Name: 植物プロモーター解析: 同定とルート、インゲンの根粒特異的プロモーターの解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-12-23T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 58 s
Description: 学ぶ植物プロモーター解析法。インゲンの根粒特異的プロモーターを同定・解析し、Agrobacterium rhizogenesを用いた毛状根誘導と遺伝子発現パターンの時空間解析を行います。共生条件下での遺伝子制御メカニズムの理解に役立ちます。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

この仕事は部分的に総局・ デ ・ Asuntos ・ デル ・によって支えられた個人的な Académico、DGAPA/PAPIIT-ウナム (付与なし。蘇州妙林鋼と M K に IA205117 IN219916A) と国立ナシオナル デ サイエンス y Tecnològia (CONACYT グラント号 240614 ミリリットルに)。

1. 識別、分離、およびp. 尋常性ニン プロモーターのクローニング
<ol>
	<li>興味の遺伝子のプロモーターを識別します。Phytozome、Ensembl 植物、NCBI、等A マメ科植物プロモーター P. 尋常性ニン (PvNIN; などの植物に使用できるいくつかのゲノム データベースと解析ツールがあります。Phvul.009G115800) はこの研究20で使用されました。</li>
	<li>デザイン oligos ゲートウェイまたはクローニング ベクトル システムによって従来の制限の酵素のためには、(図 1 a) が使用されます。 注: 標準 (25-35 bp) 脱塩プライマー作業罰金。プロモーターと遺伝子との間に逃げ逆オリゴ シーケンスがお勧めです。</li>
	<li>新鮮単離P. 尋常性から PvNIN プロモーター領域 (または興味の遺伝子のプロモーター領域) を増幅する DNA のプロモーター固有オリゴ セットを使用して。高品質なポリメラーゼを使用し次の PCR 条件: 95 ° C、5 分。30 サイクル (95 ° C、30 s、55 ° C、30 秒、1 分の 72 ° C);5 分のための 72 ° C。</li>
	<li>60 V 7 × 10 cm ゲル トレイ上で 1% アガロースゲルで増幅されたフラグメントを実行し、対応する私アンプリコンを溶出 (700 bp、図 1 b) と製造元の指示に従って力がある pENTR/D ・ TOPO ベクターにクローン。</li>
	<li>2 μ L の有能なエシェリヒア属大腸菌に反応を変換ホストゲノム弟 (LB) 50 mg/L カナマイシン (Kan50) を添加した製造元の指示と変換の混合物のプレート 150 μ L を用いた細胞します。37 ° C でめっきされたセルを一晩成長します。</li>
	<li>3-6 植民地およびそれらは Kan50 を含む LB 培地で一晩培養を選択します。プラスミッドの選択法を用いた DNA を分離し、ベクトル特定 M13 oligos を用いた PCR によるプラスミドを分析します。PCR プラスミド 12:03 oligos の使用 100 ng の 10 X PCR バッファーの U Taq DNA ポリメラーゼ、10 mM dNTPs の 0.5。</li>
	<li>使用して、次の PCR 増幅条件;95 ° C、3 分。30 サイクル (95 ° C、30 s、58 ° C、30 秒、75 のための 72 ° C s);72 ° C で 7 分間は 1% の agarose のゲルの PCR の製品を可視化します。正しい挿入が 324 bp バンド (図 1) を持っている 1,024 の bp とベクトルの挿入はなしでバンドを持っていることを確認します。</li>
	<li>LR 反応エントリ ベクトル (力がある pENTR/D-トポ-PvNIN) と宛先ベクトル pBGWFS7.021を製造元の指示に従って市販酵素ミックスを使用してを実行します。</li>
	<li>2 μ L の有能なエシェリヒア属大腸菌に LR 反応を変換スペクチノマイシン (Spe100) 100 mg/L を添加したポンドに製造元の指示と変換の混合物のプレート 150 μ L で説明したように標準的な手法を用いた細胞します。37 ° C でめっきされたセルを一晩成長します。</li>
	<li>約 5 コロニーをピックアップし、Spe100 を含む LB 培地で一晩培養それら。プラスミッドの選択法を用いた DNA を隔離し、プロモーター固有 oligos を用いた PCR によるプラスミドを分析します。</li>
	<li>手順 1.3 の PCR 条件を使用します。増幅を確認する 1% の agarose のゲルの PCR の製品を視覚化します。Amplicons が 700 bp。</li>
	<li>チップの信頼性を検証するプロモーター固有 oligos と肯定的なプラスミド pBGWFS7.0/PvNIN::GUS-GFP (図 1) をシーケンスします。</li>
	<li>A. 体の獲得ひずみ K599 (ただし、 a. 体の獲得の他の系統を使用可能) に、プラスミドを変換します。次の設定で electrocompetent 細胞と 1 mm キュベットで electroporate を 50 μ l 添加するプラスミッドの準備の 2 μ L を追加: 1.8 kV、25 μ F、200 Ω。</li>
	<li>細胞を回復 〜 500 μ L の SOC 媒体振る 2 英ポンド Spe100 のプレートの 28 ° c と 28 ° C で 2 日間の成長します。</li>
	<li>前述のステップ 1.7 でコロニーのスクリーニングを実行し、手順 1.3 のように PCR 条件を使用します。肯定的なクローンからグリセロールを行い、-80 ° C で保存</li>
	<li>A. 体の獲得文化陰性対照として空 pBGWFS7.0 ベクトルをかくまっているを使用します。</li>
</ol>
2 A. 体の獲得は一般的な豆の毛状根を変換。
<ol>
	<li>蒸気滅菌する (P. 尋常性品種黒人 Jamapa) の種子 (約 20) 1 分の 96% エタノール 50 mL とエタノール; を破棄層流フードの一定の混合での 10 分間 20% の漂白剤 (次亜塩素酸ナトリウム) の 50 mL を加えます。漂白剤を削除し、過剰な滅菌水で 3 回洗います。 注: 他のP. 尋常性品種は、毛状根の誘導に使用できます。</li>
	<li>ブロートンで湿らせた滅菌フィルター ペーパーに滅菌の種子を発芽 &#38; ディルワース (B &#38; D) ソリューション22 (表 1) の 28 ° C で暗闇の中 2 日間</li>
	<li>変換前に、の日は、次のものを準備してください。
	<ol>
		<li>固体の LB Spe100 のバイナリのベクトル (1.13 と 1.14 の手順で準備) をかくまっているA. 体の獲得文化の 150 μ L を連勝、一晩 28 ° C で育ちます。</li>
		<li>15 mL チューブを詰めて B &#38; D ソリューションと置換二重層状アルミ箔でスクリュー キャップ。B の 10 mL を含む 22 cm のガラス管を組み立てる &#38; D ソリューション (図 2) とオートクレーブそれ。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>変換の日、次の滅菌材料の層流フードを組み立てる: 手順 2.2 から種子、培養プレート ステップ 2.3.1、ステップ 2.3.2 からチューブ、滅菌二重蒸留水 (10 mL)、ピペット、ピペット チップ、滅菌鉗子から発芽・ 3 mL 注射器。</li>
	<li>曲がって 200 μ L tip を使用して、遠心管にプレートからA. 体の獲得細胞をこすりし、二重の滅菌水 1 mL で再懸濁します。同様に、ベクトル制御の細胞を個別に準備します。
	<ol>
		<li>再懸濁しますに優しく細胞をミックスします。ボルテックスにかけないでください。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>2.3.2 滅菌ピペット チップを使用しての手順からチューブのアルミ箔に 3 mm の穴を確認します。</li>
	<li>注射器 2.5 ステップからセル (プロモーターまたはベクトル制御) を収集し、少し針の先端 (図 2) と発芽種子の胚軸を刺します。 注: 針貫通 (4-6 回) 維管束組織を確認し、小さな注入 (~ 5 μ L) 胚軸まわりの異なった位置で傷の細胞が値下がりしました。</li>
	<li>B を含む 15 mL チューブの 3 mm の穴に挿入された苗の根を慎重に挿入 &#38; D ソリューション。22 mL ガラス管全体のセットアップに戻すし、湿度を維持するためにそれらを封印します。</li>
	<li>16 h 光: 8 の 28 ° C で維持成長槽内管を孵化させなさい h 暗い日長。 ノート: インキュベーション後、3-4 日植物に育つ 22 mL ガラス管の縁。</li></ol>この段階で、キャップをはずし、図 2 iで示すように、幹の周りパラフィルムで縁をシールします。
	<li>5-7 日で負傷のサイトでカルスを観察し、見つける 〜 10-12 日の変換後に 2 cm 毛状根。 注: それは B を維持するために重要な &#38; 常にプラスチックやガラス管で D ソリューション。</li>
	<li>2 週間後毛状根の下 2 cm の幹を切断することによってプライマリ ルートを削除し、滅菌バーミキュ ライトを入れたポットに根を移植します。成長室 (16 h 光: 8 h 28 ° C で暗い) の工場を維持し、B と灌漑 &#38; D ソリューション。</li>

