2018年2月5日
酸化アルミニウム コーティング ガラスに添付ファイルのN型糖鎖の合成にモジュラー アプローチは、糖鎖マイクロ アレイを開発し、広く中和抗体、HIV のプロファイリングの使用が示されている (ACG スライド) をスライドさせます。
この方法論の全体的な目標は、HIV抗体のヘテログリカン結合を検出するための酸化アルミニウムコーティングガラススライド上に新しい糖鎖マイクロアレイを構築することにより、N型糖鎖の合成に対するモジュール式の化学酵素的アプローチを開発することです。この方法は、多くの開発における細胞ウイルス特異的糖鎖の同定に関する糖鎖生物学における重要な疑問に答えるのに役立ちます。この方法の主な利点は、弱い結合を検出し、HIV患者の抗体などのタンパク質に結合する糖の混合物を同定することです。
この技術の意味は、シアル性異化菌が人間の気道上皮細胞に発現し、症状が出る一方で問題が一般的であるため、インフルエンザ感染症の診断にまで及びます。したがって、グリコアレーは野生サブタイプの特異性を決定するための理想的なツールとなります。この方法は、HIV抗体の糖鎖特異性を内部に提供できますが、表面に印刷されたヒト特異的血清抗原に対するヒト血清抗体の結合パターンに基づくさまざまな癌の診断など、他のシステムにも適用できます。
この手順を開始するには、事前に調製した2〜5マイクロモルの糖鎖と5ミリリットルの丸底フラスコを追加します。フラスコにマグネチックスターバーを追加し、ゴム製のセプタムでキャップします。400マイクロリットルの新たに乾燥させたDMFと10〜25マイクロモルのホスホン酸リンカーをフラスコに加えます。
次に、反応混合物を800rpmで5時間撹拌します。反応が完了したら、ロータリーエバポレーターを使用して、5〜10ミリバールの真空圧と摂氏40度の溶媒を蒸発させます。その後、乾燥させた反応混合物と0.5ミリリットルの水を溶解し、ポリアクリルアミドゲルベッドの上にロードします。
水を使用して製品を溶出し、1〜2ミリリットルの画分を収集します。TLCで収集されたフラクションを確認するには、TLCプレート上の各フラクションを見つけ、プレートを0.25モルのセリウムモリブデン酸アンモニウムに浸します。汚れたプレートをホットプレートで加熱し、製品を視覚化します。
画分を含む製品を組み合わせ、溶液biofolizeを凍結した後、白色粉末として所望の生成物を得る。次に、乾燥させた製品を2ミリリットルの水に溶かし、水酸化パラジウムを加えます。フラスコに水素含有バルーンを取り付け、反応混合物を水素雰囲気下で800rpmで15時間攪拌します。
反応が完了したら、混合物をCelite Bedでろ過し、2ミリリットルのメタノールと2ミリリットルの蒸留脱イオン水で洗浄します。次に、ロータリーエバポレーターを使用して、300ミリバールの真空圧と摂氏40度の溶媒を蒸発させます。その後、クラッド混合物を約1ミリリットルの水に溶解し、ポリアクリルアミドゲルベッドの上にロードします。
製品を水で溶出し、1〜2ミリリットルの画分を収集します。画分を含む製品を組み合わせ、溶液biofolizeを凍結した後、白色粉末として所望の生成物を得る。製品が乾燥したら、酸化重水素を溶媒として使用したenimarおよび質量分析法で製品を特性評価します。
表面陽極酸化のために、温度制御されたインキュベーターを摂氏4度に設定します。次に、事前に調製した0.3モルのシュウ酸水溶液を、マグネチックスターバーを含む500ミリリットルのビーカーに移します。長さ10センチメートルのプラチナロッドをカソードとして溶液に入れます。
陽極酸化プロセス全体を通して、シュウ酸を300rpmで攪拌し続けます。ラボトレーサーソフトウェアで、セットアップボタンをクリックし、次に機能選択のスイープ電圧をクリックします。開始電圧と停止電圧を25.8ボルトに設定します。
ポイントの数は 100、コンプライアンスは 1、スイープ遅延は 1200 ミリ秒です。次に、[OK]をクリックします。cl アルミコーティングされたスライドガラスをカソードに向けて
取り付けます。「run test」ボタンをクリックして、現在の測定値を観察します。表面陽極酸化後、スライドガラスを二重蒸留水で十分に洗浄し、窒素ガスでパージドライします。スライドガラスは、さらに使用するまで相対湿度30%のチャンバーに保管してください。
作製には、すべての一価糖鎖の溶液をエタノールグリコール中に100ミリモル濃度で調製します。糖鎖溶液をプリンティングバッファーで希釈し、100マイクロモル溶液を作製します。ヘテロリガンド研究では、各糖鎖溶液の5マイクロリットルに5マイクロリットルのMAN-5糖鎖を追加します。
調製した糖鎖を384ウェルマイクロプレートに移し、マイクロアレイプリンティングステップを行います。プリンターアレイ技術にマイクロプレートを挿入した後、各アルミニウムコーティングされたスライドガラスに0.6ナノリットルの糖鎖溶液を堆積させることにより、ロボットピンでマイクロアレイを印刷します。次に、70マイクロリットルの一次抗体PG-9と3%BSAを含むPTSBバッファーを調製します。
次に、120マイクロリットルの二次蛍光タグ抗体Donkeyと抗ヒト免疫グロブリンG、および3%BSAを含むPBSTバッファーを暗所で調製します。PG9と二次蛍光タグ抗体を1:1の比率で混合します。次に、プレミックス抗体を摂氏4度で30分間インキュベートします。
