Name: 血清やフィーダーフリーのマウス胚のコレクションは、無細胞アプローチのための細胞馴化培地を幹 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-08T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 32 s
Description: 学ぶマウス胚性幹細胞の血清・フィーダー非依存培養条件下での条件培地収集法とその抗老化活性の評価手法。細胞非依存アプローチによる加齢関連疾患治療への応用可能性を探る。

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この研究は、基礎科学研究開発プログラム（2013R1A1A2060930）および医学研究センタープログラム（2015R1A5A2009124）韓国国立研究財団を通じて（NRF）、科学、ICT省が資金を提供し、今後の計画によってサポートされていました。この研究はまた、病気の子供のための病院からの起動オペレーティング・グラント（HK歌唱）でサポートされています。私たちは、G4 MESCラインを提供するために、この原稿博士アンドラーシュナジの編集中にその優れた助けのためのLaura BarwellとサラJSキムに感謝したいと思います。

注：血清及び無フィーダーCM収集プロトコルの概略図を図1に示されています。 1.材料（MEFを、ミディアム、プレート、および溶液の調製） <ol><li>文化のMEFに培地の500ミリリットルを準備します。 10％FBS（ESC品質）、50単位/ mlペニシリン、および50mg / mlストレプトマイシンを含むダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）を補足。 </li><li>確立されたルーチンプロトコル13次胚からのMEFを単離し、MEF培地中で維持します。 </li><li>文化へたmESCを培地500mlを準備します。 DMEM、15％FBSおよび2mMのL-グルタミン、100μMの非必須アミノ酸（NEAA）、100μMのβメルカプトエタノール、100ユニット/ mlの白血病抑制因子（LIF）、50単位/ mlペニシリン、および50が補充されますミリグラム/ mlのストレプトマイシン。 </li><li> 0.1％ゼラチン溶液の5mlを10cmの細胞培養皿をコーティングすることによりゼラチン化プレート（5ゼラチン化プレート/ 1 MESCプレート）を準備します。少なくとも10分間インキュベート<html>室温で。 </li><li>たmESCの無血清条件に減少血清培地の500ミリリットルを準備します。サプリメントは、炭酸水素ナトリウム（pHは7.0）の1.2グラムと血清培地を削減しました。 0.2μmのボトルトップフィルターに通してフィルタリングします。 </li><li>老化関連βガラクトシダーゼ（SAβ-GAL）老化細胞の検出のための染色溶液調製：1mg / mlのX-GALを、40mMのクエン酸/リン酸ナトリウム緩衝液（pH6.0）（ジメチルホルムアミド、DMFに溶解） 、5mMのフェリシアン化カリウム、5mMのフェロシアン化カリウム、150mMのNaCl、及び2mMのMgCl 2 14。 注意：（危険）DMFは、有毒で腐食性のソリューションです。ソリューションを取り扱う場合の個人防護服（ 例えば、ニトリルまたはラテックス手袋、白衣、およびゴーグル）を着用してください。ヒュームフードを使用してください。 </li><li>文化ヒト皮膚線維芽細胞（HDFを、NHDF-ADデア・線維芽細胞）への培地500mlを準備します。 10％FBSおよび100単位/ mlのペニシリンおよび100mg / mlストレプトマイシンを含むDMEMを補います。 </li></ol>マウス胚性幹細胞のjove_title &quot;&gt; 2。文化（図1Aおよび2A） 注：細胞培養生物学的安全フード内のすべてのステップを実行します。 <ol><li> 15cmの細胞培養皿にマイトマイシンCを10μg/ mlを含むMEF培地20mlでのMEFを扱います。 