Name: 死後ヒト脳ドナーから軟膜植片培養物の導出 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 18 s
Description: 学ぶ、死後ヒト脳の軟膜から線維芽細胞を培養するエクスプラント法。パーキンソン病の細胞系を用いた病態研究に応用可能で、6〜8週間でフィブロネクチン陽性細胞を樹立できる。

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>jove_content<このプロトコルの開発は、パーキンソン研究所の脳提供プログラムに向けられた民間の寄付によって資金提供されました。

脳の寄付登録が寄付する意思の登録者によってドキュメントが含まれています。法律で認められているように、組織の検索のために剖検許可は近親者により提供されます。収集した剖検標本を用いた調査研究は、医療保険の携行性と責任に関する法律（HIPAA）規制の遵守を確保するために、治験審査委員会（IRB）によって検討されています。 注：軟膜試料は脳解剖中脳切開または神経病理学者によって収集され、25〜30 mLの髄膜増殖培地を含有する50mLのコニカルチューブに格納されています。試料は、試料調製まで4℃で保存します。細胞の生存率は、時間死後と減少する処理が可能な限り早く行われるべきです。 1.セットアップ軟膜解剖を開始する前に注：1.1ステップ - 1.3は、生物学的安全キャビネットの内部で実行されるべきです。 <ol><li>ダルベッコ改変イーグル培地、ウシ胎仔血清を100mLの375ミリリットルを組み合わせることにより、髄膜増殖培地を準備し、5 mLの10 mMの非必須アミノ酸、5 mLの200 mMのL-アラニル-L-グルタミン、5mlの100mMのピルビン酸ナトリウム、 5mLの万U / mLのペニシリン/ストレプトマイシンおよび5 mLの250 / mlのアムホテリシンBを500mLのフィルターユニットです。フィルタと混ぜます。 4週間までのメディアを使用してください。 </li><li>解剖を開始する前に、バイオセーフティキャビネット内のすべての材料を配置する：4倍ペトリ皿、2×6ウェルプレート、2倍メス、15-20滅菌15 mmのカバースリップ、ピペットを吸引するリン酸緩衝生理食塩水（PBS）、血清学的ピペット、。 </li><li> 6ウェルプレートの各ウェルに滅菌オートクレーブ0.1％ゼラチン溶液1mLを加えます。 30〜60分間脇にプレートを設定します。 2×6ウェルプレートを準備します。 </li></ol>軟膜サンプルの調製注：2.1ステップ - 2.3は、生物学的安全キャビネットの内部で実行されるべきです。 <ol><li>にPBSの約10 mLを加え滅菌10 cmの組織培養皿と皿に髄膜サンプルを配置します。鉗子を使用して、静かに血液を除去するためにPBSで軟膜を洗います。 </li><li>新鮮な10mLのPBSを含む新しい10-cmの組織培養皿に髄膜を移し、洗浄を続けます。できるだけ多くの血液を除去するために、必要に応じて繰り返します。 </li><li> 2メスを使用して、X 6センチメートル約6センチメートルに大部分を軟膜の組織を切断します。 </li><li>培養皿と水平層流フード内で解剖顕微鏡への転送の上に置いて蓋。 </li></ol>軟膜組織の3解剖注：3.1手順 - 3.3解剖顕微鏡を使用して、水平層流フード内で実行されます。 <ol><li>少なくとも20-25 3ミリメートル×3ミリメートルの作品を作成するのに十分な大き軟膜ピース（ステップ2.3）上の領域から血管を削除します。 1メスでの場所で軟膜を持ち、他に、穏やかな浅い掻きカ月を使用ションは、血管を分離します。 </li><li>準備された領域から組織の小さな正方形をカット。最初の大きい作品を作り、その後、小さなセクションにそれらをスライスして、段階的プロセスでカットします。 </li><li>揺動運動と組織を切断する代わりに、組織と別のメスを保持するために1メスを使用してください。組織の一貫性のために、互いに対してメスをスライドすることは困難です。これは離れて組織を引き裂くとギザギザのエッジになります。 </li><li>約20〜25 3ミリメートル×3ミリメートル片が存在するまで、半分に作品を切断続けます。 </li></ol>組織培養プレート上に解剖髄膜個の4譲渡注：ステップ4は、生物学的安全キャビネットの内部で行われるべきです。 <ol><li> （ステップ1.3から）6ウェルプレートから吸引除去ゼラチン。各ウェルに、髄膜増殖培地の1 mLを加え。滅菌ピンセットを用いて、各ウェルに3-4生検片を配置します。 </li></ol> Mの上カバースリップの5配置eninges小品注：5.1手順 - 5.2解剖顕微鏡を使用して、水平層流フード内で実行されます。 <ol><li>ウェル当たり1-2滅菌15-mmの円形カバースリップで作品をカバーしています。 </li><li>片がプレートの底に触れていることを確認するために鉗子でしっかりと押し下げます。これは、井戸の底に組織片の付着を可能にします。 </li><li> 37℃、5％CO 2インキュベーターに6ウェルプレートに置き。 </li></ol> 6.細胞培養のメンテナンス注：6.1ステップ - 6.3は、生物学的安全キャビネットの内部で実行されるべきです。カバースリップは、髄膜片を移動させ、取り除くべきではないよう注意して培養皿を扱います。 <ol><li>文化の中で2日後、各ウェルに新鮮な髄膜増殖培地の追加の1 mLを加え。 </li><li> 7日目に、慎重にメディアを吸引し、各ウェルに新鮮な培地の2 mLを加え。 </li><li> 9日後、増殖培地毎に変化し続けます文化まで、他の日は、コンフルエントになります。 </li></ol> 7.継代注：すべてのステップは、生物学的安全キャビネットの内部で実行されるべきです。髄膜線維芽細胞は、髄膜組織片の外に移行し、より大きな培養皿に髄膜線維芽細胞を、培養容器の縁に向かって成長拡大を開始した後。 <ol><li>継代を開始する前に、コート15-30分間1％ゼラチンで培養皿。 </li><li> 6ウェル皿から培地を吸引し、2mLのPBSで細胞を洗浄。 </li><li>各ウェルにトリプシン/ EDTAを1 mLを加え、5〜10分間37℃でインキュベートします。カバースリップまたはこのステップの髄膜組織を除去する必要はありません。 </li><li>細胞は丸みを帯びていると、デタッチ培地2mLのを追加して起動すると。 </li><li>ピペット細胞最大とまでは完全にすべての塊を破壊し、より大きな培養皿に細胞溶液を移します。 </li><li>三6ウェル皿から細胞を結合するために4：1〜3：1の比率を使用し1 T75培養皿に。 </li><li>髄膜線維芽後細胞を、細胞をトリプシン処理、T75培養フラスコ中でコンフルエントに、バイアル当たり1×10 6細胞/ mlで凍結保存培地中で凍結保存します。コンフルエント髄膜線維芽細胞の一つのT75培養フラスコは、約5〜7万個の細胞が含まれています。 </li></ol>免疫染色により髄膜線維芽細胞の8キャラクタリゼーション注：手順を開始する前に、4％パラホルムアルデヒド溶液を調製し、PBS中の5％正常ヤギ血清（ブロッキング緩衝液）、0.3％トリトンX-100 PBS（透過化緩衝液）、一次および二次抗体溶液中で、およびを1μg/ mLでのヘキスト33342は、10mg / mLのストックからPBSで希釈しました。 <ol><li> 0.1％ゼラチンでコーティングした8ウェルチャンバースライドに15,000〜30,000髄膜線維芽細胞をシード。 </li><li>細胞が付着している場合、24時間後、室温で10分間、ウェルあたり100μLの4％パラホルムアルデヒドで細胞を固定します。 1×PBSでウェルを3回洗浄。 </li><li>室温で5分間、0.3％トリトンX-100150μlで細胞を透過性。 1×PBSでウェルを3回洗浄。 </li><li>室温で1時間ブロッキング溶液200μL（PBS + 5％正常ヤギ血清）を加えます。 </li><li>ブロッキング溶液を吸引除去し、ブロッキング溶液中に希釈し、所望の一次抗体の150μLを追加します。二重染色のために、次のように氷上で別々の遠心分離管中の一次抗体の作業希釈液を準備します。 <ol><li>抗フィブロネクチン+ 1の300倍希釈液：ブロッキング溶液中の抗ネスチンの200倍希釈を準備します。抗SERPINH1 + 1の250倍希釈液：ブロッキング溶液中の抗TUJ1 1,000希釈1を準備します。抗SERPINH1 + 1の250倍希釈液：ブロッキング溶液中の抗SOX2 100希釈の1を準備します</li></ol></li><li> 4℃で一晩インキュベートします。 </li><li> 1×PBSでウェルを3回洗浄。 </li><li>抗ウサギ（緑ヤギ二次抗体を蛍光標識の400希釈; EX /エム2：作業1を準備します</sアップ&gt; 519分の495 nm）をヤギ抗マウス（赤; EX /エム2 617分の590 nm）をブロッキング溶液中で、各ウェルに100μLを追加します。室温、暗所で1時間インキュベートします。その後、1×PBSで一回、ウェルを洗浄します。 </li><li>各ウェルへの解決策を、3分間、暗所でインキュベートし; 100を1μg/ mLのヘキスト33342のμL（例/エム2 461分の358 nmの青に）を追加します。ウェルの最終1×PBS洗浄に残して、1×PBSでウェルを3回洗浄し、アルミ箔でスライドをカバーしています。 </li><li>蛍光顕微鏡下で細胞を分析します。 </li></ol>

