Name: 電気生理学的研究のための成体マウスの網膜の水平スライスの調製 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 2 s
Description: 学ぼう、マウス網膜の水平スライス調製法を用いて水平細胞と無長突起細胞の機能を電気生理学的に記録する方法。パッチクランプとイメージング技術で視覚情報処理のシナプス回路を詳細に解析できます。

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この作業は、ドイツ研究振興協会のDFG FOR701およびFE464/11-1からA.F.の支援を受けました。著者は、Andrea Nerz の優れた技術支援に感謝したいと思います。

すべての手順は、ドイツ連邦共和国によって発行された動物実験のためのガイドラインに従って行いました。 注：網膜組織は、この手順の延長部分の間に酸素を欠いていることになりますので、すべてのステップができるだけ速く行われるべきです。マウスは、解剖の前に少なくとも3時間暗順応でなければなりません。網膜の光適応を回避するために、準備とスライスは、暗赤色灯の下で行われるべきです。 メディアやその他の化学物質の作製<ol><li> エイムズ「中6を準備します。解剖後、すべての回でエイムズ「中に網膜組織を浸します。 <ol><li>エイムズ「中の2.2グラムと蒸留水250ミリリットルで298ミリグラムのHEPESを溶解させます。 HEPESの濃度は5 mMのだろう。すべての粒子が溶解するまで穏やかに撹拌します。 </li><li>カーボゲンを用いて室温でバブルエイムズ「中（95％酸素、5％の車少なくとも5分間、ボン二酸化）。溶液へのガラスパスツールピペットで供給カーボゲン。ガス調整器の出口に適切なチューブを介して、パスツールピペットを接続します。 </li><li>溶液に、475 mgのナトリウム - 炭酸水素を追加します。バブリング後の重炭酸塩の添加は、炭酸カルシウムの沈殿を防止します。 </li></ol></li><li> 低ゲル化温度アガロースを準備します。アガロースをビブラトーム切片中に網膜組織の埋め込みのために必要とされます。 <ol><li> 9ミリリットルエイムズ「中で180mgのアガロースおよび蒸留水1ミリリットルに溶解します。全ての固体が溶解するまでゆっくりとアガロース溶液を加熱するためにマイクロ波を使用してください。オーバーフローを避けるために10秒ずつ - 5の熱。溶液は透明かつ透明であるべきです。 </li><li>ストアは、処置の期間、37℃の水浴中でアガロースを溶解しました。 </li></ol></li></ol> 2.ビブラトームを設定します注：すべての切片を用いて行われています材料表に記載されているビブラトーム。指定された設定は、ビブラトームのこのタイプを参照してください。神経組織のビブラトーム切片の詳細については7を参照するために参照してください。 <ol><li>ブレードホルダーにビブラインジェクタブレードを置きます。 </li><li> &quot;のVibroCheck「デバイスとブレードの垂直偏向を測定します。それは切断面に平行になるまで、ブレードを傾けるために、ブレードホルダーの調整ネジを使用してください。ブレードの正確な位置決めは、部分表面のブラインド効果を防止するために、その表面上の生きている細胞を含む平坦部を製造する必要があります。 </li><li>以下の設定にビブラトームを設定します。振幅、1.00;スピード、0.20;厚さ、180から200ミクロン。 </li></ol>マウス網膜の3解剖<ol><li>気密容器に約1ミリリットルイソフルランの蒸発によって大人C57BL / 6マウスをAnaesthetize。麻酔が完了すると、頸椎脱臼によって動物を安楽死させます。ザマウスは、そうでなければ、スライスの品質が低下する、3カ月以上経過してはなりません。 </li><li>眼の下に曲がったピンセットを置くことによって、眼球を削除します。静かに視神経を公開します目のボールを持ち上げます。春のはさみで視神経を切断して、2ミリリットルエイムズ「中を含む35ミリメートルのペトリ皿に眼球を転送します。 </li><li>実体顕微鏡のステージ上のすべての後続のステップを実行してください。以下の手順（ - 3.9 3.4ステップ）の最適な視覚的な制御を可能にする値に倍率を調整します。 </li><li>尖った鉗子または20 G針で強膜への移行で角膜を穿刺。このステップの間、別のピンセットで眼球を安定。穿刺装置で網膜を損傷しないように注意してください。 </li><li>ステップ3.3で作られた小さな穴に春のはさみを挿入し、角膜の周りに円を切りました。切断しながら、再び、ピンセットで眼球を安定。 Cの順で表面に非常に接近していない切開をしてください網膜にユタ。 </li><li>慎重にピンセットで角膜、レンズ、および硝子体を除去します。硝子体は、眼の後部にのみ薄い透明層を含みます。しかし、硝子体が完全に除去されること切片ビブラトームに必須です。 </li><li>ペトリ皿では、1がダウンし、網膜上に穴を通して見えるような方法でアイカップを置きます。開口部の縁は、強膜組織のみで構成する必要があります。円形カット（ステップ3.4）が近すぎるアイカップの赤道に行われた場合、網膜組織はまた、切開部に存在近くなります。ステップ3.8で網膜を損傷しないように、次に注意してください。 </li><li>鉗子で強膜をつかみ、慎重に離れて組織を引き裂きます。このステップの間に、網膜を破壊することはないが不可欠です。必要に応じて、鉗子で組織の強膜の部分を安定さ、慎重に他の鉗子で網膜を剥離することによって鋸状縁から網膜を切り離します。鉗子を閉じておいてください。再処理することはありません組織は非常に柔らかく、すぐに道を与えるので、ピンセットでティナ。 注：このステップでは、網膜とアイカップの残りの部分のみが視神経頭で接続されます。 </li><li>春のはさみで視神経乳頭に付着部位をカット。網膜は今自由にエイムズ「中における組織の単一の部品として浮遊する必要があります。 </li><li>位置にそれを操作するために、鉗子でエッジに沿って網膜を保持することにより、湾曲した手術用メスの刃を用いて、約23ミリメートルの6小さな長方形 - 4に網膜をカット。長方形内の網膜組織を挟まないようにしてください。網膜、遠くない周辺部の中央部から駒を取ります。 </li><li> 35mmのプラスチック製ペトリ皿に大径プラスチックパスツールピペットで網膜の小片を移送、の底を1mm未満のグリッドサイズを有するメッシュで置換されています。ビーカーまたは三角フラスコの上部3分以内にシャーレを修正し、エイムズ「中府の網膜の部分を沈めますカルボゲンでbbled。 </li></ol>アガロースにおける網膜個の4埋め込み<ol><li>エイムズ「中のいくつかと一緒に35ミリメートルのプラスチックシャーレに3網膜個 - 注意深く2を転送します。転送のために大口径のプラスチックパスツールピペットを使用することが最も便利です。このステップでは、網膜片の正確な向きは重要ではありません。 </li><li>ガラスパスツールピペットで残りのエイムズ「中のできるだけ多くを削除してください。すぐ流体が削除されているように、ステップ4.3に進みます。