37℃で2時間、5％CO 2インキュベートします。 </li><li> MEFからの培地を吸引除去します。 PBSで細胞を3回洗浄します。トリプシンEDTA（TE、1×）の3 mlを加え、37℃で3分間、5％CO 2インキュベートします。 3分後、300×gで3分間MEF培地と遠心分離機の6ミリリットルでTEを中和します。 </li><li> MEF培地5mlで再懸濁。トリパンブルー染色し、血球計数器を用いて得られた細胞懸濁液中の細胞数を決定します。 MEF培地中の10-cmの細胞培養皿あたり2×10 6細胞の密度でプレートに不活性化したMEF（フィーダー）。 37℃で24時間、5％CO 2インキュベートします。 </li><li>上（フィーダをメッキした後、MESC媒体24時間とMEF培地を交換してください翌日）。 </li><li> MESC培地でフィーダー上で2×10 6細胞の密度でプレートたmESC（G4 F1ハイブリッドES細胞）。 37℃で48時間、5％CO 2インキュベートします。 注：MESC-CMのアンチエイジング効果が低い継代数のたmESCは15-17を使用しているときに可能性が強いです。私たちは、ルーネンフェルト・タネンバウム研究所、マウントサイナイ病院、25のオードストリート、トロント、ON、M5T 3H7、カナダで博士アンドラーシュナジからG4 MESCラインを取得しました。 </li><li> 70から80までパーセントサブコンフルエントな状態で比較的高い密度と継代で細胞を保管してください。毎日新鮮なMESC培地で培地を交換してください。 </li></ol> 3.血清の収集とフィーダー馴化培地（図1Bおよび図2B） 注：細胞培養生物学的安全フード内のすべてのステップを実行します。 <ol><li> 5mlのPBSでMESCプレートをすすぎます。 TE（2.5倍）の1ミリリットルを加え、37℃で3分間、5％CO 2インキュベートします。 3分後、MESC mediu 2mlのTEを中和メートルと300×gで3分間遠心操作します。 </li><li> MESC媒体の各ゼラチンコート培養皿（5ゼラチン化プレート/ 1 MESCプレート）にMESC媒体とプレートの5ミリリットル1ミリリットル中に再懸濁。 37℃で培養し、5％CO 2 80〜85までの％の密集度に達します。 </li><li>合計3回の洗浄のために、1回の洗浄あたり10分間細胞（10cmプレートあたり8ミリリットル）をカバーするのに十分なPBSでたmESCを洗ってください。 37℃で24時間、5％CO 2のための低血清培地中でインキュベートします。 注：洗浄工程は、FBSの汚染を防止することが重要です。インキュベーション時間18,19に従うことが重要です。 </li><li> 2500×gで20分間、50ミリリットルコニカルチューブと遠心分離機にMESC-CMを収集します。遠心分離後の上澄み液（CM）を収集します。 0.2μmのボトルトップフィルターに通してフィルタリングします。 </li></ol>マウス胚の4効果幹細胞馴化培地（MESC-CM） 注：MESC-CMの効果は、次のようないくつかの方法によって検証されましたSAβ-galアッセイ、細胞周期分析、定量RT-PCR。 <ol><li> SAのβ-galアッセイ（図3A） <ol><li> HDF培地で6ウェルプレート中のウェル当たり2×10 4細胞の密度でシードのHDF。 37℃で一晩インキュベートし、5％CO 2。 </li><li>一晩のインキュベーション後、廃棄HDF媒体の半分とはMESC-CMと制御媒体を追加します。 37℃で72時間、5％CO 2インキュベートします。制御媒体がたmESCの非存在下におけるゼラチンコートディッシュで（血清メディア縮小）無血清培地に由来します。 </li><li> 2回の洗浄の合計のために、1回の洗浄につき30秒間細胞（6ウェルプレート当たり2ミリリットル）をカバーするのに十分なPBSで細胞を洗浄。固定のために3.7％パラホルムアルデヒド（PFA）を追加します。室温で5分間インキュベートします。 