3. プロモーター解析: ニン プロモーター式、インゲンの根粒菌の結節
<ol>
	<li>根粒の誘導、PY 培 (0.5 g ペプトン、酵母エキスを 0.3 g) 700 ミリメートル CaCl2と 20 mg mL− 1と 100 ml tropici 根粒菌や根粒菌 etli (一般的なマメに対応している) を接種します。ナリジクス酸。24 h の 30 ° C で 300 rpm で振とうしながらインキュベートします。 注: 任意の特定の抗生物質は、形質転換根粒菌の場合される可能性があります。</li>
	<li>常温 2,800 × g で 3 分間遠心分離機でセルをペレットし、10 mM MgSO4の 10 mL で再懸濁します。10 mM MgSO4希釈による外径600 0.6 にセルの外径を調整します。</li>
	<li>あたりの毛状根に根粒の成長を誘導する植物 (プロモーターおよびベクトル制御) (3.2 から準備) 文化の 1-2 mL を接種します。B が付いている植物に水を引く &#38; 根粒形成を促進するために限られた窒素 (2 mM 自演3) D ソリューション。</li>
	<li>実験の必要性によって異なる時点で毛状根を収集します。3-5 日間感染スレッドを勉強するための収集のサンプルの記事接種 (dpi)。 注: 原始結節と若い結節で調査 6 9 dpi と解像度 10-12 日、それぞれ。最後に、成熟しており、機能性結節は 14-21 dpi とで senesced 結節で学ぶことができます &#62; 28 dpi。</li>
	<li>レポーター遺伝子 (ガスまたは GFP) の活動のための根粒を処理します。ジェファーソン23で記述されたプロトコルに従ってガスの利用状況を分析します。GFP を蛍光顕微鏡下で観察します。青いアルゴン イオン レーザーを用いた GFP の蛍光性を刺激 (488 nm)、510 から 540 へ放出される蛍光の収集と nm。</li>
</ol>

