Name: マイクロスケールの熱泳動を使用してATPのアプタマーの結合部位のマッピング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-07T18:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 9 s
Description: 学ぶマイクロスケール熱泳動法によるDNAアプタマーとATPの結合部位マッピング。DH25.42アプタマーのアデニン特異的結合を定量解析し、分子間相互作用の基礎パラメータを迅速に測定する手法を解説します。

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アプタマー作業ストックの調製<ol><li>製造元の指示に従って、水にオリゴヌクレオチド（5-Cy5でCCTG GGGGAGTATTGCGGAGGAAGG-3、参照18からの配列）を溶解、100μMの最終濃度に達します。 </li><li>結合緩衝液で200 nmまでのオリゴヌクレオチドストックを希釈することにより、アプタマー作業溶液を準備します（20 mMトリス、pHが7.6; 300mMのNaCl; 5mMのMgCl 2、0.01％のTween20）。 </li><li> 90℃で2分間混合物をインキュベート、サンプルはすぐに氷上で冷却し、室温でサンプルを使ってみましょう。 </li></ol>リガンド希釈シリーズの調製<ol><li>各リガンド（アデノシン三リン酸（ATP）、アデノシン二リン酸（ADP）、アデノシン一リン酸（AMP）、アデニン、グアノシン三リン酸（GTP）、シチジン三リン酸（CTP）、デオキシアデノシン三リン酸（dATPを）、及びS-アデノシルメチオニン（SAM）のために; 10 mMストックずつ）、16ステップシリアルdilutiを準備200μlのマイクロ反応チューブ内に。 注：14,000×gで5分間のリガンド株式の遠心分離は、凝集物を除去するのに役立つことがあります。低容量は、低結合反応チューブは、チューブ壁に分子の吸着を避けることをお勧めします。 </li><li>推定親和性より少なくとも50倍の最大濃度で開始し、各希釈段階で50％リガンド濃度を低下させます。 注：制御ソフトウェアに実装濃度ファインダーツールは、結合データをシミュレートし、希釈系列のための右の濃度範囲を見つけるのに役立ちます。 </li><li>マイクロ反応管に16から2をアプタマー結合緩衝液10μlを加え、チューブ1のリガンドストック（10 mM）の20μlのを入力します。 </li><li>転送10管2に管1μlのピペッティングにより、数回上下適切に混ぜます。次のチューブに10μLを移し、残りのチューブのために、この希釈を繰り返します。 </li><li>最後のチューブから10μlの過剰を捨てます。任意のbは避けてくださいufferの希釈効果。チューブ1およびチューブ2月16日のバッファは同一でなければなりません。 </li></ol>最終反応ミックスの調製<ol><li>ピペッティングの誤差を最小化するために個々の結合20μlの容量との反応（アプタマー使用液+それぞれのリガンド希釈液10μlを10μl）を準備します。わずか4μLの容量は、キャピラリーLL FiにSUFのfi cientです。 </li><li>各リガンド希釈液10μlに200 nmのアプタマーワーキング溶液10μlを加え、ピペッティングにより、数回上下適切に混ぜます。 </li><li>試料中に毛細血管を浸漬することにより、標準的なキャピラリーにサンプルLL室温とFiので5分間サンプルをインキュベートします。より長いインキュベーション時間は、いくつかの相互作用を必要とすることができます。しかし、5分が最も適しています。 NOT光学測定が行われる中央部、上、側面のみに毛細血管をタッチします。 </li><li>目の上に毛細血管を配置電子キャピラリートレイとMSTデバイスを起動します。 </li></ol> 4. MSTデバイスの起動注：生成されたデータを解釈するためのソフトウェアデバイスに2つのプリインストールされたソフトウェア・パッケージを提供し、 &#39;&#39; &quot; &#39;分析制御実験条件の技術的なセットアップ用のソフトウェア&#39;&quot;。 <ol><li> MSTデバイスに毛細管トレイを配置する前に、制御ソフトウェアを起動し、ドロップダウンメニュー &#39; &quot;&#39;温度制御で「手動温度制御を可能にする &#39;&#39;を選択することによって、全体的な所望の温度を調整します。このように、25℃に温度を調整します。 注：MST機器は、温度制御された22〜45°Cからすることができます。 </li><li>温度が期待されるレベルに到達した後、MSTデバイスに毛細管トレイを配置するのを待ちます。 </li><li> Cy5の色素のための &quot; &#39;&#39;赤にLEDチャネルを設定し、FL uorescencを得るためにLEDの電力を調整します標準センサーとMSTデバイスで300〜1000蛍光単位の電子信号。 