Name: カエルの神経筋終末へのカルシウム色素の神経切片への積載：カエル神経筋接合部におけるカルシウムの一時的な位置合わせ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 17 min 5 s
Description: 学ぶカエル神経筋接合部へのカルシウム色素積載法。神経切片を用いてOregon Green BAPTAを導入し、シナプス活動時のカルシウム動態を蛍光記録で解析する手法を解説。薬剤影響評価にも応用可能。

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この研究は、ロシア政府のカザン連邦大学の競争的成長プログラムとロシア基礎研究基金（16-04-01051; 16-34-00817; 15-04-02983）の助成を受けて実施されました。私たちは、原稿の以前のドラフトに関する有益なコメントを提供した4人の匿名の査読者に感謝します。 Yuliya Aratskayaには音声録音に感謝の意を表します。 Victor Ilyin博士に多くの有益なコメントをいただき、フィナーレ編集の助けに感謝します。

実験は、 Rana ridibundaカエルの筋肉皮膚の孤立した神経筋調製物で行った。両方の性別の動物のサイズは約5-9cmであった。実験手順は、実験動物のケアおよび使用のためのNIHガイドに従って、カザン連邦大学およびカザン医科大学の実験動物の使用に関するガイドラインに従って実施した。この実験プロトコルは、欧州共同体理事会指令86/609 / EECの要件を満たし、カザン医科大学の倫理委員会によって承認された。 1.ソリューションの準備<ol><li> リンガー溶液の調製。 <ol><li>リンゲル溶液：113.0mM NaCl、2.5mM KCl、3.0mM NaHCO 3 、および1.8mM CaCl 2を調製する。 pHを7.2-7.4に調整する。 </li><li>低いCa 2+を含むリンゲル溶液を調製する。 </高Mg 2+含量：113.0mM NaCl、2.5mM KCl、3.0mM NaHCO 3、6.0mM MgCl 2、0.9mM CaCl 2 。 pHを7.2-7.4に調整する。 </li></ol></li><li> 色素装填溶液の調製。 <ol><li> HEPES-Naを含む水系溶液を10 mM（pH 7.2-7.4）で調製する。 </li><li> 14μLのHEPES溶液を染料30と共にバイアルに加える。 注：Ca 2+インジケーター色素は、500μLのバイアルに500μgの粉末を入れたものです。 </li><li>ボルテックスしてスピンダウンして完全に混合します。 </li><li>溶液を希釈して、Ca 2+指示薬の最終濃度を30mMに下げる。 -20℃で光および貯蔵に暴露されないようにする。 </li></ol></li></ol> 2.染料充填手順<ol><li> 皮膚の胸筋を胸腹の神経片で解剖する 。 注：解剖の手順は利用可能ですBlioch らによる論文の無償ダウンロード、1968 31 。 <ol><li>解剖の手順には、2つの細かい鉗子と角膜のはさみを使用します（ 表の表を参照）。解剖した組織を、リンゲル溶液で予め充填したシリコンエラストマーでコートしたペトリ皿に移し、細いステンレススチール製のピンで組織を固定し、それを皿の中にわずかに引き伸ばす。 </li><li>ペトリ皿にリンゲル溶液の新しいアリコートを再充填する。結合組織を除去する。神経を損傷しないでください。 </li></ol></li><li>充填ピペットを準備する：かみそりの刃を使用して、標準プラスチック10μLピペットチップの円錐部分の〜2mmの長さの部分を切り取ってください。 </li><li>ペトリ皿に充填ピペットをマウントするための粘土模型を準備します。 </li><li>ピペットチップから作られたシリコンチューブとプラスチック接続アダプターを介して充填ピペットの背面をプラスチックシリンジに接続します。 </li><li>前にdあなたのローディング手順は、プラスチックピペットを使用して、ペトリ皿からリンガーのソリューションを削除します。微細な注射器を用いて筋肉 - 神経製剤を乾燥させる;これは、その後の充填ピペットの充填時にCa 2+色素の希釈を防止する。 </li><li>冷凍庫からCa 2+指示薬バイアルを取り出し、室温で暗所で解凍させる。 </li><li>低倍率（10倍）の実体顕微鏡制御下で、筋肉と神経との間の接合を検出する。細かいピンセットとはさみで、 胸鰭の腹側の神経を筋肉の表面近くに切断します（ステップ2.1参照）。約2mmの神経切手を残す。 </li><li>モデリングクレイを使用して、ペトリ皿上のチュービングおよびシリンジに取り付けられた充填ピペットを固定します。 </li><li>ピペットの先端を神経切開の近くに動かします。 </li><li>それをつまらないで、静かに充填ピペットの先端に神経断端を吸引する。 </li><li>鈍い部分から吸引チューブを取り外す充填ピペットの端。 </li><li>長い針が付いたシリンジを使用して、充填ピペットから余分な溶液を注意深く取り出します（ 材料表を参照）。神経切れを挟まないでください。 </li><li>先端部に神経断端が吸引された状態で、充填ピペットの先端を垂直に少し持ち上げます。 </li><li>石油ゼリーを使用して、充填ピペットチップの外側から神経断端の吸引された部分を断熱する。 </li><li>必要に応じて、充填ピペットで絶縁された神経断端を乾燥させる：長い針を備えた注射器を用いて充填ピペットから余分な溶液を静かに吸引する。 </li><li>ピペットチップが長いピペットを使用して、0.5μLの色素負荷溶液（ステップ1を参照）を引き出します。 </li><li>ピペットチップを充填ピペットに静かに挿入します。混合物を神経断端に直接放出する。 </li><li>充填ピペットの開放端を石油ゼリーでシールする。 </li><li>リンガーの小さなアリコートを加える調製物を濡らしたままにするためにペトリ皿への凍結。 </li><li>調製物を室温で暗く湿った条件下で5時間インキュベートする。 </li><li>充填液を充填したピペットを取り出し、リンゲル液で調製物をすすぎ、8℃の冷蔵庫に一晩放置する。 </li></ol> 3.顕微鏡のための組織の準備<ol><li>調製物をシリコンエラストマーでコーティングしたチャンバーにマウントし、鋼製のマイクロニードルでわずかに引き伸ばすように固定します。 </li><li>新しいリンガー溶液のアリコートで組織をすすぐ。 </li><li>神経を刺激するために吸引電極を使用する。電極の構築は、Kazakov らによる論文の無償ダウンロードから入手可能である。 、2015 32 。電極の先端を神経の切断端に近づけて配置し、電極の穴に神経断端を吸引する。 </li><li>準備室を顕微鏡ステージに取り付けます。プラック温度プローブと、チャンバ内の入口および出口の点火。 </li><li>ペルチエ素子に電源コードを接続します。 </li><li>準備を盛り上げるには、単純な重力駆動システムを使用します。余分な溶液を除去するには、灌流吸引ポンプをオンにします。 </li><li>サーモコントローラユニットの電源を入れます。 </li><li>温度コントロールを20°Cに設定します。 </li><li>紫外線防護シールドを取り付けます。 </li><li>刺激ワイヤー電極を電気刺激装置に接続し、顕微鏡下で4倍の対物レンズを用いて筋肉収縮を観察する。 </li><li> Ca 2+およびMg 2+の含有量が低いリンゲル液で灌流システムを満たす。 注：このソリューションは、筋肉の収縮を防ぐために使用されます。