から1mm以下）から覗くまで2エタノール含有毛細血管を挿入し、プラグインの4アダプター/ホルダーを通して毛細血管を含む2 nonethanol。 注意：ぬれたプラグに近い毛細血管の開口部を維持するの蒸発を低減し、ハエが通常のプラグの上に座ると餌にさらさキャピラリーに降りるように、食品に簡単にアクセスできます。 </li><li>実験的なハエが含まれているバイアルに加えて、ハエのないモックバイアルを準備します。このコントロールは、自然蒸発を評価するのに役立ちます。 注：違いは変数蒸発し、消費データを誤解につながることができますように、プラグに比べキャピラリー開口部の比較的同等の位置を維持するようにしてください。実験中に十分な湿度を維持し、湿ったプラグから湿度が低く、大規模な距離として、ぬれたプラグにできるだけ近い毛細血管の開口部を配置制御されていない蒸発の両方の結果をすることができます。 </li><li>定規を使用して、mm単位のブラックマーク線に対して毛細血管のそれぞれの液体の相対的な位置を記録し、これらの値を書き留めます。 注：解決策は、黒リットルに正確に配置されている場合INEは、値はゼロに等しくなければならない、それは上または下である場合、それは、それぞれ、正または負の値であるべきです。液体の初期レベルは、最終的なO / N消費値の基準点を設定します。 </li><li> 24時間バックインキュベーターでバイアルを設定します。実験全体を通して一定の時間で毛細血管を交換してください。 </li><li>バイアルからそっと毛細血管を外し、黒のマーキング線に対して液体のレベルを測定します。 </li><li>モックバイアル内の液体レベルを慎重に確認してください。 注：レベルが2mm以上を落とした場合は、蒸発が高く、消費レベルが信頼できないことを示しています。 </li><li> 2.3.10 - 手順2.3.3に示すように、2mLの水で軽く栓を減衰し、毛細血管の新しいセットを挿入します。 24時間バックインキュベーターでバイアルを設定します。 </li></ol></li><li>決定の好み<ol><li>私から最終レベルを減算することにより、各キャピラリの総消費量を計算します出発点でnitialレベル。 </li><li>同じ食品（エタノール含有毛細血管から別途すなわち nonethanol毛細血管）との両方の毛細血管の値を結合します。 </li><li>エタノール含有毛細血管から消費量から非エタノール毛細血管から消費量を減算することにより、エタノールの嗜好を計算し、同じバイアルのすべての毛細血管からの総消費量の値によって値を割ます。 </li><li>同じ実験群のすべてのバイアルの好みのインデックスを平均します。 <img alt="Equation1" src="/files/ftp_upload/54910/54910equation1.jpg" /> 注：Nonethanol 1（NE1）、Nonethanol 2（NE2）、エタノール1（E1）、エタノール2（E2）、総nonethanol（合計NE）= NE1 + NE2、総エタノール（合計E）は、E1 + E2を=、総合計消費（合計）=合計NE +合計E、およびエタノール選好指数（PI） </li></ol></li></ol>