25％のパワーLEDをこの研究で使用されています。 注：6000 18000蛍光単位は、高感度センサーとMSTのために推奨されています。 </li></ol> 5.キャピラリースキャン<ol><li> 「コントロール」のソフトウェア上のキャピラリの位置を選択し、「開始キャップスキャン」をクリックすることで、試料の異なる品質面をチェックするために、毛細管スキャンを行います MSTの測定を開始する前に。 </li><li>ソフトウェアで（U字型またはピークを平坦化）蛍光増強/消光とこだわりの効果のためのキャピラリースキャンを点検します。 注：その他の蛍光の検出および取り扱いに関する詳細やこだわりの影響が議論に記載されています。 </li></ol> 6. MST測定注：MSTの測定を開始する前に、こだわりの影響を除外することを確認し、充実/クエンチング効果、またはピペッティングエラー、毛細管スキャンがフロリダ州uorescence信号がSUFのfi cientであることを示していることを確認してください。詳細については、説明を参照してください。 <ol><li> &#39;&#39;コントロール」ソフトウェアで、それぞれのキャピラリ位置に希釈系列からのリガンドの濃度を割り当てアプタマーとリガンド（1：1）を混合する希釈工程を考えてみましょう。 </li><li>キャピラリ＃1のリガンドの最高濃度（5 mm）を入力し、正しい希釈タイプを選択します（ここでは、1：1）、最大濃度をクリックすると、自動的に毛細血管の＃2位の残りの濃度を割り当てるには、ドラッグ機能を使用16。最低濃度は152.6 nmです。 </li><li>制御ソフトウェアの各セクションで（ここでは、100 nM）を蛍光増アプタマーの濃度を入力します。 </li><li> 、5秒間のFL uorescenceを検出し、デフォルト設定を使用して30秒間MSTを記録し、レーザーtの不活性化後にさらに5秒間蛍光を記録します<html> O分子の逆拡散を監視します。 </li><li>制御ソフトウェアの各セクションの20％のレーザー出力を調整します。 注：最高の信号対雑音比を受信し、非特異的効果を回避するために、20〜40％のレーザー出力が推奨されます。特定の場合において、より高いレーザー出力を結合していない及び結合した分子の良好な分離を得るために必要とされ得ます。 </li><li>コピー先のフォルダを選択した後、実験を保存して、 &#39;&#39;スタートMST測定」ボタンを押すことで、MSTの計測を開始します。 注：.ntpファイルは、保存先のフォルダに生成されます。この設定を使用して、一回の測定は、10〜15分間持続します。 </li><li> EC 50値のより正確な決意のために少なくとも2回の実験手順を繰り返します。 注：技術的再現性を試験するために、同一の毛細管が複数回（技術的反復）を走査することができます。 </li></ol> 7. MSTデータ分析NT &quot;&gt;注：解析ソフトウェアは測定中のFL yの上のデータの分析を可能にする分析ソフトウェアは、リガンド濃度37対MST時間トレースと正規化されたフロリダ州uorescence（F ノルム ）の変化をプロットします。。 <ol><li> MST解析ソフトウェア（MO.Affinity分析）を起動し、保存先のフォルダから.ntpファイルをロードします。データ選択メニューでの解析タイプとして「MST」を選択します。 注：リガンド依存性蛍光効果の場合は、初期蛍光分析のために選択することができます。 </li><li>ドラッグ・アンド・ドロップするか、それぞれの実験下の「+」ボタンを押して、新たな分析にそれぞれの技術的あるいは生物学ラン（複数可）を追加します。 </li><li>実験では、MSTのトレース、キャピラリースキャン、キャピラリー形状、初期蛍光、および漂白速度の特性に関する情報を得るために、それぞれの実験以下の情報ボタンを押してください。 注：これらの生データ缶アルそう分析の後の手順で検査されます。 </li><li>視覚バンプやスパイクなどの目に見える、凝集および沈殿効果のためのMSTトレースを検査します。 注：検出および凝集効果の取り扱いの詳細については、議論をお読みください。 </li><li>視覚的に平坦化またはU字型のピークとして表示毛細管スキャンと吸着効果のためのキャピラリー形状オーバーレイを、点検してください。視覚毛細管スキャンおよび蛍光効果の初期蛍光を検査します。視覚効果を光退色するための漂白率を検査します。 </li><li>用量 - 応答モードに切り替えて、それぞれのボタンを押して、「エキスパート」モードに解析の設定を変更します。 MSTの評価戦略として「T-ジャンプ」を選択します。 </li><li>曲線Fiのための設定については、「ヒル」モデルを選択します。結合パラメータを自動的に計算されます。 「比較結果」メニュー内の正規化のそれぞれのタイプを選択してデータを正規化します。エクスポート.XLSまたはPDFファイルなどのデータのいずれか。 注：バインディンググラフ下の表には、計算された結合パラメータをまとめたもの。 </li></ol>