外部カルシウムの濃度の減少および外部マグネシウムの上昇は、Ca 2+過渡応答の振幅の減少をもたらす。しかしながら、以前の経験に基づいて、0.9mM CaCl <sub&gt; 2および6mMのMgCl 2は、Ca 2+過渡応答の振幅を確実に解消するのにはまだ十分である。例えば、ニコチン性アセチルコリン受容体の特異的ブロッカーであるd-ツボクラリンまたはアルファ - ブンガロトキシンの使用は、筋肉の痙攣を完全にまたは部分的に遮断するであろうしかし、これらの毒素の添加は、シナプス前カルシウム浸入にも影響し得る33 。これを避けるために、μ-コノトキシンGIIIAを使用することができます27 。 </li><li>ポンプを入れ、低Ca 2+および高Mg 2+を含むリンゲル液で調製物の灌流を開始する。 </li><li>顕微鏡の40×対物レンズに切り替えます。 </li><li>スイッチをオンにする<html>彼はモノクロメーター（ 表の表を参照）。 </li><li>モノクロメータ制御ソフトウェアで488 nmの発光波長と連続照明モードを選択します。 </li><li>蛍光モードでの高倍率下で、神経末端に色素が充填されていることを確認する。 </li></ol><img alt="図1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55122/55122fig1.jpg" /> 図1 ：Ca 2+指示薬が充填された神経および末端。 （ A ）負荷操作後にCa 2+指示薬を充填した神経。スケールバー=200μm。 （ B ）Ca 2+指示薬で満たされた神経終末。スケールバー=20μm。 （ C ）Ca 2+ -指示薬の蛍光は、神経終末にはっきりと見える。スケールバー=20μm。_blank &quot;&gt;この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。 <ol start="17"><li> Ca 2+およびMg 2+の低濃度溶液中で調製物を少なくとも30分間平衡化させる。 </li></ol> 4.デジタルCCDカメラによるビデオキャプチャ注：蛍光信号の取り込みの詳細は、顕微鏡とカメラの種類ごとに異なりますが、主な考慮事項は画像取り込み速度です。 <ol><li> NMJにおける単一のCa 2+過渡状態の記録のための最小捕捉周波数として1kHzを使用する。 注：蛍光イメージングには高速デジタルCCDカメラが必要です（ 材料表を参照）。ここでは、カメラ、モノクロメータ、および刺激装置の同期にデータ収集システムとソフトウェア（ 表の表を参照）を使用しました。要するに、このプロトコルは、データのデジタル出力上に同期パルスを生成することを可能にするシャッターを開放し、ビデオ信号を捕捉し、刺激を開始するための捕捉システムを含む。すべての時間的パラメータは、プロトコルおよび/または装置上で設定することができる。典型的なプロトコルは、1kHz（80x80ピクセル）で取得された一連の500フレームです。励起光による照明は、Ca 2+インジケータを漂白し、細胞組織を光分解することができる。したがって、励起光への長時間の暴露を避けてください。このプロトコルでは、シャッターはビデオのキャプチャに必要な時間だけ開いています。特定の神経末端あたり20シリーズを取得します。ここでの目的は、対照群および薬物送達後の同じ部位をモニターすることである。 </li><li>顕微鏡の4倍対物レンズの下で、明視野法を使用して筋肉と神経分岐を視覚化します。 </li><li> 40倍の対物レンズに切り替え、落射蛍光法と488 nmの励起波長を使用して、色素が充填された神経終末を探します。関心のある神経終末領域を特定する。 </li><li>三眼チューブで顕微鏡で、光路交換レベルを選択します：100％光をカメラに照射します。 </li><li> CCDカメラの取得ソフトウェアを起動します。 </li><li> 「ライブ」モードでは、ROIを見つけてフォーカスを調整します。 </li><li>メニューの「変更」の設定を選択します。 </li><li> 「基本設定」は、毎秒1,000フレーム（fps）で、80 x 80の解像度で使用してください。 </li><li>入力フレーム数を500に設定します。 </li><li>実験の名前を入力します。 </li><li> 「外部トリガ」を選択します。 </li><li>プリトリガ時間を10 msに設定します。 </li><li>リピート数を20に設定します。 </li><li>モノクロメータ制御ソフトウェアでは、488 nmの発光波長と「外部トリガ照明」モードを選択します。 </li><li>データ収集ソフトウェアを実行します。 </li><li>刺激プロトコールをロードする。 </li><li>ビデオを録画する前に、ビデオキャプチャソフトウェアを使用して暗いフレームをキャプチャします。 </li><li>刺激プロトコルを実行します。 </li><li> ROIとチェクを選択k記録された信号。 </li></ol> 5.データ分析注：データ解析には、CCDカメラソフトウェアとImageJを使用します。データは表計算プログラムで曲線として表されます。 CCDカメラソフトウェアでは、平均20回繰り返して結果をImageJサポートファイルにエクスポートします。 ImageJで、ROIと背景を選択します。 ROIからバックグラウンドを差し引く。データを比（ΔF/ F 0 -1）×100％として表し、ΔFは刺激中の蛍光の強度であり、F 0は静止時の蛍光の強度である。 <ol><li> CCDカメラの取得ソフトウェアで、ファイル&gt;平均ファイルをクリックします。ファイルを選択して平均します。 </li><li> [フィットファイルとして保存]をクリックして、平均化したファイルを.fitファイルとして保存します。 </li><li> ImageJソフトウェアを実行します。次の手順を実行します。 </li><li>画像/調整/輝度/コントラストをクリックします。 </li><li> [イメージ]&gt; [スタック]&gt; [ツール]&gt; [;スタックソーター。 </li><li>分析&gt;ツール&gt; ROIマネージャーをクリックします。 </li><li>平均化された.fitファイルをImageJウィンドウにドラッグアンドドロップします。 </li><li>ウィンドウを拡大すると、より見やすくなります。 </li><li>カーソルを動かすことによって、最後のフレームを選択して削除します（これはダークフレームです） </li><li>背景と思われる領域上の矩形ROIを選択します。それをROIマネージャーに追加する</li><li> More&gt; Multi Measureをクリックして背景を測定します。意味に注意してください。データをコピーしてスプレッドシートプログラムにエクスポートし、比率のしきい値の平均値を計算します。 </li><li> 「Process」→「Main」→「Subtract」をクリックして、スタックからしきい値を減算します。しきい値の平均値を入力します。 </li><li>神経終末を囲む四角形のROIを選択します。これをROIマネージャーに追加します。 </li><li> More&gt; Multi Measureをクリックして測定します。意味に注意してください。それをスプレッドシートプログラムにコピーしてエクスポートします。 </li><li>信号の平均オフセット。 注記：最初の数十点は刺激なしでベース色素の蛍光を示す。これは安静時の蛍光である。 </li><li>安静時の蛍光で信号を分割します。 </li><li> &quot;1&quot;を減算して100％を掛けます。 </li><li>シグナルをプロットし、Ca 2+過渡応答の振幅を計算する。 </li></ol>

