Name: ヒト子宮頸管ガンマ・デルタT細胞の単離およびフローサイトメトリー分析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-06T10:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 10 s
Description: 学ぶ ヒト子宮頸管ガンマ・デルタT細胞の単離とフローサイトメトリー分析手法。サイトブラシ採取、磁気ビーズ分離、細胞選別を用いた免疫応答研究の効率的ツールです。

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私たちは、この作業に参加する意欲のためにマイアミWIHSの研究参加者に感謝します。この原稿のデータは、マイアミの女性の省庁間HIV研究（WIHS）により回収しました。本書の内容はもっぱら著者の責任であり、国立衛生研究所（NIH）の公式見解を示すものではありません。この作品は、前進のための国立アレルギー感染症研究所と女性の省庁間のHIV感染の研究（WIHS）[助成金番号U01のAI103397]、アレルギーと国立感染症研究所、国立衛生研究所[助成金番号P30AI073961]、ナショナルセンターによってサポートされていましたトランスレーショナル科学とマイノリティの健康と健康格差に国立研究所、国立衛生研究所[助成金番号UL1TR000460と1KL2TR000461]、および国立小児保健発育研究所、国立衛生研究所[承認番号K23HD074489]。

研究活動は、マイアミの女性のHIV省庁間研究（WIHS）と承認が前に得られたエイズ研究のためのマイアミセンター（CFAR）.Institutional審査委員会（医学のマイアミミラー科大学）と共同で大学マイアミのHIV研究ユニットで開催されました募集及び任意の評価や研究関連手順へ。 1.子宮頸管ブラシサンプル採取注：参加者は、訓練を受けたMDや婦人科医と細胞採取用ブラシを挿入することにより、鏡検査下で実施した上皮内リンパ球の集合によって行わ膣の検査を受けました。 <ol><li> 参加者の特徴 <ol><li>性的に、アクティブ妊娠していないではなく、避妊薬上または子宮内のデバイスとの年齢、18〜45年を老化させる女性の参加者を募集。 </li><li>膣の検査の前に、参加者は緑で10 mLの採血を受けています末梢血単核細胞（PBMC）を単離するためのトップヘパリンバキュテナー。子宮頸管上皮内分析9の制御として機能します。 </li></ol></li><li> 子宮頸管サンプルの収集 <ol><li>無給油で膣内に適当なサイズの滅菌鏡を挿入します。粘液をきれいに検鏡し、滅菌ガーゼの挿入を容易にするために暖かい水を使用してください。鏡の位置は、OSや子宮膣部の完全な可視化を可能にします。 </li><li>手に最も近いだけ毛が表示されるまで、子宮頸管に子宮頸管ブラシを挿入します。 360°用のブラシを時計回りに回転させます。 IMDM培地5mlを含む15 mLのチューブにブラシを転送します。 </li><li>すぐに収集した後、氷上で細胞採取用ブラシを含むチューブを置きます。収集した上皮内細胞の高い生存率を得るためには、1時間以内に研究室およびプロセスへの細胞採取用ブラシを提供します。 </li></ol></li></ol><ol><li> 4短い（10秒）ストロークを適用頸管細胞採取用ブラシを含む渦管。 </li><li> 250×gで10分間、細胞採取用ブラシを含む遠心チューブ。 </li><li>慎重にチューブから細胞採取用ブラシを削除する（チューブの底にペレットを乱さないでください）、IMDM培地の1ミリリットルを追加し、チューブを氷上に置きます。 </li><li> 50mlのチューブの上に100ミリメートルのセルストレーナーに細胞採取用ブラシを置きます。 </li><li> 20ミリリットルのIMDMで細胞採取用ブラシを洗ってください。 </li><li> 250×gで10分間遠心分離管。 </li><li>上清を除去し、ペレット化した細胞を1mLのIMDMに再懸濁し、2.3に記載され、すでに再懸濁ペレットと組み合わせます。 </li><li>自動細胞計数器10を用いて細胞数をカウントしたり、トリパンブルー色素の10μLでの細胞懸濁液10μLを組み合わせることにより、血球計数器を用いて細胞数を計測します。優しく細胞と色素を混合するまでピペット上下10倍。負荷10μL2血球計数器のチャンバのいずれかの開口部に混合物の。 5グリッド領域内のすべてのセルを数えます。実行可能な非生存細胞の別々のカウントを保持。以下の式を用いて細胞生存率を決定する：％生存細胞=非生存細胞×100 /総細胞数の細胞。 以下の計算を使用して、1ml当たり、その後の細胞濃度（細胞の合計数）を決定します。 1ml当たりの全細胞は=全細胞カウントX（希釈係数/カウント正方形の数）は10,000細胞/ mlにxは。 </li><li> 10％DMSOおよび90％FBSを含む凍結培地を用いて、単離された子宮頸管細胞を凍結します。 </li></ol> 3.フローサイトメトリー<ol><li>再懸濁1％ウシ血清アルブミンを含有する100μLのFACS緩衝液中に1-3×10 5子宮頸管細胞（PBS </li><li> 1μL/ 10 6 表1に記載の濃度で表面マーカーのためのLIVE / DEAD修正可能イエロー死細胞染色キットおよび抗体を追加します。 </li><li>光から保護して4℃で30分間、細胞をインキュベートします。 </li><li> 350×gで5分間、1mLのFACS緩衝液細胞および遠心管を追加</li><li> 300μLの1％パラホルムアルデヒドで細胞ペレットを再懸濁します。 </li><li> FACS緩衝液100μLビーズの一滴、サンプル染色のために使用される抗体と同じ濃度を添加することにより、染色に使用されるビーズと抗体を使用して補正制御を準備します。 </li><li> 405 nmで、488 nmの、および635nmのレーザーを搭載したフローサイトメーター、上の染色されたビーズとサンプルを取得します。 </li></ol> 4.子宮頸管ガンマデルタT細胞の単離<ol><li> 磁気ビーズ分離 <ol><li>再懸濁材料および試薬の表で参照TCRガンマデルタマイクロビーズキットに含まれるバッファの40μLで、2.6で説明した子宮頸管細胞ペレット（≤107総細胞）を、。 </li><li>まず、ウィット：2段階の染色プロトコールのためのキットの指示に従ってください抗ハプテンマイクロビーズ-FITCを有する第二のH抗TCRガンマデルタハプテン - 抗体と、 </li><li> 4~8℃で15分間インキュベートした後、10分間、300×gで遠心分離緩衝液の1ミリリットルを加えることによって細胞を洗浄します。チューブを反転させて上清を除去し、一枚の紙の助けを借りて乾燥タップします。 </li><li>提供バッファーの500μLで細胞ペレットを再懸濁し、ベンダーのプロトコルに従って適切な磁気分離器に置くことで磁気カラムを準備します。 </li><li>カラムに細胞懸濁液を適用し、通過する非標識細胞を収集し、バッファの適切な量（500μL）でカラム3回洗います。列のリザーバが空になると、バッファたびに3回を追加することにより、洗浄工程を実行します。総流出物を収集します。これは非標識、負の細胞画分であります</li><li>列を削除するカラムに磁気分離器およびピペット1mlの緩衝液を形成し、直ちに磁気ラベルで端数を洗い流しますしっかりカラム付属のプランジャーを適用することによって細胞を編 注：磁気標識された抗ハプテンマイクロビーズを蛍光色素FITCとコンジュゲートされているため、単離されたガンマデルタT細胞は、すでに蛍光フローサイトメトリー分析のために染色されています。 </li></ol></li><li> 細胞選別 <ol><li>セクション3で説明したように細胞選別のために、生存能力のダイと抗体パネルと子宮頸管細胞を標識。 </li><li>ライブ、CD45 + CD3 +、ガンマデルタ陽性細胞上の電子ゲートを設定し、細胞選別を行います。 </li></ol></li></ol>