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CEおよびTSは、生物物理学的分析サービスを提供し2bind社の従業員です。このビデオの記事のための出版手数料は2bind社によって支払われています。

品質コントロール： 非特異的表面への試料物質の付着/吸着、ならびに凝集効果、親和性データの質に劇的な影響を与えます。しかし、わずか数最先端の技術は、これらの影響を監視し、回避するために、正確かつ迅速なオプションを提供しています。 MSTは、技術的なセットアップの段階的な最適化を可能にする、検出し、これらの問題を克服するのに役立つ統合された品質管理を提供しています。凝集/沈殿効果（ステップ7.7）に移動プロファイルで監視することができ、一方、粘着蛍光効果に関する重要な情報は、毛細管スキャンキャピラリー形状（5.2および7.5ステップ）から抽出することができます。これらのコントロールは、データ品質の一定の改善のために有効にして、プロトコルにおける重要なステップを表します。 吸着効果とトラブルシューティングの検出： キャピラリースキャンは、主にINIとして行われますTiAlのステップは、その上に蛍光をスキャンすることによって、トレイ保持部上の毛管の位置を決定します。各ピークは、MSTの計測...

分子間の相互作用は自然の基礎です。したがって、基礎および応用研究の多くの分野の科学者は、異なる種類の分子相互作用の基本的な原理を理解してみてください。マイクロ熱泳動（MST）は、バッファを自由に選択して、高速、正確な、コスト効率の高い、溶液中の分子間相互作用の品質管理特性評価を行うために、科学者を可能にします。 MSTを使用して、1,000以上の出版物は、ライブラリースクリーニング、結合事象の検証、競合アッセイ、および複数の結合パートナー1-8を用いた実験を含めた分析の種類を記述する、単独で2016年から、すでにあります。一般的に、MSTは、このような分子間相互作用の任意の種類の結合親和性（mmまでPM）、化学量論、および熱力学、のような古典的な結合パラメータ、の研究を可能にします。 MSTの大きな利点は、相互作用パートナーの大きさの独立した結合事象を研究する能力です。でもCHALlengingの小核酸アプタマーとの相互作用（15-30塩基）等の小分子、薬物、抗生物質、または代謝産物などの標的を定量することができます。 アプタマー-ターゲット相互作用を特徴づけるために、現在の最先端の技術は、実験室強く、非常に複雑されているか、またはアプタマー-小分子相互作用9,10を定量化することができません。表面プラズモン共鳴（SPR）はゲル状、19をプロービングにライン、アッセイ11,12と、本当にそのような等温滴定熱量測定（ITC）13-15、定組成溶離16、平衡ろ過17,18としてラベルフリー熱量測定アプローチを、ベースシフトアッセイ、stopped-流FL uorescence分光法20,21、蛍光異方性（FA）22,23、単一分子FL uorescenceイメージング24,25、およびバイオ層干渉（BLI）は26も不正確またはアプタマー、小分子と非互換ですか、相互作用。その他principaこれらのメソッドのリットルの問題は、低感度、高サンプル消費、固定化、表面の質量輸送の制限、および/またはバッファの制限です。これらの技術の唯一のいくつかは、凝集、吸着効果のための統合制御を提供します。 MSTは、アプタマーおよび小分子27-29、ならびにそのようなタンパク質30-33のような他の標的との間の相互作用を研究するために、この制限を克服するために、科学者のための強力なツールを表します。