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</ol>

著者は何も開示することはない。

本論文では、カエルの神経終末へのCa 2+感受性色素負荷を神経断端を通して行う方法を提示した。装填手順の終わりまでに、神経の近位部分の全ての末端に有意な蛍光レベルがある。プローブの末端内濃度は40〜150μMの間で変動すると推定されている17 。 インキュベーション手順は、室温で2段階、次いで冷蔵庫でより低い温度で実施される。室温で染料との組織インキュベーションの時間を制御することが重要である。神経断端の実際の長さ、特定の色素、および温度に依存して、インキュベーション時間は変化し得る。過度に露出すると、神経断端に近い近位部の端子に過負荷がかかります。しかし、神経の中間部分では、満足のいく負荷のある端末を見つけることは可能である。その間冷蔵庫で長時間インキュベートすると、色素は神経終末に均等に分布します。 私たち自身の観察33,35ならびに他の研究者30のデータは、シナプス後応答の振幅またはミニエンドプレート電位の頻度に対する負荷手順の感知可能な影響の欠如を証明する。良好な寿命が、装填された調製物に記録された。私たちが注目したい重要な点がいくつかあります。色素が切断された神経の軸索に入ることを可能にするために、切除後数分以内に色素負荷溶液に神経断端を置くことは非常に重要である。恐らく神経軸索の再封鎖のために遅延が無効な負荷を引き起こす可能性がある（27,36）。一部の研究者は、100mM EDTA（Ca 2+ - およびMg 2+ - キレート剤）切断された軸索が再シールされるのを防ぐために、神経の切除直後。緩衝液を1〜2分後に除去し、色素充填溶液37と交換する。装填手順のためにプラスチックチューブの代わりに石油 - ゼリーを使用することにより、より短い神経断端の使用が可能になる。このアプローチを使用している間、それは色素でHEPES溶液に浸された後に切断され、色素溶液27,28中の二価イオンの欠如のために軸索は再シールされない。 我々の研究では、デキストランの代わりにCa 2+指示薬の水溶性塩形態を用いた。デキストランコンジュゲートは、塩形態よりも緩徐に軸索に拡散する。しかしながら、デキストランコンジュゲートの使用は、色素区画化および神経およびNMJによる処理を減少させる。カルシウムグリーン1〜3,000MWデキストランコンジュゲートは良好な拡散速度を有し、コンパートメント化の低減を実証する<s<html> up class = &quot;xref&quot;&gt; 38。 組織の蛍光照射の長期間を避けることは、その健康と生存に影響するため、非常に重要です。可視光チャネルのノマルスキ光学系を使用して神経端末を検索します。記録中は、絞りを使って照射野を制限します。 このローディング方法は、長いインキュベーションに耐えることができる調製物にのみ適していることは注目に値する。研究がより壊れやすい組織（ 例えば、温血動物のシナプス）で行われているときに色素負荷時間を短縮するためには、神経断端の長さを縮小し、マイクロピペットを用いて負荷29,39を行うことが必要である。 このローディング技術は、単一神経刺激およびリズミックシナプス活性の両方の下で蛍光指示薬を用いて、細胞質ゾルCa 2+の変化をイメージングするのに適しているCa 2+ -過渡振幅の分析を用いて、神経伝達物質放出に関与するカルシウムの侵入に対する異なる物質の影響を研究することができる33 。

カルシウムイオン（Ca 2+ ）は、メディエーター放出1,2,3,4,5の開始、維持および可塑性を含む、多くのニューロンシグナル伝達プロセスに関与する。活動電位が到着すると、細胞外Ca 2+が神経末端に入り、神経伝達物質放出を開始する。いくつかのシナプスでは、カルシウム電流は、電気生理学的方法6,7,8によって直接測定することができる。神経筋接合部（NMJ）の場合、神経終末の微細なサイズのために、直接パッチクランプおよび2電極電圧クランプ技術を使用することはできない。 NMJの神経終末からの内向きのCa 2+電流の記録は、間接的な電気的方法イオロジー法9,10 。しかしながら、これらの方法は、ナトリウムおよびカリウムイオンチャネルブロッカーによるシナプスの前処理を必要とする。光学的方法は、神経終末におけるイオン電流の薬理学的分離を必要とせず、活動電位によって誘発されたCa 2+流入の記録、および軸索血小板11,12,13,14におけるCa 2+イオンのその後の上昇を可能にする。これらの方法は、遊離Ca 2+イオンの結合時の特定のCa 2+感受性色素の蛍光の変化の記録に基づいている15,16,17,18,19。 Ca 2+インジケータをCにロードすることができます実験の目的に応じて、さまざまな方法で習得できます。研究者は、膜透過性染料形態20,21 、パッチピペット22またはマイクロインジェクション23,24,25を介して装填する浴適用を使用する。しかしながら、これらの方法は全て、シナプス構築物における特異性のためにNMJの場合にいくつかの制限がある。 NMJにとって、最も便利で成功した方法は、神経断端を通して染料を充填することであり、前方充填法26,27,28,29である。この技術は、様々な蛍光色素を末梢神経終末にロードするために使用することができる。この方法は、 ショウジョウバエの神経末端28 、トカゲ運動神経28 、及びカエルモーター神経端子17,26,27,30を含む。研究対象のオブジェクトによっては、詳細が異なる場合があります。ガラスマイクロピペットを幼虫28の小さな神経に使用することができる。いくつかの研究者は、筋肉を神経支配する神経の新たに切断された端部を色素で予め充填された井戸に浸漬する方法27,28を記載している。次いで、調製物を数時間放置して染料を浸漬する。色素は軸索に浸され、神経末端に輸送される。本論文では、蛍光標識をカエルモーターの神経終末に神経断端を通して装填する方法について述べる。我々のプロトコールは、組織と色素とのインキュベーションのためにプラスチックピペットチップを使用する。我々はまた、Ca 2+蛍光traを取得および分析する方法を記載するnsients。

