Name: 新生児マウスからの脊髄ニューロンの単離と培養 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 49 s
Description: 学ぶ新生児マウスから脊髄ニューロンを単離・培養する手法。機械的・酵素的処理により健康なニューロンを得られ、神経生物学研究やストレス応答解析に応用可能です。

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この手技における動物のケアおよび治療は、コロラド大学の動物実験および使用委員会のガイドラインに従って行われた。 1.ソリューションの準備<ol><li> 表1に示すように、すべての溶液を適切な温度で調製して保管します。 </li></ol> 2.コーティングウェルとスライド注：ニューロンはプラスチックやガラスの表面には接着しません。 <ol><li>ニューロンの単離の1日前に、無菌の24ウェル培養プレートのウェルを0.5mLのPoly-D-Lysine（PDL; 表2 ）でコーティングし、それを層流フードO / Nに残す。 注：好ましい方法は、周辺ウェルからの蒸発がより加速され、一貫性のない結果につながる傾向があるため、24ウェルプレートを使用し、中心ウェルのみをコートすることである。さらに、ガラススライドはウェルの前に配置することができますoコーティング。ニューロンは、コーティングされたガラススライドに付着し、後でさらなる顕微鏡画像化のために除去することができる。 </li><li>分離の日に、ウェルからPDLを除去する。残りの水を取り除いて1時間乾燥させる前に、滅菌水で数分間洗ってください（下記参照）。 </li><li>乾燥後、スライドをラミニンで被覆する（ 表2 ）。 注：約10μLのラミニン（10μg/μL）で滅菌24ウェルプレートの各ウェルをコートできます。これは、ウェル全体を覆うために340μLの培地（総容量：350μL）と混合する。これを培養フード内で室温で2時間放置し、次に細胞をコーティングする前に吸引する。 </li></ol> 3.脊髄を収穫する注：すべての機器は、滅菌のためにオートクレーブ（135°Cおよび30 psi、4 x 7 minサイクル）する必要があります。 <ol><li>イソフルランを含むチャンバー内で1〜3日齢のC57BL / 6マウスを安楽死させる。待つ30秒後に動きが止まり、脚をつまんで応答がないことを確認します。 </li><li>ハサミを使って体から頭を離し、腹を立てやすい位置にします。 </li><li>背側を使用者に向けて、手順表の後足または尾と腕を安定させる。 </li><li>湾曲したアイリスはさみを使用して皮膚を切ってください。 </li><li>腰部の腰部から脊髄を切断し、胸部の両側を切断して体から分離させます。 注：これは、他の臓器（ 図1a ）への偶発的な損傷を避けるために内臓からの脊髄の注意深い解離を必要とする。 </li><li>余分な組織を除去するために0.2μmのフィルターで滅菌したリン酸緩衝生理食塩水（PBS）5 mLを含む3 x 10 cmのペトリ皿で10秒間連続して洗浄します。 </li><li>脊柱の尾端にフィルター滅菌したPBS5mLを充填した22Gの針とシリンジを挿入し、経頭蓋に流し、コードto第4ペトリ皿に出る（ 図1b ）。 </li><li>氷上で5 mLのHABG（ 表1 ）を含む15 mLチューブに脊髄を採取する。脊髄を粉砕しないように注意してください。 </li><li>リターの各子犬についてステップ3.1~3.8を繰り返す。 注：理想的には、健康なニューロンの分離を確実にするために、このプロセスは脊髄あたり30分未満かかる必要があります。 </li></ol> 4.分離ニューロン注：次のステップは、層流フードで実行する必要があります。基本的な滅菌技術に精通していることが期待される。 <ol><li> ティッシュミッシング <ol><li>脊髄を含むチューブを軽く振り、組織を懸濁させます。 </li><li>チューブから組織を60 mmのガラスペトリ皿に注ぎ、かみそりの刃でサイコロを振って、〜0.5 mmの大きさの細片を作ります。 </li><li>広口ピペットで組織をHABG 5 mLを含む15 mLチューブに移す。 </li><li>それを30℃の水浴中で30分間インキュベートし、細胞をこの温度で平衡化させた。細胞を振とう器の上に置いて、液体中に浮遊させておきます。 注：このステップは、氷から消化培地への移動時に細胞にショックを与えないようにするために行われます。細胞を30°Cに保つと、37℃での代謝の増加に関連した細胞死を減少させるのに役立ちます。 </li></ol></li><li>消化培地を調製する（ 表1 ）。 </li><li> 密度勾配を準備する（表1）。 <ol><li> 表1に示すように、4つの層を4つの別々の15 mLチューブで準備します。 </li><li>各層から1mLを新しい15mLチューブに加える。一番下のレイヤー1から始めて、上のレイヤー4に達するまで順次追加します。追加中にレイヤーを妨害しないでください。 </li></ol></li><li>ステップ2.2のPDL被覆プレートを洗浄する。