Name: 組織学的分析のための豚CNSの露出：斬首、スカルオープニングのためのマニュアル、および脳の取り外し (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 38 s
Description: 学ぶ豚の脳と下垂体の摘出技術。頭蓋骨と硬膜を開き、組織学的分析のための標本を採取する方法。神経科学研究における哺乳類脳モデルの活用と倫理的ガイドラインに準拠した手順を解説します。

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著者は感謝の気持ちで夫人トリーン・W・ミッケルセン、夫人リセM.継手、およびPåskehøjgaardのスタッフの巧みな支援を認めます。デンマーク医学研究評議会、ルンドベック財団、ノボノルディスク財団が財政的に研究を支持しました。

動物の麻酔とeuthanesiaは（NIH公開番号86から23まで、1985年改訂）および動物研究倫理のためのデンマークの理事会で承認された「実験動物のケアの原則」に従って行われました。 1.楽器<ol><li>ビデオで提示楽器を収集し、 材料の表に記載されています。 </li></ol> 2.斬首注：麻酔は、ミダゾラムの5mLの（を5mg / mL）およびケタミンを5mLた（25mg / ml）を筋肉内注射することによって誘導しました。動物を深く鎮静されたときに、5~10分後に、耳静脈にカニューレを挿入し、ペントバルビタールナトリウムの致死過剰投与（体重の100mg / kgのは）（200ミリグラム/ mL）を静脈内投与しました。 Ettrup らによって示されるように、動物が完全に安楽死させたことを確実にするために、インターデジタル疼痛反射を試験しました。 （2011）20。で説明したように、完全な安楽死が確保されました倫理ステートメント上記とEttrup らによって実証されるように、等張生理食塩水の5 Lとtranscardial灌流、続い。 （2011）20。すべての立証手順は、長期的な麻酔と術後生存のために必要な福祉予防策の必要性を排除、死後に行われます。 <ol><li>ちょうど下顎角（ 図1A）の下、外科用メスを用いて、高い円形頸部切開によりブタを斬ります。 </li><li>骨脊柱は約頭頸接合部のレベルに到達するまで、依然として外科用メスを用いて、喉頭及び食道を含む頸部の軟組織を通って前方切開を続けます。 </li><li> （アトラスの前方円弧上に、頭頸接合部の前側からの外科用メスで切断を進め、そして前方atlantooccipital膜を通って、それによって脊柱管および脊髄を露出図1B）。同時に、頭蓋底と第一頸椎の間のアクセスを容易にするために豚の頭から離れ豚の体を引っ張るためにアシスタントをお願いします。 </li><li>硬膜嚢および脊髄（ 図1B）を介して外科的切開を続けます。脊髄の完全な横断面が達成されることを保証するために特別に注意してください。 注：前の手順を実行に失敗すると、断頭プロセスの次のステップの間に、脊髄や脳に不要な牽引力になることがあります。 </li><li>強制的セクションレベル（ 図1C）にcranocervical接合を拡張します。これと同時に、後頭顆とアトラスの上部関節プロセスの間に関節を解放する部分に残りatlantooccipital靭帯を外科用メスを使用します。身体から豚の頭を区切ります。 </li></ol><img alt="図1" src="/files/ftp_upload/55511/55511fig1.jpg" style="font-size: 14px;" /> 図1：ミニブタ断頭。 （A）ネック切開（矢印、下顎角）。 （B）頭頸接合部におけるatlantooccipital靭帯および硬膜-囲ま脊髄（SC）を介して切開（C1、アトラスの前方アーク; OC、後頭顆）。 （C）atlantooccipital関節の後方部分は、セクションレベルで強制的伸長（矢印）によって解放されます。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55511/55511fig1large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> 3.スカルオープニング<ol><li>テーブルの上に豚の頭を置きます。 </li><li>の後方部を介して皮膚と頭の頂点を超える鼻の奥から、根本的な軟部組織を通る外科用メスで背側縦切開を行い、そしてダウン後頭部。 </li><li>外科用メスを用いて最初の切開の側方に位置する軟組織を除去することにより頭蓋骨の背側及び後方部分を露出させます。 </li><li>外科用メスで頭蓋骨（ 図2A）から両側頭筋を放出します。後部後頭部の骨が軟らかい組織を除去していることを確認します。 </li><li>ケリソン骨パンチと骨骨鉗子と後頭骨を除去し、硬膜に覆われ小脳（ 図2B）を露出させるために大後頭孔の後方入口を使用します。 </li><li>ちょうど目の前で、頭蓋骨の露出前面側に戻り、前頭骨のエントリポイントを選択します。この時点で、頭蓋骨を貫通して前頭洞（ 図2C）を入力するためにハンマーで骨チゼルを使用します。 </li><li>薄い、骨の骨鉗子や骨パンチと外側の頭蓋骨のラミナのdorsoposterior除去を促進し、内部が露出するように前頭洞の範囲を使用します大脳（ 図2D）を覆う骨頭蓋骨ラミナ。 </li><li>穏やか硬膜覆われ大脳（ 図2E）を露出させるためにハンマーや骨チゼルと前方内側骨頭蓋骨ラミナを開きます。 </li><li>横硬膜に覆われ大脳および小脳（ 図2F）の既に露出した部分の間に位置する頭蓋骨の最終dorsoposterior一部を解放するために時間と頭頂骨を通して骨チゼルおよび骨骨鉗子を使用して、骨の除去を続けます。 注：それは1がドアを開くと同じように、片側からの残りの後部頭蓋骨をこじ開けるためにノミを使用して、この手順の最後のステップの間に、しばしば可能です。 </li></ol><img alt="図2" src="/files/ftp_upload/55511/55511fig2.jpg" style="opacity: 0.9; font-size: 14px;" /> 図2：ミニブタの頭蓋骨の開口部。 （A）dorsoposterioの露出を後頭部と時間の筋肉の除去を含むRの頭蓋骨の表面、。 （B）後頭骨の除去（CB、硬膜に覆われ小脳; OB、後頭骨; OC、後頭顆、およびSC、脊髄）。 （C）ハンマーと骨チゼルが前方頭蓋骨を貫通するように、目のレベルで前頭洞を入力するために使用されます。 （D）前頭洞（FS）の程度は、（2）大脳を覆うインナー薄い骨の薄層を露出する、（1）外側の厚い頭蓋骨を除去するために使用されます。薄い骨ラミナの（E）の除去、硬膜に覆われた大脳（矢印）を露出させます。 （F）最後に 、ハンマーと骨チゼルは、横方向に前方及び後方の頭蓋骨の開口部を接続するために使用されます。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55511/55511fig2large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> 4.脳Removアル<ol><li>硬膜を持ち上げ、微細外科用メス（ 図3A）を用いて静脈上矢状静脈洞に近い穏やかな切開部を作成するために、外科用鉗子を使用します。 </li><li>さらに、脳の背側表面を覆う硬膜を開くために、マイクロシザーまたは硬膜ナイフを使用します。 注：小脳テント（図3B）に対応した硬膜を除去する際、この硬膜葉の保存は、後続の脳の除去を防止するように特別な注意が払わなければなりません。 </li><li>豚の頭垂直（ 図3C）を配置します。 </li><li>頭蓋腔（ 図3D）の硬膜に覆わ床から嗅球の鈍的切開によってventroanterior大脳を解放するために、骨チゼルまたはディセクタを使用します。 </li><li>暴露視交叉（ 図3E）セクションに細かい手術用メスを使用してください。下垂体茎と動眼神経を公開してセクション。 </li><li> LOを区切ることにより、腹側脳幹をリリース細かい手術用メスでWER脳神経（ 図3F）。この硬膜葉が他の解放プロセス中に脳幹を切断れるように硬膜小脳テントを完全に、（ 図3B）切開したことを確認してください。 </li></ol><img alt="図3" src="/files/ftp_upload/55511/55511fig3.jpg" style="font-size: 14px;" /> 図3：ミニブタの脳の除去。 （A）外科鉗子及び硬膜ナイフで硬膜開口。 （B）ケア完全大脳および小脳の間に位置する硬膜葉（矢印）を切開するように注意しなければなりません。 （C）ブタヘッドは、頭蓋底構造のよりよい視覚化のため、重力が脳の意図された変位に役立つようにするために垂直に配置されています。 （D）切開または骨チゼルは硬膜-covereから平滑部により嗅球を緩和するために使用されD頭蓋底。 （E）切開は、視交叉（矢印）、漏斗状茎、および動眼神経の露光及び切片のための頭蓋底に沿って後方方向に継続されます。 （; IV、滑車神経、III、動眼神経V、三叉神経、及びVIは、外転神経）は、脳幹の腹側表面から離れるように（F）は、脳の放出は、下部脳神経のセクションで完了する。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55511/55511fig3large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> 5.下垂体除去<ol><li>頭蓋骨床（ 図4A）における下垂体茎及びその周辺硬膜葉（diapragmaのsellae）を識別する。 </li><li>微細な外科用メス（ 図4B）を使用して下垂体茎に硬膜葉横に切開。 </li><li>ピットを解放するために解剖器具を使用して、uitary及び下垂体窩（ 図4C）から持ち上げ。 </li></ol><img alt="図4" src="/files/ftp_upload/55511/55511fig4.jpg" style="opacity: 0.9; font-size: 14px;" /> 図4：ミニブタの下垂体除去。 （A）下垂体窩（*）は、頭蓋骨の床で識別され（1、嗅球; 2、光学視交叉;及びPF、後頭蓋窩）。 （B）硬膜被覆（トルコ鞍diagphragm、（矢印））を横方向に切開されます。 （C）下垂体（矢印）は、解剖器具を用いて放出され、下垂体窩の外に持ち上げられます。スケールバー（AC）は、10ミリ=。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55511/55511fig4large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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</ol>