<table><tbody><tr><td>Ca2+ インジケーター</td><td>Molecular Probes, USA</td><td>Oregon Green 488 BAPTA-1 hexapotassium salt, O6806</td><td>500 &mu;g</td></tr><tr><td>シリコーンエラストマー</td><td>ダウコーニング、米国</td><td>シルガード184エラストマー</td><td></td></tr><tr><td>ピペット</td><td>バイオヒット、ロシア</td><td>720210</td><td>0.5-10&micro;L</td></tr><tr><td>ピペットチップ</td><td>Fisher Scientific, USA</td><td>02-707-175</td><td>10&micro;L</td></tr><tr><td>ピペットチップ</td><td>Biohit, Russia</td><td>781349</td><td>10&micro;L</td></tr><tr><td>Razor Blade</td><td>Fisher Scientific, USA</td><td>12-640</td><td></td></tr><tr><td>Minutien Pins</td><td>Fine scince tools, Canada</td><td>26002-20</td><td></td></tr><tr><td>Corneal Mini-Scissors</td><td>MT MEDI CORP, カナダ</td><td>S-1111</td><td></td></tr><tr><td>Jeweler Forceps</td><td>MT MEDI CORP, カナダ</td><td>F-9610</td><td></td></tr><tr><td>Jeweler Forceps</td><td>MT MEDI CORP, カナダ</td><td>F-9611</td><td></td></tr><tr><td>Modelling粘土</td><td>の地元の生産者</td><td></td><td>は、任意の地元の生産者に置き換えることができます</td></tr><tr><td>ワセリン</td><td>の地元の生産者</td><td></td><td>は、任意の地元の生産者に置き換えることができます</td></tr><tr><td>Microspin FV 2400&nbsp;</td><td>Biosan, Latva</td><td>BS-010201-AAA</td><td></td></tr><tr><td>マルチスピン MSC 3000</td><td>Biosan, Latva</td><td>BS-010205-AAN</td><td></td></tr><tr><td>使い捨て皮下注射針</td><td>Bbraun</td><td>100 Sterican</td><td>0.4&times;40mm</td></tr><tr><td>Syrynge</td><td>地元生産者</td><td></td><td>0.5 ml</td></tr><tr><td>HEPES&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich, USA</td><td>H0887</td><td>100ml</td></tr><tr><td>顕微鏡, BX51</td><td>Olympus, Japan</td><td></td><td></td></tr><tr><td>データ取得システム&nbsp;</td><td>Molecular Devices, USA</td><td>Digitdata 1550</td><td></td></tr><tr><td>ソフトウェア</td><td>Molecular Devices, USA</td><td>pClampソフトウェア, Version 10</td><td>protocolは、以下からダウンロードできます: http://kpfu.ru/portal/docs/F_230007060/Video.capture.with. RedShirt.Neuro.CCD.camera.pro</td></tr><tr><td>Bath and bath temperature controler</td><td>Experimental Builder</td><td></td><td>温度制御付きの任意のチャンバーと交換できます。たとえば、https://www.warneronline.com/&nbsp から。</td></tr><tr><td>モノクロ</td><td>メーターTill Photonics、ドイツ</td><td>Polychrome V</td><td>はもはや利用できません、他のものに置き換えることができます&nbsp;&nbsp;sutable安定した光源488nm</td></tr><tr><td>モノクロメーター制御ソフトウェア</td><td>Till Photonics、ドイツ</td><td>Polycon</td><td></td></tr><tr><td>デジタルCCDカメラ</td><td>Redshirtイメージング、米国</td><td>Neuro CCD SMQ</td><td></td></tr><tr><td>Model 2100絶縁パルス刺激装置</td><td>AMシステム、米国</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CCDカメラ用取得ソフトウェア</td><td>Redshirtイメージング、米国</td><td>Turbo SMソフトウェア</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td>米国<td></td><td>国立衛生研究所</td><td>http://rsb.info.nih.gov/ij/download.html</td></tr><tr><td>スプレッドシート プログラム</td><td>マイクロソフト、米国</td><td>Microsoft Office Excel&nbsp;</td><td></td></tr></tbody></table>

カエルの神経筋終末へのカルシウム色素の神経切片への積載：カエル神経筋接合部におけるカルシウムの一時的な位置合わせ

Loading a Calcium Dye into Frog Nerve Endings Through the Nerve Stump: Calcium Transient Registration in the Frog Neuromuscular Junction

シナプス前神経末端におけるシナプス前カルシウムレベルを測定する最も実現可能な方法の1つは、光記録である。これは、細胞内の遊離カルシウム濃度に応じて発光強度または波長を変化させるカルシウム感受性蛍光色素の使用に基づいています。カルシウム色素で細胞を染色するために使用されるいくつかの方法がある。最も一般的なものは、マイクロピペットを介して染料を装填する工程、または色素のアセトキシメチルエステル形態と予めインキュベートする工程である。しかしながら、これらの方法は、発生する方法論的問題のために、神経筋接合部（NMJ）にはあまり適していない。この記事では、カエルの神経の断端を介してカルシウム感受性色素を神経終末に装填する方法を紹介します。神経終末への外部カルシウムの侵入およびその後のカルシウム色素への結合はミリ秒の時間スケール内で起こるので、これらの相互作用を記録するために高速イメージングシステムを使用する必要があるns。ここでは、高速CCDカメラでカルシウム過渡現象を記録するためのプロトコルについて説明します。

