Name: マウスの膵臓の組織学的解析と代謝プロファイリングに対する郭清 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 21 s
Description: 学ぶマウスの膵臓摘出法を用いた組織学的解析と代謝プロファイリングの手法。心臓穿刺による終末採血も含む詳細な視覚的手順で、膵疾患研究における正確な組織採取と代謝研究を支援します。

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MAK は、国立衛生研究所からこの作品のサポートを認めている/国立がん研究所許可番号 - 1R15CA152985 01A1。このプロジェクトは、マイアミ大学学部研究賞プログラム、奨学金プログラムとマイアミ大学夏学者プログラムにマイアミ大学博士課程工学部機会によってサポートされています。

ビデオで実施および下記の手順は、機関動物ケアおよび使用委員会 (IACUC) マイアミ大学によって承認されている。
 1。 準備と刺激テスト 手術、手術台、事後操作テーブルの <ol><li>確立する 2 つの明瞭な区域。すべての材料と必要な道具と両方のエリアをステージします。
	出されたボンネットの下 <ol><li>ステージ オペレーティング テーブル。プロシージャの継続的かつスムーズなパフォーマンスを可能にする方法で装備テーブルを配置します</li>。
		<li>は、同じ部屋および操作のメイン テーブルの近くで術後テーブルを確立します。プロシージャ全体で生殖不能の環境として、両方のテーブルを保持します</li>。
	</ol></li> <li>次の場所は、オペレーティング テーブルの上供給: 蓋、1 つ 15 mL チューブ、手術用はさみ、70% エタノール、2 つの発泡ボード、2 つの鉗子、シリンジ 1 mL 21 ゲージ、2 つの 50 mL チューブ、1 つ遠心分離機管の 1 つのスクイズ ボトルの 1 つのペアを 1 つのガラスの瓶、1 つのセラム、4 外科パッド、10 ピン、殺菌ワイプのディスペンサー、シャープス コンテナーします。</li>
	<li>は、後の操作テーブルの上次の消耗品を配置: 1 つ分析的なバランス、液体窒素、浅いワイド 4 L デュワー口デュワー、フローティング チューブ ラック、外科はさみのペアを 1 つ、2 つの鉗子、4 つのセラム チューブのディスペンサー 1滅菌ワイプします</li>。
	<li>ホルマリンで 1 つ 50 mL と 75% のボリュームに 1 つの 15 mL チューブを入力します</li>。
	<li>郭清ボードとしておおよそ 30 cm × 30 cm 発泡ボードに 1 つの外科パッドを貼る各コーナーで pin を使用します。操作中に残りの 4 つのピンを使用します。臓器を手術後テーブルに転送する外科パッドで小さい発泡ボードを準備します 。
	注意: イソフルラン (99.9%) は、有毒化学物質、排出される麻酔ガス 8 の清掃から安全性の最大レベルを確保するため口のフードで使用する必要があります。イソフルランを使用してオープン アンド ドロップ メソッドを使用してに関連付けられている研究者へのリスクに関する追加情報がテイラーとムック 8 記事</li>。
	<li>はガラスの瓶にイソフルラン (99.9%) を数滴に浸す外科パッドを配置し、マウス、イソフルランとの直接接触を防ぐために、上にペーパー タオルを配置します。同様に、残りの管ライン、イソフルランを数滴で吸収し、マウスと、イソフルランとの直接接触を防ぐために上に追加のパッドを配置する外科パッドを使用します</li>。
	<li>注ぐ液体窒素デュワー最大行を埋めるまでに達する浅い広口にします</li>。
	<li>マウスの麻酔に郭清のために選択の場所の部屋の すなわち 〜 1 分のふたで覆われてイソフルラン (99.9%) のいくつかを浸したパッド付きのガラス瓶が値下がりしました 
	注: 今回は、マウスから異なります。マウスが意識、商工会議所から削除し、操作盤の上に配置します</li>。
	<li>は、科学者から離れて指摘した頭と、腹側が横たわっているようにマウスを合わせます。イソフルラン (99.9%) の数滴を浸した外科パッドとライニング管の頭を置き、マウスの刺激に対して反応されるように足ピンチして刺激テストを実行します。
	<ol><li>場合は、このテストは失敗し、足ピンチ テストに対するマウスの応答、手順 1.8</li>。
	</ol></li></ol> 2。初期の切開、心臓穿刺、安楽死 <ol><li>手術の発泡ボードにマウスの四肢をピンし、70% のエタノールでマウスの腹側をウェットします</li>。
	<li>は、ピンセットで尿道口近くの毛皮をピンチし、若干上向きに引き出します。腹腔正中線を尿道口から始まって、あごで終了を手術用はさみで切開を行います。