著者は、開示することは何もありません。

ほとんどの実験的神経科学の研究は、CNSへのアクセスが薄いskull-と硬膜の厚さによって促進されるマウスおよびラットのような小さな動物種、で実行されています。しかし、ブタ1、4、8、羊32、および非ヒト霊長類のような、より大きな実験動物において、これらの構造のかなりの厚さは、堅牢な器具（材料のテーブル）と頭蓋骨の骨の除去のための適切なエントリポイントの使用を必要とする（ 図2）。 CNSにアクセスすることができ、脳を安全に削除する前に硬膜葉（ 図3及び4）規制の知識が必要です。 損傷から基礎となる脳を保護するように、頭蓋骨の骨除去中に無傷で硬膜を残すことをお勧めします。前transcardial固定20も</su...

<html>ブタにおけるトランスレーショナル神経科学の研究では、過去20年間の間に、ますます人気となっています。ブタの脳の大サイズは、従来の臨床脳イメージャと直接使用及びヒト臨床1、2、3、4、5、6、7、8から神経外科手順および装置の試験の使用を可能にします。過去20年間で、豚、特にミニブタ（ 例えば、ゲッティンゲンのミニブタ）、などの幹細胞移植などの神経調節治療法を、調べるために使用されています。ウイルスベクターのトランスフェクション。パーキンソン病、肥満、うつ病、およびアルツハイマー病2、6、に向けおよび脳深部刺激= &quot;XREF&quot;&gt; 9、10、11、12、13、14、15、16、17。これは、ミニブタCNS 3、18、19、20、21を操作するために定位手術的アプローチの開発が続いてきました。制定CNSの変化は脳撮像（PET 10、13、22、24及びMR 23）、膀胱内圧測定11、12、25、歩行分析を用いて、生きた動物で評価されています17、神経学的評価9、17、及び組織学および立体解析14、15、17、26、27、31に基づいて死後検査。しかし、死後分析が厚く、骨の頭蓋骨と繊維状硬膜カバーは、豚の脳を囲むように、簡単な作業ではありません豚の脳の露出および除去を必要とします。 本論文や教育ビデオの目標は、死後のブタの脳と下垂体は、非電動式手術器具を使用して15〜20分で完全な状態で露出して除去することができる方法を記述することです。ミニブタ下垂体の解剖学的研究のために使用教育ビデオや写真のイラストは、オスのミニブタ（20〜25キロ：6ヶ月、体重、年齢）を示します。