色素負荷および運動神経刺激後、神経終末において蛍光シグナルの振幅の増加（Ca 2+過渡）が検出され得る（ 図2参照）。 Ca 2+過渡応答のパラメータを表1に示す 。定量的に、我々の研究で測定されたCa 2+過渡応答のパラメータは、冷血動物のシナプスで他の科学者によって得られたデータに近い15,34。 Ca 2+トランジェントのパラメータは、Ca 2+の色素との結合速度およびその後の解離に依存する。 Ca 2+の神経終末への進入速度、色素との相互作用、および細胞質内の拡散はすべて、Ca 2+の一過性の立ち上がり時間に影響を及ぼす。蛍光シグナルの減衰時間は、色素の親和性に依存し、細胞内緩衝液とのCa 2+相互作用の速度、およびイオンポンプ35による除去を含む。 Ca 2+過渡応答の振幅解析は、神経伝達物質の放出に関与するカルシウム侵入に対する様々な物質の影響を研究するために使用することができる33 。 <img alt="図2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55122/55122fig2.jpg" /> 図2 ：平均Ca 2+ カエルNMJで測定される一過性。 Ca 2+過渡応答は、13のカエルNMJからのシグナルの平均に基づいて計算した。 <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55122/55122fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。</a> <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> ピークΔF/ F（％） </td><td> 立ち上がり時間20％-80％（ms） </td><td> τ（ms） </td></tr><tr><td> 12,6±1,1（n = 13） </td><td> 4.6±0.5（n = 13） </td><td> 115.3±8.3（n = 13） </td></tr></tbody></table> 表1： Ca 2+過渡応答 の 平均化された パラメータ 。データは平均±SEとして示されている。 nは別個のNMJにおける測定の数である。ピークΔF/ Fは、ΔF/ Fの平均振幅である。

ここでは、カエルの神経切開部から神経終末にカルシウム感受性色素を充填する方法について説明します。末梢神経終末における速いカルシウム過渡状態の記録および分析のためのプロトコルも提示する。

One of the most feasible methods of measuring presynaptic calcium levels in presynaptic nerve terminals is optical recording. It is based on using ...

