Name: ゼブラフィッシュの開発の長期イメージングのための多彩な取り付け方法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 55 s
Description: 学ぶゼブラフィッシュ胚の長期ライブイメージングのための多彩な取り付け方法。低融点アガロースを用いて後部体の正常な発生を維持しながら、細胞動態を詳細に観察できる技術です。発生生物学研究に有用です。

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Estelle Hirsinger: パスツール研究所と国立研究庁からのコア資金 (ANR-10-BLAN-121801 DEVPROCESS)。エステル・ヒルシンガーは、国立科学研究センター(CNRS)の出身です。ベンジャミン・スティーブントンは、Agence Nationale de la Recherche(ANR-10-BLAN-121801 DEVPROCESS)から資金提供を受け、その後、Rouxフェローシップ(Institut Pasteur)、AFM-Téléthonフェローシップ(番号16829)を受けました。彼は現在、ウェルカム・トラスト/王立協会のヘンリー・デール・フェローシップの支援を受けています。

1.溶液の調製とプルガラスニードル<ol><li> 20 mMトリスpHを8.8に4ミリグラム/ mLでトリカイン（3-アミノ安息香酸エチルエステルとも呼ばれる3-アミノ安息香酸エチル）の25倍ストック溶液を作成し、そのソリューションはpHである4 mLおよび店舗7.小分けに持ち込みます-20℃。 注：麻酔トリカイン、それによって筋肉のけいれんや運動6を遮断する神経電位依存性ナトリウムチャネルに優先的に作用します。 </li><li> E3胚培地中0.17ミリグラム/ mlの最終濃度でトリカインの作業溶液を作ります。 7 注：この溶液のpHが漂うとして即時作業溶液トリカインしてください。 </li><li>電子レンジ内の溶液を加熱して50 mLチューブ中のE3胚培地中1.5％の最終濃度を低融点アガロースを溶解します。水浴またはベンチトップインキュベータのいずれかで45℃ - このソリューションは42に平衡化してみましょう。垂直のための大規模な料理を準備している場合光シートイメージング（ステップ4）、アガロースE3胚培地に1％の標準的な融解の追加の25mLのを作ります。 </li><li> OD 1.20ミリメートル、ID 0.69ミリメートル、長さ10mmの寸法のフィラメント毛細血管にホウケイ酸ガラスを使用してください。 </li><li>毛細血管は、 機器および試薬の表に記載され加熱フィラメント針プラーの種類に引っ張られた場合は、次の設定を使用します。熱600は、鋭いピンセットで120、速度50、時間225、圧力500を引いて、ブレークちょうどそれが胚を配向し、過剰のアガロースを除去するためのクリーンでシャープな針を作成するために曲がるした時点過去の針。マイクロメスはまた、過剰なアガロースを除去するために使用することができます。 </li></ol>倒立または直立顕微鏡のための胚の2の埋め込み<ol><li> E3胚の培地中の適切な段階に胚を上げます。 7 </li><li>両眼dissecの下に鋭いピンセットで必要な段階では、dechorionate胚ティン顕微鏡。 </li><li>トリカイン作業溶液中で少なくとも5分間dechorionated胚を培養します。 </li><li>溶融アガロース溶液を45℃に冷却した後、E3媒体の最小の転送に50mlチューブに直接dechorionated胚を転送するために、ガラスパスツールピペットを使用します。 </li><li>約1ミリリットルマウンティング培地と一緒に胚を取り出して、約追加します。 10ミリメートルのマイクロウェルと35ミリメートルのガラス底ペトリ皿の中央円に胚と一緒にメディアをマウントする100μlの。 </li><li>マウンティング媒体が設定されているように、（ 図1A）外側を向く尾を含むアガロースの円の端に胚を移動します。ゲルが完全に設定されるまで、所望の横方向の向きで胚を維持するために、キャピラリ針を使用してください。画像後部ボディの開発に、できるだけ横向きで胚を向けるように注意してください。したがって、慎重adjustmenによってこの位置に胚を維持キャピラリ針付きTS。 注：必要に応じて、複数の胚は、この時点で取り付け皿に添加することができます。このような場合は、最初の皿にアガロース低いが溶融転送し、アガロースドロップの中心に胚を追加します。その後、ガラスリングのエッジに胚を押し出すと、所望の位置に向けます。 6胚まで、アガロースが固化する前に、この方法を実装することができます。 </li></ol>後部の体の周りに余分なアガロースの3除去注：このセクションでは、アガロースは、後部本体を囲む領域から除去されることにより、手順を説明します。