注意：（危険）パラホルムアルデヒドは有毒で腐食性のソリューションです。ソリューションを取り扱う場合の個人防護服（ 例えば、ニトリルまたはラテックス手袋、白衣、およびゴーグル）を着用してください。ヒュームフードを使用してください。 </li><li>固定液を吸引します。ステップ4.1.3で説明したように、PBSで2回固定した細胞を洗浄。 </li><li> SAβ-gal染色液（1-2 1mlあたり6ウェルプレート中）を追加します。 37℃で17.5時間インキュベートします。 注：これは、CO 2インキュベーター中でインキュベートされるべきではありません。 </li><li> SAβ-gal染色溶液を吸引し、ステップ4.1.3で説明したように、PBSで2回細胞を洗浄します。 </li><li>カウンター染色用エオシンソリューションを追加します。室温で5分間インキュベートします。ステップ4.1.3で説明したように、PBSで2回細胞を洗浄。 </li><li>その後の分析のために取り付けられたデジタルカメラを使用して、光学顕微鏡、キャプチャ画像を用いて100倍の倍率で画像セル。 注：細胞の総数は、ブラインド方法でカウントすることができ、SAのβ-gal陽性の青色細胞の割合を算出することができます。 </li></ol></li><li> 細胞周期分析（図3B） <ol><li>の密度で種子のHDFHDF培地6cmの細胞培養皿中でウェルあたり8×10 4個の細胞。 37℃で一晩インキュベートし、5％CO 2。 </li><li>一晩のインキュベーション後、廃棄HDF媒体の半分とはMESC-CMと制御媒体を追加します。 37℃で24時間、5％CO 2インキュベートします。 </li><li> 3.1で説明したステップとして、細胞をトリプシン処理し、300×gで5分間遠心操作します。冷PBS溶液で細胞を洗浄2500×gで3分間、2回遠心分離（PBS 0.5 mMのCaCl 2を、2％FBS、1.5ミリリットルチューブあたり1ミリリットルで）。冷PBS溶液100μlで再懸濁。 </li><li>ボルテックスしながら冷エタノールを200μlをドロップすることによって細胞を固定。少なくとも1時間、4℃で保管してください。 </li><li>ステップ4.2.3で説明したように、二回の冷PBS溶液で細胞を洗浄。 </li><li> 50μg/ mlのRNアーゼを含有するクエン酸ナトリウム緩衝液250μL（1.12％pH値8.5）に細胞を再懸濁。 37℃で30分間インキュベートします。 </li><li>クエン酸ナトリウム250μlのを追加します。50μg/ mlのヨウ化プロピジウムを含むバッファー。室温で20分間インキュベートします。 </li><li> 20フローサイトメトリーを用いて、各試料中の10,000細胞を測定します。 </li></ol></li><li> 定量RT-PCR（図3C） <ol><li>種子のHDFとステップ4.1.1と4.1.2で説明したように、MESC-CMを追加します。 </li><li>製造業者のプロトコルに従ってRNA抽出キットを使用してのHDFからトータルRNAを単離します。分光光度計21を用いて抽出した全RNAを定量化します。 </li><li>製造業者のプロトコール20に従って、オリゴ（dT）プライマーおよびM-MLV逆転写酵素を含む反応混合物の20μlに1μgの全RNAを添加することにより、cDNAを合成。 </li><li>グリーンPCRマスターミックスと特定の遺伝子プライマー（ 補足 表1）を用いて、リアルタイムPCR装置を用いてcDNAの増幅を測定します。 GAPDH発現を用いてデータを正規化します。以下のPCRプロトコルを使用します。最初のデ95℃で10分間naturation。 95℃で15秒間の45サイクル、55℃で20秒間、および72℃で35秒間。 95°C、60°Cで1分間、95℃で30秒間、および60℃15で5秒で15秒間融解曲線ステージ。 </li></ol></li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