<table><tbody><tr><td>ヘビーメスハンドル#4</td><td>FST(ファインサイエンスツール)</td><td>10008-13</td>皮膚<td>切開と軟部組織の除去に適しています</td></tr><tr><td>非滅菌メスブレード#23</td><td>FST&nbsp;</td><td>10023-00</td><td></td></tr>メス<tr><td>ハンドル#7</td><td>FST&nbsp;</td><td>10007-12</td><td>硬膜切開と精密作業に最適</td></tr><tr><td>非滅菌メス刃 #11</td><td>FST&nbsp;</td><td>10011-00</td><td></td></tr><tr><td>外科用鉗子</td><td>FST&nbsp;</td><td>11024-18</td><td>外科用鉗子の先端がしっかりとしたグリップを確保します&nbsp;</td></tr><tr><td>ケリソンボーンパンチ</td><td>Aesculap脳神経外科</td><td>FF713R</td><td>堅牢でなければならない、噛み合わせサイズ3-5ミリメートル</td></tr><tr><td>骨Rongeur</td><td>Aesculap脳神経外科</td><td>MD615</td>堅<td>牢でなければならない、噛み合わせサイズ15 x 5</td></tr>ミリメートル骨<tr><td>Rongeur</td><td>Aesculap脳神経外科</td><td>FO551R</td><td>堅牢でなければならない、噛み合わせサイズ25×15ミリメートル&nbsp;</td></tr><tr><td>骨のタガネ</td><td>ロートン</td><td>67-0335</td><td>ノミの頭のサイズは20 mmを超えてはいけません</td></tr><tr><td>マレット(ハンマー)</td><td>ミラルコ</td><td>5624108</td><td>ヴァイト 300 g、長さ30 cm、ヘッドヒットエリアサイズ2 x 2 cm</td></tr>マイクロ<tr><td>シ</td><td>ザーFST&nbsp;</td><td>14002-14&nbsp;&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>解剖</td><td>Aesculap脳神経外科</td><td>OL165R</td><td></td></tr><tr><td>G&ouml;ttingen minipigs</td><td>Ellegaard G&ouml;ttingen Minipigs A/S, Denmark</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Euthanimal</td><td></td><td></td><td>Pentobarbital</td></tr><tr><td>Ketamine</td><td>Pfizer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Midazolam&nbsp;</td><td>ハーメルン・ファーマシューティカルズ</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

組織学的分析のための豚cnsの露出：斬首、スカルオープニングのためのマニュアル、および脳の取り外し

Exposure of the Pig CNS for Histological Analysis: A Manual for Decapitation, Skull Opening, and Brain Removal

ブタは、ヒト以外の霊長類への経済的かつ倫理的に実現可能な代替品として大動物翻訳の神経科学研究でますます人気となっています。豚の大規模な脳の大きさは、従来の臨床脳イメージャーを使用すると、人間の診療所から脳神経外科手順および装置を直接使用してテストすることができます。さらに巨視的および組織学的分析は、しかし、豚、中枢神経系（CNS）の死後露光およびその後の脳の除去を必要とします。豚CNSが厚く、骨、頭蓋骨や脊柱によってカプセル化されているので、これは、簡単な作業ではありません。本論文や教育ビデオの目標は、死後のブタの脳とそれに続く肉眼および組織学的分析に適したそのままの状態で下垂体を露出して削除する方法を説明することです。

乾燥から組織材料を防止するためには、巨視的分析が行われた直後の固定剤又は等張食塩水で満たされたジャー中で除去し、脳および下垂体を保管することが推奨されます。組織材料は、等張食塩水に貯蔵に対し、年間の固定液に保存することができるにも冷蔵庫に、経時的に組織崩壊につながります。 無傷のブタの脳は直接凍結28に対して大きすぎる一方除去下垂体は、直接、ドライアイス冷却液2-メチルブタンに浸漬することによって凍結されてもよいです。その代わりに、それは以前にTOTOで凍結し、40μmの厚さの切片5、18にクライオスタットは、区分することができる9〜15ミリメートルの厚さの平行冠状組織スラブに、28を示されているように、ブタの脳をスライスす...