後部本体の伸長の場合には、尾部が成長アウトできることを通常は保証することが重要です。胚が完全にアガロースによって含まれていた後、アガロースを除去することにより、胚は、頭部領域と卵黄嚢の約半分で囲まれたままです。 <ol><li>アガロースドロップを設定したら、ペトリジをあふれさせますトリカイン作業溶液とのsh。 </li><li>透過光ベースと解剖双眼顕微鏡下では、強いコントラストが操作して明確に見られるように、アガロースの削減を可能にするようにミラーの位置と入射光の角度を調整します。 </li><li>カットを実行するには1（ 図1）、ただ体節5（5 番目の位置に形成心臓領域に後方の位置から、卵黄に沿ってアガロース途中でカットするキャピラリ針またはマイクロメスを使用前方の体節）。 </li><li>示すように形成心臓に隣接する最初のカット、およびガラスにアガロースを介して完全な道を開始します。 </li><li>深いアガロース内の毛細管またはマイクロメスのままにし、 図1に示すように、胚を超える長いカットを作るために始めながら、ゆっくりと上下を見ました。胚や卵黄を穿刺することなく、可能な胚に近いカットします。 </li><li>次に、カット2および3（ 図1を作ります</strong&gt;）、胚に対する位置から、ガラスに至るまですべての道を行くカットで始まる皿底。後部本体のアンフォールディングフル背側方向にするためにできるように、それは最初の5体節に対して接線方向になるように2をカットしてください。卵黄面と90°の角度で3をカットし、ハートフィールドから開始してください。 注：ガラス円のエッジまでアガロースを切断（ 図1に示すように）完全なブロック（ステップ3.6）としてアガロースを除去するのに役立ちます。しかし、これは必須ではありません。 </li><li>カット1と3の交差点に出発し、ゆっくりと後部本体を囲むアガロースの二乗を除去するために、上向きに持ち上げながらカット2の終わりに向かってゆっくりと斜めカットを行います。 注：いくつかのケースでは、これは、1つのブロックに解放され、操作が一度に完了する。他では、それはディスロッジに胚周辺のアガロースをいくつかの試みがかかる場合があります。 </li><li>鋭いピンセットで、外れBを削除胚培地からアガロースのロック。 、このプロセスを補助皿の側にアガロース片を移動し、アガロース片を持ち上げながら、支持体としてペトリ皿の壁を使用します。 </li></ol><img alt="図1" src="/files/ftp_upload/55210/55210fig1.jpg" /> 図1：取付・セットアップのダイアグラム。 （A）図は、ペトリ皿の中心のガラスリング内に取り付けられた胚の位置を示しています。右側には、アガロースdottted赤線で示さ周囲を介して各連続したカットと胚のズームがあります。 （B）に取り付けられた胚は、両方反転して直立目的のためのアクセスのしやすさを表示する側面図に図解されています。 （C）胚は垂直光シートイメージングセットアップのために実装することができる方法を示す同様の2文字組。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55210/55210fig1large.jpg" target="_blank">CLください</a>この図の拡大版を表示するには、こちらICK。 <ol start="9"><li>筋肉のけいれんが完全にその時点でブロックされていない場合は、4 mg / mlで、pHが7のストック溶液からトリカインの滴を追加します。 </li></ol> 4.垂直ライトシート顕微鏡のための胚の取り付け注：これはその上に概説した方法のバリエーションが垂直指向SPIMにより試料のイメージングのための複数の目標のアクセスを可能にしています。この変化の背後にある考え方は、2つの撮像目標の容易なアクセスを可能にするために、皿の底よりもわずかに高いサンプルを持ち上げることです。 <ol><li> 5mmの高さに取り付け、コートE3培地中の1％アガロースでの100mmプラスチック製ペトリ皿をサンプリングし、設定することを可能にする前に。 </li><li>皿の中央に1ミリリットルの低融点アガロースのドロップを置き、設定することができます。 </li><li>しかし項2のような低融点アガロース中に埋め込むの胚は、この時間は、50mlチューブから胚を除去しますソリューションのより小さな滴（0.5ミリリットル）でアガロースの皿の中央に1ミリリットル滴の上に、この小滴を配置します。 </li><li>小滴の中心に胚を配置し、ゲルが設定されるまで、その正しい方向を維持するために、キャピラリ針を使用してください。 </li><li>トリカインワーキング溶液で皿をフラッディングし、セクション3のとしてではなく、1％標準アガロースのクッションを切断することなく、余分なアガロースを削除します。 </li></ol>

