Name: マウスにおける低侵襲横大動脈狭窄 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-14T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 40 s
Description: 学ぶ低侵襲横大動脈狭窄法によるマウス左室肥大誘導。人工呼吸器不要のシンプルな手技で心筋リモデリングや心臓線維症を研究し、心血管研究のスループットを向上させる。

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私たちは、VEVO 2100超音波システムを提供するための香港理工大学の生命科学における大学研究施設（ULS）を感謝したいです。訓練及び円滑のための医工学、香港理工大学、学際課から博士Chunyiウェンに感謝します。この作品は、香港政府RGCグラントGRF 17127215、764812とビリー・KCチョウにHKU6 / CRF / 11Gによってサポートされていました。

プロトコルは、香港の大学の教育・研究（CULATR）でライブ動物の使用に関する委員会のガイドラインに従います。 1.運用サイトの準備<ol><li> 75％イソプロピルアルコールで手術部位を消毒します。心の変化や対象動物の呼吸速度を避けるために、37℃に加熱パッドの温度を調整します。 </li><li> 30分間、または他の適切な方法により、121℃で重力置換滅菌器で滅菌手術器具を使用してください。 </li><li>ライゲーションおよび組織分離および開創器として使用するためのツールを作るために、 図1に見られるように、4〜30ゲージの針と針ホルダとカーブして2 -を取ります。手術で使用するための綿棒になりまし-湾曲針をマウントします。 </li><li>それは針ホルダーと90°27ゲージの針と曲線を鈍ら。連結工程で0.4 mmのスペーサーを作るために、ハード面を擦ることにより、先端を滑らかに。 </li></ol><ol><li>負のテールピンチ反射で麻酔を確認してください100ミリグラム/キログラム+ 10mg / kgの腹腔：体重との関係で適切なケタミンおよびキシラジンの混合物と2カ月齢、オス、22〜25グラムC57BL / 6Nマウスを麻酔。 </li><li>脱毛クリームの2〜3分のアプリケーションと前頸部と胸の毛を削除してください。暖かい水と綿棒でクリームを削除します。 </li><li>角膜の乾燥を防ぐために、動物の眼に眼軟膏またはゲルを適用します。 </li><li>仰臥位で加熱パッド上に動物を配置し、すべての15分間隔で適切な文書を維持することを確認され、術中モニタリングを行っています。 </li><li>手術中に正しい位置に動物を維持するために加熱パッドに手足を固定するための外科紙テープを使用してください。 </li><li>アルコールとポビドンヨード溶液で交互に3回皮膚を消毒。 </li><li>無菌DRを使用汚染を防ぐために露出され、操作フィールドと猿。各マウスについての新しい滅菌手袋を使用し、必要に応じて。 </li></ol> 3.連結手順<ol><li>メスで首と胸の正中線の位置でマウスの皮膚を開きます。 </li><li>優しく鈍はさみで結合組織を分離することにより、頭部に向かって甲状腺を引き出します。 </li><li>湾曲した針との両側に向かって正中線で気管に筋層を分離します。 </li><li>鈍はさみを使用して、第2のリブ（約5mm）に胸骨を切りました。開創又は湾曲鉗子でカットを開きます。 </li><li>湾曲した針で結合組織を分離することによって、互いと下胸壁からの胸腺葉を分離します。横方向の大動脈弓と2頸動脈は、この時点ではっきりと見えるようになります。 </li><li>アーチの下に湾曲した針を配置し、膿によって反対側の血管壁および結合組織の間に穴を開ける湾曲したヘッドを興。 </li><li>湾曲した針を使用して、大動脈弓の下に6-0モノフィラメント縫合糸を引っ張ります。 </li><li>ループ内で、スペーサを配置し、ダブルノットで所定の位置に縫合糸を固定します。優しくスペーサーを取り外します。 </li><li>結び目の位置に成功したくびれを確認して、縫合糸の端をカット。 </li><li>単純結節縫合パターンで6/0シルク縫合糸を使用して、胸壁を閉じます。連続縫合パターンの6/0モノフィラメント縫合糸で皮膚を閉じます。 </li></ol> 4.術後ケア<ol><li>縫合部位にポビドンヨード溶液を塗布し、回復および術後のモニタリングに予熱したケージ内に動物を配置します。 </li><li>動物が痛みを緩和し、適切なソフトな食品とマウスを提供するために、意識を取り戻した後 - （0.1ミリグラム/ kg皮下12時間ごとに0.05）ブプレノルフィンを注入します。 </li><li>完全な回復後12時間の明/暗サイクルの部屋に動物を返します。 </li></ol> 5。心エコー検査：成功ライゲーションおよび測定の確認<ol><li> 1 L /分の酸素流量で、メンテナンスのために、1.5％ - 誘導のために、5％イソフルラン、および1 - 一週間後、3と以前バンドマウスを麻酔。 </li><li>脱毛クリームを使用して、胸の毛を削除します。徹底的に暖かい水と綿棒でクリームを削除します。 </li><li> 37℃に維持動物処理台に仰臥位でマウスを固定します。足に電極ゲルを適用し、電極とパッドにそれらをテープで固定します。 </li><li>マウスの胸部に超音波ゲルを適用します。 40 MHzのMS550Dプローブおよび高周波数超音波システムと、大動脈弓のと同様に、左右の頸動脈上にカラードプラとパルス波ドプラ走査を行います。 </li><li> Bモードを使用して、左心室を探します。 Mモードを使用して、収縮期および拡張期の壁厚を測定することができます。使用シネストアおよび必要に応じてデータや画像を保存するためのフレームストア。 </li><li> UB-モードを歌う、分岐点の前に左総頸動脈を見つけます。流れを評価するために、パルス波やカラードップラーを使用してください。類似した時点で、右頸動脈に繰り返します。後で分析するためにシネストアとフレームストアモードで画像を保存します。 </li><li>マウスは左側臥位になるように、左端に動物ハンドリングプラットフォームを傾けます。大動脈弓を見つけるために、XとYをマウス、胸骨の位置でヘッドに平行な位置からのオフセットを30°にプローブを配置し、操作します。 </li><li>くびれの位置を確認します。血液は、2つの頚動脈が大動脈弓から分岐点との間の狭い水路を流れるされるように、くびれのサイトをより見やすくするために、カラードプラモードを使用します。 </li><li>ピーク流速を測定するために、パルス波やカラードップラーを使用してください。使用シネストアおよび必要に応じてデータや画像を保存するためのフレームストア。 </li><li>動物が腹臥位に加熱パッド上で回復させます。それは完全に麻酔から回復した後に12時間の明/暗サイクルの部屋で、元のケージに動物を返します。 </li></ol>

