Name: ライブイメージングは、タキサン耐性乳癌における微小管の動的不安定性を研究するために (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 2 s
Description: 学ぶドセタキセル耐性乳がん細胞における微小管動的不安定性の測定法。GFPチューブリン発現とデコンボリューション顕微鏡を用いたライブイメージングにより、薬剤処理下の微小管挙動を可視化し、がん細胞の薬剤耐性メカニズム解明に貢献します。

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この研究はCBCF(ZW)からの資金提供によって支えられています。

1.ライブイメージング用の細胞を準備<ol><li> 細胞培養および播種 <ol><li>ドセタキセル（MCF-7 TXT）及びその非耐性の親細胞株（MCF-7 CC）に対する耐性について選択されたMCF-7乳癌細胞を使用します。詳細な選択プロセスおよびこれらの選択された細胞株の特徴づけは、以前24に記載しました。 </li><li>ダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）及びウシ胎児血清（FBS）10％90％からなる非必須アミノ酸を補充した培地中で、37℃で10cmの培養皿内のすべての細胞を増殖させます。 5％CO 2雰囲気中で培地を維持します。 5 nMのドセタキセルでMCF-7 TXT細胞を維持します。 </li><li>ライブイメージングのためのカバースリップ上にシード細胞。 70％アルコールでそれらをすすぎ、次いで一晩UVへの露光24によってmmのポリ-L-リジンでコーティングしたカバーガラスを滅菌します。 35ミリメートルの6ウェル培養プレートにカバースリップを置きます。 PL各ウェル中のエース1カバーガラス。 </li><li> 10 cmの培養皿から培地を除去し、PBSで細胞を洗浄。皿から細胞を剥離するために皿にトリプシンEDTAの0.5 mLを加え。細胞の剥離、次のトリプシンを中和するために皿に培地の5ミリリットルを追加します。 </li><li>単位体積あたりの細胞の数を決定するために、血球計数器で細胞を数えます。 </li><li>各ウェルの単位体積当たりの細胞数に基づいて、およそ10 5個の細胞を加えます。静かに振とうした後、細胞をカバーグラスに付着することを可能にするためにインキュベーターにバックプレートを置きます。 </li></ol></li><li> GFPタグ付きαチューブリンの発現 <ol><li>微小管ダイナミクスをアッセイするために、製造業者のプロトコルに従って、商業GFP伝達制御（ 例えば、BacMamによって）でGFPタグ付きαチューブリンで細胞を形質導入します。 </li><li> 37℃の細胞培養インキュベーター中で36時間、ウェル中の細胞は、COM可能にする培養plete接着および60％のコンフルエンス。 </li><li>次式に従って、各ウェルに追加するには、GFPタグαチューブリンの適切な量を計算します。 <img alt="方程式" src="/files/ftp_upload/55027/55027eq1.jpg" /> 細胞数は、標識の際にウェルの細胞の推定総数であり、所望のPPCは、セル当たりの粒子数です。 注：MCF-7細胞を播種は20の所望のPPCと10 5〜2×10から細胞数を倍増している必要があり、各カバースリップに必要な量は、したがって、40μLです。異なる細胞については、上記の式に基づいて算出ボリュームが最善ではないかもしれません。正確な量は、GFP-チューブリンの実際の発現レベルに応じて調整する必要があります。 </li><li>均一な溶液を確保するために反転させることによって、GFPタグ付きαチューブリンを数回混ぜます。ボルテックスしないでください。 注：コントロールのために、ヌル（コントロール）試薬は、任意の哺乳動物の遺伝子を欠いています要素とは、潜在的なバキュロウイルス媒介性効果とバックグラウンド蛍光を決定するのを助けるために使用することができます。非標的GFP伝達制御もセル全体を点灯しており、使用することができます。 </li><li>新鮮な培地で培養液を交換してください。各ウェルに新しいメディアの2 mLおよびGFPタグ付きαチューブリンの40μLを追加します。 </li><li>培養培地でGFPタグαチューブリンの完全な混合を可能にするために、静かにプレートを振ります。培養プレートをインキュベーターに戻し、GFPチューブリンの発現を可能にするために、24時間インキュベートします。 </li></ol></li><li> ドセタキセルで細胞を扱います 注：この実験は、微小管動的不安定性に対するドセタキセルの効果をテストすることです。したがって、細胞は、ドセタキセルの所望の濃度で処理しました。 <ol><li> DMEM 90％FBSおよび10％を構成し、非必須アミノ酸を補充した培地を調製。フェノールレッドはfluorescenに干渉する可能性があるため、フェノールレッドを含まないDMEMを使用しますGFPチューブリンのCE。 （10 nMの〜10μMの範囲）ドセタキセルの所望の濃度を追加します。ドセタキセルの原液をジメチルスルホキシド（DMSO）中10mMです。 </li><li>組織培養インキュベーター中で37°Cにドセタキセル含有培地を予め温めます。 </li><li>ドセタキセル含有培地での通常の培養培地を交換し、組織培養インキュベーター中で30分間インキュベートします。各ドセタキセル濃度についてウェルあたり少なくとも3カバースリップがあるはずです。 </li></ol></li></ol> 2.ライブイメージングは​​、微小管の動的不安定性を検査します<ol><li> システムのセットアップ <ol><li> 37℃、5％CO 2に維持し、チャンバ内の実験を行います。倒立蛍光顕微鏡にCCDカメラで60X、1.42 NA油の対物レンズを搭載した顕微鏡システムを用いて、時間経過により蛍光画像を取得します。 </li><li>ライブイメージングのための細胞を設定します。プリ暖かい両方の試料ホルダーと37°Cまでの媒体。調べるために、カバースリップを選択してください。試料ホルダーに関心のカバースリップをマウントして、ステップ1.3.1で製造したドセタキセル含有培地1mLでそれをインキュベートします。 </li></ol></li><li> 微小管動的不安定性のライブイメージング <ol><li>イメージングのために使用される細胞を同定します。彼らは、平坦で発現したGFP-チューブリンの高い蛍光強度を持ち、明確な微小管構造を有していなければなりません。 </li><li>まず調べるために、ステップ2.2.1から同定された細胞の群からの1つのセルを選択します。同定された細胞の周辺領域に焦点を当てています。露光時間と画像取得の頻度のためのプログラムを設定します。露光時間は、通常0.5秒であるように、画像は、あらゆる2つのSを取得します。 </li><li> 1.33から2.2.3へのステップのための追加の20分を許可します。このように、正確に50分ドセタキセルを加えた後、ステップ1.3.3で説明したように、（これは標準化のためである）イメージングを開始します。 </li><li>微小管dを記録しynamics 2分間、写真ごとに2秒を取ります。合計では、同定された細胞のための60の画像を取得します。 </li><li>次の識別されたセルに移動し、手順を繰り返し2.2.4に2.2.2。 5個の細胞が撮像されるまでの手順を繰り返します。時間は、ドセタキセルの添加後70分に到達する前に、ステップ1.3.3に記載のように、これを行うことが不可欠です。 </li><li>各処理条件については、繰り返しは3つの異なるカバースリップのために2.2.5に2.2.1を繰り返します。合計では、画像15細胞、十分なデータが微小管の動的不安定性を測定することです。 </li></ol></li></ol> 3.画像処理およびデータ解析<ol><li> 画像のデコンボリューション <ol><li>高品質を達成するために取得した画像をデコンボリューション。顕微鏡システムを装備したデコンボリューションプログラムを開きます。 </li><li> 「プロセス」をクリックして選択し、 &quot;逆畳み込みを。」 「入力」ウィンドウに画像ファイルをドラッグし、クリックして &quot;Doを」画像ファイルは、デコンボリューション、およびれますデコンボリューションファイルは自動的に新しいファイルとして保存されます。 </li></ol></li><li> 動画の生成 <ol><li>装備ソフトウェアで開くように復元画像ファイルをクリックします。 </li><li> 「ファイル」をクリックして選択し、「ムービーとして保存します。」 「AV」と「アニメーションスタイル」と「ムービーのフォーマット」を選択し「進みます。」 「100％」から「圧縮品質」と「フレームレート」を設定します &quot;5 /秒。」 </li><li> 「時間を通してアニメイト」のボックスをチェックして、クリックして &quot;それをしなさい。」ビデオが生成されます。 </li></ol></li><li> 微小管の短縮と成長率の測定 <ol><li>測定に使用される微小管を同定します。各セルについて、ほんの数微小管は、その短縮や成長がはっきりと完全に従っていることができるようになります。 </li><li>微小管Aの開始長さを示すフレームを識別するために、ビデオの各フレームを調べますndはほとんどの延長または短縮微小管とフレーム。 2微小管と2フレーム間の経過時間と長さの変化を測定します。 </li><li>時間によって長さの変化を分割することによって増殖または短縮の速度を計算する（単位はミクロン/ sです）。各処理条件については、少なくとも10個の細胞に従うと、少なくとも20微小管を測定します。 </li><li>各処理条件に対する平均と標準誤差を計算します。学生の試験を使用して条件間の統計的差異を分析します。表中および/またはグラフ内のデータを報告します。 </li></ol></li></ol>