網膜組織を乾燥させないでください。 </li><li>すぐにアガロース溶解の2ミリリットル（37°C）で網膜の部分をカバーしています。ステップ3.10に記載されたサイズを考えると、作品をアガロース内丸くしません。 </li><li> 液体アガロースの中で、静かにシャーレの底に網膜の部分を押してください。神経節細胞層が下向きにする必要があります。正確な位置を判断するための立体顕微鏡を使用してください。位置決めのために、網膜のパイを扱います小さなへらでECES。アガロースは迅速に固化するため、可能な限り迅速かつ正確に網膜を配置します。 <ol><li>網膜片をガラス皿の底に平行なアレンジ。そうでない場合のセクションでは、接線方向または斜めになります。個々の部分は、互いに接触しないはずですが、あまりにも遠く離れてはなりません。同じ水平レベルに多かれ少なかれ網膜片を配置してみてください。 </li></ol></li><li>少なくとも2分間 - （6°Cの4）冷蔵庫の中に埋め込まれた網膜片とガラスシャーレを入れてください。これはすぐに、さらなる処理のためにアガロースを硬化します。すぐにアガロースが重合したとして、次のステップに進みます。 </li></ol>網膜個の5取付<ol><li>慎重にペトリ皿から網膜片を含むアガロースブロックを削除します。ガラスからアガロースブロックを持ち上げるために、スパチュラまたは同様のデバイスを使用してください。接着力のために、これは非常に困難であることが判明することができます。ただし、破損しませんアガロースブロック。室温で、この以降のすべてのステップを実行してください。 </li><li>カバーガラス上のアガロースブロックを配置し、手術用メスの刃で、サイズを調整します。網膜片の両側にアガロースの2ミリメートル - 1のままにしておきます。ブロックの最終的なサイズは、約1066ミリメートル（10ミリメートルは、ブロックの高さを意味し、その辺の長さ6ミリメートル）でなければなりません。 </li><li>瞬間接着剤を使用してビブラトームの試料ホルダーにアガロースブロックを接着。底部がホルダーに固定されながら網膜の作品は、その表面に平行に10ミリメートル、高ブロックの上部に配置し、配向されるべきです。 </li><li>ビブラトームのバッファトレイに以前バブリングエイムズ「中を注ぐことにより、すぐにブロックをカバーしています。 </li></ol>水平ビブラトーム切片の6準備<ol><li>切片を開始します。網膜組織の断片が、スライスに表示されるまで最初は、手動でスライスの厚さを設定します。そして、ステップ2.3での設定に変更します。からアガロースブロックごとに3スライス - マウスの網膜は、これ以上2以下があるだろう、だけで約200μmの厚さです。 </li><li>ガラス棒でバッファトレイからセクションを削除し、35ミリメートルペトリ皿に2ミリリットルエイムズ「中に転送します。 </li><li>すぐに37℃（5％CO 2/55％のO 2）でインキュベーターに保管してセクション。セクションを囲むアガロースインキュベーター固体とどまると網膜を損傷することなくセクションを処理するために使用することができます。室温で酸素エイムズ &#39;培地に比べてそれぞれの雰囲気中37℃で保存するときに、より良いスライス品質が得られます。切片を直ちに使用することができ、または良好な生理学的結果をインキュベーターに4時間まで保存することができます。 </li><li> 6 - アガロースと繰り返しセクション4の次の網膜の部分を埋め込みます。 </li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