<ol><li>Kaul, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genital+tract+immune+milieu%3A+an+important+determinant+of+HIV+susceptibility+and+secondary+transmission%5BTitle%5D)+AND+%22J+Reprod+Immunol%22%5BJournal%5D)">The genital tract immune milieu: an important determinant of HIV susceptibility and secondary transmission.</a> J Reprod Immunol. 77, 32-40 (2008).</li>
<li>Haase, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+early+infection+to+prevent+HIV-1+mucosal+transmission%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Targeting early infection to prevent HIV-1 mucosal transmission.</a> Nature. 464, 217-223 (2010).</li>
<li>Hayday, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((gamma%5D%5Bdelta%5D+cells%3A+a+right+time+and+a+right+place+for+a+conserved+third+way+of+protection%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">gamma][delta] cells: a right time and a right place for a conserved third way of protection.</a> Ann Rev Immunol. 18, 975-1026 (2000).</li>
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<li>Cheroutre, H., Lambolez, F., Mucida, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+light+and+dark+sides+of+intestinal+intraepithelial+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">The light and dark sides of intestinal intraepithelial lymphocytes.</a> Nature Rev Immunol. 11, 445-456 (2011).</li>
<li>Strbo, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+Intra-Epithelial+Endocervical+Gamma+Delta+%28GD%29+1+T+Cells+in+HIV-Infected+Women%5BTitle%5D)+AND+%22AJRI%22%5BJournal%5D)">Loss of Intra-Epithelial Endocervical Gamma Delta (GD) 1 T Cells in HIV-Infected Women.</a> AJRI. 75, 134-145 (2016).</li>
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<li>McKinnon, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimizing+viable+leukocyte+sampling+from+the+female+genital+tract+for+clinical+trials%3A+an+international+multi-site+study%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Optimizing viable leukocyte sampling from the female genital tract for clinical trials: an international multi-site study.</a> PloS one. 9, e85675(2014).</li>
<li>Dominguez, M. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+multiplexed+quantitation+of+gene+expression+on+single+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">Highly multiplexed quantitation of gene expression on single cells.</a> J Immunol Methods. 391, 133-145 (2013).</li>
</ol>

著者らは、利害の衝突をもたらす可能性がありコマーシャルまたは他の関連を持っていない（ 例えば 、製薬株式所有権、コンサルティング、アドバイザリーボードのメンバーシップ、関連特許、または研究資金）。

女性の下部生殖管の粘膜の脆弱性の評価は、HIV取得送信のリスクに対処する臨床試験の必須成分です。典型的には、HIV感染にFGTの脆弱性が性器分泌物（サイトカイン、ケモカインおよび抗菌ペプチド）12、13中の可溶性免疫調節を測定することによって評価されます。しかし、これらのバイオマーカーは、膣の炎症しか示している生理学的および病理学的事象の影響を受けている、と常に直接粘膜損傷を表すものではありません。粘膜因子がHIVを取得し、送信のリスクを増加させる方法の我々の理解を向上させるために、粘膜損傷の細胞マーカーを開発する必要があります。 GD上皮内T細胞は、上皮細胞間のインターカレーFGTに存在し、ホメオスタシスにだけでなく、環境問題に対する防御の第一線に貢献すると考えられています。 GD T細胞はpotenを持っています<html> FGT内粘膜の脆弱性を評価するための追加のバイオマーカーを構成するのTiAl。 このプロトコルでは、ヒト子宮頸管細胞採取用ブラシサンプルか...