<ol><li>Rockman, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+atrial-specific+and+inducible+expression+of+an+atrial+natriuretic+factor+transgene+in+an+in+vivo+murine+model+of+cardiac+hypertrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 88 (18), 8277-8281 (1991).</li>
<li>de Almeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20410870">Transverse aortic constriction in mice.</a> J Vis Exp. (38), (2010).</li>
<li>Hu, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minimally+invasive+aortic+banding+in+mice%3A+effects+of+altered+cardiomyocyte+insulin+signaling+during+pressure+overload%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Minimally invasive aortic banding in mice: effects of altered cardiomyocyte insulin signaling during pressure overload.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 285 (3), H1261-H1269 (2003).</li>
<li>Shimizu, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Excessive+cardiac+insulin+signaling+exacerbates+systolic+dysfunction+induced+by+pressure+overload+in+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Excessive cardiac insulin signaling exacerbates systolic dysfunction induced by pressure overload in rodents.</a> J Clin Invest. 120 (5), 1506-1514 (2010).</li>
<li>Tarnavski, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+surgical+models+in+cardiovascular+research%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Mouse surgical models in cardiovascular research.</a> Methods Mol Biol. 573, 115-137 (2009).</li>
<li>Zhang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modified+murine+model+for+the+study+of+reverse+cardiac+remodelling%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Cardiol%22%5BJournal%5D)">A modified murine model for the study of reverse cardiac remodelling.</a> Exp Clin Cardiol. 18 (2), e115-e117 (2013).</li>
<li>Hartley, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doppler+estimation+of+reduced+coronary+flow+reserve+in+mice+with+pressure+overload+cardiac+hypertrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Doppler estimation of reduced coronary flow reserve in mice with pressure overload cardiac hypertrophy.</a> Ultrasound Med Biol. 34 (6), 892-901 (2008).</li>
<li>Scherrer-Crosbie, M., Thibault, H. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiography+in+translational+research%3A+of+mice+and+men%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Soc+Echocardiogr%22%5BJournal%5D)">Echocardiography in translational research: of mice and men.</a> J Am Soc Echocardiogr. 21 (10), 1083-1092 (2008).</li>
<li>Faerber, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+heart+failure+by+minimally+invasive+aortic+constriction+in+mice%3A+reduced+peroxisome+proliferator-activated+receptor+gamma+coactivator+levels+and+mitochondrial+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Cardiovasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Induction of heart failure by minimally invasive aortic constriction in mice: reduced peroxisome proliferator-activated receptor gamma coactivator levels and mitochondrial dysfunction.</a> J Thorac Cardiovasc Surg. 141 (2), 492-500 (2011).</li>
<li>Li, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+Cardiac+Morphological+and+Functional+Changes+in+Mouse+Model+of+Transverse+Aortic+Constriction+by+Echocardiographic+Imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Assessment of Cardiac Morphological and Functional Changes in Mouse Model of Transverse Aortic Constriction by Echocardiographic Imaging.</a> J Vis Exp. (112), (2016).</li>
</ol>