	<ol><li>鉗子で毛皮の皮の 1 つの側面をつかむ最初の切開部の開始の点の近く、別の切開はさみで下方と斜めに背中足に向かってします</li>。
		<li>は、反対側に同じ方法でこれを繰り返します 。
		注: 毛皮の皮より広い開口部を作成する可能性がありますにピンを必要はありません</li>。
	</ol></li> <li>心を確認し、注射針の目詰まりを避けるために、心臓の周りの膜である心膜を取り外します。
	<ol><li>は、鉗子で心膜をつかんで、はさみでカットします。慎重に鼓動する心臓に注射針を挿入して心臓穿刺を行い、ゆっくりとピストンを撤回する開始します</li>。
		<li>最適な採血、心臓のポンプ作用を模倣し、あまりにもすばやく描画を避けるために針のプランジャーを使用します 。
		注: 通常約 1 mL の血液を収集することができます</li>。
		<li>血のコレクションを完了すると、遠心管とシャープス コンテナーにシリンジの処分に血を払拭します</li>。
		中心部を接続する添付ファイルを削除することによって安楽死実施 <li>心臓穿刺の実行後です 。
		注: ヘパリン、抗凝固剤は、この特定における血清コレクションの凝固する血を許可する心臓穿刺する前にこの手順で注射器に追加されませんでした。しかし、研究者は、プラズマを収集するために血液凝固を防ぐために場合は、ヘパリンに追加でした心臓穿刺前にシリンジします</li>。
	</ol></li> <li>研究には、マウスの遺伝子型が含まれている場合耳の部分をハサミでチョキンし、遺伝子型検証用遠心管に配置します</li></ol>。
 3. 膵臓領域抽出 <ol><li>マウスの左側にある胃を検索します。優しく (避けるために引き裂く) 開始 2 つの鉗子を使用して胃と十二指腸と膵臓を切り離すします 。
	注: 胃や腸から膵臓をデタッチする際、非常に重要な臓器から膵臓組織をガイドしていない粉砕したり、鉗子で膵臓を引き裂く優しく鉗子を使用は。
	<ol><li>小腸の空腸および回腸のセクションから膵臓を分離し続けると最後に大腸の盲腸から</li>。
	</ol></li> <li>、盲腸で鉗子を再配置および直腸に向けて残りコロンに沿って膵の分離を続行します 。
	注: この時点ではカットし、胃から結腸、直腸の直前の領域部分を削除すると便利です</li>。
	<li>膵臓と脾臓を添付します。マウスの右側に向かって膵臓をスライドさせます。隣接脾臓と膵臓を完全にデタッチする鉗子で膵臓と胸腔内の残りの関係を区切ります</li>。
	<li>は、膵臓を外し、検査のためにそれを広げ。識別目的のため膵臓に接続されている脾臓を残します。
	<ol><li>削除すべて結合組織、膵臓からの脂肪および腸間膜の組織 。
		メモ: この組織は色白く、こうして色でピンカーは、膵臓の組織から簡単に区別することができます。これは、膵臓を全削除する必要がある場合に特に重要です。たとえば、膵臓が圧迫され、体重と動物のグループ間比較する必要があります。Ptf1a cre/+;LSL Kras G12D/+ マウス モデル古いヶ月で特に硬線維性膵組織が存在する可能性があります。この場合、腫瘍組織で腸がインター レースにすると膵臓を慎重に除去を実施する必要があります。高度な場合は、異常な脾臓と肝臓組織もあるかもしれない</li>。
	</ol></li> <li>必要に応じて、この時点で他の臓器を削除します</li></ol>。
 4 データの収集とストレージ <ol><li>臓器の抽出後、サンプルを保全のため術後のエリアに移動します。</li>。
	<li>各器官の重量を量るし、彼らのそれぞれのセラムにそれらを配置します 。
	注: ウィットに沿ってh 質量今後の参考のため、各サンプルの任意の不正を記録すべきです</li>。
	<li>器官の重量を量ったが、一度スナップ凍結用液体窒素にそれらを配置します</li>。
	<li>凍結、スナップ後長期保存用-80 ° C で臓器を格納します</li>。
	<li>は一晩、ベンチ上ホルマリン保存サンプルを配置し、次の朝は 70% エタノールにホルマリンからのソリューションを変更します 。
	注意: これらのサンプルは、長期保存のための 4 ° C で保存する必要があります</li>。
	<li>長期保存、凍結-80 ° C で血と耳パンチ。血液から血清コレクション、30 分の凝固し、それを遠心血液を許可します。ピペットを使用して血清部分を削除し、-80 で格納 ° C</li>
</ol> 5。クリーンアップ 殺菌ワイプ <ol><li>サニタイズすべての解剖ツール。キャップ、イソフルランの管は手術パッドを浸した。新鮮な外科パッドと発泡ボードの外科パッドを交換してください。処分施設ごと採取されなかったマウスの部分 &#39; s 動物処分ポリシー</li>。
</ol>