本論文や教育ビデオの目標は、その後の肉眼および組織学的分析に適したそのままの状態で死後のブタの脳と下垂体を露出して削除する方法を説明することです。

組織学的分析のための豚CNSの露出：斬首、スカルオープニングのためのマニュアル、および脳の取り外し

Pigs have become increasingly popular in large-animal translational neuroscience research as an economically and ethically feasible substitute to ...

このビデオでは、頭蓋骨と硬膜を開いて、無傷の豚脳および無傷の下垂体を露出し、摘出する方法を説明します。倫理声明：動物の麻酔および安楽死は、「実験動物ケアの原則」に従って実施され、デンマーク動物研究倫理委員会の承認を得ました。雄のゴッティンゲンミニピッグへの麻酔導入は、ミダゾラムおよびケタミンの筋肉内注射により行いました。5～10分後、動物が深く鎮静された状態で耳静脈にカニュレーションを行い、致死量のペントバルビタールナトリウムを静脈内投与した。動物が完全に安楽死したことを確認するため、既報の手法に従い指間痛反射を確認した。適切に安楽死させた後、動物に5 Lの等張生理食塩水で経心腔灌流を行った。したがって、実演されるすべての手順は死後に実施されており、長期麻酔や処置後の生存に必要な動物福祉上の配慮は不要です。使用器具：4番の大型メスハンドル、および非滅菌の23番メス刃。皮膚切開および軟部組織の除去に適しています。メスハンドル7番と、非滅菌の11番メスブレードを使用します。硬膜切開や精密な作業に最適です。確実な把持を可能にするバイト（噛み合わせ）を備えた外科用鉗子。KAIRison Bone Punch。バイトサイズが3〜5 mmの堅牢なものである必要があります。骨鉗子。繊細な骨操作を行うため、堅牢で噛み合わせサイズが5〜15 mm程度のものを使用してください。また、より大型の骨鉗子も用意してください。厚い骨片を除去するため、バイトサイズは約25 × 15 mmのものを使用します。骨ノミを用います。ヘッドの大きさは20 mmを超えないようにしてください。骨ノミに適したマレット。鋭い先端を持つマイクロシザー。解剖鉗子（ディセクター）。断頭。下顎角の直下で頸部の高い位置に円形の切開を加え、豚の断頭を行う。頸部の軟組織を通って切開を続けます。骨および脊柱に達するまで、喉頭と食道を切断します。位置はおおよそ頭蓋頸椎移行部のレベルになります。頭蓋頸椎接合部の前方側から切開を進め、前環椎後頭膜を貫通させます。これにより、脊髄が露出します。同時に、助手が豚の体を頭部から遠ざけるように引くことで、頭蓋底と第一頸椎の間のアクセスが容易になります。頭蓋頸部接合部を強く伸展させて断頭を完了させる前に、脊髄が完全に切断されていることを確認します。開頭を行います。皮膚および下層の軟組織に沿って、背側正中切開を加えます。吻の後方から頭頂部を経て、後頭部の後方に向かって切開します。最初の切開線の外側に位置する軟組織を除去し、頭蓋骨の背面および後面を露出させます。側頭筋を頭蓋骨から剥離します。後頭骨の後方を軟組織から清掃します。大後頭孔の後方を指標として後頭骨を除去し、硬膜に覆われた小脳を露出させます。頭蓋骨の前方に戻り、眼の直前にある前頭骨に進入点を選定します。この段階で、ボーンチゼルを用い

exposure-pig-cns-for-histological-analysis-manual-for-decapitation

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

遺伝的誘導フェイトマッピング（GIFM）マークと細かい空間的、時間的な制御を持つトラックの細胞...