垂直スライスとは対照的に、水平細胞とアマクリン細胞のような半径方向に配向ニューロンの樹状突起形態がよく保存されています。全網膜製剤と比較して、これらの細胞型は、微小電極のために容易にアクセス可能であり、両方の電気及びイメージング技術によって研究することができます。ここでは、網膜の外側に焦点を当てました。しかしながら、同様のアプローチは、特に、内網膜10のアマクリン細胞について報告されています。 水平スライス標本の特性は、機能的研究のためのいくつかの意味を持ちます。錐体光受容体とシナプス後水平細胞間のシナプス結合の数は、無傷の網膜からほとんど区別できませんでした。シナプスの連絡先は、暗闇の中で神経伝達物質の強壮剤の放出を示す、機能的でした。シナプスは、明/暗の遷移などの内因性刺激するか、外部の双極刺激によって活性化することができました。 <p clお尻= &quot;jove_contentは&quot;&gt;技術の1つの重要なステップは、組織を損傷することなく、できるだけ速く行われるべきである網膜自体の単離であります。また、...

視覚情報は、感光体活性化の動的な時空間的パターンとして符号化され、光受容体および二次ニューロン間のリボンシナプスは、視覚情報の下流の転送を決定します。哺乳動物の網膜の垂直スライス標本、 すなわち光受容体と双極細胞との間、および双極細胞、およびアマクリン細胞1、2、3、4、いくつかのタイプの間で、垂直の経路の信号処理を研究するための非常に貴重なツールです。 しかし、垂直切片は常にシナプスの連絡先のかなりの損失につながる、多くの網膜神経細胞の樹状突起分野の厳しい切り捨てが発生します。特に、網膜の外側に、水平細胞は、それらの横に広がる拡張樹状のフィールドと軸索末端システム5に影響を受けます。垂直でスライス標本、水平細胞の樹状突起の円錐感光体端末の数百のシナプス入力は、このように、いくつかの疎コンタクトに低減されます。これは、個々のシナプスの特性を研究するためには十分かもしれないが、それは決してないが、感光体リボンシナプスの同期化された活性化の基礎となる信号処理機能を表します。 したがって、我々は、無傷で機能的な水平細胞の樹状突起にほぼすべての錐体光受容体のシナプス入力を離れる水平スライス標本を、開発しました。切片ランの面は、理想的には、水平細胞及びアマクリン細胞間の内顆粒層を通して切断し、網膜の表面に平行です。このように、外側の網膜の水平スライスを含んで作成され、シナプス前サイト上で、シナプス後サイト上の内側と外側のセグメントだけでなく、シナプス終末、および水平細胞と双極細胞と光受容体。この調製は、トンに非常に適していますOその樹状のフィールド内のすべての錐体視細胞、水平細胞の樹状突起に協調シナプス入力を調べます。したがって、より良い、シナプス後応答に感光体活性化のマトリックスからの視覚情報の伝達のために重要である感光体リボンシナプスの働きを理解するのに有用であることが分かるかもしれません。

<table><tbody><tr><td>エイムズミディア</td>ム<td>シグマ</td><td>A1420</td><td></td></tr>重<tr><td>炭酸ナトリウム</td><td>シグマ</td><td>S5761</td><td></td></tr>ヘ<tr><td>ペ</td><td>スシグマ</td><td>H3375</td><td></td></tr>カル<tr><td>ボゲン</td><td>エアリキード</td><td></td><td></td></tr><tr><td>アガロース</td><td>シグマ</td><td>A9045</td><td></td></tr><tr><td>35mmペトリ皿(プラスチック)</td><td>Nuncサーモフィッシャー</td><td>150318</td><td></td></tr><tr><td>ガラスペトリ皿</td><td>ケモリン</td><td>50-1470-40</td><td></td></tr><tr><td>イソフルラン</td><td>調剤 大学病院</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ビブラトーム 注射器 ブレード</td><td>バイオシステム</td><td>39053250</td><td></td></tr><tr><td>ビブラトーム</td><td>ライカ マイクロシステム</td><td>VT1200</td><td></td></tr><tr><td>バイブロチェック</td><td>ライカ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>マイクロ波</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ウォーターバス</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>鉗子</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>20G針</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>春はさみ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>湾曲メスの刃実</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>体顕微鏡</td><td></td><td></td><td></td></tr>プラスチック<tr><td>パスツールピペット</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ガラスパスツールピペット</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

電気生理学的研究のための成体マウスの網膜の水平スライスの調製

Preparation of Horizontal Slices of Adult Mouse Retina for Electrophysiological Studies

垂直スライス標本はよく大人の哺乳類の網膜内の回路および信号伝送を研究するために設立されています。これらの製剤で切片の面は、光受容体と双極細胞のような半径方向に配向ニューロンの研究に最適です、網膜表面に対して垂直です。しかし、水平細胞、広視野アマクリン細胞、および神経節細胞の大きな樹状アーバは、これらの細胞中で著しく減少シナプス活性を残して、ほとんどが切り捨てられます。神経節細胞と変位アマクリン細胞は網膜の全体に取り付けられた準備に研究することができるのに対し、内顆粒層に位置する水平細胞とアマクリン細胞がわずかしか全体の網膜組織内の電極のためにアクセスできます。 最大のアクセシビリティとシナプス完全性を達成するために、我々は、マウス網膜の水平スライス標本を開発し、感光体と水平の間のシナプスでの信号伝達を研究しました細胞。水平方向の切片は、水平細胞の樹状突起に無傷で機能的なコーンシナプス入力のための前提条件として、電極の標的化のための水平細胞体の（1）簡単かつ明確な視覚識別、および拡張水平細胞の樹状のフィールド（2）保存を可能にします。 水平スライスからの水平細胞は暗所でトニックシナプス活性を示し、そして、彼らは内向き電流と減少したシナプス活性の低下と光の点滅を短時間に応答しました。免疫細胞化学的証拠は水平細胞の樹状フィールド内のほぼすべてのコーンはその周辺の樹状突起とシナプスを確立することを示しています。水平スライス標本は、したがって、水平方向に拡張網膜神経細胞の生理学的特性ならびに選択されたシナプス全体の感覚信号伝送との統合を研究するのに適しています。