<ol><li>Fesinmeyer, M. D., Austin, M. A., Li, C. I., De Roos, A. J., Bowen, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+in+Survival+by+Histologic+Type+of+Pancreatic+Cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Epidemiol+Biomarkers+Prev%22%5BJournal%5D)">Differences in Survival by Histologic Type of Pancreatic Cancer.</a> Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 14 (7), 1766-1773 (2005).</li>
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</ol>

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既存のメソッドの意義 マウス解剖の他の非公式の動画が存在している間このビデオ説明が最初のプロの品質、査読、郭清10 でマウスの膵臓の収穫抽出に必要な詳細な手順のすべての視覚的なデモ.代謝とインスリンの主な器官をされている膵臓に生産、郭清と膵の収穫を生理的特性11の保存のためことができます。膵臓を分離することによって、サンプルの将来の分析を行うことができます。この手順は、比較と同じ時間枠の内で同じ生体内の他の組織からの相互作用の研究。
技術の限界 このプロシージャの最大の制限は、マウスの生命、縦コレクションを防ぐと同じマウスから複数の組織サンプルのサンプリングの終了です。断面人口は年齢、性別、または他の量指定子の動向を分析するためには実装する必要が膵臓癌の代謝性バイオ マーカーの研究を行った。このプロトコルのもう一つの制限は、プロシージャを一時停止することができないことです。Euthanization が開始さ...

マウスはヒト膵癌1,2の重要な動物モデルとして登場しました。Ptf1acre/+;LSL KrasG12D/+マウス モデル、クリステンの膵臓、膵上皮内テロメラーゼ (PanINs)、その進歩と呼ばれる、膵臓の病変の開始に終って専らラット肉腫 (K ‐ Ras) 遺伝子が有効膵膵管癌は、一般的には PDACs3と呼ばれます。このマウス モデル システム、ヒト膵癌4、5生活や頻繁に PDAC に進捗状況の最初の 5 ヶ月以内、PanINs が出てくる追加の利点の最高の動物モデルの 1 つ、単一の年4、560-70 歳が人間の膵臓癌が最もよく起きるに対し。
Ptf1a から郭清による膵臓抽出cre/+;LSL KrasG12D/+パニン ・早期から進行 PDAC3,4まで様々 な年齢でのマウスは、膵臓癌の開発の詳細縦断的組織学的検討,5. 5 個から 15 ヶ月に至るまでの年齢層で膵臓の収穫も、準備組織健康から病気にかかったティッシュへの移行中に発生する膵4代謝の世界の変化の特徴を抽出する使用ことができます6,7。
この記事では、マウスの膵臓領域抽出の実行に必要な手順の完全な視覚的なガイドを提示し、膵臓がさらなる分析のための保存のためのガイドラインを提供します。個人を含む、その他の膵疾患の研究を行って I 型糖尿病、特に学生やマウスの膵臓を使っての収穫を含む研究に新しい捜査に役に立つはずのこのガイドは均等に貴重になりますメタボリック ・ プロファイリングまたは組織学的解析の郭清。