技術は、温度勾配を介して分子の動きに依存しています。呼ばれるこの有向運動、「熱泳動は、「サイズ、電荷、および分子34,35の水和殻に依存します。分子へのリガンドの結合を直接変更熱泳動移動度が得られ、これらのパラメータのうちの少なくとも1つを変化させます。小さなサイズを有するリガンドは、結合した状態に結合していないからサイズ変更の面で大きな影響がないかもしれませんが、彼らがdrを持つことができます<html>水和殻および/または電荷にamatic効果。結合パートナーとの相互作用後の分子の熱泳動運動の変化は、基本的な結合パラメータ2,7,34,36,37の定量化を可能にします。 図1Aに示されているように、MSTデバイスは、蛍光検出の場合と同じ光学系を用いて、ガラスキャピラリー内のサンプル上に集束赤外線レーザーで構成されています。レーザは温度勾配（2-6℃のΔT）を確立しながら、トリプトファン6または蛍光標識された相互作用パートナー3,8のの固有のFL uorescenceを介してタンパク質の熱泳動的動きを監視することができます。空間、ΔTで生じる温度差はソーレーによって定量することができる高温の領域での枯渇または分子の蓄積につながるCOEF Fiのcient（S T）。 G &quot;/&gt; C ホット加熱された領域内の濃度を表し、及びcの寒さは、初期の寒冷地での濃度です。 図1B、それぞれの時間スケールによって分離することができる別の相からなるMSTの移動プロファイル（時間トレース）における典型的なMSTの実験結果に示すように初期蛍光を正確出発蛍光を定義し、光退色またはphotoenhancementをチェックするために温度勾配が存在しない場合に最初の5秒で測定されます。温度ジャンプ（T-ジャンプ）において蛍光変化熱泳動移動前の段階を示しています。この蛍光の初期の減少は、量子収率uorophore FLの熱的変化に依存しています。定常状態分布に達するまで、熱泳動相が原因分子の熱泳動的動きのために、蛍光が減少（または増加）に従います。レーザがオフにされた後、図1（b）に示すように、逆TJUMPと蛍光増分子の同時逆拡散を観察することができます。基本的な結合パラメータにアクセスするために、相互作用パートナーの異なるモル比を分析し、比較します。光学可視分子が一定に保たれると非標識リガンドの増加量が供給され、一方、典型的には、16の異なる比率は、一つMST実験で研究されています。 2つの結合パートナーとの相互作用は、熱泳動の変化を誘導し、したがって、正規化されたFL uorescenceで、次のように計算されるF ノルム 、： <img alt="方程式" src="/files/ftp_upload/55070/55070eq2.jpg" /> 冷たい ホット ＆F Fは、MSTトレースのデFiのNEDの時点でFL uorescence強度を平均化表します。結合親和性（K dまたはEC 50値）CURVによって計算することができます。電子フィッティング（ 図1C）。 全体的に、MSTは、いかなる種類の分子相互作用を研究するための強力なツールです。および25-ntの短い一本鎖DNAアプタマーDH25.42（7.9キロダルトン）;この原稿は、小分子アデノシン三リン酸（0.5 kDaのATP）との間で挑戦的な相互作用を特徴づけるためのプロトコルを提供しています。原稿の間に、ATP分子上のアプタマーの結合部位は、ATPのアデニングループにダウンマッピングされます。