<ol><li>Decimo, I., Fumagalli, G., Berton, V., Krampera, M., Bifari, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meninges%3A+from+protective+membrane+to+stem+cell+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Meninges: from protective membrane to stem cell niche.</a> Am J Stem Cells. 1 (2), 92-105 (2012).</li>
<li>Bifari, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+stem%2Fprogenitor+cells+with+neuronal+differentiation+potential+reside+in+the+leptomeningeal+niche%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Novel stem/progenitor cells with neuronal differentiation potential reside in the leptomeningeal niche.</a> J Cell Mol Med. 13 (9B), 3195-3208 (2009).</li>
<li>Bifari, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meninges+harbor+cells+expressing+neural+precursor+markers+during+development+and+adulthood%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Cell+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Meninges harbor cells expressing neural precursor markers during development and adulthood.</a> Front Cell Neurosci. 9, 383(2015).</li>
<li>Decimo, I., Bifari, F., Krampera, M., Fumagalli, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+stem+cell+niches+in+health+and+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Pharm+Des%22%5BJournal%5D)">Neural stem cell niches in health and diseases.</a> Curr Pharm Des. 18 (13), 1755-1783 (2012).</li>
<li>Hayashi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meningeal+cells+induce+dopaminergic+neurons+from+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Meningeal cells induce dopaminergic neurons from embryonic stem cells.</a> Eur J Neurosci. 27 (2), 261-268 (2008).</li>
<li>Nakagomi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leptomeningeal-derived+doublecortin-expressing+cells+in+poststroke+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Leptomeningeal-derived doublecortin-expressing cells in poststroke brain.</a> Stem Cells Dev. 21 (13), 2350-2354 (2012).</li>
<li>Hjelm, B. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+autopsy+donor-derived+somatic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Lett%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from autopsy donor-derived somatic cells.</a> Neurosci Lett. 502 (3), 219-224 (2011).</li>
<li>Hjelm, B. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro-differentiated+neural+cell+cultures+progress+towards+donor-identical+brain+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Mol+Genet%22%5BJournal%5D)">In vitro-differentiated neural cell cultures progress towards donor-identical brain tissue.</a> Hum Mol Genet. 22 (17), 3534-3546 (2013).</li>
<li>Meske, V., Albert, F., Wehser, R., Ohm, T. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culture+of+autopsy-derived+fibroblasts+as+a+tool+to+study+systemic+alterations+in+human+neurodegenerative+disorders+such+as+Alzheimer%27s+disease--methodological+investigations%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neural+Transm+%28Vienna%29%22%5BJournal%5D)">Culture of autopsy-derived fibroblasts as a tool to study systemic alterations in human neurodegenerative disorders such as Alzheimer's disease--methodological investigations.</a> J Neural Transm (Vienna). 106 (5-6), 537-548 (1999).</li>
<li>Bliss, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+postmortem+human+dura+mater+and+scalp+for+deriving+human+fibroblast+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Use of postmortem human dura mater and scalp for deriving human fibroblast cultures.</a> PLoS One. 7 (9), e45282(2012).</li>