こんにちは、ディミトリー・サミグリンです。私はロシア科学アカデミーのカザン生物化学・生物物理学研究所のシナプスプロセス生物物理学研究室に勤務しています。当研究室では、神経筋接合部におけるカルシウムシグナルの多様な経路について研究しています。シナプスレベルのカルシウムを測定するための最も簡便な手法の一つが、光学的な記録法です。ここでは、カエルの神経終末において、神経断端を介してカルシウム感受性色素を導入する方法について記述します。また、カエルの末端における大規模なカルシウム・トランジェントの測定および解析のプロトコルを提示します。この手法を用いることで、シナプス活性中のシナプス前レベルのカルシウムに対する活性薬物の影響を研究することが可能です。色素負荷溶液の調製。フルオレセイン系カルシウム色素であるOregon Green BAPTAは、少量の粉末500 microgramsが500 microliters分として提供されています。この粉末に、HEPESを含む溶液14 microlitersを加えます。ローディング溶液をボルテックスし、スピンダウンして十分に混合させる。光への曝露を避けるため、ローディング溶液の入ったバイアルをアルミホイルで包む。ローディング溶液は、フリーザーにて-20°Cで保存する。色素負荷の手順。動物から胸筋の皮膚組織を摘出する。摘出した組織を銀コーティングされたペトリ皿に載せる。細いステンレス製ピンで組織を伸展させます。ペトリ皿にリンゲル液を加えます。カミソリを使用して、10 µL ピペットチップの細い端から、約 2 mm の小さな断片を切り出します。シャーレ上で充填用ピペットを固定するためのプラスチリンを用意します。充填用ピペットをシリコンチューブとピペットチューブ製の変換アダプターを用いてプラスチック製シリンジに接続します。プラスチック製ピペットを用いて、シャーレから一時的なリンゲル液を除去します。シリンジを用いて乾式準備を行います。これにより、充填ピペットへの溶液の吸い込みを防ぐことができます。ロード溶液の入ったバイアルを冷凍庫から取り出し、暗所で室温にて融解させます。滅菌済み顕微鏡下で、視覚的に確認しながら、精密ピンセットと鋏を用いて、筋肉に近い位置で神経を切断します。神経断端を約2 mm残してください。充填用ピペットをチューブとシリンジと共に、プラスチリンを用いてペトリ皿上に固定します。それを神経枝に近づけます。充填用ピペットで神経断端をゆっくりと吸引します。充填用ピペットの鈍端から吸引チューブを取り外します。シリンジを用いて、充填ピペット内の神経断端を乾燥させます。神経断端が入った充填ピペットを上に移動させます。バセリンを用いて、神経断端を外部から孤立させます。再度、シリンジを用いて充填ピペット内の神経断端を乾燥させます。ロングチップを装着したピペッティングにより、0.5 µLのローディング溶液を吸い取ります。ローディング溶液が入ったピペットチップを、充填ピペットにゆっくりと挿入します。混合液を神経断端に直接注入します。充填用ピペットの開放端をバセリンで封止します。シャーレに少量の溶液を加えます。調製物を室温の暗所で、湿った状態で5時間インキュベートします。インキュベーション後、調製物を取り出し、充填溶液が入った充填用ピペットを抜き取ります。調製物を水槽に入れ、リンゲル液で洗浄します。試料を入れたバスを、8 °Cの冷蔵庫で一晩保存します。顕微鏡観察に向けて組織の準備を行います。バスから試料を取り出します。銀メッキされたチャンバー内に試料を固定し、組織をわずかに伸展させます。新鮮なリンガー液で組織を洗浄します。吸引刺激電極を取り出します。刺激吸引電極をチャンバー内に配置し、その先端を切断した神経端に近づけます。神経を電極の方へ引き寄せます。電極の作製方法についてはKhazokoffの論文に記載されており、同論文へのリンクは材料欄にあります。準備チャンバーを顕微鏡ステージに固定します。温度プローブを設置してください。準備チャンバー内のペルチェ素子の電源コードおよび流入チューブを接続します。流出チューブを調製チャンバーに配置します。灌流ポンプの電源を入れます。温度コントローラーユニットの電源を入れます。コントローラーユニットの温度を20 °Cに設定します。紫外線保護シールドを設置します。スティミュレーターの遅延時間と周期を設定します。吸引電極から刺激装置へワイヤーを接続します。電源を入れます。低倍率の対物レンズを用いて、刺激を与えて筋収縮を確認してください。低カルシウム・高マグネシウムのリンゲル液で灌流システムを満たします。灌流速度を約2 mL/minに設定します。対物レンズを40倍のものに交換します。Polychrome V.Selectの放出波長と連続モード照明をオンにします。シャッターを開けます。40倍の対物レンズを用い、蛍光モードの照明下で、端末がロードされていることを確認します。末端を探し、そこに焦点を合わせます。図には、負荷された神経および十分に負荷された運動神経末端が示されています。Red-Short Neuro CCDカメラを用いてビデオキャプチャを行います。Turbo-SMソフトウェアを起動します。「Change Settings」を選択し、フレーム数を500に設定します。実験名を入力してください。