血清および無フィーダーMESC-CMの成功収集のために、以下の提案を考慮に入れなければなりません。最も重要な要因は、MESC-CMを収集するための初期継代たmESCを使用しています。以前は、初期継代MESC-CMは、後期継代たmESCと比較して、より良好なアンチエイジング効果を有することが示されています。たmESCの継代数は、それらの発生能16及び多能17に影響を与えることが報告されています。 さらなる研究は、抗老化作用を誘導するMESCのsecretome、特定の要因を分析するために必要とされているが、我々は、現在MESC-CMは、細胞レベルで老化を減少させるのに十分であると結論付けることができます。 若い細胞に戻って老化細胞を元に戻すMESC固有の分泌因子の同定は今後の研究のために重要となります。高品質は、このような抗体アレイ15のような分泌分子、上の分析についてD secretome分析、メディア収集プロセス（ステップ3）の間に洗浄工...

このプロトコルの目的は、血清および無フィーダー培養条件から培地（MESC-CM）を-conditionedし、その生物学的機能を特徴づけるために、マウス胚性幹細胞（MESC）を収集することです。 一般的には、胚性幹細胞（ESCは）による自己再生1-3のための彼らの多能性と能力に再生医療や細胞治療のための大きな可能性を持っています。しかし、幹細胞の直接移植は、免疫拒絶および腫瘍形成4,5のようないくつかの制限を有します。従って、無細胞アプローチは、再生医療や老化介入6,7の代替治療戦略を提供することができます。 老化は、増殖停止、改変された細胞生理学、および行動の永続的な状態によって特徴付けられる組織や臓器の老化に対する細胞相手と見られています。老化、癌、心臓血管疾患、Tなどの流行病のための主要な危険因子であります2型糖尿病、および神経変性8を YPE。老化の明らかな特徴の一つは、幹細胞の老化や枯渇9によって引き起こされる組織の再生能力の低下、です。多くの重要な研究は、このような一貫して老化を遅らせ、寿命を延長する能力を持っているラパマイシン9、レスベラトロール10、およびメトホルミン11、および血液媒介全身の要因、すなわちGDF11 12、薬理学的分子を、示しています。 本研究では、MESC-CMは、血清因子とのMEFからの分泌因子の混入を排除するために、血清（ウシ胎児血清、FBS）およびフィーダー（マウス胚線維芽細胞、MEFの）層なしで収穫されています。これらの条件は、結果的にMESC固有の分泌因子の正確な同定を可能に血清および無フィーダーCMを可能にしました。 この提案されたプロトコルは、非常に効率的で比較的費用対効果、および容易動作します。この技術は、老化関連疾患及びその他の再生のための介入に向かって安全かつ潜在的に有利な無細胞治療アプローチの開発のために使用することができる抗老化効果を媒介することができるMESC由来の可溶性因子の特性への洞察を提供しますトリートメント。

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Invitrogen</td><td>#11960-044</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Invitrogen</td><td>#30044333</td><td>20%, ES細胞質</td></tr><tr><td>ペニシリンおよびストレプトマイシン</td><td>Invitrogen</td><td>#15140</td><td>50単位/mlのペニシリンおよび50&nbsp;mg/ml ストレプトマイシン</td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>Invitrogen</td><td>#25030</td><td>2&nbsp;mM</td></tr><tr><td>非必須アミノ酸 (NEAA)</td><td>Invitrogen</td><td>#11140</td><td>100&nbsp;&マイクロ;M</td></tr><tr><td>&beta;-メルカプトエタノール&nbsp;</td><td>シグマ</td> <td>#M3148</td><td>100&nbsp;&マイクロ;M</td></tr><tr><td>白血病抑制因子&nbsp;</td><td>ミリポア</td> <td>#ESG1107</td><td>100 units/ml</td></tr><tr><td>OPTI-MEM</td><td>Invitrogen</td><td>#22600</td><td></td></tr><tr><td>X-gal&nbsp;</td><td>Sigma</td> <td>#B4252</td><td>1 mg/ml</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド (PFA)</td><td>Sigma</td><td>P6148</td><td>3.70%</td></tr> <tr><td>ジメチルホルムアミド (DMF)</td><td>Sigma</td> <td>#D4551</td><td></td></tr><tr><td>フェリシアン化カリウム</td><td>Aldrich</td><td>#455946</td><td>5 mM</td></tr><tr><td>フェロシアン化カリウム</td><td>Aldrich</td><td>#455989</td><td>5 mM</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td> <td>#S7653</td><td>150 mM</td></tr><tr><td>MgCl<サブ>2</サブシ</td><td>グマ</td><td>>#M2393</td><td>2 mM</td></tr><tr><td>マイトマイシン C</td><td>シグマ</td> <td>#M4287</td><td>10&nbsp;&マイクロ;g/ml</td></tr><tr><td>ヨウ化プロピジウム&nbsp;</td><td>シグマ</td> <td>#P4170</td><td>50&nbsp;&マイクロ;g/ml</td></tr><tr><td>TRIzol</td><td>Ambion</td><td>#15596018</td><td></td></tr><tr><td>M-MLV 逆転写産物 Promega</td><td></td> <td>#M170B</td><td></td></tr><tr><td>Power SYBR Green PCR master mix&nbsp;</td><td>Applied Biosystems</td><td>#4367659</td><td></td></tr><tr><td>HDFs, NHDF-Ad-Der-Fibroblast&nbsp;</td><td>LONZA</td> <td>#CC-2511</td><td></td></tr><tr><td>ボトルトップフィルター</td><td>Corning</td><td>#430513</td><td>0.2 &mu;メートル</td></tr></tbody></table>