<table><tbody><tr><td>ガラス瓶&nbsp;</td><td>Corning</td><td>3140-150</td><td>ビデオで使用しているガラス瓶は製造中止になりました。&nbsp;これはその代替品です。</td></tr><tr><td>ガラス瓶の蓋</td><td>Corning</td><td>9985-150</td><td>動画で使用しているガラス瓶の蓋は製造中止になりました。&nbsp;これはその代替品です。</td></tr><tr><td>15 mL ファルコンチューブ</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>339650</td><td></td></tr><tr><td>手術用ハサミ</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>9201</td><td></td></tr><tr><td>スクイーズボトル&nbsp;</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>03-409-10DD</td><td></td></tr><tr><td>100%エタノール</td>フィ<td>ッシャーサイエンティフィック</td><td>22-032-103</td><td></td></tr>ホル<tr><td>マリン</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>245-684</td><td></td></tr><tr><td>フォームボードセラ</td><td>パック</td><td>562908</td><td></td></tr><tr><td>鉗子</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>200205SHN</td><td></td></tr><tr><td>1 mL 21GシリンジBD</td><td>バイオサイエンス</td><td>309624</td><td></td></tr><tr><td>50 mL ファルコンチューブ</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>339652</td><td></td></tr><tr><td>2.0 mL 微量遠心チューブ&nbsp;</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>02-681-258</td><td></td></tr><tr><td>サージカルパッド</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>S67011</td><td></td></tr><tr><td>Tピンの長さ:&nbsp; 2"&nbsp;</td><td>アドバンスストア製品</td><td>X32T-05</td><td></td></tr><tr><td>滅菌ワイププロフェッショナル使い捨て</td><td>インターナショナル株式会社</td><td>Q85084</td><td></td></tr><tr><td>シャープスコンテナ</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>14-827-122</td><td></td></tr><tr><td>分析天びん</td>マー<td>シャルサイエンティフィック</td><td>ME-AE200</td><td></td></tr><tr><td>4Lデュワー</td><td>テイラーウォートン</td><td>4LD</td><td></td></tr><tr><td>浅い広口デュ</td><td>ワーフィッシャーサイエンティフィック</td><td>F3087-V</td><td></td></tr><tr><td>フローティングマイクロチューブラック</td><td>VWR60986-100</td><td></td><td></td></tr><tr><td>極低温バイアル1.2 mL、滅菌済み</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>10-500-25</td><td></td></tr><tr><td>イソセシア(イソフルラン)&nbsp;</td><td>ヘンリー・シャイン 動物衛生</td><td>050033</td><td></td></tr><tr><td>液体窒素</td><td>ライト兄弟</td><td>NIT-60-XX</td><td></td></tr><tr><td>マウス クラス株</td><td>ジャクソン研究所</td><td>OO8179</td><td></td></tr><tr><td>マウス Cre 株</td><td>MMRRC</td><td>OOO435-UNC</td><td></td></tr></tbody></table>

マウスの膵臓の組織学的解析と代謝プロファイリングに対する郭清

Dissection of the Mouse Pancreas for Histological Analysis and Metabolic Profiling

膵臓特定のトランスクリプション要因、1 a cre リコンビナーゼ; を調査しています。lox 停止-lox クリステン ラット肉腫、12 のコドンでアスパラギン酸グリシン (Ptf1acre/+;LSL-KrasG12D/+) ヒト膵癌のモデルとしてのマウスのひずみ。私たちの現在の研究の目的は、膵臓癌の進行の新規代謝マーカーを識別するためにです。尿、糞便、血液、膵臓組織の抽出物と癌の進行を舞台に膵臓の組織学的解析のメタボリック ・ プロファイリングを行った。マウスの膵臓人間のような明確に定義された固形臓器ではなく、むしろ簡単にマウス内部解剖学になじみのない個人またはほとんどまたはまったく経験を実施して個人識別はないびまん性分散軟部組織マウス臓器の解剖。この資料の目的は、詳細な測定を提供する郭清によりマウスの膵臓の除去には初心者を誘導する視覚的なデモ。この記事は特にメタボリック ・ プロファイリングまたは組織学的解析のため郭清によってマウスの膵臓の収穫が必要研究に学生や新しい研究者に貴重なする必要があります。

図 1動作環境領域の概要については、図 2のポスト操作領域を示しています。この設定は、機器の最小限の量を提供します、ステージング、個人はこの個々 のニーズに合わせて変更することができます。プロトコルは実験の特定のニーズに合わせて最適化する必要があります。この手順は、マウスの適切な euthanization9を必要とする生活を終了する方法で行われています。研究者は、準備ができて、マウスはイソフルラン浸したパッド (図 3) と麻酔室に配置されます。
マウスが意識、マウスを削除し、基板の背側に配置。つま先ピンチ手順を実行して、マウスが (図 4) の痛みに敏感であることを...