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

ロックマンらは、心臓に圧負荷を研究するための方法として、大動脈結紮するための第1の方法を考案しました。これは、高血圧や心不全1の細胞および分子の結果を明らかに開始するための研究を可能にしました。改良された方法、低侵襲横断大動脈狭窄（MTAC）は、従来の横断大動脈狭窄9の欠点がない、左心室圧負荷および心不全の誘導のために適し、時間依存性の方法を提供します。手順自体は簡単とTACと比較して増加した生存率と有意により行うことができます。この方法の主な利点は、それが大動脈狭窄実験の性能を可能にするが、同じまたはより良い結果のために大幅に少ない機器、外科技術、および動作時間のことです。 TACの手順で開胸法は、グラムを有効に行いますreaterアクセス​​と心臓や血管の全体のより良い眺め。潜在的な利点は、それが容易にそのような右心室圧負荷又は大動脈弓のバンディングが行われると同時に、虚血状態のために冠動脈結紮のための肺動脈狭窄の性能などの他の手順と組み合わせて実施することができることです。逆に、...

<html>この記事の全体的な目的は、マウスの大動脈狭窄（TAC）は、より単純で好都合手術を生産するように改変することができる方法を横断実証することです。 TACは、1991年1に導入され、操作ゲノム2、3、4、5、6を特に小動物において、左心室および心不全に肥大につながる細胞および分子経路を研究するために分子生物学を有効にしました。所望の圧力過負荷の製造におけるその有効性にもかかわらず、技術は、最終的手順を行う際に、その低い生存率により困難によって制限されます。 TACを行う外科医は、気管内挿管、開胸術を実行することができ、および肺虚脱1を防止するために人工呼吸を使用しなければなりません。 コンテンツは&quot;&gt;多くの場合、簡単かつ低侵襲性の方法が望まれている。その結果、低侵襲横断大動脈狭窄（MTAC）は3を考案した。結果（具体的には、左心室肥大）が同じであるが、手順が有意に少ない装置を含みます動物へとダメージが少ない。MTACが90％以上の大きな生存率を、持っている、とだけ15〜25分の動作時間を持つことが望ましい方法であることが判明している。成功した手術後の死亡のまれな例があまりにに起因することができます驚異的な左心室過負荷や、腎臓などの重要な臓器への血液供給の致命的な減少をもたらす大動脈弓の-tightくびれ、。 手順が完了した後、心エコー検査は、バンディングおよび心臓形態および機能の成功を評価するために使用することができます。高周波超音波システムは、直径を測定し、左右の変化を流すために利用することができます頚動脈、ピークフロー速度測定のための大動脈弓の狭窄を可視化するため、および左心室壁の厚さと機能パラメータ7,8を決定します。安楽死の後、器官はまた、ヘマトキシリン及びエオシン染色およびピクロシリウスコラーゲン染色で組織病理学的研究のために収集することができ、後者の線維を観察するために特に有用です。