<ol><li>Hernández-Garcia, C. M., Finer, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+validation+of+promoters+and+cis-actingregulatory+elements%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Identification and validation of promoters and cis-actingregulatory elements.</a> Plant Science. 217-218, 109-119 (2014).</li>
<li>Dhanapal, A. P., Govindaraj, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unlimited+Thirst+for+Genome+Sequencing%2C+Data+Interpretation%2C+and+Database+Usage+in+Genomic+Era%3A+The+Road+towards+Fast-Track+Crop+Plant+Improvement%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics+Research+International%22%5BJournal%5D)">Unlimited Thirst for Genome Sequencing, Data Interpretation, and Database Usage in Genomic Era: The Road towards Fast-Track Crop Plant Improvement.</a> Genetics Research International. , 684321(2015).</li>
<li>Nanjareddy, N., Arthikala, M. K., Blanco, L., Arellano, E. S., Lara, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protoplast+isolation%2C+transient+transformation+of+leaf+mesophyll+protoplasts+and+improved+Agrobacterium-mediated+leaf+disc+infiltration+of+Phaseolus+vulgaris%3A+Tools+for+rapid+gene+expression+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Protoplast isolation, transient transformation of leaf mesophyll protoplasts and improved Agrobacterium-mediated leaf disc infiltration of Phaseolus vulgaris: Tools for rapid gene expression analysis.</a> BMC Biotechnol. 16 (1), 53(2016).</li>
<li>Pumplin, N., Zhang, X., Noar, R. D., Harrison, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polar+localization+of+a+symbiosis-specific+phosphate+transporter+is+mediated+by+a+transient+reorientation+of+secretion%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Polar localization of a symbiosis-specific phosphate transporter is mediated by a transient reorientation of secretion.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (11), E665-E672 (2012).</li>
<li>Kryvoruchko, I. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MtSWEET11%2C+a+Nodule-Specific+Sucrose+Transporter+of+Medicago+truncatula%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">MtSWEET11, a Nodule-Specific Sucrose Transporter of Medicago truncatula.</a> Plant Physiol. 171 (1), 554-565 (2016).</li>
<li>Suzaki, T., Yano, K., Ito, M., Umehara, Y., Suganuma, N., Kawaguchi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Positive+and+negative+regulation+of+cortical+cell+division+during+root+nodule+development+in+Lotus+japonicus+is+accompanied+by+auxin+response%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Positive and negative regulation of cortical cell division during root nodule development in Lotus japonicus is accompanied by auxin response.</a> Development. 139 (21), 3997-4006 (2012).</li>
<li>Suzaki, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoreduplication-mediated+initiation+of+symbiotic+organ+development+in+Lotus+japonicus%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Endoreduplication-mediated initiation of symbiotic organ development in Lotus japonicus.</a> Development. 141 (12), 2441-2445 (2014).</li>
<li>Qin, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+high-affinity+phosphate+transporter+GmPT5+regulates+phosphate+transport+to+nodules+and+nodulation+in+soybean%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">The high-affinity phosphate transporter GmPT5 regulates phosphate transport to nodules and nodulation in soybean.</a> Plant Physiol. 159 (4), 1634-1643 (2012).</li>
<li>Wang, Z., Panfeng, L., Yan, Y., Chi, Y., Fan, B., Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+and+Functional+Analysis+of+a+Novel+Group+of+Legume-specific+WRKY+and+Exo70+Protein+Variants+from+Soybean%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Expression and Functional Analysis of a Novel Group of Legume-specific WRKY and Exo70 Protein Variants from Soybean.</a> Sci Rep. 6, 32090(2016).</li>
<li>Montiel, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Phaseolus+vulgaris+NADPH+oxidase+gene+is+required+for+root+infection+by+Rhizobia%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">A Phaseolus vulgaris NADPH oxidase gene is required for root infection by Rhizobia.</a> Plant Cell Physiol. 53 (10), 1751-1767 (2012).</li>
<li>Arthikala, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PvRbohB+negatively+regulates+Rhizophagus+irregularis+colonization+in+Phaseolus+vulgaris%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">PvRbohB negatively regulates Rhizophagus irregularis colonization in Phaseolus vulgaris.</a> Plant Cell Physiol. 54 (8), 1391-1402 (2013).</li>
<li>Arthikala, M. K., Sánchez-López, R., Nava, N., Santana, O., Cárdenas, L., Quinto, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RbohB+a+Phaseolus+vulgaris+NADPH+oxidase+gene%2C+enhances+symbiosome+number%2C+bacteroid+size%2C+and+nitrogen+fixation+in+nodules+and+impairs+mycorrhizal+colonization%5BTitle%5D)+AND+%22New+Phytol%22%5BJournal%5D)">RbohB a Phaseolus vulgaris NADPH oxidase gene, enhances symbiosome number, bacteroid size, and nitrogen fixation in nodules and impairs mycorrhizal colonization.</a> New Phytol. 202 (3), 886-900 (2014).</li>
<li>Barraza, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Down-regulation+of+PvTRE1+enhances+nodule+biomass+and+bacteroid+number+in+the+common+bean%5BTitle%5D)+AND+%22New+Phytol%22%5BJournal%5D)">Down-regulation of PvTRE1 enhances nodule biomass and bacteroid number in the common bean.</a> New Phytol. 197 (1), 194-206 (2013).</li>
<li>Estrada-Navarrete, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+autophagy-related+kinase+is+essential+for+the+symbiotic+relationship+between+Phaseolus+vulgaris+and+both+rhizobia+and+arbuscular+mycorrhizal+fungi%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">An autophagy-related kinase is essential for the symbiotic relationship between Phaseolus vulgaris and both rhizobia and arbuscular mycorrhizal fungi.</a> Plant Cell. 28 (9), 2326-2341 (2016).</li>