このビデオの記事は、組織学的解析と代謝プロファイリングに対する郭清によってマウスの膵臓を正常に削除に必要な手順の詳細なデモを提供します。

We have been investigating the pancreas specific transcription factor, 1a cre-recombinase; lox-stop-lox- Kristen rat sarcoma, glycine to aspartic acid at ...

このビデオ記事の主な目的は、マウス膵臓の解剖に関する詳細な視覚的手順を提供することです。これらの手順は、ヒト膵疾患のマウスモデルを研究し、組織学的解析や代謝プロファイリングのために解剖によってマウス膵臓を採取する必要がある研究者にとって有用です。また、本ビデオ記事では、心 punctures 手法を用いた終末血採取の実施に関する詳細な手順についても解説します。必要な備品が揃った手術台が表示されています。これらには、蓋付きのガラス瓶1個、15 mLファルコンチューブ1本、手術用はさみ1本、70%エタノールが入った洗浄ボトル1本、フォームボード2枚、ピンセット2本、1 mL 21ゲージシリンジ2本、50 mLファルコンチューブ2本、遠心チューブ1本、クライオバイアル1本、手術用パッド4枚、ピン10本、滅菌ワイプのディスペンサー、および鋭利物回収容器が含まれます。また、必要な備品が揃った術後処置台が表示されています。これらには、分析天秤1台、4Lの液体窒素用デュワー瓶1個、浅型広口デュワー瓶1個、フローティングマイクロチューブラック1個、外科用鋏1本、ピンセット2本、クライオバイアル5本、および滅菌ワイプのディスペンサーが含まれます。安楽死を行うには、まずマウスを、イソフルランを数滴浸したガーゼパッドが入ったガラス瓶に入れ、マウスが意識を失うまで蓋をします。これには通常、約1分かかります。その後、マウスをガラス瓶から取り出し、足指つまみテストを行い、マウスが不快感を感じない状態であることを確認します。足つまみテストに不合格となった場合、足つまみテストに合格するまでマウスをガラス瓶に戻し、蓋を閉じておきます。マウスを仰向けに置き、肢を手術用フォームボードに固定し、マウスの腹側を70% ethanolで湿らせます。ピンセットで尿道口付近の被毛をつまみ、軽く上方に引き上げます。尿道口から始まり、正中線を上がって顎で終わるように、腹腔に切開を加えます。最初の切開の開始点付近で、被毛の一方を掴み、後肢に向かって斜め下方に別の切開を加えます。反対側についても同様の手順で繰り返します。最終的な心穿刺を行うために、心臓の位置を確認します。まず、鉗子で胸骨を掴み、横隔膜を切開します。素早く肋骨に沿って上方へ切開し、切除した部分を取り除いて、拍動している心臓を露出させます。心臓の位置を確認したら、心膜を除去し、シリンジを用いて心臓穿刺を行います。効率的に採血するためには、針のプランジャーを使用して心臓のポンプ動作を模倣し、急いで吸引しすぎないようにしてください。採血した血液を遠心チューブに移し、使用済みのシリンジは鋭利物廃棄容器に廃棄します。心穿刺の後、心臓をつなぐ付着部を取り除いて安楽死させます。マウスの左側にある胃を確認します。膵臓は、胃や十二指腸、および小腸と大腸に沿って付着しており、脾臓にも接している、拡散した淡色の組織として観察されます。ピンセットを用いて、膵臓を胃および十二指腸から慎重に分離し始めます。空腸および回腸の部位から引き続き、膵臓を小腸から分離し、最終的に盲腸および大腸まで分離します。盲腸に達したら、ピンセットの位置を調整し、残りの結腸に沿って直腸に向かって膵臓の分離を続けます。この時点で、胃から直前にある結腸領域までの区間を切除して取り出すのが便利です。膵臓とそれに付着している脾臓を確認してください。膵臓をマウスの右側へスライドさせます。膵臓と胸腔の間の残りの結合部を切断し、膵臓とそれに隣接する脾臓を完全に切り離します。膵臓を取り出して広げ、観察します。必要に応じて、この時点で他の臓器を取り除いても構いません。摘出後、サンプルを術後処置エリアへ移動します。各臓器を計量し、それぞれのクライオバイアルに入れます。観察された異常があればすべて記録してください。臓器をクライオバイアルに入れたら、浮遊式マイクロチューブラックに入れ、液体窒素が入ったデュワー瓶に投入します。急速冷凍後、長期保存のために臓器を−80°Cで保存してください。使用したすべての解剖器具は、滅菌ワイプを用いて洗浄してください。イソフルランを浸したサージカルパッドを入れたファルコンチューブに蓋をします。フォームボード上のサージカルパッドを新しいものに交換します。採取しなかったマウスの部位は、施設の動物廃棄方針に従って廃棄してください。以下の項目は、適切に取り扱う必要があります。これらの項目を正しく保存することで、蛍光顕微鏡観察、ヘマトキシリン・エオシン染色による組織学、免疫組織化学、質量分析、核磁気共鳴分光法など、多岐にわたる実験を実施することが可能になります。膵臓は代謝活性およびインスリン産生の主要な臓器であるため、本手順によって生理学的特性を保存することができます。膵臓を分離することで、そのサンプルを用いて今後の解析を行うことが可能になります。この手順により、同一個体内の同一時間枠において、他の組織との相互作用の比較および研究が行えます。