我々は、上皮内GD T細胞を評価するために、子宮頸管ブラシサンプルを使用する方法を開発しました。子宮頸管は円柱上皮の単層によって裏打ちされています。上皮内リンパ球は急速に病原性微生物7、8に遭遇すると、免疫応答を開始することができ、上皮層内に存在する現場のリンパ球を表します。子宮頸管上皮内コンパートメントの免疫学的事象を理解することは、HIVを含む感染を防止するための効果的な戦略の設計のために重要です。 私たちの方法は、さらに、HIV感染またはHIV感染のリスクがある女性では上皮内GD T細胞の役割を探求するために新鮮に採取したヒト子宮頸管のサンプルと同様に凍結した子宮頸管細胞に適用することができます。このプロトコルの主な目的は、子宮頸管上皮内コンパートメントにおける新規免疫学的事象を発見し、evaluatことですHIV感染女性における粘膜の脆弱性のマーカーとしての電子GD T細胞応答。 FGTの免疫周りの知識の大幅なギャップが部分的に成功した粘膜サンプルを収集し、処理の難しさに起因しています。また、複雑な粘膜免疫細胞の不均一性、および互いにそれらの相互関連性は、免疫系の状態と機能を反映する臨床的に関連する測定値を識別することに大きな課題です。我々はさらに、FRT免疫の基礎となるメカニズムを同定するために重要であり得る非常に多重化され、単一細胞技術を用いて分析することができる高度に精製された上皮内GD T細胞を得るための方法を開発しました。

<table><tbody><tr><td>サイトブラシプラス GT&nbsp;</td><td>(CareFusion、サンディエゴ、カリフォルニア州、米国</td><td></td><td></td></tr><tr><td>IMDM、IscoveのModified Dulbecco's Medium&nbsp;</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>12440061</td><td></td></tr><tr><td>Beckman Coulter 全自動セルカウンター (The Vi-CELL Series Cell Viability Analyzer</td><td>Beckman Coulter</td><td>496178</td><td></td></tr><tr><td>DMSO, Dimethyl sulfoxide&nbsp;</td><td>シグマ・アルドリッチ&nbsp;</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>FBS, Fetal Bovine Serum</td><td>Invitrogen, Gibco</td><td>26140-079</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Invitrogen, Gibco</td><td>10010023</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A-9647</td><td></td></tr><tr><td>LIVE/DEAD Fixable Yellow Dead Cell Stain kit&nbsp;</td><td>ライフテクノロジーズ、</td><td>L349S9</td><td></td></tr><tr><td>1%パラホルムアルデヒドシ</td><td>グマアルドリッチ&nbsp;</td><td>D6148</td><td></td></tr><tr><td>Fortessa フローサイトメーター&nbsp;</td><td>Becton Dickinson</td><td></td><td></td></tr><tr><td>UltraComp eBeads</td><td>eBioscience</td><td>01-2222-42</td><td></td></tr><tr><td>ArC アミン反応性補償ビーズ (Life Technologies, Grand Island, NY, USA)</td><td>Life Technologies</td><td>A10346</td><td></td></tr><tr><td>anti-TCR γ/delta MicroBead Kit&nbsp;</td><td>ミルテニーミルテニーバイオテック株式会社</td><td>130-050-701</td><td></td></tr><tr><td>MSカラム</td><td></td><td>103-042-201</td><td></td></tr><tr><td>MACSセパレーター</td><td></td><td>4124</td><td></td></tr></tbody></table>

ヒト子宮頸管ガンマ・デルタt細胞の単離およびフローサイトメトリー分析

Isolation and Flow Cytometric Analysis of Human Endocervical Gamma Delta T Cells

女性の生殖器官（FRT）粘膜免疫系は防御の第一線として機能します。性器粘膜のより良い知識は、HIVを含む異なる病原体の病原性を理解するために不可欠です。ガンマデルタ（GD）T細胞が「非在来型」T細胞の原型であり、γおよびδ鎖からなるヘテロ二量体、T細胞受容体（TCR）の発現によって定義されるT細胞の比較的小さな部分集合を表します。これは、α-βのTCRによって定義される古典的なはるかによく知られているCD4 +ヘルパーT細胞およびCD8 +細胞傷害性T細胞から離れてそれらを設定します。 GD T細胞は、多くの場合、組織特異的局在化を示し、上皮に濃縮されます。 GD T細胞は、炎症、腫瘍監視、感染性疾患、および自己免疫における免疫応答を調整します。 ここでは、再現性のヒト子宮頸管上皮内GD Tリンパ球を分離し、分析するための方法を提示します。我々ヘクタール女性の省庁間のHIV感染に関する研究（WIHS）に参加した女性から使用子宮頸管細胞採取用ブラシサンプルVEの。膣粘膜の傷害が存在である条件中GD T細胞相互作用についての知識は、粘膜GD T細胞応答についての知識があり、膣microbicides.In追加の開発を含む、粘膜の脆弱性に対処している任意の臨床試験に適用することができます感染性疾患の治療におけるGD T細胞ベースの免疫療法の適用のための潜在。