残りの水を取り除く前に滅菌水で数分間洗ってください。それらを1時間乾燥させる。 </li><li> 組織を消化培地に移す。 <ol><li> 30℃のシェーカー水浴から組織含有チューブを取り出し、数分間静置する。 </li><li> 37℃の水槽から消化液チューブを取り出し、リールロックシリンジに吸引します。 </li><li>組織含有チューブから余分なHABGを吸引する。 </li><li>シリンジにleur-lock 0.2μmフィルターを使用して、消化液を組織含有チューブに加えます。 </li><li>チューブを30℃のウォーターバスに30分間置きます。細胞を流体中に浮遊させるのに十分なだけ振とうさせる。 注：消化培地に細胞を長時間入れすぎないようにしたり、温度が高くなりすぎて過度の消化を招き、組織がゼラチン状の混合物に浮遊することがないようにすることが重要です。 </li></ol></li><li>この期間中、ステップ2.3と同様にラミニンをコートする。 </li> &lt;粉砕を行う（ すなわち 、細胞を組織から分離する）。 <ol><li> 30℃の振とう水槽からチューブを取り出し、数分間静置する。 </li><li>過剰な消化培地を吸引する。 </li><li> 2mLのHABGに組織を懸濁する。 </li><li>ナローボアピペットを使用して、45分間10倍に粉砕します。 注：これはおそらく単一の最も重要なステップであり、正しく行われていないと収量を大幅に減少させる可能性があります。 <ol><li>組織をピペットに吸引し、直ちに内容物を戻す。 </li><li>空気を導入することは避けてください。生存可能な収率を大幅に低下させます。 注：ピペットは、9インチのガラスピペットで、ピペットの先端を磨いて粗い表面を滑らかにし、クロロホルム中のジクロロジメチルシラン（DMDCS）の1:20溶液中に置き、 / Nその後、ピペットを取り出して風乾させ、その後、滅菌のためにオートクレーブにかけなければならない。 注意：DMDCSとクロロホルムは可燃性が高く、シリコンゴムはフュームフードで使用してください。 </li></ol></li><li>上清の上2 mLを吸引し、「コレクション」と名付けられた新しい15 mLチューブに入れます。 </li><li> 4.7.3-4.7.5の手順をさらに2回繰り返します（細胞回収チューブは最後に6 mLになるはずです）。 </li><li>収集チューブの内容物をステップ4.2で準備したグラジエントチューブにゆっくり移し、グラジエントの混乱を避けます。 </li></ol></li><li>この時点で、冷蔵庫から前もって調製した神経根培地（ 表1 ）を取り出し、37℃の温浴中で温める。 </li><li> ニューロンを精製する。 <ol><li>グラジエントチューブを800 xgおよび22℃で15分間遠心します。 </li><li>ピペットで目的の層を集め（ 図2 ）、新しい15 mLチューブに入れます。最高純度のニューロ（ すなわち &gt; 90％）、層3を集める。純度がより低い（ すなわち &gt; 70-80％）より多くの収率を得るために、層2および3を集める。 </li><li>新たに収集した層に5mLのHABGを加えることによって密度勾配を希釈する。 </li><li> 22℃で2分間200 xgで遠心分離する。 </li><li>上清を捨て、5mLのHABGに再懸濁し、細胞を懸濁させるためにペレットを軽くたたきます。 </li><li> 22℃で200×gで2分間遠心分離する。 </li><li>上清を捨て、3mLの神経細胞培地に再懸濁し、細胞を再懸濁するためにペレットを軽くたたきます。 </li></ol></li><li> 細胞を数える。 <ol><li> 10μLの溶液を、今では神経細胞培地に入れ、10μLのトリパンブルーと混合する。 </li><li>この混合物10μLをガラス計数室に入れる。 </li><li>標準のガラス計数チャンバを使用して、4つの4×4象限のそれぞれの細胞の数を数えます。カウントされたすべてのセルを追加する（n）、マルチ（希釈係数）、4で割る（象限の数）、3倍（神経基底培地の体積）、および10 4を掛けて細胞/ mL中の細胞濃度を得る。 <img alt="式" src="/files/ftp_upload/55856/55856eq0.jpg" /></li></ol></li><li> 細胞を培養プレート上に播種する <ol><li>細胞懸濁液を1mLの神経細胞培地中の300,000個の細胞に希釈する。 注：上記のステップで得られた細胞の濃度に基づいて、3×10 5細胞/ mLの最終濃度を得るために、追加の神経基底培地を添加する。式はC 1 V 1 = C 2 V 2であり、ここでC 1は収穫から得られた細胞の初期濃度であり、 V 1は3mLである。上記のように、C 2は3×10 5細胞/ mLである。方程式はV 2について解かれる。溶液中の細胞の総容量を等しくするために必要な神経細胞培地の容量を加えるV 2である 。 </li><li>静かに振とうして溶液中の細胞を分散させ、コーティングした24ウェルプレートの各ウェルに1 mLを加える。 </li></ol></li></ol>