基本設定は1000 frames per second、80 by 80です。外部トリガーを選択します。プリトリガー時間を入力してください。マイナス10ミリ秒に設定します。繰り返し回数に20を入力します。Polychromeソフトウェアで、外部トリガー照明モードを選択します。Clampexソフトウェアを実行します。刺激プロトコルをロードします。このプロトコルは、カザン連邦大学のウェブサイトにある当研究室のページからダウンロード可能です。記録を開始する前に、Turbo-SMソフトウェアでダークフレームをキャプチャしてください。三眼キューブで光路の切り替えレベルを選択します。カメラ用に100%に設定してください。刺激プロトコルを実行します。関心領域を選択し、信号を確認します。神経刺激に応答して、神経終末へのカルシウム流入を反映した蛍光強度の変化を記録します。データ解析を行います。Turbo-SMソフトウェアで、「file」を選択します。次に、「average files」を選択します。ファイルを選択してください。平均化ファイルの名称を入力し、それらを平均化します。平均化ファイルをfitファイルとして保存します。選択し、fitファイルとして保存してください。ファイル名を入力して保存します。Image Jを起動し、以下のツールを開きます：Analysis、tools、ROI Manager。fit形式で保存された平均化ファイルを探します。それをImage Jにドラッグアンドドロップします。より詳細に確認するため、ウィンドウをズームします。背景と思われる領域を矩形の関心領域（ROI）として選択します。ROIマネージャーに追加します。ROIマネージャーで、「More」から「Multi-measure」を選択します。平均値を読み込みます。データをコピーし、Excelにエクスポートします。Excelで平均関数を使用して、比率のための背景の平均値を算出します。Excelを閉じずにImage Jに戻ります。背景計算を行ったウィンドウは保存せずに閉じます。ROI Managerを使用して、長方形の背景描画を削除します。インストゥルメントプロセスから「Math」、「Subtract」を開きます。Excelで算出した閾値の平均値を入力し、スタックからバックグラウンドを減算します。神経末端の周囲に矩形の関心領域（ROI）を選択します。それをROIマネージャーに追加します。ROIマネージャーで、[Select]、[More]、[Multi-measure]を選択し、[load down]、[mean]を読み込みます。Excelウィンドウにコピーして貼り付けます。Excelのインストルメントプロットグラフを使用してください。信号が開始される前の平坦な領域を選択します。静止時の最初の蛍光値から信号の開始まで、グラフに詳細を読み込みます。次に、静止時の蛍光値を平均化するためのデータ点数を決定します。これらの値を平均し、静止時の蛍光値の平均値を算出します。信号を静止時の蛍光強度で除します。そこから1を減算し、100%を乗じます。信号をプロットし、カルシウム過渡応答の振幅を算出します。蛍光信号の時間パラメータは、カルシウム-色素複合体形成の正反応および逆反応の速度に依存します。カルシウム信号の立ち上がり時間は、カルシウム流入のダイナミクス、すなわち終末内での拡散およびカルシウムと色素の相互作用を表しています。カルシウム・トランジェントの減衰は、色素の親和性、カルシウム緩衝能の速度、およびその回収速度に依存します。カルシウム・トランジェントの振幅を分析することで、神経伝達物質の放出に関与するカルシウム流入に対する、さまざまな活性物質の影響を研究することが可能です。このローディング手法は、細胞質カルシウムの変化をイメージングするのに適しています。蛍光インジケーターを用い、単一神経刺激および律動的なシナプス活性の両方において解析を行います。カルシウム過渡応答の振幅を分析することで、神経伝達物質の放出に関与するカルシウム流入に対する、さまざまな物質の影響を研究することができます。ここでは、注意すべき重要な点がいくつかあります。インキュベーションの手順は、室温でのインキュベーションと冷蔵庫内でのインキュベーションの2段階で構成されます。室温で染料と共にインキュベートする時間を制御することが重要です。神経断端の長さ、使用する染料、および室温によって、インキュベーション時間は異なる場合があります。術前の端末を過剰に曝露させると、神経断端に近い近位部で過負荷となる可能性があります。冷蔵庫内で長時間インキュベーションすることで、染料が神経終末に沿って均一に分布します。切断後数分以内に神経を色素充填溶液に浸すことが不可欠です。これにより色素が神経内に浸透します。時間を置くと、おそらく神経末端が閉鎖するため、充填効率が低下します。色素の区画化を軽減するには、色素の拡張型を使用することが可能です。組織の生存性に影響を与えるため、組織への長時間の蛍光照射を避けることが非常に重要です。末端を探索するために、可視光チャネルでNomarski光学系を使用します。記録中は、絞りを用いて照射範囲を制限します。神経のシャッタースタンプを用いることで、充填プロセスの時間を短縮できます。この場合、ガラスマイクロバイパスを使用することができます。

