2017年3月21日
選択的に標識された蛍光のGnRH-I、-IIおよび-III誘導体は、それらの細胞への取り込みを追跡し、定量化するための信頼性の高いツールです。本稿では、可視化、定量化、および種々の細胞株におけるこれらのGnRHの結合体の取り込み効率を比較するための実験を紹介します。
この手順の全体的な目標は、ヒトがん細胞培養におけるGnRHベースの薬物送達システムの有効性を調査し、予測することです。この方法は、さまざまなヒトがんタイプの細胞がGnRH標的抗がん薬をどれだけ効率的に摂取するかなど、標的抗がん治療分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。この方法の主な利点は、共焦点顕微鏡とフローサイトメトリー分析を同時に使用できる新しい蛍光標識GnRHアナログを使用することです。
この技術の意味は、GnRH受容体がいくつかのがん細胞タイプで高度に発現し、それらの選択的標的化を可能にするため、抗がん治療にまで及びます。その手順を実演するのは、私の研究室の博士課程の学生であるBianka Gurbiです。まず、播種した顕微鏡スライドの7つのウェルのそれぞれから培養培地を取り出します。
次に、予熱された完全培地250マイクロリットルをネガティブコントロールウェルに加え、予熱したGnRH適合種子処理培地250マイクロリットルを残りの6つのウェルのそれぞれに加えます。スライドをインキュベーターで摂氏37度、二酸化炭素5%で5時間インキュベートします。5時間のインキュベーション後、各ウェルから培地を吸引し、細胞を250マイクロリットルのPBSで洗浄します。
続いて、各ウェルに250マイクロリットルの固定溶液を加え、スライドを室温で10分間インキュベートします。細胞が固定されたら、固定液を廃棄し、250マイクロリットルのPBSで細胞を洗浄します。PBSで調製した5マイクロモル蛍光プローブ溶液250マイクロリットルを各ウェルに加え、スライドを室温で10分間インキュベートします。
蛍光プローブ溶液を除去した後、250マイクロリットルのPBSで細胞を2回慎重に洗浄します。最後に、各ウェルに3〜4滴の封入剤を加えます。顕微鏡で画像化されるまで、スライドを室温で暗所に保ちます。
播種した顕微鏡スライドの5つのウェルのそれぞれから培養培地を取り出します。次に、予熱した完全培地250マイクロリットルをネガティブコントロールウェルに加え、未処理の細胞を含むセカンドウェルに加えます。残りの3つのウェルの細胞を、10マイクロモルのGnRH FITCを含む予熱処理培地で前処理します。
スライドをインキュベーターで摂氏37度、二酸化炭素5%で1時間インキュベートします。その後、処理した細胞からのみ培地を取り出し、予熱した完全培地250マイクロリットルで細胞を洗浄します。次に、ウォッシュメディウムを取り出します。
次に、予熱した完全培地250マイクロリットルを3つのウェルのそれぞれに加えます。スライドをインキュベーターで摂氏37度、二酸化炭素5%で1時間インキュベートします。インキュベーション後、5つのウェルすべてから培地を廃棄し、250マイクロリットルのPBSで細胞を洗浄します。
次に、PBSを取り外し、250マイクロリットルの固定溶液で室温で10分間細胞を固定します。次に、固定液を廃棄し、細胞を250マイクロリットルのPBSで洗浄します。各ウェルに250マイクロリットルのブロッキング溶液を加え、スライドを室温で1時間インキュベートします。
ネガティブコントロールを除く各ウェルからブロッキング溶液を吸引します。細胞を250マイクロリットルのPBSで洗浄した後、各ウェルに250マイクロリットルの一次抗体溶液を加えます。スライドを室温で1時間、暗所でインキュベー
トします。5つのウェルのそれぞれから溶液を取り出し、250マイクロリットルのPBSで細胞を洗浄します。次に、PBSを取り出し、250マイクロリットルの二次抗体溶液を加えます。スライドを室温で1時間暗所でインキュベートします。
各ウェルから溶液を吸引し、250マイクロリットルのPBSで細胞を洗浄します。洗浄PBSを取り外し、5マイクロモルの蛍光プローブを含む250マイクロリットルのPBSを各ウェルに加えます。スライドを室温で10分間インキュベートします。
各ウェルから蛍光プローブ溶液を取り出し、250マイクロリットルのPBSで細胞を2回慎重に洗浄します。最後に、各ウェルに3〜4滴の封入剤を加えます。顕微鏡で画像化されるまで、スライドを室温で暗所に置いてください。
倒立共焦点レーザー走査型顕微鏡で細胞を画像化します。488ナノメートルと633ナノメートルのレーザーをオンにします。レーザーの増幅率とピンホールのサイズを確認してください。
ネガティブコントロールサンプルを画像化します。原子核で観測された信号を最適化し、FITCとAlexa 546の信号をゼロに近づけるように調整します。次に、同じパラメーターを使用して、処理されたサンプルを画像化します。