<ol><li>Robinson, G. E., Fernald, R. D., Clayton, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genes+and+social+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Genes and social behavior.</a> Science. 322, 896-900 (2008).</li>
<li>Koob, G. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurobiological+substrates+for+the+dark+side+of+compulsivity+in+addiction%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropharmacol%22%5BJournal%5D)">Neurobiological substrates for the dark side of compulsivity in addiction.</a> Neuropharmacol. 56, Suppl 1 18-31 (2009).</li>
<li>Kaun, K. R., Devineni, A. V., Heberlein, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+melanogaster+as+a+model+to+study+drug+addiction%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Genet%22%5BJournal%5D)">Drosophila melanogaster as a model to study drug addiction.</a> Hum Genet. 131, 959-975 (2012).</li>
<li>Devineni, A. V., Heberlein, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Addiction-like+behavior+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Commun+Integr+Biol%22%5BJournal%5D)">Addiction-like behavior in Drosophila.</a> Commun Integr Biol. 3, 357-359 (2010).</li>
<li>Shohat-Ophir, G., Kaun, K. R., Azanchi, R., Mohammed, H., Heberlein, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sexual+deprivation+increases+ethanol+intake+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Sexual deprivation increases ethanol intake in Drosophila.</a> Science. 335, 1351-1355 (2012).</li>
<li>Devineni, A. V., Heberlein, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preferential+ethanol+consumption+in+Drosophila+models+features+of+addiction%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol+%3A+CB%22%5BJournal%5D)">Preferential ethanol consumption in Drosophila models features of addiction.</a> Curr Biol : CB. 19, 2126-2132 (2009).</li>
<li>McBride, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mushroom+body+ablation+impairs+short-term+memory+and+long-term+memory+of+courtship+conditioning+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Mushroom body ablation impairs short-term memory and long-term memory of courtship conditioning in Drosophila melanogaster.</a> Neuron. 24, 967-977 (1999).</li>
<li>Ejima, A., Smith, B. P., Lucas, C., Levine, J. D., Griffith, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequential+learning+of+pheromonal+cues+modulates+memory+consolidation+in+trainer-specific+associative+courtship+conditioning%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Sequential learning of pheromonal cues modulates memory consolidation in trainer-specific associative courtship conditioning.</a> Curr Biol. 15, 194-206 (2005).</li>
<li>Ejima, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generalization+of+courtship+learning+in+Drosophila+is+mediated+by+cis-vaccenyl+acetate%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Generalization of courtship learning in Drosophila is mediated by cis-vaccenyl acetate.</a> Curr Biol. 17, 599-605 (2007).</li>
<li>Keleman, K., Kruttner, S., Alenius, M., Dickson, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Function+of+the+Drosophila+CPEB+protein+Orb2+in+long-term+courtship+memory%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Function of the Drosophila CPEB protein Orb2 in long-term courtship memory.</a> Nat Neurosci. 10, 1587-1593 (2007).</li>
<li>Kaun, K. R., Azanchi, R., Maung, Z., Hirsh, J., Heberlein, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Drosophila+model+for+alcohol+reward%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A Drosophila model for alcohol reward.</a> Nat Neurosci. 14, 612-619 (2011).</li>
<li>Xu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+propensity+for+consuming+ethanol+in+Drosophila+requires+rutabaga+adenylyl+cyclase+expression+within+mushroom+body+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Brain+Behav%22%5BJournal%5D)">The propensity for consuming ethanol in Drosophila requires rutabaga adenylyl cyclase expression within mushroom body neurons.</a> Genes Brain Behav. 11, 727-739 (2012).</li>
<li>Devineni, A. V., Heberlein, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+evolution+of+Drosophila+melanogaster+as+a+model+for+alcohol+research%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The evolution of Drosophila melanogaster as a model for alcohol research.</a> Annu Rev Neurosci. 36, 121-138 (2013).</li>
<li>Ro, J., Harvanek, Z. M., Pletcher, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FLIC%3A+high-throughput%2C+continuous+analysis+of+feeding+behaviors+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">FLIC: high-throughput, continuous analysis of feeding behaviors in Drosophila.</a> PloS one. 9, 101107(2014).</li>
<li>Itskov, P. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+monitoring+and+quantitative+analysis+of+feeding+behaviour+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Automated monitoring and quantitative analysis of feeding behaviour in Drosophila.</a> Nat Commun. 5, 4560(2014).</li>
<li>Yapici, N., Cohn, R., Schusterreiter, C., Ruta, V., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Taste+Circuit+that+Regulates+Ingestion+by+Integrating+Food+and+Hunger+Signals%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A Taste Circuit that Regulates Ingestion by Integrating Food and Hunger Signals.</a> Cell. 165, 715-729 (2016).</li>
<li>Peru, Y. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-lasting%2C+experience-dependent+alcohol+preference+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Addict+Biol%22%5BJournal%5D)">Long-lasting, experience-dependent alcohol preference in Drosophila.</a> Addict Biol. 19, 392-401 (2014).</li>
<li>Dus, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nutrient+Sensor+in+the+Brain+Directs+the+Action+of+the+Brain-Gut+Axis+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Nutrient Sensor in the Brain Directs the Action of the Brain-Gut Axis in Drosophila.</a> Neuron. 87, 139-151 (2015).</li>
<li>Anderson, D. J., Adolphs, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+framework+for+studying+emotions+across+species%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A framework for studying emotions across species.</a> Cell. 157, 187-200 (2014).</li>
<li>Gibson, W. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+responses+to+a+repetitive+visual+threat+stimulus+express+a+persistent+state+of+defensive+arousal+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Behavioral responses to a repetitive visual threat stimulus express a persistent state of defensive arousal in Drosophila.</a> Curr Biol. 25, 1401-1415 (2015).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