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著者は、彼らが競合する金融利害関係を持たないことを宣言します。

in vitroおよびin vivoで ：微小管動的不安定性を測定するための2つの主要な方法があります。 インビトロの方法では、精製されたチューブリンは、コンピュータ増強経時微分干渉コントラスト顕微鏡法を用いて微小管の動的不安定性を測定するために使用されます。 インビボ法では、蛍光チューブリンのマイクロインジェクション、またはGFPチューブリンを発現し、微小管に取り込まれます。微小管の動態（増殖および短縮）を、間期細胞の10、20、25の周辺領域に感度カメラを用いて、経時により記録されます。顕微鏡の各種この目的のために使用されてきたが、ここで報告されたプロトコルは、デコンボリューション顕微鏡を使用します。 生体内では 、動的不安定性は、一方のみが微小管プラス端（βチュー...

<html>乳癌死亡率の主要な原因は、転移1,2を介してです。例えば、ドセタキセルおよびパクリタキセルのようなタキサンは、現在、転移性乳癌2、3、4、5、6の処置における第一選択レジメンとして使用されます。彼らは、微小管ダイナミクスを混乱させる微小管標的とするエージェント（MTA）のグループの一部です。しかし、治癒的療法にタキサンを使用する最大の課題の一つは、疾患再発7につながる、癌細胞におけるタキサン耐性の発生です。薬剤耐性は、転移性乳癌7患者における全死亡の90％以上を占めています。 微小管は、α-およびβチューブリンヘテロ二量体の重合により形成されていますクラス= &quot;外部参照&quot;&gt; 8、9。微小管動態の正確な調節は、細胞の分極、細胞周期の進行、細胞内輸送、および細胞シグナル伝達を含む多くの細胞機能にとって重要です。微小管およびそれらの力学の調節不全は、細胞機能を破壊し、細胞死10、11をもたらします。彼らは、この調節不全を引き起こす方法に応じて、MTAの薬物は、微小管安定化剤（ 例えば、タキサン）または微小管destabalizing剤（ すなわち、ビンカアルカロイドまたはコルヒチン部位結合剤）20のいずれかに分類することができます。微小管の質量に対するその反対の効果にもかかわらず、十分な用量で、両方のクラスは、微小管ダイナミクス21への影響を介してがん細胞を殺すことができます。 主につながる、微小管スピンドル12を安定化させることにより、タキサン機能染色体不整列。紡錘体チェックポイント（SAC）のその後の永遠の活性化は、有糸分裂中の細胞を逮捕します。長時間の有糸分裂の停止は、その後アポトーシス13、14が発生します 。タキサンは、組み立てられたチューブリン16にのみ存在するβチューブリン8、15、上タキサン結合部位を介して微小管と相互作用します。 タキサン耐性のための複数のメカニズムは、 図9に示すように 、17が提案されています。これらのメカニズムは、原因薬剤排出タンパク質の過剰発現およびタキサン固有抵抗5への一般的な多剤耐性、9、18、19の両方が含まれます。例えば、タキサン耐性癌細胞は、特定のβ-浴槽の発現および機能が変化していてもよいですグロブリンは、5、9、19、20、21、22、23をアイソタイプ。微小管の動的不安定性を測定するためのin vivo法を用いて、我々は、非耐性、親MCF-7 CCセル 17と比較した場合、ドセタキセル耐性MCF-7 TXT細胞の微小管の動態は、ドセタキセル治療に非感受性であることを示しています。 より良いのMTAの機能と癌細胞におけるタキサン耐性の正確なメカニズムを理解するためには、微小管動態を測定することが不可欠です。ここで、我々はそうすることのin vivo法を報告しています。細胞中のGFPタグ付きチューブリンの発現と組み合わせてライブイメージングを用いて、我々は、MCF-7 TXTおよびMCF-7 CC細胞ととWiの微小管動態を測定することができますドセタキセル治療thout。結果は、私たちは、タキサン抵抗性を克服することができ、より効果的な薬物を設計するのに役立つことができます。