<ol><li>Graeden, E., Sive, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+Imaging+of+the+Zebrafish+Embryonic+Brain+by+Confocal+Microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Live Imaging of the Zebrafish Embryonic Brain by Confocal Microscopy.</a> J Vis Exp. (26), e1-e2 (2009).</li>
<li>Delaune, E. A., François, P., Shih, N. P., Amacher, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-Cell-Resolution+Imaging+of+the+Impact+of+Notch+Signaling+and+Mitosis+on+Segmentation+Clock+Dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">Single-Cell-Resolution Imaging of the Impact of Notch Signaling and Mitosis on Segmentation Clock Dynamics.</a> Dev Cell. 23 (5), 995-1005 (2012).</li>
<li>Lawton, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulated+tissue+fluidity+steers+zebrafish+body+elongation%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Regulated tissue fluidity steers zebrafish body elongation.</a> Development. 140 (3), 573-582 (2013).</li>
<li>Dray, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-Fibronectin+Interactions+Propel+Vertebrate+Trunk+Elongation+via+Tissue+Mechanics%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell-Fibronectin Interactions Propel Vertebrate Trunk Elongation via Tissue Mechanics.</a> Curr Biol. 23 (14), 1335-1341 (2013).</li>
<li>Steventon, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Species+tailoured+contribution+of+volumetric+growth+and+tissue+convergence+to+posterior+body+elongation+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Species tailoured contribution of volumetric growth and tissue convergence to posterior body elongation in vertebrates.</a> Development. 143, 1732-1741 (2016).</li>
<li>Attili, S., Hughes, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anaesthetic+Tricaine+Acts+Preferentially+on+Neural+Voltage-Gated+Sodium+Channels+and+Fails+to+Block+Directly+Evoked+Muscle+Contraction%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Anaesthetic Tricaine Acts Preferentially on Neural Voltage-Gated Sodium Channels and Fails to Block Directly Evoked Muscle Contraction.</a> PLoS ONE. 9 (8), 103751-103756 (2014).</li>
<li>Westerfield, M. <a target="_blank" href="https://zfin.org/zf_info/zfbook/zfbk.html">The Zebrafish Book, 5th Edition; A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio)</a>. , University of Oregon Press. Eugene. Paperback (2007).</li>
<li>Schröter, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamics+of+zebrafish+somitogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Dynamics of zebrafish somitogenesis.</a> Dev Dyn. 237 (3), 545-553 (2008).</li>
<li>Megason, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+toto+imaging+of+embryogenesis+with+confocal+time-lapse+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol+%28Clifton%2C+N.J.%29%22%5BJournal%5D)">In toto imaging of embryogenesis with confocal time-lapse microscopy.</a> Methods Mol Biol (Clifton, N.J.). 546, Chapter 19 317-332 (2009).</li>
<li>Sugiyama, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Illuminating+cell-cycle+progression+in+the+developing+zebrafish+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Illuminating cell-cycle progression in the developing zebrafish embryo.</a> PNAS. 106 (49), 20812-20817 (2009).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

この実装技術は、胚は、顕微鏡、複数の長さスケールで後部ボディ伸びを以下のことを目的としたオーバー長期的タイムラプスイメージング実験への転送中に静止保持することができます。それは両方の直立および反転の顕微鏡セットアップのイメージングを可能にし、提案が、これはさらに垂直に向けSPIMに適合させることができる方法のために作られているという点でまた、多目的です。 このプロトコルでの重要なステップは、この構造の正常な発達を可能にするために重要である後部本体を囲む過剰アガロースを慎重に除去することです。卵黄の上部の周囲アガロースを削除する場合は特に、胚にダメージを与えないで、ここで世話をすることが重要です。時にはこのプロセス中に型から胚を失うことが可能であるように、胚の周りからカットアガロースブロックを取り外す際に加えて、注意が必要です。これらの理由から、これは、低スループット法THAでありますtは対照的に、既に3Dプリントプラスチック金型を利用する方法を公開するために、同時に多くのゼブラフィッシュ胚の実装に適していません。 <sup class="xref...