<li>Sproul, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+iPSC+lines+from+archived+non-cryoprotected+biobanked+dura+mater%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Neuropathol+Commun%22%5BJournal%5D)">Generation of iPSC lines from archived non-cryoprotected biobanked dura mater.</a> Acta Neuropathol Commun. 2, 4(2014).</li>
<li>Adler, C. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+clinical+diagnostic+accuracy+of+early+vs+advanced+Parkinson+disease%3A+clinicopathologic+study%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">Low clinical diagnostic accuracy of early vs advanced Parkinson disease: clinicopathologic study.</a> Neurology. 83 (5), 406-412 (2014).</li>
<li>Hughes, A. J., Daniel, S. E., Kilford, L., Lees, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accuracy+of+clinical+diagnosis+of+idiopathic+Parkinson%27s+disease%3A+a+clinico-pathological+study+of+100+cases%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurol+Neurosurg+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Accuracy of clinical diagnosis of idiopathic Parkinson's disease: a clinico-pathological study of 100 cases.</a> J Neurol Neurosurg Psychiatry. 55 (3), 181-184 (1992).</li>
<li>Hughes, A. J., Daniel, S. E., Lees, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+accuracy+of+clinical+diagnosis+of+Lewy+body+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">Improved accuracy of clinical diagnosis of Lewy body Parkinson's disease.</a> Neurology. 57 (8), 1497-1499 (2001).</li>
<li>Langston, J. W., Schüle, B., Rees, L., Nichols, R. J., Barlow, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multisystem+Lewy+body+disease+and+the+other+parkinsonian+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">Multisystem Lewy body disease and the other parkinsonian disorders.</a> Nature Genetics. 47 (12), 1378-1384 (2015).</li>
<li>Vangipuram, M., Ting, D., Kim, S., Diaz, R., Schüle, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skin+punch+biopsy+explant+culture+for+derivation+of+primary+human+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Skin punch biopsy explant culture for derivation of primary human fibroblasts.</a> J Vis Exp. (77), e3779(2013).</li>
<li>Byers, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SNCA+triplication+Parkinson%27s+patient%27s+iPSC-derived+DA+neurons+accumulate+alpha-synuclein+and+are+susceptible+to+oxidative+stress%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">SNCA triplication Parkinson's patient's iPSC-derived DA neurons accumulate alpha-synuclein and are susceptible to oxidative stress.</a> PLoS One. 6 (11), e26159(2011).</li>
<li>Sanders, L. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LRRK2+mutations+cause+mitochondrial+DNA+damage+in+iPSC-derived+neural+cells+from+Parkinson%27s+disease+patients%3A+reversal+by+gene+correction%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Dis%22%5BJournal%5D)">LRRK2 mutations cause mitochondrial DNA damage in iPSC-derived neural cells from Parkinson's disease patients: reversal by gene correction.</a> Neurobiol Dis. 62, 381-386 (2014).</li>
<li>Beevers, J. E., Caffrey, T. M., Wade-Martins, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+pluripotent+stem+cell+%28iPSC%29-derived+dopaminergic+models+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Soc+Trans%22%5BJournal%5D)">Induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived dopaminergic models of Parkinson's disease.</a> Biochem Soc Trans. 41 (6), 1503-1508 (2013).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