<table><tbody><tr><td>1インチ30ゲージニードル</td><td>BD、Franklin Lakes、NJ 07417、米国。</td><td>305128</td><td>手順およびFigure 1</td></tr><tr><td>27 Gauge Needle</td><td>BD, Franklin Lakes, NJ 07417, USA.&nbsp;</td><td>301629</td> スペーサー6/0 DafilonB. Braun、34212 Melsungen、ヘッセン州、ドイツ<td>のために鈍く滑らかにします</td></tr><tr><td></td><td>。</td><td>C0933066</td><td></td></tr><tr><td>6/0 Silkam</td><td>B. Braun、34212 Melsungen、ヘッセン州、ドイツ。</td><td>C0762067</td><td></td></tr><tr><td>Sterile gloves</td><td>A.R. Medicom, Inc (Asia), 香港.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>コットンアプリケーター</td><td>Mannings、採石場湾、香港。</td><td></td><td>Local Shopping</td></tr> <tr><td>CenterDepilatory Cream</td><td>Veet(香港)、Kwun Tong、九龍、香港</td><td></td><td>Local Shopping Center</td></tr><tr><td>Lexer-Baby Scissor</td><td>FST、ブリティッシュコロンビアV7H 0A6、カナダ。</td><td>14078-10</td><td></td></tr><tr><td>Curved Iris Forcep</td><td>FST、ブリティッシュコロンビア州V7H 0A6、カナダ。</td><td>11065-07</td><td></td></tr><tr><td>Micro Olsen-Hegar Needle Holder</td><td>WPI, Sarasota, FL 34240, USA.&nbsp;</td><td>501989</td><td></td></tr><tr><td>Stereo Micrioscope</td><td>WPI, Sarasota, FL 34240, USA.&nbsp;</td><td>PZMIII-BS</td><td></td></tr><<tr><td>strong>GenTeal Eye Gel</td><td>Novartis, East Hanover, NJ 07936, USA.&nbsp;</td><td></td><td>Local Pharmacy</td></tr><tr><td>Heating Pad</td><td>Kent Scientific Corporation, Torrington, CT 06790, USA.&nbsp;</td><td>DCT-20</td><td></td></tr><tr><td><強力>手術テープ</強力></td><td>実験動物ユニット</td><td></td><td></td></tr><tr><td><強力>ケタミンおよびキシラジン</強力></td><td>実験動物ユニット</td><td></td><td></td></tr><tr><td><強力>ベタジン</強力></td><td>実験動物ユニット</td><td></td><td></td></tr><tr><td><強力>ブプレノルフィン</強力></td><td>実験動物ユニット</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

マウスにおける低侵襲横大動脈狭窄

Minimally Invasive Transverse Aortic Constriction in Mice

低侵襲性の横大動脈狭窄（MTAC）は、標準開胸横大動脈狭窄（TAC）より、マウスにおける横大動脈の狭窄のためのより望ましい方法です。横方向の大動脈狭窄は、左心室における高圧の誘導のための機能性に優れた方法であるが、それは気管挿管と人工呼吸の使用のために、より困難で長い手順です。 TACは、新しい方法、MTACとして、しばしばも少ない存続可能ではありません、どちらも換気セットアップで肋骨と肋間筋の切断や気管挿管を必要とします。胸腔にアクセスするために開胸とは対照的にMTACでは、大動脈弓は、前首の正中切開を介して到達されます。甲状腺は、胸骨切痕を明らかにするために引き戻されます。胸骨はその後、第2リブレベルに削減され、大動脈弓は、結合組織と胸腺を分離することによって、単純に到達します。からそこに、縫合糸は、アーチの周りに包まれ、スペーサで結ばれ、その後、胸骨カットし、皮膚を閉じることができますすることができます。 MTACは、左心室の高血圧症を誘発するより速く、より侵襲性の低い方法であり、ハイスループット研究の可能性を可能にします。狭窄の成功は、大動脈弓と左右の頸動脈血管の寸法の流速を決定するために、高周波経胸腔心エコー検査法、特にカラードップラーとパルス波ドップラーを使用して確認することができ、かつ左心室機能と形態。成功したくびれはまた、間質および血管周囲線維症の心筋細胞肥大などの重要な組織病理学的変化を、トリガされます。ここでは、MTACの手順は、頸動脈中の得られた流れの変化は、心エコー検査、全体の形態、および心臓内の組織病理学的変化に調べることができる方法を示す、記載されています。

MTACは、タイムリーに、左心室の大幅な高血圧の誘導を可能にします。 ポリウレタン管を適所に曲げられて保持されるように4 30ゲージ針- 図1に見られるように、プロシージャのための主要なツールの製造は、2を必要とする、シンプルで最小です。外科手術自体はTACと比較して、容易に行うことができるように、また、より複雑です。甲状腺が後退された後、胸骨を切断し、胸腺のビューをクリアするために移動されます。大動脈弓は、ライゲーション工程（ 図2）のために容易に配置可能です。 MTACは確実に連結したマウスでは、左心室圧負荷を生成します。くびれ横大動脈を明確Wとして、 図3Cに見られるように図3は 、明らか...