<table><tbody><tr><td>アプタマー結合バッファー</td><td></td><td></td><td>20 mM Tris pH 7.6; 300 mM NaCl; 5 mM MgCl2; 0.01% Tween-20</td></tr><tr><td>蛍光標識 ATP アプタマー</td><td>IDT, Leuven, Belgium</td><td></td><td>配列: DH25.42 50-Cy5-CCTGGGGGAGT- ATTGCGGAGGAAGG-3</td></tr><tr><td>ATP</td><td>Sigma Aldrich, Germany&nbsp;</td><td>A2383</td><td>10 mM ストック溶液を - 20 °C で保存。C</td></tr><tr><td>ADP</td><td>Sigma Aldrich(ドイツ)&nbsp;</td><td>A2754</td><td>10 mM ストック溶液を - 20 °C で保存。C</td></tr><tr><td>AMP</td><td>Sigma Aldrich(ドイツ)&nbsp;</td><td>A2252</td><td>10 mM ストック溶液を - 20 °C で保存。C</td></tr><tr><td>アデニン</td><td>・シグマ・アルドリッチ(ドイツ)&nbsp;</td><td>A8626</td><td>10 mM ストック溶液を - 20 °C で保存。C</td></tr><tr><td>SAM</td><td>Sigma Aldrich、ドイツ&nbsp;</td><td>A7007</td><td>10 mM ストック溶液を - 20 °C で保存。C</td></tr><tr><td>dATP</td><td>Sigma Aldrich, ドイツ&nbsp;</td><td>11934511001</td><td>10 mMストック溶液を-20°Cで保存。C</td></tr><tr><td>CTP</td><td>Sigma Aldrich(ドイツ)&nbsp;</td><td>C1506</td><td>10 mM ストック溶液を - 20 °C で保存。C</td></tr><tr><td>GTP</td><td>Sigma Aldrich(ドイツ)&nbsp;</td><td>G8877</td><td>10 mMストック溶液を-20°Cで保存。C</td></tr><tr><td>モノリスNT.115&nbsp;</td><td>NanoTemper Technologies, Munich, Germany</td><td>MO-G008</td><td>Blue/Red Channel MSTデバイス、標準検出器付き、Monolith NT115 pico is MSTデバイス、高感度検出器付き</td></tr><tr><td>Monolith NT.115 capillaries Standard</td><td>NanoTemper Technologies, Munich, Germany</td><td>MO-K002</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf PCR tubes</td><td>Eppendorf, Germany</td><td>30124537</td><td></td></tr><tr><td>Monolith Control software. 2.1.33, プリインストールデバイス</td><td>NanoTemper Technologies、ミュンヘン、ドイツ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MO.affinity analysis v2.1.1</td><td>NanoTemper Technologies、ミュンヘン、ドイツ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kaleidagraph 4.5.2</td><td>Synergyソフトウェア</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

マイクロスケールの熱泳動を使用してatpのアプタマーの結合部位のマッピング

Mapping the Binding Site of an Aptamer on ATP Using MicroScale Thermophoresis

結合親和性、化学量論、熱力学などの基本的な結合パラメータの観点から分子相互作用を特徴づけることは、基礎科学と応用科学において不可欠なステップです。MicroScale Thermophoresis(MST)は、この重要な情報を取得するための高感度な生物物理学的方法です。この技術は、温度勾配を通る分子の移動を表す熱泳動と呼ばれる物理的効果に依存しており、溶液中の結合パラメータを迅速かつ正確に決定し、緩衝条件(緩衝液から溶解物/血清まで)を自由に選択することができます。MSTは、結合していない分子が結合パートナーと複合体を形成している分子とは異なる熱泳動運動を示すという事実を利用しています。熱泳動運動は、分子相互作用の瞬間に、サイズ、電荷、および水和シェルの変化により変化します。2つの結合パートナーの異なる分子比の移動プロファイルを比較することにより、結合親和性(pMからmM)などの定量的情報を決定できます。アプタマーと小さな化合物のような小さなサイズの分子間の困難な相互作用も、MSTで研究することができます。この原稿では、DH25.42 DNAアプタマーとATPとの間の十分に研究されたモデル相互作用を使用して、アプタマーと低分子の相互作用を特徴付けるためのプロトコルを提供します。この研究は、MSTが非常に感度が高く、7.9 kDaのDNAアプタマーの結合部位をATPのアデニンにマッピングできることを示しています。