最近、我々は子宮頸管上皮内GD T細胞を分析し、我々はHIVに感染した女性では子宮頸管ガンマデルタT細胞の喪失9、11について報告する最初のものでした。ここでは、隔離し、子宮頸管ガンマデルタT細胞のサブセットを分析するためのプロトコルについて説明します。 図1に示すように 、GD T細胞は、容易にヒト子宮頸管細胞サンプル中で検出することができます。 子宮頸管ガンマデルタV1（GD1）T細胞のユニークな集団はmultiparametarサイトメトリーベースの免疫表現（ 図1）を用いてフローについて説明しました。 HIV感染していない子宮頸管試料についての代表的なゲーティング戦略は、図1に示されています。分...

ここでは、上皮内γデルタT細胞の分析のためのヒト子宮頸管内上皮内リンパ球を得るための単離方法について説明します。このプロトコルは、磁気ビーズまたは細胞選別による子宮頸管内γデルタT細胞の精製に拡張できます。

ヒト子宮頸管ガンマ・デルタT細胞の単離およびフローサイトメトリー分析

The female reproductive tract (FRT) mucosal immune system serves as the first line of defense. Better knowledge of the genital mucosa is therefore ...

本手順の全体的な目的は、ヒトの子宮頸管ブラシ検体から、非典型的な上皮内細胞であるγδ T細胞集団を単離し、特性解析することです。この手法は、子宮頸管上皮内コンパートメントにおける免疫イベントを理解するための重要な疑問に答えるのに役立ち、感染症を予防するための効果的な戦略の設計を支援します。本手法の主な利点は、子宮頸管上皮内γδ Tリンパ球をin vitroで研究するための、強力かつ効率的なツールを提供することです。手順の実演は、私の研究室のシニアリサーチアソシエイトであるLaura Romeroが行います。採取後すぐに、サイトブラシが入ったチューブを氷上に置いてください。採取から1時間以内に、サイトブラシが入ったチューブを10秒間のボルテックスで4回処理します。次に、チューブを遠心分離し、パレットを乱さないように注意してブラシを取り除きます。続いて、細胞に1 mLのIMDM培地を加え、チューブを氷上に置きます。50 mLコニカルチューブに入れた100 mmセルストレーナーの上にサイトブラシを載せ、20 mLの新鮮なIMDMでブラシを洗浄します。洗浄液を遠心分離します。ペレットを1 mLの新鮮なIMDMで再懸濁し、元のサイトブラシ採取チューブ内の細胞とともに洗浄液と合わせてプールします。フローサイトメトリーで子宮頸管細胞を解析するために、5 mLチューブ1本につき1～3 × 10⁵個の細胞を100 µLのfaxバッファーに分注し、目的の抗体および生存率染料で、4 °Cの暗所にて30分間ラベルします。インキュベーション終了後、キットバッファー1 mLで細胞を洗浄します。細胞を遠心分離した後、上清を完全に除きます。ビーズと適切なIgGコントロール抗体を使用して、補正コントロールを設定します。次に、最初のチューブをロードし、前方散乱光（FSC）対側散乱光（SSC）プロットを用いて全子宮頸管細胞集団にゲートを設定し、続いて細胞のダブレットを除去します。生存率染色の発現に基づいて死細胞を除外した後、生存しているCD45陽性かつCD3陽性の細胞にゲートを設定します。γδ1陽性細胞およびγδ2陽性細胞は、γδ TCRを発現するCD3陽性細胞のサブポピュレーションとして定義されます。