播種した培養プレートの7つのウェルすべてから完全な培地を廃棄します。次に、予熱された完全培地1ミリリットルをネガティブコントロールウェルに加え、予熱された処理培地1ミリリットルを残りの6つのウェルに加えます。プレートをインキュベーター内で摂氏37度、二酸化炭素5%で5時間インキュベートします。
すべてのウェルから培地を廃棄した後、2ミリリットルのPBSで細胞を2回慎重に洗浄します。PBSを取り外し、次に各ウェルに500マイクロリットルのトリプシンEDTA溶液を追加します。プレートを摂氏37度で細胞が剥離するまでインキュベートします(これには約10分かかります)。
1ミリリットルの完全培地を使用して、各ウェルのトリプシンを中和し、プレートを振とうします。その後、穏やかなピペッティングで細胞を懸濁します。懸濁液を別々のFACSチューブに移し、サンプルをGの150倍、摂氏4度で4分間遠心分離します。
上清を慎重にデカントします。次に、500マイクロリットルの氷冷PBSを各FACSチューブに加え、細胞を穏やかに再懸濁します。FACSで分析されるまで、チューブを氷上に置いておきます。
ここでは、咽頭がん細胞におけるGnRHの取り込みの解析を示します。GnRHの蛍光複合体1マイクロモルによる5時間の治療は、咽頭癌細胞に局在する緑色蛍光シグナルとして現れる、わずかではあるが識別可能な摂取をもたらした。複雑な投与量の追加増加は取り込みの増加につながり、咽頭癌細胞におけるGnRH取り込みの用量依存性を実証しました。
肺がん細胞におけるGnRHの受容体依存的な取り込みと、その受容体におけるリガンドの細胞分布を、蛍光GnRH複合体による同時処理と1型GnRH受容体および核の染色により解析した。その結果、1型GnRH受容体は細胞膜と関連しているのに対し、GnRHタンパク質は細胞内に取り込まれ、細胞質内に留まっていることが分かりました。咽頭癌細胞におけるGnRHの取り込みも、FACS分析を用いて研究した。
その結果、細胞を1マイクロモルのGnRHコンジュゲートで処理したときに観察されたGnRHの取り込みは、細胞に適用される用量を10マイクロモルに増やすと強く増加することがわかりました。このテクニックをマスターすると、適切に実行すれば8時間で完了できます。この手順を試みる際には、処理されたサンプルと蛍光色素を直接光から保護することを忘れないでください。
この手順に続いて、GnRH標的薬が特定の種類の癌の増殖をどれだけ効率的に阻害できるかなどの追加の質問に答えるために、細胞生存率やアポトーシスアッセイなどの他の方法を実行できます。この開発後、この技術は、がん治療の分野の研究者が、接着がん細胞におけるGnRHベースの薬物送達システムの有効性を探求する道を開きました。このビデオを見れば、これらの蛍光標識GnRHコンジュゲートを使用して、GnRH標的療法に対するがん細胞の感受性を探る方法について十分に理解できるはずです。
完全なトランスクリプトを表示し、数千本の科学動画にアクセス
この研究は、ヒトのがん細胞培養におけるGnRHベースの薬物送達システムの有効性を調査します。細胞内取り込みを追跡するための蛍光標識されたGnRHアナログを導入し、標的型抗がん療法への洞察を提供します。
This method enables biopharma R&D teams to quantitatively assess the cellular uptake efficiency of GnRH-targeted drug conjugates across diverse cancer models. By combining confocal microscopy and flow cytometry, it provides mechanistic de-risking for GnRH-based therapeutic candidates through direct visualization and dose-dependent quantification of target engagement. The approach supports early-stage target validation and predictive confidence in tumor-selective delivery systems prior to lead optimization.
The method fits within the discovery continuum from target validation through lead identification, enabling data-driven prioritization of GnRH-conjugate candidates based on quantitative uptake and receptor correlation.