この研究では、MSTは、ATPのDH25.42 DNAアプタマー18の結合部位を特徴付けるために適用されました。ランダム38-40一つ以上の蛍光体で標識タンパク質と小分子をATPの相互作用を特徴付けるまたはATP模倣他の研究とは対照的に、本研究では、5 &#39;末端上の1つのCy5分子と7.9 kDaの一本鎖DNAアプタマーのラベル付きバージョンが含まれています。異なるATP誘導体および関連分子、様々な位置にATP異なるすべては、ATP分子上の結合部位をマッピングするために使用しました。異なるリガンドの（50％ずつリガンド濃度を減少させる16段階で）希釈系列を調製し、Cy5標識アプタマーの一定量と混合しました。サンプルを、25％のLEDと20％のレーザー出力において標準キャピラリーで分析しました。移動プロファイル（MST時間トレース）を記録し、T-ジャンプ相に由来する蛍光単位は、リガンドconcentrに対してプロットしました。エーション（ 図1Cを比較）。カーブフィッティングは、EC <su...

MicroScale Thermophoresis (MST) は、アプタマーとターゲットの相互作用を特徴付ける高感度技術です。この原稿では、アプタマーと低分子の相互作用を特徴付けるためのMSTプロトコルについて説明します。

マイクロスケールの熱泳動を使用してATPのアプタマーの結合部位のマッピング

Characterization of molecular interactions in terms of basic binding parameters such as binding affinity, stoichiometry, and thermodynamics is an ...