<table><tbody><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5796</td><td></td></tr><tr><td>Non-essential amino acids</td><td>Life Technologies, Invitrogen</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Gibco, Invitrogen</td><td>12483</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Anti (100x)</td><td>Life Technologies, Invitrogen</td><td>15240-062</td><td></td></tr><tr><td>ドセタキセル</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>01885-5mg-F</td><td></td></tr><tr><td>DMEM フェノール レッドフリー</td><td>Gibco, Invitrogen</td><td>21063</td><td></td></tr><tr><td>CellLight 試薬 *BacMam 2.0* GFP-tubulin</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>C10613</td><td>細胞内で GFP チューブリンを発現するための主要な試薬</td></tr><tr><td>CellLight 試薬 *BacMam 2.0* GFP</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>B10383</td><td>Control</td></tr><tr><td>Dimethyl Sulfoxide (DMSO)</td><td>Sigma-Aldrich+B9:AA9</td><td>472301</td><td>デセタキセルの分解用</td></tr><tr><td>22mmガラスコーブスリップ</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック</td><td>12-545-101</td><td></td></tr><tr><td>6ウェル培養プレート</td><td>グライナー・バイオワン・インターナショナル</td><td>6ウェル・セリ・カルチャープレート</td><td></td></tr><tr><td>デルタビジョン顕微鏡イメージングシステム</td><td>GEヘルス</td><td></td><td>このシステムには、温度とCO2を制御するためのウェザーステーションが装備されています。また、デコンボリューションとタイムラプス制御のためのWorxソフトウェアも装備していました。</td></tr><tr><td>トリプシンEDTA(0.25%)、フェノールレッド</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>25200056</td><td></td></tr><tr><td>Bright-Line Hemacytometerセット、Hausser Scientific</td><td>Hausser Scientific、VWR</td><td>サプライヤー番号:1492 VWR番号:15170-172</td><td></td></tr></tbody></table>

ライブイメージングは​​、タキサン耐性乳癌における微小管の動的不安定性を研究するために

Live Imaging to Study Microtubule Dynamic Instability in Taxane-resistant Breast Cancers

ドセタキセルなどのタキサンは、癌の治療に一般的に依存している微小管標的薬(MTA)のグループに属しています。しかし、がん細胞のタキサン耐性は、薬剤の長期使用の有効性を劇的に低下させます。蓄積された証拠は、タキサン耐性の根底にあるメカニズムには、薬物排出タンパク質の過剰発現による多剤耐性の発現などの一般的なメカニズムと、微小管のダイナミクスが関与するタキサン特異的なメカニズムの両方が含まれていることを示唆しています。
タキサンは細胞の微小管を標的としているため、微小管の動的不安定性を測定することは、タキサン耐性のメカニズムを決定するための重要なステップであり、この耐性を克服する方法についての洞察を提供します。実験では、in vivo法を用いて微小管の動的不安定性を測定しました。GFPタグ付きα-チューブリンを発現させ、MCF-7細胞の微小管に取り込むことで、高感度カメラを用いたタイムラプスによる微小管ダイナミクスの記録を可能にしました。その結果、非耐性の親MCF-7CC細胞とは対照的に、ドセタキセル耐性MCF-7TXT細胞の微小管動態はドセタキセル治療に感受性がなく、これがドセタキセル誘発性有糸分裂停止およびアポトーシスに対する耐性を引き起こすことが示されました。この論文では、微小管の動的不安定性を測定するこのin vivo法について概説します。