気管挿管と人工呼吸器の使用を排除しながら、低侵襲性横大動脈狭窄（MTAC）は、通常の横方向の大動脈狭窄（TAC）の必需品を節約します。これは、特に翻訳研究における左心室過負荷のハイスループット研究のために非常に望ましい方法であることが分かります。

Minimally invasive transverse aortic constriction (MTAC) is a more desirable method for the constriction of the transverse aorta in mice than standard ...

この手順の全体的な目的は、人工呼吸器を必要としない簡便な手術手順で横大動脈弓を狭窄させ、左室肥大を誘発することです。この手法は、心筋リモデリング、心肥大、アポトーシスと線維化、および左室圧負荷状態に関する循環器分野の重要な疑問を解決するのに役立ちます。本手法の主な利点は、人工呼吸器と気管挿管の必要性を排除しつつ、通常の横大動脈狭窄術の要点を維持している点にあります。処置を開始する前に、持針器を使用して30ゲージの針2〜4本の先端を湾曲させ、それぞれを綿棒に取り付けます。次に、27ゲージの針の先端を鈍化させ、持針器を用いて先端を90度に曲げます。その後、硬い表面で先端を平らに整え、0.4 millimeterのスペーサーを作成します。足指へのピンチ刺激に対する反応がないことを確認して適切な鎮静レベルであることを確認した後、動物の眼に軟膏を塗布し、マウスを37 degrees Celsiusに加温したヒートパッドの上に仰臥位で置きます。手術用テープを用いて四肢をヒートパッドに固定します。次に、アルコールおよびポビドンヨード溶液のワイプで皮膚を3回連続して消毒し、手術部位を露出させた滅菌ドレープを動物に被せます。結紮処置を開始するために、滅菌スカルペルを用いて、首と胸の中線位置で皮膚を切開します。次に、解剖顕微鏡下で鈍端剪刀を使用し、結合組織を慎重に分離して甲状腺を頭側へ牽引します。曲針を用いて、気管の中線にある筋肉層を動物の両側に向けて分離し、鈍端剪刀で胸骨を第2肋骨まで約5 mm切断します。曲がったピンセットで切開部を広げ、曲がった針を用いて胸腺葉と下胸壁を分離します。この時点で、横大動脈弓と2本の頸動脈が明確に確認できます。曲がった針を弓の下に配置し、その先端を用いて血管壁と反対側の結合組織の間に穿孔を作成します。針を用いて大動脈弓の下に6-0モノフィラメント縫合糸を配置し、あらかじめ用意したスペーサーをループの中に挿入します。二重結節で縫合糸を固定し、スペーサーをそっと取り除きます。結節が適切に締まったことを確認した後、縫合糸の端を切り、6-0シルク縫合糸を用いて単純結節縫合で胸壁を閉鎖し、続いて6-0モノフィラメント縫合糸を用いて連続縫合で皮膚を閉鎖します。次に、縫合部位にポビドンヨード溶液を塗布し、動物を予熱したケージに戻して、回復および術後モニタリングを行います。1週間後、実験動物の足裏に電極用ゲルを塗布し、電極を装着した37 degrees Celsiusに加温したヒーターパッドにテープで固定します。続いて、マウスの胸部に超音波用ゲルを塗布し、高周波超音波診断装置でBモードを選択します。40 MHzのMS550Dプローブを用いて、左心室を特定します。次に、Mモードで収縮期および拡張期の壁厚を測定します。Bモードに戻り、分枝点より手前の左総頸動脈を特定し、パルス波ドプラおよびカラードプラを用いて血流を評価し、必要に応じて後で解析するために画像を保存します。動物固定台を左端まで傾けてマウスを左側臥位にし、プローブを胸骨傍部位の頭部と平行な位置から30度のオフセットで配置します。x軸およびy軸のトルクを調整して大動脈弓を探し、カラードップラーモードを用いて狭窄部位をより鮮明に可視化させながら、狭窄箇所を特定します。パルス波ドップラーおよびカラードップラーを用いて、大動脈弓から分枝する2本の総頸動脈の間を血液が流れている地点で、最高血流速度を測定します。その後、動物を腹臥位でヒーティングパッドの上に置き、完全に回復するまでモニタリングを行いながら回復させます。低侵襲横行大動脈縮窄術（MTAC）は、結紮したマウスにおいて、横行大動脈の明らかな縮窄と縮窄部位におけるピーク血流速度の上昇を伴う左室圧負荷を確実に誘発します。対照的に、シャム手術を施した動物では、明らかな縮窄は見られず、ピーク血流速度は正常です。結紮の結果、右総頸動脈では血流速度が著しく上昇し、上行大動脈および心臓内に圧力が蓄積して左心室肥大が誘発され、その結果、左総頸動脈の血流が著しく減少します。対して、偽手術を行ったマウスでは、左右の頸動脈でほぼ同一の血流が観察されます。得られた肥大関連パラメータは、MTAC結紮マウスの著しく拡大し変形した心臓、および生存率の低下として容易に観察されます。これらの変化は細胞レベルでもさらに観察され、非結紮動物と比較して、MTACマウスでは心筋細胞のサイズ増大と線維化が認められます。この手法に習熟すれば、適切に実施することで5分から10分で完了させることができます。この処置を行う際は、血管を損傷させないよう注意することが重要です。このビデオを視聴することで、人工呼吸器を必要としない簡便な手術手技を用いた、大動脈弓横断的狭窄による左心室肥大の誘発方法について十分に理解することができます。