後部ボディ伸びが胚体軸の大部分を形成するように延びていることにより、胚発生に不可欠なプロセスです。これは、複数の細胞の挙動は、個々の組織のレベルでの形態形成を生成するために協調的に作用することにより、複雑な形態形成過程の一例です。これらの差動組織変形は、その後、構造全体のレベルで後部本体の伸長を生成するために一緒に働きます。これらのプロセスが制御され、現像時に調整されている方法を理解するために、我々は（分子、細胞、細胞集団と組織のレベルでIE）複数のスケールで、これらのプロセスに従うことができなければならず、全体の構造の形態形成に直接これを関連付けること。 その光学的透明性と小さなサイズは、最小侵襲性光イメージングのアプリケーションを可能にするようゼブラフィッシュの胚は、LIVによく適して近づいイメージング後部本体の伸長のために理想的です電子イメージング。 1これは、分子のレベル、2単セルで、3と間組織行動、4だけでなく、細胞集団全体の臓器のレベルで後部本体の開発に光を当てるしている最近の一連の刊行物によって証明されています。 5 このような共焦点、多光子顕微鏡法および選択的平面照明顕微鏡（SPIM）などの高度なイメージング技術は、光毒性および光退色の効果が低下した発生過程の長期イメージングを可能にしています。顕微鏡への転送時および取得時に正しい向きでサンプルを維持するために1）十分な支持の成長を可能にするために、サンプルの移動2）十分な自由：ライブのサンプルの実装のための堅牢な技術は、3つの目標を達成するために必要とされますその通常のdevelに影響を与えることなく、後部ボディ領域発、そして最後に3）多様なイメージング・セットアップにイメージングを可能にする実装方法の汎用性にある程度。 このプロトコルは、ゼブラフィッシュD.レリオの開発を撮像するための実装技術を紹介します。この技術は、細長く、正常に発育する後部ボディ領域を残して、ヘッドと卵黄嚢の領域をほぼ完全に、アガロース中に含まれるように胚をマウントすることを含みます。このように、それはまた、アガロース、標準の光画像化技術による画像化を可能にするように開発身体の他の領域の長期イメージングのための適切な方法です。代替の向きで胚をマウントすることも可能であるが、このプロトコルは、横方向の向きで胚の取り付けを示しています。さらに、直立反転および垂直光シート顕微鏡のセットアップのための方法を適応させる方法を紹介します。

<table><tbody><tr><td>消耗品</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ガラス底皿</td><td>Mattek</td><td>P35-1.5-10-C</td><td>35 mmシャーレ、10 mmマイクロウェル。No.1.5</td></tr><tr><td>注射針用カバーガラスキャピラリー</td><td>&nbsp;サッター&nbsp;</td><td>BF 120-94-10</td><td>フィラメント、外径1.20 mm、内径0.94 mm、長さ10 cmのオロケイ酸ガラスを使用しています。ただし、フィラメント針は必要なく、ほとんどの注射用標準針は機能するはずです。</td></tr><tr><td>マイクロメス</td>フェ<td>ザー</td><td>P-715</td><td>マイクロフェザー使い捨て眼メス、プラスチックハンドル付き</td></tr><tr><td>パスツールピペット</td><td></td><td></td><td>230mm<ロング</td></tr><tr><td>>試薬</ストロング>/</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>トリカイン</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>A5040</td><td></td></tr><tr><td>低融点アガロース</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>A9414</td><td></td></tr><tr><td>EQUIPMENT</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>fine鉗子&nbsp;</td><td>FINE SCIENCE TOOLS GMBH&nbsp;</td><td>11252-30&nbsp;</td><td>デュモン #5</td></tr><tr><td>ニードルプラー&nbsp;</td><td>サッター&nbsp;</td><td>P97</td><td>加熱フィラメントニードルプラー</td></tr><tr><td>双眼解剖顕微鏡</td><td>ライカ</td><td>S8 Apo</td><td></td></tr></tbody></table>