ここに提示されたプロトコルを使用して、我々は、通常の微小管動態（MCF-7 CC）とドセタキセル耐性（MCF-7 TXT）乳癌細胞に対するドセタキセルの効果を研究しました。画像の二組は、MCF-7 CC及びMCF-7 TXT細胞 （ 図1A）における微小管の成長と短縮にドセタキセル（0.5μM）の効果を示します。 我々はまた、2つの細胞株のために、これらの条件下で微小管の成長または短縮率を計算し、0.5μMで、ドセタキセルを強くMCF-7 CC細胞のチューブリン動態なく、MCF-7 TXT細胞 （ 図1B）を阻害することを示しました。 ...

この論文では、ドセタキセル抵抗性乳がん細胞(MCF-7TXT)における微小管の動的不安定性を測定するためのin vivo法を説明するプロトコルを報告します。この方法では、デコンボリューション顕微鏡イメージングシステムを使用して、標的細胞におけるGFP-チューブリンの発現を検出します。

Taxanes such as docetaxel belong to a group of microtubule-targeting agents (MTAs) that are commonly relied upon to treat cancer. However, taxane ...

この実験の全体的な目標は、ドセタキセル耐性乳がん細胞の微小管の動的不安定性を測定することです。この方法は、生理学的条件下での微小管の動的不安定性に関する細胞生物学の分野における重要な疑問に答えるのに役立ちます。また、さまざまな薬物治療の後でも、この手法は有用です。この技術の主な利点は、生細胞の微小管ダイナミクスを研究するためのシンプルで信頼性が高く、生理学的に適用可能なプロトコルを提供することです。手順を開始する前に、10 cmの培養皿で37°C、5%二酸化炭素の完全培養培地で乳がん細胞を適切な密度で増殖させます。実験前日、24mmポリL-リジンコーティングガラスカバースリップを70%アルコールですすぎ、一晩UVライトにさらします。翌朝、カバースリップを6ウェルプレートの各ウェルに1枚ずつ入れます。次に、培養物をPBSで洗浄し、各皿の細胞を0.5ミリリットルのトリプシンEDTAで分離します。細胞がプレートの底から持ち上げられ始めたら、5ミリリットルの新鮮な培地でトリプシンを中和し、細胞を数えます。次に、各カバースリップに5番目の細胞を約10倍加え、プレートを静かに振って、細胞をインキュベーターに少なくとも36時間戻します。細胞の微小管動態を測定するには、GFPタグ付きαチューブリンストック溶液を反転して数回混合し、ボルテックスのない均質な溶液を確保します。次に、各ウェルの培地を、40マイクロリットルのタグチューブリンを含む2ミリリットルの新鮮な培地と交換します。プレートを静かに振ってマーカーを培養培地と完全に混合し、プレートをさらに24時間インキュベーターに戻します。翌日、培養培地をドセタキセルを含む新しい培地と交換し、プレートをインキュベーターに30分間戻します。細胞を阻害している間に、倒立蛍光顕微鏡の電源を入れ、サンプルホルダーを摂氏37度に予温します。次に、60X 1.42 NAオイル対物レンズを選択し、最初のカバースリップをサンプルホルダーに取り付けます。サンプルを1ミリリットルの新鮮な摂氏37度のドセタキセル含有培地で覆い、高GFPタグ付きαチューブリン蛍光強度を示し、微小管構造がはっきりと見えるフラットセルのクラスターを見つけます。クラスター内のセルの1つの周辺領域に焦点を合わせ、画像取得頻度に適切な露光時間を設定します。ドセタキセルの最初のアリコートを追加してからちょうど50分後に、微小管のダイナミクスを2分間記録し始め、2秒ごとに写真を取得します。すべての画像を取得したら、各ドセタキセル濃度の3つのウェルすべてから合計5つの細胞の画像が取得されるまで、示したばかりの次の細胞を画像化します。各阻害剤濃度についてすべての画像を取得したら、顕微鏡システム内でデコンボリューションプログラムを開き、クリックプロセスを行います。次に、deconvolve

live-imaging-to-study-microtubule-dynamic-instability-taxane

Research

JoVE Journal

Cancer Research

がん研究

骨転移の実験的マウスモデルは、ルシフェラーゼを発現する乳腺腫瘍細胞の心臓内の送達後に設立されました。開発腫瘍と溶骨性病変の結果は、生物発光とマイクロCT画像を縦方向にモニターした。...