このプロトコルは、脳の寄付金と合わせて採取したヒト死後の軟膜から髄膜線維芽細胞培養を導出するためのシンプルかつ堅牢なプロトコルを記述します。死後の人間の材料から細胞培養物を導出するプロトコルの非常にいくつかの説明があります。二つの研究は、皮膚由来線維芽細胞培養物7を説明する 8、9、一つの研究は、硬膜サンプル10について説明し 、他は非凍結保存された冷凍硬膜サンプル11について説明しています。 私たちは、凍結保存の前に十分な成長と拡大を確実にするために、各ウェル中の2-3組織片（約3mm×3 mm）の持つ2つの6ウェルプレートを準備します。髄膜片を所定の位置にそ...

硬膜、くも膜と軟膜：髄膜は脳を保護する3膜で構成されています。より最近には、髄膜も脳の発達と脳のホメオスタシス1で重要な役割を果たすことが認識されています。髄膜は、間葉系および神経堤由来細胞から誘導され、興味深いことに、髄膜内に存在する前駆細胞は、in vitroおよびin vivo 2、3、4 における移植後の神経細胞を生じさせることができることが示されています。それらはドーパミン作動性ニューロン5に、胚性幹細胞の分化のための間質細胞由来誘導活性を有するような髄膜培養物はまた、成功裏に、フィーダー層として使用されてきました。また、軟膜は直接虚血状態6の下で、ニューロン、アストロサイト、およびオリゴデンドロサイトに分化する能力を持っています。 このプロトコルでは、人間の死後髄膜サンプルをまとめて、くも膜と軟膜から収集された軟膜と呼ばれ、研究目的のために人間の脳の寄付金の一部として調達されています。脳の解剖死の24時間以内に行われ、このプロトコルでここに示されているように軟膜サンプルは、次の6~8時間以内にさらなる処理のために冷増殖培地中に置かれます。 このプロトコルは、患者の一次軟膜細胞培養の開発のための解剖と人間の髄膜試料の調製を記載します。組織は、約3ミリメートル×3ミリメートルの正方形の25-30片に切断されています。三枚は各6ウェルに配置されたゼラチンでコーティングされたウェルと丸いガラスカバースリップでダウンして開催されました。髄膜切開は、約25-35分かかります。この文化の主な課題は、脳の調達、輸送、および解剖などの無菌性は、一般的に無菌条件下で行われていないです。 Therefore、ペニシリン、ストレプトマイシン、およびアムホテリシンBのカクテルで培地を補足し、別々に培養組織片にマルチウェルディッシュを使用することが重要です。 髄膜線維芽細胞の増殖は、最初の週以内に通常発生します。細胞がコンフルエントになるまで培地を2〜3日ごとに変化させ、細胞を酵素的に継代します。髄膜線維芽細胞は、凍結保存培地mLの/バイアルあたり100万個の細胞で凍結保存します。このプロトコルでは、20から30000000髄膜線維芽細胞は、凍結保存のため6-8週間で導出することができます。これらの髄膜線維芽細胞の下流のアプリケーションが、疾患の研究、直接神経分化または病気のメカニズムの理解のため、および薬物開発のための軟膜から誘導された多能性幹細胞の誘導のための一次培養物です。