ゼブラフィッシュの開発の長期イメージングのための多彩な取り付け方法

A Versatile Mounting Method for Long Term Imaging of Zebrafish Development

ゼブラフィッシュの胚は、アクセシビリティと光透過性の容易さのために複雑な形態形成過程を研究するための理想的な実験系を提供しています。具体的には、後部ボディ伸びは、複数の組織変形が体軸の大部分の形成を指示するために一緒に作用することにより、胚発生に不可欠なプロセスです。長期タイムラプス撮影することによって、このプロセスを観察するためには、十分な支持を顕微鏡及び取得に転送中に正しい方向で試料を維持することを可能にする実装技術を利用する必要があります。また、実装は、その正常な発達に影響を与えることなく、後部ボディ領域の伸長のための運動の十分な自由度を提供しなければなりません。最後に、多様なイメージング・セットアップにイメージングを可能にするために、実装方法の汎用性がある程度存在しなければなりません。ここでは、後部本体の開発を画像化するための実装技術を提供elongatioゼブラフィッシュD.レリオ中のn。この技術は、細長く、正常に発育する後部ボディ領域を残して、ヘッドと卵黄嚢の領域をほぼ完全にアガロース中に含まれるように胚をマウントすることを含みます。これは、直立反転および垂直光シート顕微鏡セットアップのために適合させることができる方法を紹介します。このプロトコルは、後部ボディ用イメージングのための胚をマウントするに焦点を当てているが、それは簡単にゼブラフィッシュの開発のさまざまな側面のライブイメージングのために適合させることができます。

上記で概説したプロトコルは、長期的タイムラプスイメージングのためのゼブラフィッシュ胚の取り付けのための多目的な技術を詳しく説明しています。この例は、図2Aおよびアニメーション/ビデオ図1に示されています。胚は、mRNAがphotoconvertible蛍光タンパク質kikumeGRをコードすると1細胞期で注入しました。上記のように15体節段階でそれらをマウントし、10倍の対物レンズとの倒立型共焦点顕微鏡上で12時間、撮像されました。示すように、得られた共焦点スタックが最大限に表示されるように投影されました。この映画は、明らかに、後方本体が映画の存続期間全体にわたって自由に移動させ、通常の培養条件で自由に絨毛膜を開発することが許可されている胚に見られる形態の類似の変化を示していることを示しています。 さらなる例は、Fのigure 2bに示されていますそし...

ここでは、正常な発達を乱すことなく、生きたゼブラフィッシュの胚の後部体の発達を長期間のタイムラプスイメージングを可能にする汎用性の高いマウント方法を紹介します。

Zebrafish embryos offer an ideal experimental system to study complex morphogenetic processes due to their ease of accessibility and optical transparency. ...