<html>マウス網膜の水平スライスでは、水平細胞体は簡単に多角形の細胞体（ 図1A）から出てくるいくつかの主要な樹状突起とのユニークな形態に応じて特定することができました。スライスの表面近くに位置する水平細胞体は、パッチクランプ電極のための日常的にアクセス可能でした。録音時には、細胞が密接に無傷のマウス網膜8（ 図1B）の軸索保有水平細胞の形態と類似していた彼らの複雑な樹状樹枝状分岐を、明らかにし、蛍光色素を充填しました。フルオレセイン結合ピーナッツ凝集素とコーン茎の標識はコーン茎と水平細胞の樹状突起（ 図1C）との間の密接な空間的な関係を示しました。いくつかの例外を除いて、水平細胞の樹状のフィールド内のすべてのコーン茎は、樹状突起により接触させました。 ENT &quot;FO：キープtogether.withinページ=&quot; 1 &quot;&gt;コーンと水平細胞間の接触は、パッチクランプ記録は、水平...

私たちは、網膜の表面に平行に切片化の面で大人の哺乳類の網膜の水平スライス標本を開発しました。 nonradially指向の網膜神経細胞の樹状のフィールドは、パッチクランプおよびイメージング技術と信号処理の研究を可能にする、切り捨てられませんでした。

Vertical slice preparations are well established to study circuitry and signal transmission in the adult mammalian retina. The plane of sectioning in ...