この実験の全体的な目的は、マイクロスケール熱泳動を用いて、結合部位のマッピングを含むDNAアプタマーと低分子の相互作用を特性評価することです。この手法は、分子相互作用の基本的な結合パラメータに関する重要な疑問を解決するのに役立ちます。この技術の主な利点は、相互作用パートナーのサイズに依存しないことであり、アプタマーと低分子との間の困難な相互作用における品質管理データを取得することが可能になります。この手法はアプタマーと低分子の相互作用に関する知見を提供できますが、薬物-標的相互作用や抗原-抗体相互作用など、他の分子間相互作用にも適用可能です。手順を開始するために、Cy5標識DNA DH25.42アプタマーの100 micromolarストック溶液を蒸留水で調製します。次に、アプタマーストック溶液を結合バッファーで200 nanomolarに希釈します。アプタマー作製溶液を90 °Cで2分間インキュベートします。その後、氷上で室温まで冷却します。次に、テストするリガンドを16段階で連続希釈するため、低吸着の200 µLマイクロ遠心チューブにラベルを貼り、準備します。10 millimolarのリガンドストック溶液と結合バッファーをそれぞれ20 microlitersずつチューブ1に分注します。チューブ2から16には、結合バッファーを10 microlitersずつ分注します。次に、チューブ1からリガンドストックを10 microliters分チューブ2に移し、ピペットを用いて十分に混合します。希釈混合液 10 µL をチューブ 3 に移し、十分に混合します。このようにして連続希釈を行い、必要に応じてバッファーによる希釈の影響を補正し、完了後、チューブ 16 から余分な 10 µL を廃棄します。各希釈液にアプタマー作製溶液 10 µL を加え、ピペットで十分に混合します。サンプルを室温で5分間インキュベートします。次に、各混合液を清潔な標準キャピラリーに吸い込みます。この際、キャピラリーの両端のみに触れるようにしてください。キャピラリーを、濃度の高い順にトレイホルダーに配置します。MST装置を起動し、装置制御ソフトウェアを開きます。手動温度制御を有効にし、装置温度を25°Cに設定します。装置が設定温度に達したら、キャピラリートレイを挿入します。Cy5標識アプタマー用に、LEDチャンネルを赤に設定します。蛍光信号が500ユニットになるようにLED出力を調整します。その後、キャピラリースキャンを行い、キャピラリーの位置を取得してサンプルの品質を確認します。得られたピークがU字型または平坦な場合は、吸着効果を最小限に抑えるために、コーティングキャピラリーを用いてサンプルを新しく調製してください。MST装置のソフトウェアで、最初のキャピラリーのリガンド濃度と希釈タイプを入力します。クリックしてドラッグし、残りのキャピラリーの濃度と希釈を入力してください。最終ミックスにおけるアプタマーの濃度を入力します。実験方法の設定を確認し、蛍光測定を5秒間、MST測定を30秒間、そしてレーザー停止後の蛍光測定を5秒間行うように設定してください。レーザー出力を20%に設定します。ファイルパスを指定し、実験ファイルを保存してください。次に、MST測定を開始します。この方法で少なくとも3回の測定を行ってください。データ解析を始めるには、MST解析ソフトウェアを開き、実験ファイルを読み込みます。解析タイプにMSTを選択します。解析ソフトウェアでは、すべて同じキャピラリーセットで測定したテクニカルリピートの比較が可能です。また、別のキャピラリーセットを用いたバイオロジカルリピートを解析に追加することもできます。最初の測定の下にある情報ボタンをクリックします。MSTトレースを確認し、凝集や沈殿の影響を示すバンプやスパイクがないか検査します。次に、キャピラリースキャンとキャピラリー形状オーバーレイを確認し、吸着や吸収の影響を示す平坦なピークやU字型のピークがないか検査します。MSTでは凝集や吸収の影響を迅速に検出できるため、この手法を用いてテクニカルセットアップを高速かつ迅速に最適化し、最適なデータ品質を確保することができます。キャピラリースキャンおよび初期蛍光において、リガンド依存的な蛍光消光または増強効果がないか確認してください。また、経時的な蛍光変化を調べ、フォトブリーチング（光退色）または光増強の兆候がないか点検してください。データの品質が確認されたら、用量反応モードに切り替えます。T Jump MST評価戦略でエキスパート解析設定を選択してください。次に、曲線フィッティングにHillモデルを選択し、結合パラメータを自動的に算出します。結果の比較メニューで、正規化タイプを選択します。正規化されたデータをスプレッドシートまたはPDFファイルとしてエクスポートします。本手順では、単鎖DNAアプタマーと選択した低分子リガンドとの結合相互作用を調査するためにMSTを使用しました。MST曲線にヒル方程式を当てはめ、半最大有効濃度値を決定しました。ATPに対するアプタマーの5回の独立した生物学的反復測定において、ATPとアプタマーの相互作用は6～13ユニットの負の結合振幅を示し、平均EC50値は約52.3 micromolarでした。各リガンドのデータは結合分子の割合に正規化した後、比較されました。ATPと比較したADP、AMP、およびSAMのEC50値から、リン酸基の数はアプタマーの結合挙動にせいぜいわずかな影響しか与えないことが示唆されます。リボースのC2ヒドロキシル基の除去についても、アプタマーの結合親和性への影響はわずかであることが示されました。ペアリング基が存在しない場合、またはペアリング基がグアニンに変更された場合、アプタマーは結合しませんでした。アプタマーはアデニン単独にも結合したため、アデニン基がアプタマーの主要な結合部位であることがさらに示されました。この手法を習得すれば、適切に実施することで、基本的な結合パラメータに関する重要な情報を数分から数時間で得ることができます。

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Research

JoVE Journal

Biochemistry

生物化学

SELEXのプロトコールは、順番にランダムライブラリ領域に隣接する固定プライマー配列を必要とする結合リガンドの再生を必要とするそれぞれの選択の複数のラウンドを、含み。これらの固定プライマー配列は、選択プロセス（偽陽性と陰性）の妨げになることがあります。ここでは、プライマーのないプロトコルを提示する。...

ランダムDNAライブラリーを使用するプライマーフリーアプタマーの選択

このビデオは、タンパク質-脂質相互作用を研究するためのマイクロスケールの熱泳動を示しています。このアッセイは、温度勾配に応答した蛍光標識タンパク質の熱泳動運動を定量化することにより、分子間の相互作用を検出します。蛍光分子は、異なる濃度の非蛍光脂質分子と混合され、溶液中の分子の混合物は毛細血管にロードされます。キャピラリー内のサンプルに温度勾配を適用し、温度勾配内の蛍光分子の動きを検出して記録します。...