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</ol>

著者には開示がない。

この技術は、脊髄ニューロンの信頼できる培養を可能にする。技能の習熟度が達成されると、完了するまでに約3.5時間かかります。我々は、約4時間で2匹の別個の同腹仔（合計16匹のマウス）からニューロンの単離を行うことができた。実行可能性の重要なステップは、マウスから脊髄を巧みに抽出することができることです。歩留まりは、いくつかのウェルをメッキすること、および様々な条件下でニューロンを試験する能力を可能にする。我々は、成熟後にニューロンを処理し、ウェスタンブロット分析を用いてタンパク質発現を確実に評価することができた。さらに、ニューロン付着のためにウェル内部のガラススライドを使用することにより、ニューロンのさらなる染色分析が可能になる。 この手順は、胚組織および関連する労働強度を必要としない点で有利である。さらに、成人の脊髄を使用して、十分な組織を収集する必要はありませんeニューロンの分離。これは、成体マウスで見られるように、ニューロン生理学における年齢の複合的な行動の要因を防止する。しかしながら、この技術は制限がないわけではない。以前に述べたように、老化ニューロンは新生児マウスを使用する...

<html>脊髄の病理を理解するには、巨視的レベルと顕微鏡レベルの両方で、様々なモデルを使用する必要があります。大小の動物モデル1,2,3は 、脊髄疾患および傷害のインビボ研究のために使用される。 インビボでこれらの問題を研究することにはメリットがありますが、脊髄の解析は全脊髄ホモジネートまたは組織切片4に限定されます。これは、居住ニューロンおよび周囲グリアの間で脊髄における特定の応答および標的を分離しようとするときに、あいまいさを生じる。遺伝的に操作されたマウスの利用可能性の増加は、細胞レベルおよび分子レベルでの生物学のより詳細な調査を可能にする。したがって、ここでは新生仔マウスモデルが使用され、 インビトロでの脊髄ニューロンの固有の特性および生物学の研究が可能になる。 in vitroでのニューロンの単離と維持は特に簡単ではない大人のげっ歯類の皮質組織からのニューロンの単離のための技術が比較的豊富にあり、それは相当数の単離されたニューロン（ すなわち数百万個）これとは対照的に、脊髄組織からのニューロンの収量は、組織の質量がより少ないために、部分的に8,9,10よりも低い。さらに、マウスでは、新生児の単離のための技術が相対的に不足している脊髄ニューロン、および既存の方法は、より低いニューロン収量（ すなわち数百）または胚性マウスの単離を必要とする手間と資源重い技術によって制限される10 。 このプロトコルでは、新生児マウスの脊髄からかなりの数のニューロンをコスト効率的かつリソース効率的に単離できる技術を使用する。以前に発表された技術でよく見られるように、我々は酵素プロテアーゼとしてパパインを使用し、脊髄組織からのニューロンの放出を可能にする。さらに、精製された細胞の分離には濃度勾配を使用していますが、これは以前は効果的であることが示されています6,10。細胞が培養される培地は様々であり得るが、我々の経験およびこれまでに公開された11のように 、新鮮なB27培地補充物はニューロンの寿命にとって重要であることが証明されている。ニューロンは、典型的には10日間まで生存可能であり、治療を行うことを可能にする。