<li>Nanjareddy, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Legume+TOR+Protein+Kinase+Regulates+Rhizobium+Symbiosis+and+Is+Essential+for+Infection+and+Nodule+Development%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">A Legume TOR Protein Kinase Regulates Rhizobium Symbiosis and Is Essential for Infection and Nodule Development.</a> Plant Physiol. 172 (3), 2002-2020 (2016).</li>
<li>Frühling, M., Schröder, G., Hohnjec, N., Pühler, A., Perlick, A. M., Küster, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+promoter+of+the+Vicia+faba+L.+gene+VfEnod12+encoding+an+early+nodulin+is+active+in+cortical+cells+and+nodule+primordia+of+transgenic+hairy+roots+of+Vicia+hirsuta+as+well+as+in+the+prefixing+zone+II+of+mature+transgenic+V.+hirsuta+root+nodules%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Science%22%5BJournal%5D)">The promoter of the Vicia faba L. gene VfEnod12 encoding an early nodulin is active in cortical cells and nodule primordia of transgenic hairy roots of Vicia hirsuta as well as in the prefixing zone II of mature transgenic V. hirsuta root nodules.</a> Plant Science. 160 (1), 67-75 (2000).</li>
<li>Szabados, L., Ratet, P., Grunenberg, B., de Bruijn, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+analysis+of+the+Sesbania+rostrata+leghemoglobin+glb3+gene+5%27-upstream+region+in+transgenic+Lotus+corniculatus+and+Nicotiana+tabacum+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Online%22%5BJournal%5D)">Functional analysis of the Sesbania rostrata leghemoglobin glb3 gene 5'-upstream region in transgenic Lotus corniculatus and Nicotiana tabacum plants.</a> Plant Cell Online. 2 (10), 973-986 (1990).</li>
<li>Madsen, L. H., Tirichine, L., Jurkiewicz, A., Sullivan, J. T., Heckmann, A. B., Bek, A. S., Ronson, C. W., James, E. K., Stougaard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+molecular+network+governing+nodule+organogenesis+and+infection+in+the+model+legume+Lotus+japonicus%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">The molecular network governing nodule organogenesis and infection in the model legume Lotus japonicus.</a> Nat Commun. 12, 1-10 (2010).</li>
<li>Montiel, J., Arthikala, M. K., Quinto, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phaseolus+vulgaris+RbohB+functions+in+lateral+root+development%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Signal+Behav%22%5BJournal%5D)">Phaseolus vulgaris RbohB functions in lateral root development.</a> Plant Signal Behav. 8 (1), 1-3 (2013).</li>
<li>Nanjareddy, K., Arthikala, M. K., Gómez, B. M., Blanco, L., Lara, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentially+expressed+genes+in+mycorrhized+and+nodulated+roots+of+common+bean+are+associated+with+defense%2C+cell+wall+architecture%2C+N+metabolism%2C+and+P+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Differentially expressed genes in mycorrhized and nodulated roots of common bean are associated with defense, cell wall architecture, N metabolism, and P metabolism.</a> PLoS ONE. 12 (8), e0182328(2017).</li>
<li>Karimi, M., Inzé, D., Depicker, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gateway+vectors+for+Agrobacterium-mediated+plant+transformation%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Plant+Sci%22%5BJournal%5D)">Gateway vectors for Agrobacterium-mediated plant transformation.</a> Trends Plant Sci. 7 (5), 193-195 (2002).</li>
<li>Broughton, W. J., Dilworth, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+leghemoglobin+synthesis+in+snake+beans%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+J%22%5BJournal%5D)">Control of leghemoglobin synthesis in snake beans.</a> Biochem J. 125 (4), 1075-1080 (1971).</li>
<li>Jefferson, R. A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1178271/">Assaying chimeric genes in plants, the GUS gene fusion system.</a> Plant Mol Biol Rep. 5 (4), 387-405 (1987).</li>
<li>Cho, H. J., Farrand, S. K., Noel, G. R., Widholm, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-efficiency+induction+of+soybean+hairy+roots+and+propagation+of+the+soybean+cyst+nematode%5BTitle%5D)+AND+%22Planta%22%5BJournal%5D)">High-efficiency induction of soybean hairy roots and propagation of the soybean cyst nematode.</a> Planta. 210 (2), 195-204 (2000).</li>
<li>Deng, Y., Mao, G., Stutz, W., Yu, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+Composite+Plants+in+Medicago+truncatula+used+for+Nodulation+Assays%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Generation of Composite Plants in Medicago truncatula used for Nodulation Assays.</a> J. Vis. Exp. (49), e2633(2011).</li>
<li>Kumagai, H., Kouchi, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+silencing+by+expression+of+hairpin+RNA+in+Lotus+japonicus+roots+and+root+nodules%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Plant+Microbe+Interact%22%5BJournal%5D)">Gene silencing by expression of hairpin RNA in Lotus japonicus roots and root nodules.</a> Mol Plant Microbe Interact. 16 (8), 663-668 (2003).</li>
<li>Okamoto, S., Yoro, E., Suzaki, T., Kawaguchi, M. <a target="_blank" href="http://www.bio-protocol.org/e795">Hairy Root Transformation in Lotus japonicus.</a> Bio-protocol. 3 (12), e795(2013).</li>
<li>Jacobs, T. B., Martin, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+CRISPR+Vector+Construction+and+Characterization+of+DNA+Modifications+by+Generation+of+Tomato+Hairy+Roots%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">High-throughput CRISPR Vector Construction and Characterization of DNA Modifications by Generation of Tomato Hairy Roots.</a> J. Vis. Exp. (110), e53843(2016).</li>
<li>Estrada-Navarrete, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Agrobacterium+rhizogenes-transformation+of+the+Phaseolus+spp.%3A+a+tool+for+functional+genomics%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Plant+Microbe+Interact%22%5BJournal%5D)">Agrobacterium rhizogenes-transformation of the Phaseolus spp.: a tool for functional genomics.</a> Mol Plant Microbe Interact. 19 (12), 1385-1393 (2006).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