<table><tbody><tr><td>コーニング ペトリ皿</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック</td><td>351029</td><td></td></tr><tr><td>Nunc 6ウェルプレート</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック</td><td>14-832-11</td><td></td></tr><tr><td>15mmカバースリップ</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック</td><td>12-545-83 15CIR-1D</td><td></td></tr><tr><td>メス、滅菌ブレード、No.15</td><td>ミルテックス</td><td>4-415</td><td></td></tr><tr><td>湾曲した精密先端鉗子</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック</td><td>16-100-122</td><td></td></tr><tr><td>血清ピペット</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>13-678-11E</td><td></td></tr><tr><td>パスツールピペット</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>22-230490</td><td></td></tr><tr><td>ゼラチン</td><td>シグマ</td><td>G1890-100G</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝液 生理食塩水</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>SH30264.02</td><td></td></tr><tr><td>コーニング 500 mL フィルターユニット</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>430770</td><td>培地コンポーネントとフィルター。</td></tr><tr><td>Nunc細胞培養処理フラスコ(フィルターキャップ付き)、T175 cm2&nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>178883</td><td></td></tr><tr><td>名前</td><td>会社</td><td>strongカタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>Growth Media</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hyclone DMEM</td><td>Fisher Scientific</td><td>SH30081.02</td><td></td></tr><tr><td>Hyclone FBS</td><td>FisherScientific</td><td>SH30910.03</td><td></td></tr><tr><td>MEM 非必須アミノ酸溶液 (100x)</td><td>Thermo Fisher</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX Supplement (100x)</td><td>Thermo Fisher</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム (100 mM)</td><td>Thermo Fisher</td><td>11360-070</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン (10,000 U/mL)</td><td>Thermo Fisher</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>アムホテリシンB(黄色の溶液/ 250 & micro;g/mL)</td> <td>Fisher Scientific</td><td>BP264520</td><td></td></tr><tr><td>Bambanker Freeze 120 mL</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>NC9582225</td><td></td></tr><tr><td>名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号<</td><td>strong>コメント</td></tr><tr><td>フィブロネクチン染色</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>8ウェルチャンバースライド&nbsp;</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td><td>ック1256518</td><td></td></tr><tr><td>20%パラホルムアルデヒド&nbsp;</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>15713</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100&nbsp;</td><td>シグマ</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>100%グリセロール&nbsp;</td><td>BioRad</td><td>9455</td><td></td></tr><tr><td>100%正常ヤギ血清&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>101098-382</td><td></td></tr><tr><td>抗フィブロネクチン抗体 [F1]</td><td>Abcam</td><td>ab32419</td><td>1:300 希釈液中</td></tr><tr><td>アンチSERPINH1</td><td>Sigma</td><td>S5950-200ul</td><td>1:250 希釈液中</td></tr><tr><td>アンチSOX2</td>ミリ<td>ポア</td><td>MAB4343</td><td>1:100 ブロッキング液中希釈</td></tr><tr><td>アンチネスティン</td><td>ミリポア</td><td>MAB5326</td><td>1:200ブロッキング溶液中での希釈</td></tr><tr><td>Anti-TUJ1</td><td>Covance</td><td>MMS-435P</td> ブロッキング<td>溶液中での 1:1,000 希釈</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 anti-rabbit</td><td>Thermo Fisher</td><td>A11029</td><td>ブロッキング溶液中での 1:400 希釈;(グリーンチャンネル;Ex/Em2 495/519 nm)&nbsp;</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 555 anti-mouse</td><td>Thermo Fisher</td><td>A21424</td><td>1:400 希釈液ブロッキング溶液;(レッドチャンネル;Ex/Em2 590/617 nm)&nbsp;</td></tr><tr><td>Hoechst 33342 染色</td><td>Thermo Fisher</td><td>H3570</td> 最終<td>濃度 1.0 &mu;g/mL;(ブルーチャンネル;Ex/Em2 358/461 nm)</td></tr><tr><td colspan="4">サプライヤーは提案であり、他のベンダーからの同様の製品も同様に使用することができます。</td></tr></tbody></table>

死後ヒト脳ドナーから軟膜植片培養物の導出

Derivation of Leptomeninges Explant Cultures from Postmortem Human Brain Donors

大きな進歩は、パーキンソン病の臨床的特徴付けてなされたものであっても、いくつかの研究は、パーキンソン病の診断は病理学的に、臨床的に診断されたパーキンソン病の25％までで確認されていないことを報告しています。したがって、特発性パーキンソン病と臨床的に診断された患者から採取した組織は、誤診率の高さを持つことができます。したがって、前臨床モデルとして、パーキンソン病を研究するために、このような組織からのin vitro試験で無駄になることができます。 パーキンソン病の確認神経病理学的診断と死後の人間の軟膜を収集し、黒質線条体細胞損失およびレビー小体と呼ばれる細胞内タンパク質封入体によって特徴づけられることで、1は、臨床的に観察されたパーキンソニズムは、他の基礎疾患プロセス（ 例えば、腫瘍、動脈硬化症）によって引き起こされていないことを確信することができます。 このプロトコルPRESEN髄膜線維芽細胞培養の導出のための死後の人間の軟膜の解剖と準備TS。この手順は、堅牢であり、高い成功率を有します。脳の調達は、一般的に無菌条件下で行われていないとして、文化の課題は、無菌性です。従って、ペニシリン、ストレプトマイシン、およびアンホテリシンBのカクテルで培地を補充することが重要ですパーキンソン病の剖検で確認例から髄膜線維芽細胞の導出は、パーキンソン病のin vitroモデル化のための基盤を提供します。髄膜線維芽細胞は3-9日、試料調製後に表示され、約20〜30万個の細胞を6〜8週間で凍結保存することができます。髄膜線維芽細胞培養物は、均質であり、細胞は、フィブロネクチン、髄膜を識別するために一般的に使用されるマーカーを発現します。