ここでは、Devineniらによって説明された以前の研究に基づいて、報酬を求める行動の変化を測定するための統合アプローチの詳細を示します。6 および Shohat-Ophir et al 5.プロトコルの最初のセクションでは、経験入力としてさまざまな種類の性的相互作用を使用し、2 番目のセクションでは、2 つの選択摂食アッセイを使用して、エタノールの消費の好みに対する経験の影響を評価します。
Devineniらによって示されているように 。6、ハエにおけるエタノール自己投与は堅牢な行動であり、最初は低くて可変的な好みによって特徴付けられ、時間の経過とともに増加し、より一貫性が増します。発達する好みは、ハエがエタノールの薬理学的効果をその位置に関連付けることを学ぶプロセスを反映している可能性がありますが、その不快な味6 およびエタノール蒸気への最初の曝露中に発生することが知られている嫌悪反応11。エタノール含有毛細管の位置...

経験に応じて、行動の修正は、動物がその環境1の変化に彼らの行動を調整することができます。このプロセスの間、動物は、外部環境の変化する条件で、内部の生理的状態を統合し、その後の生存と再生のチャンスを高めるために、別の上で1つのアクションを選択します。報酬システムは、飲食、またはそのような子孫2のための性行動や思いやりなどの長期生存を確保するものとして、即時の生存率を高める行動を補強することにより、個人および種の生存のために必要とされる行動を動機づけるように進化しました。そのような乱用薬物などの人工化合物はまた、天然の報酬2を仲介共同オプトイン神経経路によって報酬系に影響を与えます。 最後の二十年の間に、果実はキイロショウジョウバエが molecを研究するための有望なモデルとして確立されている飛びますウラルと行動3,4にエタノールの影響を形成している神経メカニズム。 以前、我々は、薬物報酬5を得るための動機に、ハエにおけるペプチド性ニューロンのサブセット（NPF / NPF受容体（R）ニューロン）などの性的経験としてそのカップル自然の報酬を、同定しました。 NPF式は、両方の性的な経験にし、例えば、エタノール中毒などの薬物の報酬に敏感です。 NPF発現レベルの変化は、高NPFが減少し、低NPFがエタノールを消費する設定を増加させ、エタノール自己投与5、の変化に変換されます。彼らはまた、減少したエタノール消費により反射され活性化、とペアになって臭いのための強い好みを表示するようNPFニューロンをアクティブにすると、ハエのためにやりがいのあります。さらに重要なことは、NPFニューロンの活性化は、エタノール中毒と臭気キューとの間に正の関連を形成するハエの能力を妨害します。 NPF / Rとの間の因果関係システム、報酬のメモリ、およびエタノール消費は1つが報酬の状態5の変化の指標としてエタノール自己投与を使用することができることを示唆しています。 この公報では、報酬の状態でフラ​​イ自然の報酬システムおよびアッセイの変更を活用するための統合的なアプローチを実証します。アプローチは、報酬の状態の変化の推定値としてエタノール自己投与を評価するために、2つの選択肢のキャピラリーフィーダーアッセイ（CAFE）に続いて2つの部分、自然の報酬関連の経験を操作するための訓練プロトコルで構成されています。 CAFEアッセイは、薬物自己投与のための齧歯類試験で使用される2つのボトルの選択アッセイに類似しており、ハエ6中毒のような動作の特定の特性を反映することが示されています。