遺伝子の機能解析の中には、遺伝子発現パターンの研究は生体内で遺伝子の空間的で、一時的な規則を理解する上で重要な役割を果たしています。遺伝子発現パターンを勉強するよく知られているメソッドは、興味の遺伝子プロモーター領域のクローンを作成する蛍光マーカー遺伝子(GFP、RFP 等)など β-グルクロニダーゼ レポーター遺伝子の上流。ここで、ルート結節の共生 (RNS) 特定遺伝子、ニン、RNS 時p. 尋常性の時空間的発現パターンを研究するのプロモーター領域を選択しました。選択したプロモーターは、上流プロモーター発現ベクターにゲートウェイを用いた GFP::GUS 記者に転写されています。
毛の根系における共生特定プロモーター発現したP. 尋常性。毛むくじゃらのルート システムは、遺伝子の機能解析に広く使用されています, 含む RNAi による遺伝子ノックダウン、遺伝子の異所性発現、プロモーターの式、および反抗的な作物の蛋白質のローカリゼーション。システムの主な利点は、簡単、再現性、信頼性、同時に労働集約的がないこと...

プロモーターは、興味の遺伝子の発現調節機構を理解する上で重要な役割を果たす重要な分子生物学的ツールです。プロモーターは、dna 塩基配列を上流にある翻訳の系列の遺伝子の開始コドンと彼らを運ぶ遺伝子の中央の規制情報したがって、正しい注釈、特性は、遺伝子の機能を理解することに不可欠です。発現パターンに応じて植物プロモーターは、構成、組織固有または開発段階固有および誘導の1として分類されます。トランスクリプトーム技術、コンピュータ モデルの改善および別の植物種のためのゲノム配列の数の増加の可用性の進歩はプロモーター配列2の大規模な予測を容易にしました。
その一方で、プロモーター評価ツールと、高速で効率的、かつ再現性のある形質転換技術の確立に重要ですも。他のモデル植物とは異なり、豆マメ (P. 尋常性) の共通の遺伝子の機能解析はインゲンマメsp 安定な形質転換のための反抗的な性質のために主に阻害します。一時的な変形システムは、迅速な遺伝子機能解析研究3のための代替として機能します。マメ科共生研究のマメ科植物と根粒菌の相互作用は、根粒特異遺伝子のプロモーターの研究機能の解析に最も扱いやすいモデル システムの 1 つです。これまでのところ、これらの共生に関連するいくつかのマメ科植物プロモーターがされている特徴、すなわち、ウマゴヤシ分子PT44SWEET115、ミヤコグササイクロプス UBQ6VAG17、グリシン最大 PT58Exo70J9, P. 尋常性RbohB10、11,12、TRE113、PI3K14、TOR15、など。Cis要素直接遺伝子に影響を与えます。転写因子 ENBP1A は初期 nodulin VfENOD12 のCisの規制地域 (−692 bp) に結合し、これはソラマメ16の根粒原基におけるレポーター遺伝子の発現を促進します。Cisの規制領域の置換 (−48 bp −161) 根粒特異プロモーターの異種のレグヘモグロビン GLB3 プロモーター δ p35S と δ pNOS、根粒特異性の損失で起因し、プロモーター活性17 低下.
以前のレポートを示す転写因子ニン根毛細胞における根粒菌感染の開始に必要なミヤコグサ18根粒器官形成に欠かせないも.現在の研究では、識別、分離、クローニングおよび一般的な豆毛状根における根粒特異プロモーターのキャラクタリゼーションのためのプロトコルについて述べる。、これを達成するためには、 P. 尋常性の根粒菌共生固有ニン プロモーターを選択され、キメラ記者 GUS enhanced::GFP 転写融合のクローンします。さらに、このプロトコルでは、 A. 体の獲得による毛状根を用いたP. 尋常性における遺伝的変換処理の迅速かつ汎用性の高いシステムについて説明します。このシステムは、変換後の 2 週間以内に毛状根を生成します。最後に、GUS 染色によって植民地化された根粒菌根粒でニン プロモーターの時空間の発現を検討しました。
ここで説明する手順は、だけでなく、マメ科植物の根粒形成と mycorrhization の11の研究でも根19プロモーター発現パターンの調査のために役立ちます。さらに、このプロトコルは、非専門の所で使いやすいです。