インキュベーション後、アルミニウムコーティングされたガラススライドをスライドインキュベーションチャンバーにロードし、スライドインキュベーションチャンバーは16ウェルに分割されます。100 μLのプレミックス抗体を糖鎖アレイに移します。摂氏4度で16時間インキュベートした後、ピペットで糖鎖アレイからプレミックス抗体を取り出し、スライドインキュベーションチャンバーを取り出します。
スライドガラスをPBSTバッファーと脱イオン水で洗浄します。次に、スライドガラスを重力の2000倍でスピンドライします。次に、マイクロアレイ画像解析ソフトウェアを開きます。
ガラス乾燥スライドをアレイスキャナーに挿入し、アレイ化された機能を下に向けてください。設定メニューをクリックします。画像の解像度を 5 マイクロメートル/ピクセルに設定します。
そして、PMT 450で波長を635ナノメートルに設定し、電力を100%に設定しますスキャンボタンをクリックして、スライドのイメージングを開始します。最後に、ファイルアイコンをクリックして、スキャン画像をTIF形式で保存し、画像分析を行います。この研究では、モジュール式の化学療法酵素戦略を用いて、さまざまなN型糖鎖を合成しました。
この戦略の有効性を実証するために、化学酵素法によりバイアンテナ等尺性構造を合成しました。二糖類1の酵素的ガラクトシル化とそれに続く三糖類2のフコース化により、所望の四糖3が得られました。サチル化およびビルディングブロック2および3の末端修飾の減少につき、分子4および5を欲望することを可能にする。
三糖6のモジュール4の立体選択的3O-グリコサリゼーションにより、ヘキサ糖7が提供された。モジュール5の前の脱保護と反応により、脱デカ糖9が得られました。全球的な検出により、enimarおよび質量分析法によって特徴付けられたglycan 10が得られました。
還元末端にペンチルアミンテールを持つ糖鎖をホスホン酸リンカーで修飾し、ホスピニド化学によりアルミニウムガラス被覆表面に付着させた。HIV-1広域中和抗体PG9は、ホモアレイとヘテログリカンアレイを使用して糖鎖特異性についてスクリーニングされ、HIV1 PG120表面のV1/V2ループで隣接するヘテログリカンとの相互作用を初めて実証しました。この手法を習得すれば、適切に実施すれば、糖鎖固定化からベータ解析まで24時間で行うことができます。
この手順を試みる際には、Glycan 10に新たに陽極酸化されたアルミニウムコーティングガラススライドを使用することを忘れないでください。この手順を敷設するために、医療技術者のスライドがあります。炭水化物と目的のタンパク質との間の結合相互作用を定量化するために、体定数の決定を行うことができます。
この技術の開発後、研究者がケニアの感染症における炭水化物の役割をよりよく理解し、病気に対する新しい治療法の開発を支援する道が開かれました。有毒物質を扱うことは非常に危険であり、実験を行う際には衣服、眼鏡、マスクの着用などの予防措置を常に講じる必要があることを忘れないでください。
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この研究は、アルミニウム酸化物コーティングされたガラススライド上でN-グリカンを合成するためのモジュラー化学酵素アプローチを提示し、グリカンマイクロアレイ応用を促進します。この方法論は、HIVブロードリー中和抗体のプロファイリングを通じて実証され、糖生物学におけるその可能性を示しています。
This chemo-enzymatic N-glycan synthesis method enables rapid generation of diverse glycan libraries for microarray-based antibody profiling, addressing a critical gap in detecting weak and heterogeneous glycan-protein interactions relevant to HIV vaccine design. By facilitating the analysis of hetero-ligand binding behaviors of broadly neutralizing antibodies like PG9, the approach supports mechanistic de-risking in early immunogen discovery and improves predictive confidence in antigen selection. The modular strategy provides a scalable, reusable platform for epitope mapping and target validation across infectious disease and oncology pipelines.
The method integrates into the discovery workflow from early target validation through lead identification, enabling glycan-dependent antibody characterization that informs downstream preclinical development.