<table><tbody><tr><td>Hibernate A Medium - 500 mL</td><td>Thermo-Fisher</td><td>A1247501</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/A1247501</td></tr><tr><td>Hibernate A マイナスカルシウム - 500 mL</td><td>Brainbits</td><td>HA-Ca</td><td></td></tr> <tr><td>http://www.brainbitsllc.com/hibernate-a-minus-calcium/ Glutamax 100X - 100 mL</td><td>Thermo-Fisher</td><td>35050061</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/35050079</td></tr><tr><td>B27サプリメント50X - 10 mL</td>サー<td>モフィッシャー</td><td>17504044</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/17504044</td></tr><tr><td>パパイン、凍結乾燥 - 100 mg</td><td>ワージントン</td><td>LS003119</td><td>http://www.worthington-biochem.com/pap/cat.html</td></tr><tr><td>神経基礎Aミディアム - 500 mL</td>サー<td>モフィッシャー</td><td>10888022</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/10888022</td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン(10,000 U / mL)</td><td>サーモフィッシャー</td><td>15140122</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15140122</td></tr><tr><td>ポリ-D-リジン(PDL)臭化水素酸塩-5 mg</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>P6407-5MG</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p6407?lang=en&region=US マウス</td></tr><tr><td>ラミニン-1 mg</td>サー<td>モフィッシャー</td><td>23017015</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/23017015</td></tr><tr><td>トリパンブルー - 20 mL</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8154-20ML</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/t8154?lang=en&region=US</td></tr><tr><td>OptiPrep 密度グラジエント メディウム - 250 mL</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D1556-250ML</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/d1556?lang=en&region=US</td></tr><tr><td>ジクロロジメチルシラン (DMDCS、シグマシリコート)</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>440272-100ML</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/aldrich/440272?lang=en&region=US</td></tr><tr><td>クロロホルム</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>288306-1L</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sial/288306?lang=en&region=US</td></tr><tr><td>ガラスピペット-9インチ</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>13-678-20C</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/cls7095d9?lang=en&region=US</td></tr><tr><td>ピペットバルブ - 5 mL</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z186678-3EA</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/aldrich/z186678?lang=en&region=US&cm_sp=Insite-_-prodRecCold_xviews-_-prodRecCold10-1</td></tr><tr><td>BRAND&reg;&nbsp;ペトリ皿、ガラス - 60 x 15 mm</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>BR455717-10EA</td><td></td></tr><tr><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/aldrich/br455717?lang=en&region=US 滅菌済み 24 ウェル細胞培養プレート</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M8812-100EA</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/m8812?lang=en&region=US</td></tr><tr><td>ハウザー血球計算盤 (ガラス計数室)</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック</td><td>02-671-6</td><td>スライド https://www.fishersci.com/shop/products/hausser-bright-line-phase-hemacytometer-hemacytometer/026716</td></tr><tr><td>ガラス - 12 mm 滅菌カバーガラス - コーティングされていない</td><td>Neuvitro</td><td>GG-12-1.5-Pre</td><td>http://www.neuvitro.com/german-coverslip-12mm-diameter.htm</td></tr><tr><td>NeuN Rabbit モノクローナル抗体 - 100 &micro;L</td><td>Abcam</td><td>ab177487</td><td>パラホルムアルデヒド(PFA)に固定し、5% BSAでブロッキングした後、12 mmカバーガラス上の細胞を1:200に希釈した抗体で4°Cで18時間インキュベートしました。C</td></tr><tr><td>MAP-2 マウスモノクローナル抗体 - 50 &micro;L</td><td>Abcam</td><td>ab11267</td><td>パラホルムアルデヒドに固定し、5% BSA でブロッキングした後、12 mm カバーガラス上の細胞を 1:500 希釈した抗体で 4 °C で 18 時間インキュベートしました。ハ</td></tr></tbody></table>

新生児マウスからの脊髄ニューロンの単離と培養

Spinal Cord Neurons Isolation and Culture from Neonatal Mice

我々は、脊髄ニューロンの単離および培養のためのプロトコールを提示する。ニューロンは、新生児C57BL / 6マウスから得られ、生後1〜3日に単離される。通常、1匹の繁殖対から生まれた4〜10匹の仔マウスを1回の実験で集め、イソフルランで安楽死させた後、各マウスから脊髄を個別に採取する。脊柱を切開し、次いで脊髄を柱から解放する。次いで、ニューロンおよび他の細胞が組織から放出されることを可能にする酵素的プロテアーゼの送達の表面積を増加させるために、脊髄を細かく切り刻む。次いで、粉砕を用いて細胞を溶液に放出する。その後、この溶液を密度勾配で分画して、溶液中の様々な細胞を分離し、ニューロンを単離することができるようにする。約1-2.5×10 6個のニューロンを1つの繁殖群から単離することができる。次いで、ニューロンを接着剤でコーティングされたウェル上に播種する適切な成長および成熟を可能にするrs。ニューロンは、成長および培養培地中で成熟に達するまでに約7日を要し、その後、治療および分析のために使用することができる。