<table><tbody><tr><td>qRT-PCRアッセイ用Primers </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>pNIN フォワード</td><td>CACC ATA GCT CCC CAA AAT GGT AT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pNIN リバース</td><td>CAT CTT CCT TCC ACT AAC TAA C</td><td></td><td></td></tr><tr><td>M13 フォワード</td><td>GTA AAA CGA CGG CCA G</td><td></td><td></td></tr><tr><td>M13 リバース</td><td>CAG GAA ACA GCT ATG AC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>会社</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>試薬</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>pENTR/D-TOPO クローニングキット</td><td>Invitrogen</td><td>K243520</td><td></td></tr><tr><td>Gateway LR Clonase II Enzyme Mix&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>11791100</td><td></td></tr><tr><td>pBGWFS7.0&nbsp;</td><td>植物システム生物学</td><td>https://gateway.psb.ugent.be/vector/show/pBGWFS7/search/index/</td><td></td></tr> <tr><td>Platinum Taq DNAポリメラーゼ</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>10966018</td><td></td></tr><tr><td>DNeasy 植物ミニキット</td><td>Qiagen</td><td>69104</td><td></td></tr><tr><td>PureLink Quick Gel Extraction Kit</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>K210012</td><td></td></tr><tr><td>Platinum Pfx DNAポリメラーゼ</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td>11708013</tr><tr><td>Credited分子生物学 アガロー</td>ス <td>バイオ・ラッド</td><td>1613102</td><td></td></tr><tr><td>ワンショット TOP10 ケミカルコンピテント大腸菌</td><td>Invitrogen</td><td>C404006</td><td></td></tr><tr><td>Nacl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>トリプトン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T7293-250G</td><td></td></tr><tr><td>酵母抽出物</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Y1625-250G</td><td></td></tr><tr><td>細菌寒天</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A5306-1KG</td><td></td></tr><tr><td>カナマイシン硫酸塩</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>60615-25G</td><td></td></tr><tr><td>スペクチノマイシン硫酸塩</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>PHR1441</td><td></td></tr><tr><td>エチルアルコール</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E7023</td><td></td></tr><tr><td>細菌学的ペプトン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P0556</td><td></td></tr><tr><td>塩化</td><td>カルシウムSigma-Aldrich</td><td>C1016</td><td></td></tr><tr><td>Nalidixic酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N8878</td><td></td></tr><tr><td>硫酸マグネシウム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M7506</td><td></td></tr><tr><td>ゲルローディングソリューション</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7654</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>EQUIPMENT</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>サーモサイクラー</td><td>Veriti サーマルサイクラー</td><td>4375786</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離</td>機 <td>Sigma</td><td>Sigma 1-14K</td><td></td></tr><tr><td>ゲルドキュメンテーションユニット</td><td>Carestream</td><td>Gel Logic 212 PRO</td><td></td></tr><tr><td>MaxQ SHKE6000 6000 振とうインキュベーター - 115VAC</td><td>Thermo scientific</td><td>EW-51708-70</td><td></td></tr><tr><td>植物成長チャンバー</td><td>MRC</td><td>PGI-550RH</td><td></td></tr><tr><td>Horizantal laminarair flow cabinate</td><td>Lumistell</td><td>LH-120</td><td></td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡</td><td></td><td>Leica DM4500 B</td><td></td></tr><tr><td>Petridish</td><td>sym laboratorios</td><td>90X15</td><td></td></tr><tr><td>Scalpel Blade</td><td>Fisher scientific</td><td>53223</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 15mL Conical Centrifugeチューブフィ</td><td>ッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>14-959-53A</td><td></td></tr><tr><td>22 mLガラスチューブトーマス</td><td>サイエンティフィック</td><td>45048-16150</td><td></td></tr></tbody></table>

植物プロモーター解析: 同定とルート、インゲンの根粒特異的プロモーターの解析

Plant Promoter Analysis: Identification and Characterization of Root Nodule Specific Promoter in the Common Bean