軟膜の処理プロトコルが成功したときに、これは脳のための死後変化の長さに依存することができますが、髄膜線維芽細胞の増殖は最初、3〜9日切開後に観察されます。 図1は、4つの異なるドナーの髄膜線維芽細胞培養物を示しています。 図1Aは、4日10時間20分の死後変化と88歳のドナーからの処理後の組織の周りにガラスカバースリップ（ダーク対角線）および線維芽細胞成長によって押し下げ軟膜部分を示しています。 図1Bは、70歳のドナーと11時間45分死後変化から疎な線維芽細胞成長7日後の処理を示しています。 図1Cは、13日88歳のドナーと24時間死後変化から切開後の線維芽細胞の伸長を示しています。 図1Dは、T75ヴェスに継代したコンフルエント文化を示していますE1および細胞は、この段階で凍結保存することができます。 <p class="jove_content" fo:ke...

人間の死後脳から軟膜外植片培養プロトコルは6-8週間以内にフィブロネクチン陽性髄膜線維芽細胞を導出し、約20から30000000細胞を凍結保存するための技術的に堅牢かつ簡単な方法です。

Even though great progress has been made in the clinical characterization of Parkinson&#39;s disease, several studies report that the diagnosis of ...

私は、パーキンソン病研究所および臨床センターの脳提供プログラムのディレクターであるビルギット・シューレです。このビデオでは、パーキンソン病患者の死後ヒト脳の軟髄膜から外植片細胞培養の技術と初代線維芽細胞の持続時間について説明します。これらの線維芽細胞は、細胞ベースのアッセイを含むさまざまなアプリケーションに使用できます。これは、剖検で証明された散発性パーキンソン病の症例から細胞株を研究することができ、レビー小体病理を伴うため、重要です。まず、必要なすべての材料を組織培養フードに入れます。フードに入るすべての物体は、70%エタノールをスプレーして拭き取る必要があります。最初のステップは、髄膜をチューブからカッティングディッシュに移すことです。まず、約10ミリリットルのリン酸緩衝生理食塩水を滅菌済みの10センチメートルのカッティングディッシュに注ぎます。ここでは、髄膜を見ることができます。滅菌鉗子を使用して、髄膜を慎重にカッティング皿に移します。リッピングを防ぐために、この手順をゆっくりと実行してください。次のステップは、PBSで髄膜を洗浄して、できるだけ多くの血液を取り除くことです。サンプルが血まみれの場合は、別のカッティングディッシュに移すことを検討してみてはいかがでしょうか。さらに10ミリリットルのPBSを新鮮な10センチの皿に加えます。この洗浄を繰り返して、髄膜から血液を取り除き続けます。最後に、PBSを含む新鮮な10センチの皿に髄膜を移します。終了したら、皿を覆い、層流フード内の解剖顕微鏡に移します。この次のステップは、髄膜をより小さな断片に切片化し続けることです。2つの滅菌メスを使用して、浅い掻き取り動作で血管を髄膜から穏やかに分離します。この画像のように、3mm×3mmのピースを約18個カットするのに十分な大きさの領域を準備します。次に、メスを取り、揺らしながら、準備した領域を3ミリメートル×3ミリメートルの小片に切ります。これは、最初に髄膜を大きな部分に切断し、次にそれらの部分を小さなセクションに切断することにより、段階的なプロセスで行う方が簡単です。カッティングディッシュに蓋をして、組織培養フードに戻します。次に、髄膜を1ミリリットルの0.1%ゼラチンで30〜60分間きれいにコーティングした6ウェル組織培養プレートに移す準備をします。各ウェルに1ミリリットルの髄膜培地を加えます。次に、滅菌鉗子を使用して、3〜4個の髄膜片を各ウェルの中央に移します。このプレートで増殖した細胞は継代ゼロになります。次のステップでは、カバースリップを使用して、髄膜片が静止し、培養皿と接触していることを確認します。滅菌済みの15ミリメートルの円形カバースリップを髄膜片の上に置きます。必要に応じて、カバースリップで髄膜片を再配置します。次に、鉗子を使用して、カバーガラス

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学ぶ、死後ヒト脳の軟膜から線維芽細胞を培養するエクスプラント法。パーキンソン病の細胞系を用いた病態研究に応用可能で、6〜8週間でフィブロネクチン陽性細胞を樹立できる。

死後ヒト脳ドナーから軟膜植片培養物の導出

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