磁気ビーズ法を用いてγδ T細胞を単離するために、採取したばかりの1 × 10⁷個までの子宮頸管内細胞を40 µLのTCR gamma delta MicroBeadキットバッファーで再懸濁します。メーカーが推奨する2段階染色プロトコルに従い、細胞を抗TCR γδハプテン抗体で標識し、続いて抗ハプテンFITC結合MicroBeadsを用いて4～8 °Cで15分間反応させます。インキュベーション終了後、細胞を1 mLのキットバッファーで洗浄し、上清を完全に除きます。細胞を500 µLのキットバッファーで再懸濁し、その細胞懸濁液を適切なセパレーターマグネットにセットした磁気ビーズカラムに直接適用し、通り抜けた液を新しいチューブに回収します。すべての細胞がカラムを通過したら、500 µLの新鮮なバッファーでカラムを3回洗浄し、その洗浄液を回収した細胞と合わせてまとめます。γδ T細胞を回収するために、カラムをコニカルチューブに移し、カラムプランジャーを使用して1 mLの新鮮なバッファーでT細胞をカラムから洗い出します。蛍光活性化細胞分級法（FACS）を用いてガンマデルタT細胞を単離するには、先に示した抗体パネルに従って、生存率染料で細胞を標識します。次に、生存率染料、およびCD45、CD3、ガンマデルタの陽性に基づいて細胞を分級します。ヒトの子宮頸管細胞サンプルでは、ガンマデルタV1を発現する特有のT細胞集団を容易に検出できます。ゲートしたCD3陽性γδ1陽性細胞の詳細な表現型解析により、これらの細胞の大部分がCD4およびCD8陰性であることが明らかになります。先に示した通り、子宮頸管細胞を磁気ビーズ法で分離すると、これらTCR γδ細胞がほぼ98%という高純度で精製されます。このレベルの純度はフローサイトメトリー（FACS）によっても達成可能であり、子宮頸管γδ T細胞の単離において、どちらの手法も有効であることが検証されています。興味深いことに、HIV感染女性患者および健康なドナー対照群から採取した子宮頸管内上皮細胞中のγδ T細胞の解析では、HIV感染者のにおいて、これらの重要な細胞の数と生存率がわずかに低下していることが示されています。この手法に習熟すれば、適切に実施することで2〜3時間で完了させることができます。本手順を行う際は、良好な細胞生存率を維持するために、サンプルを迅速に処理し、全工程を通じて細胞を氷上で保持することが重要です。この手順に続き、高感度スループットマルチプレックスPCRを組み合わせたシングルセルソートなどの他の手法を用いることで、子宮頸管上皮内コンパートメントにおける炎症およびシグナル伝達経路に関するさらなる疑問を解消することが可能です。この技術の開発により、HIVおよび感染症分野の研究者が粘膜脆弱性の新規細胞マーカーを探索する道が開かれました。このビデオを視聴することで、ヒト子宮頸管ブラシ検体から上皮内リンパ球を調製する方法について深く理解することができたはずです。

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

末梢血単核細胞（PBMC）からのγδT細胞を拡大する方法が記載されている。 PBMC由来のγδT細胞を刺激し、ゾレドロネートとインターロイキン-2（IL - 2）を使用して展開されます。...

ゾレドロネートを使用してヒト末梢血γδT細胞の拡大

このビデオは、ヒト末梢血単核細胞(PBMC)からのCD4+Vδ1+γδT細胞の低濃度集団の磁気標識ベースの単離のためのプロトコルを示しています。FITC標識抗Vδ1抗体、磁気抗FITCマイクロビーズ、および抗CD4抗体被覆超常磁性ビーズの組み合わせを使用して、CD4+Vδ1+...