シーケンスを符号化する遺伝子の上流の配列は、プロモータ配列として名づけられます。プロモーターの発現パターンを勉強している非常に重要な遺伝子発現制御と標的遺伝子の時空間の発現パターンを理解します。その一方で、プロモーター評価ツールと、高速で効率的、かつ再現性のある形質転換技術の確立に重要ですも。この研究では、遺伝子組換えの毛状根のインゲンの根粒菌の共生固有結節創業 (NIN) プロモーターの時空間の発現パターンを調べた。植物ゲノム データベースと我々 を識別、分析ツールを使用して孤立してキメラの記者に転写融合でP. 尋常性ニン プロモーターをクローン (GUS) の β-グルクロニダーゼ活性ガス enhanced::GFP。さらに、このプロトコルは、 P. 尋常性サツマイモネコブセンチュウによる毛状根を用いた遺伝的変容の迅速かつ汎用性の高いシステムを説明します。このシステムでは、変換後 10 〜 12 日間で ≥2 cm 毛状根を生成します。次に、根粒菌接種後接種の定期的な間隔で毛状根におけるニン プロモーターの時空間表現を評価しました。ガスの活動によって描かれた結果表示ニン プロモーターが根粒形成のプロセス中にアクティブだった。一緒に、この議定書は、識別、分離、クローン、および一般的な豆毛状根の植物プロモーターを特徴付ける方法を示します。さらに、このプロトコルは、非専門の所で使いやすいです。

本研究の目的は、根粒特異P. 尋常性ニンの時空間の表現パターンを評価することだった。これを行うには、700 bp の領域は上流のニン遺伝子の翻訳開始コドンが選ばれ、oligos のセットは、図 1 aに示されている、設計されました。高忠実度のポリメラーゼを使用して、ニン プロモーター断片が増幅された、(図 1 b) を分離に転写融合を生成するゲートウェイによる変換先バイナリ ベクトル pBGWFS7.0 (図 1) に複製、キメラ記者 GUS が強化された GFP (pBGWFS7.0/PvNIN::GUS-GFP)。PBGWFS7.0/PvNIN::GUS-GFP ベクトル構造は通常何百もの独立したクローンを生成します。遺伝子特定 oligos と pcr 法によるコロニーのスクリーニングは簡単に正しいクローン (図...

プロモーター発現解析は遺伝子の規則の理解と標的遺伝子発現の時空間を改善するために重要です。ここを識別、分離、および植物プロモーターのクローンを作成するためのプロトコルを提案する.さらに、一般的な豆毛状根における根粒特異プロモーターの特性について述べる。

The upstream sequences of gene coding sequences are termed as promoter sequences. Studying the expression patterns of promoters are very significant in ...

レポーター構築物を導入したPhaseolusの形質転換根を得るために、ヘアリールート法が用いられます。得られた形質転換根を用いて、レポーター遺伝子の発現を解析します。プロモーターの発現解析は、遺伝子の時空間的な発現パターンを理解するために極めて重要です。本日は、Phaseolusにおける毛状根誘導の手法を実演し、根粒共生条件下での形質転換毛状根におけるプロモーターの発現パターンを検討します。Estrada-Navarreteらは、これまでにPhaseolusにおけるAgrobacterium rhizogenes誘導毛状根系を構築しています。本手法により、毛状根誘導に要する期間が短縮され、システムの汎用性が向上します。手順のデモンストレーションを行うのは、私の同僚であるManoj-Kumar Arthikalaと、私の研究室の学部生であるAlma LeticiaおよびBrenda Marianaです。まず、PhytozomeのPhaseolus vulgarisゲノムデータベースでNIN遺伝子の配列を検索し、ATGの上流から必要な長さの配列を選択します。適切なプロモーター配列解析に基づき、オリゴヌクレオチドを設計してください。調製したばかりのPhaseolusゲノムDNAをテンプレートとして、プロモーター配列をPCR増幅させます。高忠実度Taqポリメラーゼと標準的なPCRコンポーネント、および事前に設計したオリゴヌクレオチドを用いてPCRマスターミックスを調製します。マスターミックスを2 mL PCRチューブに分注し、サーモサイクラーを用いて適切なプログラムでプロモーター断片の増幅を行います。PCR産物を1.2%アガロースゲルで電気泳動により分離します。UVトランスイルミネーターの下で、700 bpで増幅されたNINフラグメントを可視化します。標準的な手順に従って、このフラグメントを切り出し、溶出し、GatewayエントリーベクターであるpENTR/D-TOPOベクターにクローニングします。反応混合液 2 µLをコンピテント E.coli 細胞に42 °Cで50秒間ヒートショックし、50 mg/L kanamycinを添加したLBプレートに播種します。播種した細胞を37 °Cで一晩培養します。ランダムに選択した E.coli コロニーから単離したプラスミドを用い、M13オリゴヌクレオチドを使用してPCR反応を行います。1024 bpの断片が確認されれば、陽性クローンであることを示します。陽性エントリークローンとデスティネーションバイナリベクターを用いてLR反応を行います。反応液2 µLをE.coliに形質転換し、100 mg/Lのスペクチノマイシンを含むプレート上で37 °Cでコロニーを選択します。NIN特異的なオリゴヌクレオチドを用いてプラスミドを増幅させます。陽性クローンは700 bpで増幅されるはずです。クローン断片をシーケンシングし、正しさを確認してください。NINプロモーター構築物を、エレクトロコンピテントなK599 Agrobacterium rhizogenes細胞に導入します。そして、プロモーター特異的なオリゴヌクレオチドを用いて、再度クローンの確認を行います。Phaseolus vulgarisの種子を硫黄滅菌し、滅菌した濡れたフィルターペーパー上で、28 °Cの暗所にて2日間発芽させます。NINコンストラクトおよびコントロールベクターを持つAgrobacterium rhizogenes細胞150 µLを、スペクチノマイシン選択剤を含むLBプレートに塗布する。28 °Cで一晩培養する。Phaseolusの苗の種皮を取り除き、曲げた200 µLチップを用いてプレートからAgrobacterium rhizogenes細胞を掻き出す。その後、1 mLの滅菌蒸留水を用いてエッペンドルフチューブ内で再懸濁します。Agrobacterium rhizogenes細胞を3 mLのシリンジに回収し、あらかじめ準備したチューブセットにPhaseolusの苗を配置します。発芽した種子の下胚軸を針先で軽く突き刺すと同時に、Agrobacterium rhizogenes細胞を注入します。針が胚軸を貫通しないように注意してください。注入後の苗は、28 °C、明期16時間・暗期8時間の光周期に設定した育成チャンバー内で維持します。傷ついた胚軸上のカルスは、5～7日までに視認できるようになります。2週間後、根毛がある部位の2 cm下で茎を切り、主根を取り除いてから、滅菌済みバーミキュライトを入れたポットに移植します。同時に、根粒形成を誘導するために、Rhizobium tropiciを1 ml接種します。Rhizobium培養液はOD 600で6に希釈してください。植物を、温度 28 °C、明期 16 時間、暗期 8 時間の光周期の育成チャンバー内で維持し、B溶液およびD溶液で灌水します。NINプロモーターの時空間的な発現パターンを調べるため、異なる時点でサンプリングを行います。根を傷つけないように植物を取り出し、バーミキュライトが一切付着していない状態で根を洗浄します。NIN植物および対照植物から根をランダムに選び、サンプルをGUSアッセイ緩衝液中で37°C、暗所で16時間インキュベートして、GUS組織化学染色を行う。GUS染色された根を実体顕微鏡および複合顕微鏡で観察する。この写真は、主根におけるRhizobium誘導性のNINプロモーター発現を示している。NINプロモーターの発現は、Rhizobiumに感染した根毛細胞でも確認されました。さらに、根粒形成の異なる段階においてGUSの発現を記録することが可能です。ベクターコントロールの根では、GUSの発現は見られませんでした。このビデオを視聴することで、プロモーター構築物の設計および、Phaseolusの形質転換毛状根におけるプロモーター発現パターンの解析について十分に理解できるはずです。本システムは、Phaseolusにおける他の共生系や病原体相互作用、さらには他の真正双子葉植物におけるプロモーター発現パターンの解析へとさらに応用することが可能です。