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医学

マウスの横大動脈狭窄（TAC）は、心肥大や心不全の開発の基礎となるメカニズムを研究するために一般的に使用される実験的なモデルです。ここで、我々は、マウスの心肥大の再現性の学位を作成するために大動脈を収縮する手順を説明します。...

マウスの横大動脈狭窄

このビデオでは、圧力過負荷による心不全を調べるために、マウスの低侵襲横行大動脈狭窄の実験プロトコルを示します。...

マウスモデルにおける横方向大動脈弓バンディング:左心室における高圧誘導のためのマウスにおける低侵襲技術

このプロトコルの目的は、非侵襲的B-およびMモード心エコー法およびカラー/脈波ドップラーイメージングを用いて、横方向の大動脈狭窄によって作成された心臓病のマウスモデルにおいて心臓の構造的および機能的変化を評価することです。...

心臓形態学的および心エコーイメージングによって横大動脈狭窄のマウスモデルにおける機能の変更の評価

このプロトコルの目的は、段階的に説明するマウスにおける低侵襲横大動脈狭窄 (TAC) の技術。挿管や一般的に使用される標準的な手順に必要な換気の除去、TAC...

左室肥大の誘導マウスにおける低侵襲の横大動脈狭窄のテクニック

ここでは、側方開胸による横方向の大動脈狭窄 (TAC) のプロトコルを提案します。この手法は、圧負荷および TAC...

マウスで横方向の大動脈狭窄を誘導するために閉じて胸モデル

このプロトコルは、吸収性縫合糸を有する一過性心筋肥大を得るための改善された方法を提示し、圧力過負荷を除去した後に減少した左心室肥大をシミュレートする。これは、心筋肥大型プレコンディショニングに関する研究のために貴重な可能性があります。.

過渡性心筋肥大を得るために吸収性縫合を用いて横方向の大動脈収縮を操作する

本プロトコルは、自作リトラクターを用いた低侵襲横断大動脈狭窄(TAC)手順を伴う修正され単純化された技術を記述する。この手順は人工呼吸器や顕微鏡なしで行うことができ、圧力過負荷を引き起こし、最終的には心肥大または心不全につながります。...

マウスにおける横行大動脈狭窄の修正技術

トランスジェニックマウスは、遺伝子に生理的機能をascribingで非常に有用であった。一般的にこのような、研究、気道の機能的研究として、具体的には、マウスモデルに向かって顕著シフトを受けています。ここでのプロトコルを提供する...

マウスを用いた気管狭窄のin vitroでの測定で

我々は、小さな金属クリップを用いて上行大動脈の狭窄によってWistarラットにおける圧負荷及び左心室肥大を作成するための段階的な手順を記載している。このモデルは、広範囲に心肥大中にリモデリングの変化を研究するためのそのような変更の退行ための戦略を同定および評価するために使用される。...

圧負荷心肥大モデルの作成のためのラットの大動脈狭窄昇順

主な侵襲的同所性膀胱癌異種移植片を接種するために確立された技術は、開腹手術と膀胱の動員を必要とします。この手順では、マウスに有意な病的状態を負わせる技術的に困難であり、時間がかかる。したがって、我々は、経皮的アプローチは、超音波誘導を利用して、高精度を開発した。...

マウス同所性膀胱異種移植片の最小侵襲性の確立

学ぶ低侵襲横大動脈狭窄法によるマウス左室肥大誘導。人工呼吸器不要のシンプルな手技で心筋リモデリングや心臓線維症を研究し、心血管研究のスループットを向上させる。

マウスにおける低侵襲横大動脈狭窄

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