このマウス網膜の水平スライス標本作製の全体的な目的は、水平方向に配向したニューロンの形態学的および生理学的完全性を維持し、網膜のシナプス回路におけるそれらの機能的な役割を研究することです。この手法は、感覚信号が網膜のリボンシナプスにおいてどのように符号化および統合されるかといった、視覚情報処理分野における重要な疑問への回答に寄与します。本手法の主な利点は、水平細胞やアマクリン細胞などの水平方向に配向した介在ニューロンが機能的に保持されており、電気生理学的記録へのアクセスが可能である点にあります。本手順のデモンストレーションは、私の研究室の技術者であるAndrea Nerzが行います。まず、曲がったピンセットを眼球の下に入れ、眼球を取り出します。眼球をそっと持ち上げて視神経を露出し、スプリングシザーで切断します。その後、眼球を2 mLのAMS培地を含む35 mmペトリ皿に移します。実体顕微鏡を用い、最適な視覚的コントロールが可能な倍率に調整します。次に、ピンセットで眼球を固定し、別の尖端ピンセットまたは20Gの針を用いて、角膜と強膜の境界部を穿刺します。角膜を穿刺する際は、網膜を傷つけないように注意してください。続いて、スプリングシザーを小さな穴に挿入します。ピンセットで眼球を固定しながら、角膜の周囲を円形に切除します。このとき、網膜を切断しないよう、切開線は表面のごく近くに維持してください。角膜レンズと硝子体を慎重に除去します。硝子体は眼球の後部にのみ存在する薄い透明な層で構成されています。しかし、ビブラトームによる切片作成には、硝子体を完全に除去することが不可欠です。シャーレの中にある眼球を、網膜まで至る明確な穴が見えるように配置します。開口部の縁は強膜組織のみで構成されている必要があります。次に、ピンセットで強膜を掴み、慎重に組織を引き裂きます。この工程で網膜を破裂させないことが極めて重要です。この段階では、網膜と眼杯の残りの部分は視神経乳頭のみで接続されている必要があります。スプリングシザーを用いて、視神経乳頭の接合点を切断します。網膜は、AMS培地の中で1枚の組織片として自由に浮遊しているはずです。次に、大口径のパスツールピペットを用いて網膜をカバーガラスに転送し、曲がりメスを用いて網膜を約2×3平方ミリメートルの小さな長方形に4〜6片に切り分けます。長方形に切り出す際、網膜組織を挟み込まないように注意してください。本手順では、大口径のプラスチック製パステールピペットを用いて、2〜3個の網膜片を少量のAMS培地とともにガラス製ペトリ皿に移します。残りのAMS培地をガラス製パステールピペットで可能な限り取り除きます。その後、直ちに網膜片を37 °Cで溶解させたアガロース2 mLで覆います。網膜片をシャーレの底へそっと押し付けます。アガロースはすぐに凝固するため、可能な限り迅速かつ正確に、神経節細胞層が下を向くように配置してください。同時に、切片が接線方向や斜めにならないよう、網膜片がガラスシャーレの底と平行になるように整えます。その後、さらに処理を進める前にアガロースを硬化させるため、網膜片を埋め込んだものを冷蔵庫に移します。次に、網膜片を含むアガロースブロックをシャーレから慎重に取り出します。メスを用いて、ガラスからアガロースブロックを注意深く持ち上げてください。その後、アガロースブロックをガラスカバーのスリップ上に置きます。メスを用いてサイズを調整し、網膜片の周囲に1〜2 mmのアガロースを残します。次に、瞬間接着剤を使用してアガロースブロックをビブラトームの試料保持部に固定します。あらかじめ気泡を除去しておいたAMS培地をバイブラトームのバッファー用トレイに注ぎ、速やかにブロックを覆います。この図では、スライスの表面近くに位置する水平細胞が、ドットコントラスト光学系を用いて可視化されています。この画像は、パッチ電極を介してOregon Green 488 BAPTA-1で満たされ、電極が依然として細胞に装着された状態の水平細胞を示しています。ここでは、色素を注入した水平細胞と、fluisine結合ピーナッツ凝集蛋白（PNA）で標識された錐体細胞足突起の配列を重ね合わせて示しており、これにより推定されるシナプス接触部位が明らかになります。この図において、保持電位-60 mVでのホールセルボルテージクランプ記録により、高頻度の緊張性シナプス活性が示されています。より高い時間分解能では、シナプスイベントは単相性の波形またはより複雑な電流軌跡を示します。この図では、光刺激に対する水平細胞の電流応答が示されています。光はイオンチャネルの閉鎖を誘導し、シナプス活動を遮断します。また、この図では、細胞外電極を用いて錐体光受容体を電気的に刺激しています。シナプス後興奮性電流は、刺激強度に応じて段階的に変化します。この手順に習熟すれば、適切に実施することで1時間以内に完了させることができます。本手順に続き、カルシウムイメージングなどの他の手法を実施することで、網膜ネットワークにおける視覚情報の処理といった追加の課題に取り組むことが可能です。このビデオを視聴することで、水平方向に伸展する細胞型への機能的なシナプス入力を持つ、哺乳類網膜の水平切片の作製方法について深く理解することができます。

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Neuroscience

神経科学

伝統的に垂直方向のスライスと網膜のホールマウントの準備は、網膜回路の機能を研究するために使用されている。ここで、我々は、無傷の網膜神経細胞の樹枝状形態を維持する方法をスライス小説を説明します。...

網膜の水平スライス標本

ここでは、電気生理学的記録のためのマウスの網膜の暗順応のスライスを生成するための手順を説明します。...