loading-calcium-dye-into-frog-nerve-endings-through-nerve-stump

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

カルシウムはシナプス強度の神経伝達物質の放出や変更をトリガするための不可欠な神経系におけるユビキタスメッセンジャー、です。ここでは、+ -の指標ショウジョウバエの神経終末へのCa 2をロードするためのテクニックを示しています。我々はまた、必要な装置の製造を実証し、技術の成功のための重要なポイントを強調する。...

カルシウムインジケータ付きのロードショウジョウバエの神経終末

ここでは、カニ口と胃の神経節の神経細胞の詳細なアクティビティの高速かつ高分解能蛍光膜電位感受性色素イメージングのための方法論を提示する。...

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神経、地帯、および蛍光色素で脊髄根の逆行ローディング

この動画では、ショウジョウバエの幼虫の神経線維をFM色素に浸し、細胞膜脂質に結合させています。吸引された微小電極と電気パルスはエンドサイトーシスプロセスを刺激し、FM色素を新しく形成されたエンドサイトーシス小胞に組み込みます。この方法は、神経伝達のシナプス前段階を可視化するもので、シナプス機能や神経伝達物質の放出を研究するのに役立ちます。...

ショウジョウバエ幼虫神経細胞における微小電極媒介FM色素のローディングとアンローディング

出典: Heredia, D. J., et.al. マウスダイアフラムの三者シナプスにおける細胞特異的カルシウムシグナル伝達のex vivoイメージング. J. Vis. Exp. (2018)...

トランスジェニックマウスの横隔膜の神経筋接合部におけるカルシウム動態の蛍光イメージング

出典: Zhilyakov, N. V. et al., 共焦点顕微鏡を使用した高時間分解能によるマウス神経筋接合部におけるカルシウム過渡現象の登録。J. Vis.

共焦点顕微鏡を使用したマウス神経終末の高速カルシウム過渡現象のイメージング

腸内神経系(ENS)は、腸壁に位置するニューロンとグリアのネットワークで、腸の反射を制御します。このプロトコルは、Ca2+イメージングを使用してENSのライブ調製物中の腸管ニューロンおよびグリアの活動を記録する方法を説明しています。...

腸神経系のその場のCa 2+イメージングに

の嗅球にカルシウム変化をモニタリングを通じて温度によって誘発される神経活動を記録<em&gt;アフリカツメガエル</em

シナプス小胞 (SV) 神経シナプスでの細胞間コミュニケーションの中核機構は、サイクリングします。FM 色素取り込みと放出は、定量的 SV 遠藤と分泌の試金の主な手段です。ここでは、我々 は FM1 43ショウジョウバエの神経筋接合部 (NMJ)...

シナプスでサイクリング FM 色素: 高カリウムの脱分極、電気とチャネルロドプシン刺激の比較

シナプス伝達に必要な細胞内事象を視覚化するために、2つの関連する方法が記載されている。これらのプロトコルは、 in vitro...

筋萎縮性側索硬化症のモデルにおけるシナプス機能のリアルタイム蛍光測定

プロトコルは、切断された神経を通してマウス運動神経終末に蛍光カルシウム色素をロードする方法を説明しています。さらに、共焦点顕微鏡を使用して末梢神経終末の高速カルシウム過渡現象を記録するためのユニークな方法が提示されます。...

共焦点顕微鏡を用いたマウス神経筋接合部におけるカルシウム過渡現象の高時間分解能による登録

学ぶカエル神経筋接合部へのカルシウム色素積載法。神経切片を用いてOregon Green BAPTAを導入し、シナプス活動時のカルシウム動態を蛍光記録で解析する手法を解説。薬剤影響評価にも応用可能。

カエルの神経筋終末へのカルシウム色素の神経切片への積載：カエル神経筋接合部におけるカルシウムの一時的な位置合わせ

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