本手法の総合的な目的は、後方体領域の正常な伸長を可能にする状態でゼブラフィッシュ胚を固定し、ライブイメージングを行うことです。この手法は、発生中のゼブラフィッシュの他の領域のイメージングにも応用可能です。本技術は、個々の細胞挙動がどのように組織全体のレベルでの形態形成につながるかといった、発生生物学における重要な問いに答えるのに役立ちます。この手法の主な利点は、胚を正しい方向に向かせたまま、後体部を自由に動かすことができる点にあります。まず、50 mLチューブに入れたE3培地に、最終濃度が1.5%となるように低融点アガロースを加え、電子レンジで加熱してアガロースを溶解させます。その後、ウォーターバスまたはベンチトップインキュベーターを用いて、溶液を42～45 °Cに調整します。テキストプロトコルに従ってガラス針をアロングした後、ピンセットを用いて、針がしなる直後の部分を折ります。これにより、胚の方向調整や余分なアガロースの除去に適した、清潔で鋭利な針が作成されます。E3培地中で胚を適切なステージまで成長させます。次に、実体顕微鏡下で、鋭いピンセットを用いて胚の卵膜を除去します。卵膜を除去した胚をトリカイン作動溶液中で少なくとも5分間インキュベートします。その後、ガラス製パステールピペットを使用して、卵膜を除去した胚を最小限のE3とともに、45 °Cのアガロースが入った50 mLチューブに直接移します。胚を約1 mLのマウント用アガロースと共に回収し、胚を含む培地を約100 µL、35 mmガラスボトムペトリ皿の底にある10 mmマイクロウェルの中心に転送します。マウント剤が固まる間に、胚の尾側を外側に向けてアガロースの円の端へと移動させます。キャピラリーニードルを使用して、後身部の発達を観察できるよう、胚をできるだけ側面に向けた状態で配置します。次に、キャピラリーを用いて、ゲルが完全に凝固するまで胚を目的の側方方向に向けて保持します。アガロースドロップが固まったら、トリカイン作動液を用いてペトリ皿を満たします。その後、透過光照明付きの解剖顕微鏡下で、ミラーの位置と入射光の角度を調整し、高いコントラストによってアガロースの切り込みがはっきりと見えるようにします。1回目の切断を行うには、キャピラリーニードルまたはマイクロスカルペルを用い、卵黄に隣接する中間点から、形成されつつある心臓領域のすぐ後方、第5前体節まで、アガロースを上下にのこぎり状に動かして、ガラスに到達するまで完全に切断します。ここでの重要な点は、卵黄嚢上のアガロースを切断する際に胚を傷つけないようにすることです。次に、2回目および3回目の切断を行います。胚に接する位置からガラスに向かって、最初の5つの体節に接するように切断し、後体部が背側に展開するようにします。次に、切開1と切開3の交点から、切開3の末端に向かってゆっくりと斜めに切り込みを入れ、同時にゆっくりと上に持ち上げることで、後体周囲のアガロースの正方形を切り離します。鋭いピンセットを用い、ペトリ皿の壁を支えにしてアガロースの断片を持ち上げ、胚培地から取り除きます。サンプルのマウント前に、1% アガロースを含む E3 を用い、100 mm のプラスチック皿に 5 mm の高さまでコーティングし、凝固させます。次に、1 mLの低融点アガロースをディッシュの中央に一滴滴下し、同様に凝固させます。本ビデオの前半で示した通り、胚を低融点アガロースに包埋します。ただし、今回は、少量の溶液を用いて50 mLチューブから胚を取り出し、この少量の滴をディッシュ中央にある1 mLの滴の上に載せてください。キャピラリーニードルを使用して、胚を小さな液滴の中心に配置し、ゲルが凝固するまで正しい向きを維持します。最後に、トリカイン作業溶液をディッシュに満たし、余分なアガロースを除去します。光変換性蛍光タンパク質kikumeGRをコードするmRNAを注入し、15ソマイト期にマウントして12時間のタイムラプスイメージングを行ったゼブラフィッシュ胚の例を、このアニメーションビデオで示しています。後体部は自由に動かすことができ、通常の培養条件下で卵膜から外れて発生した胚に見られるのと同様の形態変化を示します。本ビデオでは、16細胞期の胚に、核を標識するhistone 2BRFPと細胞膜を標識するCAAXGFPをコードするmRNAを注入しました。尾芽形成中の細胞挙動を可視化するため、10ソマイト期から3時間にわたり、25X水浸対物レンズを備えた正立マルチフォト顕微鏡を用いて画像を撮影しました。尾芽が正常に形成されるにつれて、細胞が活動的な突起を形成し、方向性を持って移動する様子が観察できます。この手法に習熟し、適切に行えば、20分で完了させることができます。この手順を行う際は、アガロースゲルが凝固する間に、胚が側方に位置していることを確認することが重要です。さもなければ、イメージング中に目的の領域が視野から急速に移動してしまいます。このビデオを視聴することで、後方体軸伸長のライブイメージングに向けたゼブラフィッシュ胚の固定方法について、明確に理解できるはずです。

a-versatile-mounting-method-for-long-term-imaging-zebrafish

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JoVE Journal

Developmental Biology

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