<table><tbody><tr><td>ポリスチレン 25 x 95 mm バイアル</td><td>FlyStuff</td><td>32-109</td><td></td></tr><tr><td>狭いプラスチックバイアル flugs</td><td>FlyStuff</td><td>42-102</td><td></td></tr><tr><td>使い捨て滅菌針 18 G および 27 G&nbsp;</td><td>任意の会社</td><td></td>で取得することができます <td>1.20 X 38 mm (18 G x 1 1/2") 、0.40 X 13 mm (27 G x 1/2 インチ)</td></tr> <tr><td>10 x 75 mm ホウケイ酸ガラス 使い捨て培養チューブ</td><td>キンブルチェイス</td><td>73500-1075</td><td></td></tr><tr><td>校正済みピペット 5 &#956;L</td><td>VWR</td><td>53432-706</td><td>は、5&#956を含むように白で色分けされています。L</td></tr><tr><td>ミネラルオイル&nbsp;</td><td>シグマ・アルドリッチ&nbsp;</td><td>M5904</td><td></td></tr><tr><td>ショ糖、分子生物学グレード</td><td>CALBIOCHEM</td><td>573113</td><td></td></tr><tr><td>微生物学のための酵母抽出物粉末</td>は<td>、任意の会社</td><td></td><td></td>で取得することができます</tr><tr><td>エタノール</td><td>Sigma-Aldrich&nbsp;</td><td>32221</td><td></td></tr><tr><td>標準ピペットチップ(マイクロピペット)</td><td>ThermScientific</td><td>T114R-Q</td><td>容量:0.1-20 &#956;L (ウルトラマイクロ)</td></tr><tr><td>IDENTI-PLUGS (フォームチューブプラグ)</td><td>Jaece</td><td>L800-A</td><td>は開口部に適合 6 - 13 mm</td></tr><tr><td>IDENTI-PLUGS (フォームチューブプラグ)</td><td>Jaece</td><td>L800-D</td><td>は開口部に適合 35 - 45 mm</td></tr><tr><td>バージネーターフライストック&nbsp;</td><td>ブルーミントンショウジョウバエストックセンター</td><td>#24638</td><td></td></tr><tr><td>ナローバイアル、トレイパック(PS)</td><td>ジェネシーサイエンティフィックコーポレーション</td><td>&nbsp;#32-109BR</td><td></td></tr><tr><td>ショウジョウバエメディアレシピと方法</td><td>ブルーミントンショウジョウバエストックセンター</td><td>http://flystocks.bio.indiana.edu/Fly_Work/media-recipes/molassesfood.htm</td><td></td></tr><tr><td>プロピオン酸</td><td>シグマアルドリッチ&nbsp;</td><td>P5561</td><td></td></tr>リン酸<tr><td></td><td>Sigma-Aldrich&nbsp;</td><td></td><td></td>W290017</tr><tr><td>Methl 4-ヒドロキシ安息香酸</td><td>Sigma-Aldrich&nbsp;</td><td>H3647</td><td></td></tr><tr><td>寒天は</td><td>、任意の会社</td><td></td><td></td>で取得することができます</tr><tr><td>コーンミール</td>は<td>、お</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ばあちゃんの糖蜜</td><td>B&で取得することができます。G Foods、Inc</td><td></td>は、<td></td></tr><tr><td>インスタントドライイースト</td>は<td>、任意の企業が</td><td></td><td></td>取得することができます</tr></tbody></table>