血清やフィーダーフリーのマウス胚のコレクションは、無細胞アプローチのための細胞馴化培地を幹

Collection of Serum- and Feeder-free Mouse Embryonic Stem Cell-conditioned Medium for a Cell-free Approach

胚性幹細胞(ESC)と人工多能性幹細胞(iPSC)が様々な細胞タイプを生成する能力は、再生医療の分野に新たな道を開きました。しかし、その利点にもかかわらず、ESCおよびiPS細胞の腫瘍形成の可能性は、長い間臨床応用の障壁となってきました。興味深いことに、ESCは組織の再生を促進し、細胞の老化を遅らせることができるいくつかの可溶性因子を生成することが示されており、ESCとiPS細胞も無細胞介入法として利用できることが示唆されています。そのため、血清成分(ウシ胎児血清、FBS)やフィーダー細胞(マウス胚性線維芽細胞、MEFs)の汚染を最小限に抑えたマウス胚性幹細胞(mESC)馴染培地(mESC-CM)を回収する方法が強く求められていました。本研究では、無血清および無給餌条件下でのmESC-CMの収集と、老化に伴う複数の読み出しを用いたmESC-CMの特性評価に最適化された方法を紹介します。このプロトコルは、血清やフィーダーの汚染なしに純粋なmESC特異的分泌因子を収集する方法を提供します。

もともと、たmESCは、FBSおよび他のサプリメント（ 図1Aおよび2A）とのMESC培地中のMEFフィーダー上で維持されています。 CMは、フィーダー層、FBSまたは他のサプリメント（ 図1Bおよび2B）なし低血清培地におけるたmESCから収集しました。この培養条件は、潜在的なフィーダからの要因による汚染、FBS、または他のサプリメントなしMESC-特定の条件培地を収集することを可能にします。制御媒体たmESCことなく、同一の培養条件下で回収しました。 ⅰ）通常のMESC培養条件（ 図2A）およびii）血清および無フィーダー培養条件（ 図2B）：たmESCは、2つの培養媒体間の異なる形態を示します。 MESCコロニーは、MEF層上に成長し、通常のM...

このプロトコルは、マウス胚性幹細胞（MESC）を収集するための方法を提供するメディア-conditioned（MESC-CM）血清（ウシ胎児血清、FBS）に由来する - とフィーダー細胞のための（マウス胚線維芽細胞、MEFの）フリー条件フリーアプローチ。これは、老化や老化関連疾患の治療のために適用することができます。

The capacity of embryonic stem cells (ESCs) and induced pluripotent stem cells (iPSCs) to generate various cell types has opened new avenues in the field ...