ヒト末梢血単核細胞からのCD4+ Vδ1+ γδ T細胞の選択的単離

子宮頸部からリンパ球と単球を採取するためのサイトブラシサンプリングの使用は、女性の生殖管免疫の分析のためのサンプルを提供する低侵襲技術です。このプロトコルでは、フローサイトメトリーアッセイのためのサイトブラシサンプルの収集と免疫細胞の単離について説明します。...

人間頸管サンプルの採取、単離、およびフローサイトメトリー分析

ここでは、最近示したように、胸腺外αβ T細胞前駆細胞である末梢Vδ1+CD4+ T細胞の希少なT細胞実体の単離とクローニングのための最適化されたプロトコルを提供します。この技術により、ex...

単離と<em&gt;エクスビボ</emVδ1の&gt;文化<sup&gt; +</sup&gt; CD4<sup&gt; +</sup&gt;γδT細胞、胸腺外αβT細胞前駆

初期の脳の腫瘍微小環境を入力する免疫細胞の数および活性化状態に対する時間依存の定量的データをもたらす神経膠腫浸潤末梢血単核細胞の単離およびフローサイトメトリー分析のための簡単​​な方法は、ここに提示しました。...

神経膠腫浸潤末梢血単核細胞の単離およびフローサイトメトリー分析

ここで分離し、その表現型および機能特性評価のための人間の女性の生殖器官の別の解剖学的なコンパートメントから樹状細胞を浄化する手法について述べる。このメソッドは、他の免疫細胞やその他の粘膜組織から樹状細胞を分離する合わせることができます。...

人間の女性の生殖器官から樹状細胞の表現型および機能研究の分離

ここでは、分離と CD4 のキャラクタリゼーションのためのプロトコル+ T 細胞サブセットひと末梢血からの説明。CD4 精製+ T 細胞は濾胞 T...

CD4 の分離+ T 細胞および循環の解析 T 濾胞ヘルパー (cTfh) 末梢血を使用して 6 色フローサイトメトリーから細胞のサブセット

クローン拡張は、抗原特異的T細胞応答の重要な特徴である。しかし、抗原応答性T細胞の細胞周期は、技術的な制限もあって、十分に調査されていない。ワクチン接種マウスの脾臓およびリンパ節におけるクローン膨張性抗原特異的CD8...

ワクチン接種マウスにおける抗原特異的CD8 T細胞の細胞周期解析のためのDNA/Ki67ベースのフローサイトメトリーアッセイ

これは、妊娠中および非妊娠マウスの両方から子宮リンパ球細胞を単離する方法である。この方法は、FACSの表現型、細胞分類、機能アッセイ、RNA-seq、プロテオミクスなどの複数の下流アプリケーションに使用できます。ここでのプロトコルは、フローサイトメトリーによる細胞性の細胞の1個の子宮型を表示しています。...

フローサイトメトリーによる分析のための子宮内生リンパ球細胞の分離

T細胞シグナル伝達の尺度であるカルシウム流入は、T細胞受容体刺激に対する応答を分析するための効果的な方法です。Indo-1を細胞表面分子に向けられた抗体のパネルでマルチプレックス化するためのこのプロトコルは、フルスペクトルフローサイトメトリーの非常に柔軟な機能を利用しています。...

フルスペクトルフローサイトメトリーによる初代マウスT細胞におけるT細胞受容体誘導性カルシウム流入の解析

本プロトコルは、前処理された腫瘍細胞との同種共培養システムにおけるヒトT細胞刺激の ex vivo...

前処理腫瘍細胞の同種共培養環境におけるヒトT細胞活性の解析

学ぶ ヒト子宮頸管ガンマ・デルタT細胞の単離とフローサイトメトリー分析手法。サイトブラシ採取、磁気ビーズ分離、細胞選別を用いた免疫応答研究の効率的ツールです。

ヒト子宮頸管ガンマ・デルタT細胞の単離およびフローサイトメトリー分析

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