溶液中のタンパク質-脂質相互作用を研究するためのマイクロスケール熱泳動

マイクロ熱泳動（MST）が広く細胞溶解物から標的タンパク質を精製することなく結合親和性の決定のために用いることができる。プロトコルは、GFP融合タンパク質、非変性条件下での細胞溶解、及びリガンドの濃度を変化させるの存在下で、MST信号の検出の過剰発現を伴う。...

マイクロスケール熱泳動によって結合親和性の決定のタンパク質精製·フリー法

Aプロトコルは、調整可能なストリンジェンシー磁気ビーズ選択法に基づいて、低分子ターゲットの構造スイッチングアプタマーを選択するために提供されています。構造スイッチング特性で選択されたアプタマーは、前述の金ナノ粒子アッセイなど、ターゲットの存在を知らせるためにコンフォメーションの変更が必要なアッセイに有益です。...

比色金ナノ粒子アッセイに適用される構造スイッチングアプタマーを選択するための方法

生体外の選択グループ特定フタル酸エステル結合 DNA アプタマーのキャラクタリゼーションのためのプロトコルが表示されます。電気化学 aptasensor...

フタル酸エステル結合 DNA アプタマーの選択、評価、および電気化学 Aptasensor への応用

マイクロスケール熱泳動は、低い材料コストで結合定数を迅速に取得します。標識または標識フリーマイクロスケール熱泳動のいずれかが市販されている;しかしながら、標識フリーの熱泳動は、蛍光標識を用いて行うことができる多様な相互作用測定が可能ではない。当社は、標識熱泳動測定のためのプロトコルを提供しています。...

タンパク質-脂質相互作用を測定するためのマイクロスケール熱泳動の使用

このプロトコルは、細胞環境において受容体に結合するアデニンヌクレオチドをリアルタイムで測定する方法を提示する。結合は、トリニトロフェニルヌクレオチド誘導体と非標準的な蛍光アミノ酸で標識されたタンパク質との間のフェルスター共鳴エネルギー移動(FRET)として測定されます。...

インタクトな機能的な膜タンパク質へのヌクレオチド結合をリアルタイムで測定

本プロトコルは、等温滴定熱量測定(ITC)を使用して、DNAアプタマーとテトラサイクリンの間の結合の会合および解離速度論を分析し、サンプル調製、標準およびサンプルの実行、および結果のデータの解釈を含むことを説明しています。...

等温滴定熱量測定を用いたDNAアプタマーとテトラサイクリンの熱力学的および速度論的会合の決定(英語)

抗がんアプタマー開発に必要なステップは、標的への結合をテストすることです。この結合を研究するためのフローサイトメトリーベースのアッセイを実証し、ネガティブコントロールのアプタマーとその特定のタンパク質に対して陽性または陰性の癌細胞を含めることの重要性を強調しています。...

抗がんアプタマーの選択性と特異性を評価するためのフローサイトメトリーベースの細胞表面タンパク質結合アッセイ

本プロトコルは、標的を検出するための高速3段階のアプタマーベースの指数増幅アッセイの使用を実証する。サンプル調製、シグナル増幅、および発色をカバーして、カフェインよりもテオフィリンの存在を認識するこのシステムを実装します。...

3段階G四重鎖等温指数増幅反応によるアプタマーベースのターゲット検出(英語)

このプロトコールでは、蛍光灯アプタマーDAP-10-42をシグナルレポーターとして利用するスプリットハイブリダイゼーションプローブの設計と、核酸検出および単一ヌクレオチド置換を持つターゲット間の分化への応用について概説します。...

DNA蛍光発光アプタマーをシグナルレポーターとして用いたスプリットハイブリダイゼーションプローブによる塩基配列特異的核酸解析

学ぶマイクロスケール熱泳動法によるDNAアプタマーとATPの結合部位マッピング。DH25.42アプタマーのアデニン特異的結合を定量解析し、分子間相互作用の基礎パラメータを迅速に測定する手法を解説します。

マイクロスケールの熱泳動を使用してATPのアプタマーの結合部位のマッピング

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