この技術を用いて、1匹のリター（4〜10匹の仔）は、培養プレートへの播種に適した1-2.5×10 6個のニューロンの単離を可能にする。典型的には、4〜8ウェルを上記の濃度（ すなわち 300,000細胞/ mL）で播種する。 図3は低倍率（ a ）および高倍率（ b ）倍率の光学顕微鏡で培養して1週間後のこの濃度でのニューロンの出現を示す。しかしながら、我々はまた、500,000細胞/ウェルの高濃度および100,000細胞/ウェルの低濃度で細胞を培養することもできた。より高い濃度を使用するには、栄養素が急速に枯渇し、細胞にとって有毒な酸性環境につながるため、環境条件に中程度の注意を払う必要があります。より低い濃度では、細胞は完全な成熟に達しない傾向があり、支持細胞の過増殖（ すなわち希突起膠細胞、miクロストリジウム、星状細胞）が観察される。 <p class="jove_cont...

この研究は、WT新生児マウスからのニューロンの単離のための技術を提示する。新生仔マウスから脊髄を注意深く切開し、続いて脊髄組織からニューロンを機械的および酵素的に切断することが必要である。

We present a protocol for the isolation and culture of spinal cord neurons. The neurons are obtained from neonatal C57BL/6 mice and are isolated on ...

本手順の全体的な目的は、さまざまな実験に使用可能な脊髄ニューロンを、再現性高く、かつ安定して単離できるようにすることです。この方法により、脊髄ニューロンの生物学的特性への理解を深め、さまざまなストレス要因に対する反応を解明できる可能性があります。本手法の主な利点は、大量のニューロンを単離できるため、それらを幅広い実験に活用できる点にあります。ニューロンを死滅させずに健康な状態で単離するためには、組織からニューロンを機械的に分離するトリチュレーション（摩砕）工程に習熟する必要があるため、本手法を視覚的に提示することが極めて重要です。まず、ハサミを用いて、安楽死させたマウス新生仔の頭部を身体から切り離します。次に、背面を上に向けた状態で、尾と肢を処置台の上に固定します。次に、曲面アイリス剪刀を用いて皮膚を切り取り、腰部（臀部の直上）で脊髄を切断し、胸部の両側を切断して体から分離します。余分な組織を除去するため、5 mLの滅菌PBSを入れた10 cmのペトリ皿3枚を用いて、各サンプルを10秒ずつ順次洗浄します。続いて、5 mLの滅菌PBSを満たした22ゲージの針とシリンジを脊柱の尾側に挿入し、頭側に向けてフラッシュし、脊髄を4枚目のシャーレに排出させます。脊髄を、氷上の5 mLのHABGを含む15 mLチューブに移します。脊髄を圧迫しないように注意し、残りの仔マウスに対しても同様の手順を繰り返します。ニューロンの単離を確実にするため、理想的にはこの工程は子ラット1群につき30分以内に完了させる必要があります。密度勾配を調製するために、4本の15 milliliterチューブに4つの層をそれぞれ調製します。次に、新しい15 milliliterチューブに、各層を1 milliliterずつ加えます。一番下に第1層から始めて、最上部の第4層に到達するまで順次加えてください。層を加える際は、混合の原因となる激しい動きや層を乱す操作を避けてください。次に、細切した組織に消化培地を加えます。サンプルをウォーターバス内のシェーカーに入れ、30 °Cで振とうします。その後、組織をウォーターバスから取り出し、数分間静置します。トリチュレーションを行うため、過剰な消化培地を吸引除去します。組織を2 mLのHABGに懸濁させ、細口ピペットを用いて45秒間で10回トリチュレーション（破砕）を行います。この際、生存収率が著しく低下するため、気泡が混入しないように注意してください。トリチュレーションは本手順において極めて重要な工程の一つです。組織を火炎滅菌したピペットに慎重に吸い込み、また排出させます。過剰な強さで操作すると神経細胞死を招き、逆に不十分な操作では収率が低下するため、注意が必要です。その後、上清の上層2 mLを吸引し、「collection」とラベルを貼った新しい15 mLチ

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

電気生理学的研究のための新生児マウス脊髄の分離のデモンストレーション。...

脊髄電気生理学

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学ぶ新生児マウスから脊髄ニューロンを単離・培養する手法。機械的・酵素的処理により健康なニューロンを得られ、神経生物学研究やストレス応答解析に応用可能です。

新生児マウスからの脊髄ニューロンの単離と培養

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