このプロトコルの全体的な目標は、血清およびフィーダーフリー培養条件下でマウス胚性幹細胞から馴化培地を収集し、この培地の生物学的機能を特徴付けることです。この手順は、マウス胚性幹細胞から分泌される可溶性因子の抗老化活性に関する洞察を提供し、加齢性疾患に対する安全で無細胞の治療アプローチの開発に役立てます。この手順を実演するのは、私の研究室の研究教授であるYun-Ui Bae博士です。生物学的安全性フードで、マウス胚性線維芽細胞またはMEF細胞培養物を、15センチメートルの細胞培養皿でマイトマイシンCを添加した20ミリリットルのMEF培地で、摂氏37度、二酸化炭素5%で2時間処理します。インキュベーションの終わりに、細胞をPBSで3回洗浄し、3ミリリットルのトリプシンEDTAで摂氏37度で3分間それらを剥離します。細胞がプレートの底から持ち上げられたときに、6ミリリットルの新鮮なMEF培地でトリプシンを中和します。遠心分離により細胞を回収した後、ペレットを5ミリリットルのMEF培地に再懸濁し、新鮮なMEF培地で10cmの培養皿ごとに10〜6回目の不活化MEFを2回プレート化する。フィーダー細胞を24時間培養します。次に、MEF培地をマウス胚性幹細胞培地と交換し、6回目のマウス胚性幹細胞をフィーダーに2回10回播種し、少なくとも48時間の共培養を行います。生物学的安全性フードで、マウス胚性幹細胞のプレートを5ミリリットルのPBSですすぎ、先ほど示したようにトリプシンとEDTAで細胞を剥離します。遠心分離により細胞を採取した後、幹細胞ペレットを5ミリリットルの新鮮幹細胞培地に再懸濁し、新鮮胚性幹細胞培地中の皿1ミリリットルの細胞をゼラチンでコーティングした5つの細胞培養皿に播種します。培養物が80〜85%のコンフルエント度に達するまで、細胞をインキュベーターに戻します。次に、プレートあたり少なくとも8ミリリットルのPBSで細胞をすすぎ、10分間の洗浄を3回行い、続いて減量血清培地で24時間のインキュベーションを行います。24時間以内に、上清を50ミリリットルの円錐管に移し、遠心分離します。続いて、0.2マイクロメートルのボトルトップストレーナーによるろ過が行われます。老化関連ベータガラクトシダーゼアッセイによる胚性幹細胞馴化培地の効果をテストするには、ヒト真皮線維芽細胞培地の6ウェルプレートにヒト真皮線維芽細胞を播種します。摂氏37度、二酸化炭素5%で一晩インキュベートした後、培地の半分を新鮮なマウス胚性幹細胞馴染培地と交換し、さらに72時間培養します。培養の3日目に、ウェルあたり2ミリリットルのPBSで細胞をすすぎ、30秒の洗浄を2回行います。次に、細胞を3.7%パラホルムアルデヒドに室温で5分間、ドラフトで固定します。固定後、先ほど示したように、細胞を2ミリリットルのPBSで2回洗浄し、1〜2ミリリットルのSAベータガロン溶液で細胞を1〜2ミリリットルで17時間半、二酸化炭素なしで摂氏37度で標識します。染色期間の終わりに、先ほど示したように細胞をPBSで2回洗浄します。その後、Eosenで室温で5分間対比染色します。PBS洗浄をもう1セット行った後、光学顕微鏡で細胞を100倍の倍率で画像化します。細胞周期解析では、新鮮なヒト真皮線維芽細胞培地中の6cmの細胞培養皿に、ウェルあたり10〜4番目のヒト真皮線維芽細胞を8回播種し、摂氏37度と二酸化炭素5%で一晩インキュベーションします。翌朝、培地の半分をマウス胚性幹細胞馴染培地と交換し、細胞をインキュベーターに戻します。24時間後、トリプシンEDTA解離により細胞を回収し、続いて1ミリリットルのPBS溶液で2回洗浄します。2回目の洗浄後、ペレットを100マイクロリットルの冷たいPBS溶液に再懸濁します。次に、ボルテックスしながら、200マイクロリットルの冷たいエタノールにドロップワイズアプリケーションで細胞を固定します。細胞を摂氏4度で少なくとも1時間保存します。次に、新鮮なPBS溶液で洗います。2回目の遠心分離後、ペレットを250マイクロリットルのクエン酸ナトリウム緩衝液にRNaseを添加したもので、二酸化炭素を含まない摂氏37度で30分間処理します。インキュベーションの終了時に、ヨウ化プロピジウムを含むクエン酸ナトリウム緩衝液250マイクロリットルで細胞を標識し、20分間保存します。次に、フローサイトメトリーにより各サンプルの細胞周期のステージを評価します。定量的逆転写酵素PCR解析では、RNA抽出キットを使用して、メーカーのプロトコルに従ってマウス胚性幹細胞馴化培地で処理したヒト真皮線維芽細胞から全RNAを単離します。分光光度計を使用して、抽出された総RNAを定量します。次に、オリゴデオキシチミジンプライマーとM-MLV逆転写酵素を含む反応混合物をメーカーのプロトコルに従って調製します。次に、反応混合物を含むPCRチューブに全RNAの1マイクログラムを加えます。最後に、グリーンPCRマスターミックスと適切な遺伝子プライマーを使用して、リアルタイムPCRマシンでCDNAの増幅を測定します。MEFフィーダー細胞層上の正常なマウス胚性幹細胞培養条件下で増殖したマウス胚性幹細胞は、楕円形と光沢のある外観を示します。一方、無血清およびフィーダーフリー培養条件下で増殖したマウス胚性幹細胞は、平坦で不規則な形態を示します。マウス胚性幹細胞馴化培地による老化ヒト真皮線維芽細胞の治療は、老化関連ベガラクトシダーゼ陽性細胞の数を減少させます。さらに、これらの細胞の細胞周期解析により、マウス胚性幹細胞馴化培地処理は、S期およびG2/M期の細胞数を劇的に増加させ、G0/G1期の細胞数を減少させることを明らかにしました。さらに、マウス胚性幹細胞馴化培地処理は、老化関連遺伝子および老化表現型に関連する分泌性サイトカインの発現を減少させます。この手順を試みる際には、長時間のインキュベーションにより細胞の自己消化または飢餓によるアポトーシスの可能性が高まるため、24時間後に血清とフィーダーフリー培地を収集することを覚えておくことが非常に重要です。このビデオを見れば、セルフリーアプローチのための血清およびフィーダーフリーマウス胚性幹細胞馴化培地の収集方法について十分に理解できるはずです。パラホルムアルデヒドなどの試薬の取り扱いは非常に危険であり、この手順を実行する際には、この試薬をドラフトで取り扱うなどの予防措置を常に講じる必要があることを忘れないでください。