暗順応スライス標本におけるマウス網膜神経細胞からパッチクランプ記録

このビデオは、フラットマウントマウス網膜からの電気生理学的記録のための全細胞パッチクランプ技術を示しています。電極付きの薄いガラスピペットを使用して、網膜内のスターバーストアマクリン細胞(SAC)にアプローチします。シールを形成した後、吸引を加えてメンブレンを破裂させ、全細胞パッチクランプ構成を形成します。最後に、SACシナプス受容体を通るイオンの流れは、この構成を使用して測定されます。...

フラットマウントマウス網膜からの電気生理学的記録のための全細胞パッチクランプの確立

このビデオでは、マウスの脳スライスにおけるレチノゲン酸シナプスとコルチコゲン酸シナプスの電気生理学的記録について説明しています。背側外側膝状核(dLGN)を含むスライスは、記録チャンバーに入れられます。刺激ピペットは、網膜神経節細胞(RGC)を刺激して網膜性シナプスを調査するための視路または皮質ニューロンを刺激して皮質性シナプスを調査するための視床網核のいずれかに配置されます。刺激を受けると、RGCと皮質ニューロンは興奮性神経伝達物質を放出し、LGNリレーニューロンにシナプス電流を生成します。これらの電流は、パッチクランプ記録ピペットを使用して記録されます。...

マウス脳切片における網膜形成型および皮質形成型シナプスの電気生理学的研究

Source：&lt;a style='text-decoration:none;' href='https://app.jove.com/v/55229/single-cell-rna-seq-of-defined-subsets-of-retinal-ganglion-cells'&gt;Laboissonniere,  et. al.網膜神経節細胞の定義されたサブセットの単一細胞RNA-seq. J. Vis. Exp. (2017).

蛍光トレーシングによるマウス網膜神経節細胞サブタイプの同定

マウスの目から網膜スライスを準備し、網膜ニューロンの光応答を記録する方法を示します。すべての手順は、暗所に適応した条件で行われます。...

パッチクランプ技術を用いたダーク適応、マウス網膜スライス標本におけるニューロンにおける記録光誘発シナプス後応答

我々は、マウス網膜のex vivoでのスライス標本を用いて、錐体光受容体の軸索末端におけるCa 2+動態を監視するためのプロトコルを記述します。このプロトコルは、重要な哺乳動物モデル系におけるコーンのCa 2+シグナル伝達の包括的研究、マウスを許可します。...

イメージングカルシウム<sup&gt; 2+</supマウス網膜の光受容コーン軸索末端で&gt;ダイナミクス

8時間 - 身体から取り出されると、神経組織を大幅に6後の組織の最終的な劣化につながる、環境条件によって影響されます。密接に監視し、組織の細胞外の環境を調節する独特の培養方法を用いて、組織生存率を有意に&gt; 24時間延長することができます。...

電気生理学およびカルシウムイメージングのための急性神経組織の長期のインキュベーション

本稿は、マウスの水平海馬脳スライスを得るための体系的なプロトコルを説明することを目的としている。この方法論の目的は、穿角経路や苔むした繊維路などの海馬繊維経路の完全性を維持し、デンテート回関連の神経学的プロセスを評価することである。...

マウス脳の水平海馬スライス

マウスの下-中間海馬からの急性スライスを調製するためのプロトコルを提示する。この横断的な準備を、記録の質と記録されたニューロンの形態学的特徴の保存の観点からコロナスライスと比較する。...

成体マウスのデンテート・ジラスにおける全細胞記録と神経再建のための、逆海馬からの急性スライスの作製

この研究は、光受容体細胞体を除去することで、抗体の拡散が速くなり、免疫組織化学、 in situ ハイブリダイゼーション、および電気生理学実験のための網膜内ニューロンへのパッチピペットアクセスが改善される、代替のフラットマウント網膜製剤を提示します。...

脊椎動物の網膜の内核層ニューロンを研究するための改良されたフラットマウント調製としてのスプリット網膜

学ぼう、マウス網膜の水平スライス調製法を用いて水平細胞と無長突起細胞の機能を電気生理学的に記録する方法。パッチクランプとイメージング技術で視覚情報処理のシナプス回路を詳細に解析できます。

電気生理学的研究のための成体マウスの網膜の水平スライスの調製

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