plant-promoter-analysis-identification-characterization-root-nodule

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

私たちは、毛状根複合植物が困難な変換種で植物 -...

の複合植物の世代ウマゴヤシtruncatula根粒形成のアッセイに使用

側根誘導系で<em&gt;シロイヌナズナ</em&gt;とトウモロコシ

我々 は生きているセルで複雑な規制とシグナル伝達メカニズムを研究するダイズプロトプ...

簡便な分離大豆プロトプ ラストと一過的遺伝子発現解析への応用

ここで提示されたプロトコルの目的は、ジャガイモ根分泌物への endosphere 分離細菌...

植物と微生物の相互作用: ジャガイモ根分泌物に細菌 Mycoidesの転写応答

可視化とルート成長の in situ測定は非常に困難です。根の発育と栄養への応答に時間をかけて増殖を追跡するカスタマイズ可能な rhizobox...

根の生長およびローカライズされた栄養素に対する反応性を可視化する最適化された Rhizobox プロトコル

ここでは、ジャガイモを変換する 2 つのプロトコルを提案する.サツマイモネコブセンチュウ生成トランスジェニック植物毛状根自己伝達することができます野生型撮影アグロバクテリウム変換完了形質転換植物に します。我々...

アグロバクテリウムとサツマイモネコブセンチュウ-ジャガイモの変換を介したと GUS 染色によってスベリン遺伝子のプロモーター活性

リボソームアフィニティー精製(TRAP)を翻訳すると、臓器や組織の最小限の処理で開発プログラムを解剖する可能性があります。このプロトコルは、緑色蛍光タンパク質(GFP)標識リボソームサブユニットを標的とした細胞から高品質のRNAを生成します。qRT-PCR や RNA-seq...

細胞型特異的スケールでのシロイヌナズナ・タリアナの開発を調査するためのリボソーム親和性精製(TRAP)の翻訳

このプロトコルは、植物の根に土壌媒介微生物を接種するための戦略の詳細な要約を提示する。真菌 Verticillium longisporum および Verticillium...

植物の根に土壌媒介微生物を感染させる接種戦略

ここでは、トランスジェニックダイズ毛根の高効率生産のためのプロトコルを提示します。...

遺伝子機能解析のためのダイズ毛状根形質転換

ここでは、複合植物を生産するために アグロバクテリウムツメファシエンス...

アグロバクテリウム・リゾゲネスに基づく毛状根形質転換による効率的かつ再現性の高い複合植物の生産法

学ぶ植物プロモーター解析法。インゲンの根粒特異的プロモーターを同定・解析し、Agrobacterium rhizogenesを用いた毛状根誘導と遺伝子発現パターンの時空間解析を行います。共生条件下での遺伝子制御メカニズムの理解に役立ちます。

植物プロモーター解析: 同定とルート、インゲンの根粒特異的プロモーターの解析

さらに動画を探す