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

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培養ヒト胚および誘導多能性幹細胞に適したマウス胚性線維芽細胞の調製

このビデオでは、マウス胚性幹細胞から皮質介在ニューロン前駆体を生成する方法を紹介しています。このプロトコルでは、幹細胞の増殖と胚様体(EB)への凝集を促進する特定の低分子阻害剤を含む培地で幹細胞を培養します。その後、EBは酵素と解離し、接着タンパク質でコーティングされた培養プレートウェルに播種して、皮質介在ニューロン前駆体への分化を促進します。...

マウス胚性幹細胞からの皮質介在ニューロン前駆体の生成

このビデオでは、マウス胚性幹細胞(mESC)から神経前駆細胞(NPC)をin...

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胚培養に利用される血清は、特にシグナル伝達の相互作用を含む研究での実験の結果に影響を与えることができ、未知のコンポーネントが含まれています。ここでは、無血清酸素化培養系を利用し、16〜40時間培養妊娠中期のマウス胚が子宮内で発生中の胚に匹敵する形態的発展を示すことを示している。...

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マウス胚性幹細胞は、OP9-DL1共培養システムを使用してin...

T細胞の導出体外マウス胚性幹細胞からの

このプロトコルは、無血清単層法を使用して胚性幹細胞から神経前駆細胞を生成する方法を詳細に説明しています。これらの前駆細胞は、成熟した神経細胞タイプの誘導や神経仕様のプロセスの研究に使用でき、化合物スクリーニングのためのマルチウェルフォーマットスケーリングに適しています。...

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タンパク質は、多くの場合、異なる細胞機能を発揮することができ、複数のドメインを含みます。遺伝子ノックアウト（KO）は、この機能的多様性を考慮していません。ここでは、様々な機能ドメインまたはタンパク質の変異体の分子解剖を可能KO胚性幹細胞における組み換え媒介カセット交換（RMCE）ベースの構造と機能のアプローチを報告しています。...

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この資料では、効率的に派生し、胚盤胞の段階でマウス胚からの多能性幹細胞株を培養するプロトコルについて説明します。...

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マウス胚性幹細胞の皮質介在ニューロン前駆細胞への分化

我々 はマウス胚性幹細胞を培養するための 2 つの化学ベースのプロトコルについて説明します。この新しいメソッドは、(ビタミン C)、テトを介した酸化を促進し、DNA 低いメチル化とマウス胚性幹細胞の多能性を維持するために、5-メチルシトシン (PD0325901)...

MEK 阻害剤 PD0325901 とビタミン C を用いたマウス胚性幹細胞のゲノムの低いメチル化を維持するために代替カルチャ メソッド

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学ぶマウス胚性幹細胞の血清・フィーダー非依存培養条件下での条件培地収集法とその抗老化活性の評価手法。細胞非依存アプローチによる加齢関連疾患治療への応用可能性を探る。

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