遺伝子誘導の運命のマッピングへの実践的アプローチ：マークとトラックの細胞へのビジュアルガイドインビボでの</em

本論文では、準備し、維持するために、完全な方法論を提示...

長期増強の非常に安定しており、再現性録音のための改良された準備と海馬マウススライスの保全

周産期の窒息後の低酸素性虚血性脳症は、動物モデルを使用して研究することができます。新生児低酸素性虚血性脳症の子豚モデルを確立するために必要な手順を示します。...

新生児低酸素性虚血性脳症の子豚モデル

麻酔誘発性発達神経毒性（AIDN）研究は、ヒトに広く適用されないげっ歯類に焦点を当てている。非ヒト霊長類モデルはより関連性が高いが、費用がかかり、実験に使用することは困難である。対照的に、仔ブタは、麻酔性神経毒性の研究に理想的な、臨床的に関連性のある実用的な動物モデルである。...

麻酔誘発性発達神経毒（AIDN）研究のための子豚モデルの使用：翻訳神経科学的アプローチ

本研究は、子豚.の生体内で神経伝達物質の活動を監視する酵素法による微小電極アレイ (MEA) 技術の新しい使用法を探るそのグルタミン酸不全麻酔神経毒性のメカニズムに貢献しました。ここでは、麻酔神経毒性の機構解明のための MEA 技術を適応するためのプロトコルを提案する.

そのまま子豚脳内麻酔神経毒性の研究のための微小電極アレイ技術の適応

このプロトコルは、神経科学で一般的に研究されているいくつかの脳領域の完全および解剖における豚の脳の除去のための技術を詳述する。...

家畜豚脳の抽出と解剖

この記事では、豚の水槽マグナに直接カニューレ移植のためのステップバイステップのプロトコルを提示します。<br...

豚のシスターナマグナにおける直接カニューレ移植

マウス中枢神経系の組織学的分析のための便利な重力供給灌流法が提示される。リン酸化α-シヌクレインの免疫蛍光検出は、パーキンソン病のマウスモデルにおいて実証されている。この研究はまた、経心経灌流、解剖、組織凍結/埋め込み、および凍結切片化ステップを包括的に記述している。...

マウス中枢神経系の組織学的解析のための重力供給経心筋灌流法

このプロトコルは、マウスの脳から高純度のシナプトソーム、シナプス小胞、およびその他のシナプス画分を取得するための堅牢で詳細な方法を提供します。この方法は、タンパク質の局在と機能の生化学的分析を含むシナプスプロセスのコンパートメント分解能での評価を可能にします。...

マウス脳からのシナプス成分の単離のための細胞内分画

ここでは、ミニブタモデルにおける軟硬膜下電極アレイの長期的な性能と安全性を評価する方法を提示し、手術方法とツール、術後の磁気共鳴画像法、聴覚皮質の電気生理学、インプラントの電気化学的特性、および死後の免疫化学について説明します。...

ミニブタにおける硬膜下軟性皮質電図(ECoG)アレイ移植と長期皮質記録

このプロトコルでは、生後3か月のデンマークランドレース豚に高速空気圧ドリルを使用して頭蓋切除術を行う方法について説明します。アクセスは前頭骨を介して行われ、腹側硬膜とその下にある大脳半球が明らかになります。この手順により、ブタの脳の大部分にアクセスできます。...

高速空気圧ドリル頭蓋切除術によるブタ脳へのアクセス

学ぶ豚の脳と下垂体の摘出技術。頭蓋骨と硬膜を開き、組織学的分析のための標本を採取する方法。神経科学研究における哺乳類脳モデルの活用と倫理的ガイドラインに準拠した手順を解説します。

組織学的分析のための豚CNSの露出：斬首、スカルオープニングのためのマニュアル、および脳の取り外し

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