生物発光とマイクロCTイメージングで腫瘍転移と溶骨性病変の監視

低酸素誘導因子-1αの活性の生物発光イメージングは​​、乳がんの脳転移のマウスモデルにおける頭蓋内腫瘍の低酸素症の開発を監視するために適用されます。...

マウスモデルにおける乳がんの脳転移の腫瘍の低酸素動態の in vivo生物発光イメージングに

我々は、抗癌治療への応答のイメージングのための方法を説明...

乳癌のマウスモデルにおいて腫瘍微小環境における薬剤応答のイメージングを生きる

タイムラプスイメージングは​​、特定の行動のパラメータと異なる遺伝的病変の間に相関があるかどうかを判断するために乳癌リスクの遺伝子改変モデルマウス由来の初代前腫瘍性乳腺上皮細胞の挙動を評価するために使用される。...

乳がんの遺伝子改変マウスモデル由来の初代前癌乳腺上皮細胞のタイムラプスイメージング

トランスジェニックレポーターマウスと注射可能な蛍光標識を使用することにより、長期の生体内スピニングディスク共焦点顕微鏡法は、ApcMin/+結腸直腸癌モデルにおける骨髄細胞の挙動を腸腺腫に直接可視化することを可能にします。...

における骨髄細胞ダイナミクスのリアルタイムイメージングのApc最小/ +腸腫瘍ディスク共焦点顕微鏡スピニングすることにより

ここでは、抗がん治療薬に応答して単一細胞を縦断的に追跡する長期のタイムラプス顕微鏡法について説明します。...

鏡の国のアリス：単一細胞のタイムラプス顕微鏡と縦トラッキング抗がん治療薬を研究します

このプロトコルは、単一細胞の解像度で、生体内で 、リアルタイムで多細胞相互作用の延長タイムラプスイメージングを実行するための多光子顕微鏡の使用を記載しています。...

腫瘍微小環境におけるリアルタイム多細胞ダイナミクスの拡張タイムラプス生体内イメージング

ここでは、TIP60 枯渇 MCF10A 乳房の上皮細胞を用いた創傷治癒のアッセイで細胞遊走のリアルタイム モニタ リングを提案します。生細胞イメージング...

乳腺上皮細胞移行 TIP60 の一時的な枯渇後のライブ イメージング

住セルイメージ投射は、固定細胞イメージングだけで達成可能ではない単一セルまたは全体人口の豊富な情報を提供します。ここでは、下記の抗有糸分裂薬パクリタ キセルで治療細胞運命決定を評価する生細胞イメージング...

長期的な住セルイメージ投射細胞の運命をパクリタ キセルに応答を評価するために

ここでは、TIRF顕微鏡ベースの インビトロ...

TIRF顕微鏡による インビトロでの 架橋小管と単一微小管のダイナミクスの同時可視化

脊椎動物の脳組織に侵入する膠芽腫(GBM)細胞における微小管動態のライブイメージングを可能にする技術を報告する。蛍光タグ付きGBM細胞の透明なゼブラフィッシュ脳への同所性注射と高解像度の生体内イメージングを組み合わせることで、 in situ...

ゼブラフィッシュ脳に侵入する膠芽腫細胞における微小管動態のライブイメージング

学ぶドセタキセル耐性乳がん細胞における微小管動的不安定性の測定法。GFPチューブリン発現とデコンボリューション顕微鏡を用いたライブイメージングにより、薬剤処理下の微小管挙動を可視化し、がん細胞の薬剤耐性メカニズム解明に貢献します。

ライブイメージングは​​、タキサン耐性乳癌における微小管の動的不安定性を研究するために

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ライブイメージングは、タキサン耐性乳癌における微小管の動的不安定性を研究するために