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以下のプロトコールは、膵臓の仮想スライスイメージングのための解剖、および全体の膵臓内のすべてのGFPタグ付きβ-細胞のその後の定量化のプロセスを概説します。...

マウスにおける膵β細胞の質量のその場定量に

腺房から乳管への化生誘導:3D ex vivo培養における腺房細胞から管細胞への分化を研究する方法

ランゲルハンス単離したマウスの膵島を用いたin vitroβ細胞機能をアッセイすることは、糖尿病の病態と治療薬の研究に重要な要素である。多くの下流のアプリケーションが利用可能であるが、このプロトコルは、具体的にはβ細胞機能を決定する本質的なパラメータとして、細胞内サイクリックアデノシン一リン酸（cAMP）の測定を記載する。...

マウス膵島の単離と細胞内cAMP測定法

ここでは、2型糖尿病のマウスモデルから膵島を分離するためのプロトコル、Leprdb、および2光子顕微鏡を利用した無傷の膵島からのインスリン分泌を測定するための生細胞アッセイの詳細を紹介します。...

LEPR<sup&gt; DB</sup&gt; 2型糖尿病のマウスモデル：無傷の膵島の膵島単離およびライブセル2光子イメージング

ここでは、間葉系細胞の単離に着目し、胚、新生児および成体マウス組織からの膵臓微小環境内の細胞を単離するための方法を記載します。この方法は、膵臓の発達、機能、及び腫瘍形成を調節する外因性シグナルを解明するために、細胞遺伝子発現およびタンパク質分泌のプロファイリングを可能にします。...

フローサイトメトリーによる膵臓間葉の細胞を単離と解析

マウス膵臓内分泌細胞の単一細胞トランスクリプトーム解析

原発の腺房細胞分離、蛋白質の表現や活動の変調、文化、およびダウン ストリーム アプリケーションは ex の豊富有用腺房の上皮化生...

真似をして 3次元細胞培養の膵腺房の上皮化生を操作します。

慢性膵炎(CP)は、しばしば難治性腹痛に関連する膵臓の炎症および線維症を特徴とする疾患である。本稿では、2,4,6-トリニトロベンゼンスルホン酸(TNBS)を用いた胆管注入を介してCPのマウスモデルを生成する技術を改良することに焦点を当てています。...

胆管TNBS輸液による慢性膵炎のマウスモデル

本研究は、膵島の生理学と膵島免疫細胞相互作用の研究に生きた膵臓組織スライスを適用することを示す。...

膵臓の生きた組織スライスにおける膵島機能と膵島免疫細胞相互作用の観察

膵臓の転生細胞は、膵臓腫瘍を引き起こす悪性細胞の前駆体です。しかし、無傷の生膵細胞を単離することは困難です。ここでは、膵臓組織を解離するための効率的な方法を紹介します。その後、細胞はシングルセルRNAシーケンシング(scRNA-seq)または2次元または3次元の共培養に使用できます。...

生存可能な単一細胞を単離するための膵臓組織解剖

このプロトコルは、全膵臓からのマウス内皮細胞の単離を説明しています。...

マウス膵臓内皮細胞の単離

学ぶマウスの膵臓摘出法を用いた組織学的解析と代謝プロファイリングの手法。心臓穿刺による終末採血も含む詳細な視覚的手順で、膵疾患研究における正確な組織採取と代謝研究を支援します。

マウスの膵臓の組織学的解析と代謝プロファイリングに対する郭清

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