使用して報酬を求める行動の変化を測定するための簡単な方法<em&gt;キイロショウジョウバエ</em

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

私たちは、報酬の状態の変化のためのプロキシとしてミバエ（ キイロショウジョウバエ ）にエタノール自己投与を測定するためのプロトコルについて説明します。私たちは、ハエの報酬システムを活用自然の報酬に関連した経験を変更し、報酬の状態の変化の指標として自主的なエタノール消費を使用する簡単な方法を示しています。アプローチは、内部状態の経験媒介性変化に役割を果たしニューロンおよび遺伝子を研究するための関連ツールとして機能します。やりがいとnonrewarding経験にハエを露出させ、および薬物報酬を得るために、モチベーションの尺度として自主的なエタノール消費をアッセイ：プロトコルは、2つの別個の部分から構成されます。 2つの部分はそれぞれ、さらに下流のアッセイのための最初のステップとして、または独立した二選択摂食アッセイとして経験の調節を誘導するために独立して使用することができます。プロトコルは、複雑な設定を必要としないため、任意の研究所で適用することができます基本的なフライ培養ツールとyの。

FPreviously、Devineni ら。ショウジョウバエは、エタノール含有食品を摂取するための選択肢が与えられたとき、彼らは食糧6を含むnonethanolオーバーエタノール含有食品に対する強い好みを表示することを示しました。ここに示したトレーニングプロトコルを受けていないナイーブ男性のハエの生来のエタノール嗜好を分析するときに我々が得たいくつかの代表的な結果です。 ナイーブカントンS男性のハエは4日齢まで熟成させ、羽化時に集め、4日間（ 図2）の過程でエタノールを消費する彼らの生得的な好みについてアッセイしました。展示にnonethanol食品の上に15％エタノール食品を消費するための堅牢な嗜好（ 図2）ハエエタノールとnonethanol含有溶液のショーから消費量を分析します。 <p class="jove_content" ...

私たちは、報酬の状態の変化の指標として自主的なエタノール消費を使用して、ミバエ（ キイロショウジョウバエ ）にやりがいとnonrewarding経験を誘導するためのプロトコルについて説明します。

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We ...

この手順の全体的な目的は、報酬状態の変化の指標として、ショウジョウバエにおけるエタノールの自己投与量を測定することです。この手法は、経験が脳内でどのように符号化され、それが行動の変容につながるかといった、神経科学における重要な疑問を解決するのに役立ちます。この技術の主な利点は、比較的シンプルであり、複雑な装置を必要としないことです。本プロトコルは、2つの独立したパートで構成されています。1つ目は、ハエに報酬ありおよび報酬なしの経験をさせることであり、2つ目は、薬物報酬を得ようとする動機付けの指標として、自発的なエタノール摂取量を測定することです。これら2つのパートは、それぞれ独立して使用することが可能です。後続のアッセイに向けた初期段階として経験による変調を誘導するため、あるいは独立した2択飼育アッセイとして実施します。本手順のデモンストレーションは、私の研究室の修士課程学生であるShir Zerと、大学院生のJulia Ryvkinが行います。キャピラリーフィーダーを構築するために、まず側面に小さな穴が開いた標準的なショウジョウバエ用バイアルを用意します。カミソリを使用して、バイアルのプラグを十字方向に半分に切断します。キャピラリーホルダーを配置するため、プラグの表面に正方形になるように4つの点に印を付けます。18ゲージの針を用いて、印を付けた位置にプラグを貫通する4つの穴を開けます。次に、マイクロピペットを用いて穴を広げます。カミソリでマイクロピペットを4本カットし、5 µLガラスキャピラリーをしっかりと固定できるようにします。これらを準備したプラグの穴に挿入します。エタノールを入れる2本のキャピラリーのプラグに位置を印付けします。次に、マイクロ遠心チューブラックにガラスバイアルを配置します。ショウジョウバエ用培地を溶かし、各バイアルに2 mLずつ注ぎます。餌を固めてから、バイアルをプラスチックラップで覆います。まず、小さなバイアルに分けて隔離飼育していた雄のハエを用意します。これらをランダムに2つのグループに分けます。報酬を得る交配体験を行う群と、報酬を得ない交配体験を行う群に分けます。まず報酬を得ない群について、各バイアルに既交配の雌を追加します。次に報酬を得る群について、各バイアルに処女雌を追加します。交配の様子を観察し、処女雌と接した雄が最初の1時間以内に正常に交配すること、および既交配の雌と接した雄が交配しないことを確認します。交配群が実際に交配し、拒絶群が交配に至らなかったことを確実にするため、注意深く観察することが不可欠です。1時間後、拒絶コホートの中で交尾に成功したオスと、交尾済みコホートの中で最初のトレーニングセッション終了までに交尾しなかったオスを実験から除外します。非報酬条件の、以前に交尾したメスを吸引して取り出すことで条件付けセッ

a-simple-way-to-measure-alterations-reward-seeking-behavior-using

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

キイロショウジョウバエでは、世紀の1以上にわたり、多くの重要な生物学的過程の分子および細胞基盤を理解するために使用されている遺伝的に行動的に扱いやすいモデル系である。...

アッセイのメソッドショウジョウバエ行動

ショウジョウバエの幼虫は味覚報酬で匂い刺激を関連付けることができます。ここでは、食欲の連想嗅覚学習の分析を可能にする単純な行動パラダイムを記述します。...

で食欲連想嗅覚学習<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;幼虫

このビデオでは、ショウジョウバエの給餌アッセイについて、着色食品を使用して摂食を監視し、添加された化合物が摂食活動に及ぼす影響について説明しています。この例のプロトコルは、いくつかの内分泌かく乱化学物質(EDC)の影響をテストします。...

摂食試験:ショウジョウバエの摂食嗜好の評価

このビデオでは、味覚選好アッセイについて説明しています。これは、好みの物質を摂取した後のハエの腹部の色を評価することにより、味が異なる色付きの溶液への引きつけまたは回避を測定するために使用される行動方法です。注目のプロトコルは、さまざまなショ糖濃度の溶液に対するハエの好みを測定するために使用される手順を示しています。...

Taste Preference Assay:ショウジョウバエの摂食行動を測定する方法

このビデオの記事では、我々は大人のフルーツキイロショウジョウバエを飛んでの嗅覚に依存する食品の検索行動に空腹や満腹の効果を測定するための自動化されたアッセイを説明します。...

での採餌行動のためのシングル·フライアッセイショウジョウバエ

ここでは、ストレスを受けた個人の回避を定量化するためのプロトコルを提示します。このパラダイムは強力でありながらユーザーフレンドリーであり、Drosophila...

社会回避での定量化のための簡単​​なアッセイキイロショウジョウバエ

このプロトコルは、Drosophila melanogasterの産卵嗜好を単一動物の解像度でテストするためのハイスループットアッセイを説明しています。...

個々の産卵環境を調べるために、ハイスループットアッセイ<em&gt;キイロショウジョウバエ</em

ここでは、最大100匹のビネガーフライ（Drosophila...

のコンピュータ追跡することによってアッセイ嗅覚行動<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt; 4象限オルファクトメーターで

この記事では、モチベーションを研究するために、ショウジョウバエの melanogaste rの雄交尾ドライブを使用する行動アッセイを記載します。この方法を使用して、研究者は、この動機の根底にある、分子遺伝学、および細胞メカニズムを解明するために、高度なフライ神経遺伝技術を利用することができます。...

測定とマレの変更交尾ドライブ<em&gt;キイロショウジョウバエ</em

我々はショウジョウバエDrosophila melanogasterの交尾行動に影響を与える環境および遺伝的合図を分析するためのアッセイを実証する。...

環境内の交信が交配行動に及ぼす影響を調べる方法<em&gt;ショウジョウバエmelanogaster</em

ショウジョウバエにおける糖誘発局所探索行動の追跡

学ぶ：Drosophila melanogasterを用いて、報酬状態の変化をエタノール自己投与で測定する簡便な神経科学手法。このプロトコルは動機づけと行動変容の研究に有用です。

使用して報酬を求める行動の変化を測定するための簡単な方法

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