Name: フィールドを使用してでコナジラミ、タバココナジラミ、モデル システムとして綿の付着の昆虫のための生命表の開発のための方法論 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 23 s
Description: 学ぶコホート型生命表法による昆虫個体群の死亡率測定と死因特定の手法。Bemisia tabaciの不動な幼生期を用いて、農業生態系における個体群動態の理解と害虫管理戦略の構築に貢献します。

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我々 は感謝 + アシュトン、V. バークリー、k. Beimfohr、F. Bojorquez、j ・ カントレル、g. カストロ、r. クリステンセン、J. Fearn、C. Jara、+ ミード、G. Owens、L. ロダルテ、+ Sieglaff、A. Sonoqui、M. Stefanek、B. スチュアート、j. ・ トレホ、A. スレイドと e. Yescas のテクニカル サポート。部分的なサポートは米国農務省国立研究所食料・農業拡張 IPM プログラム米国農務省農業研究サービスと害虫管理の代替特別なプロジェクト、綿株式会社、によってアリゾナ州綿生産者協会、綿を提供されました基礎、米国農務省-クリー族、NAPIAP (西部)、西部 IPM 特別プロジェクト。

注: 以下の方法は、部分的な生命テーブルに明示的には含まれないため複製または大人の段階の死亡率と見なされます。それは卵からの大人の段階に死亡率を調べますので長期コホートは世代に相当します。
 1。 確立現場 <ol><li>昆虫が存在したら、作物の生育中にいつでも行為生命表。研究を開始するときの選択目標と研究の目的によって異なります</li>。
	<li>は、周囲のプロットや原野エリアからエッジ効果を最小限に抑えるためのプロットの中心に近い作物の 2 つの行を選択します。ワイヤー フラグや作物が大きくなれば簡単に配置を容易にする木の杭と各行のヘッダーをマークします</li>。
	<li>3-4 m プロットの端から平行移動の行に。1 つの行を使用して卵のコホートとニンフのコホートを確立するを確立する</li></ol> 2。卵のコホートを確立する <ol><li>手レンズ X 8 を使用する (一般に 2 番目または 3 番目のノード上から) 綿植物の主要な茎の上部の葉の裏側に卵を新しくを検索する 。
	注: B. タバココナジラミ のライフ ステージは一般に垂直分布植物と徐々 に古い幼虫段階下の上部にある卵と植物群落内。これは、結果 1 st 齢幼虫が卵と同じ葉に落ち着くために植物はそれにつれて初期産卵部位上の葉を追加します。
	新鮮な卵を観察し、昆虫をマークする 8 x レンズを使用する前に識別を検証する <ol><li>使用電力が 15 X レンズ。新鮮な卵は、レンズの下の明るい白い色を有し、古い (図 1 a と 1 b) は、卵から目立ちます。彼らが成熟卵歎色を暗きます</li>。
	</ol></li> <li>非毒性、超微細点黒永続的なマーカーを使用して、卵の周りに小さな円を描画します。描画後にサークル内で別の卵を置く女性のチャンスを最小限に抑えるため十分に円の小さい。
	<ol><li>弓またはドリルしてペンを挿入し、描画するときに、レンズを通して見た、( 図 2 a) 手レンズ X 8 の側面に穴やスロットで切ります</li>。
	</ol></li> <li>同じ葉でこの手順を繰り返します、可能であれば、他の卵をマークするには、単一の葉と葉のセクターあたり 2 つ以上の卵を卵 4 つ以上の合計をマーキングします。綿、葉は 3 つの主要な葉脈 ( 図 3) で 4 つのセクターに分割されます</li>。
	<li>マーク egg(s) を含む葉の葉柄の周り小型軽量段ボール タグを結ぶ。タグの数し、実験的なデザイン ( 図 2 b) によってプロットまたは治療番号の表記が含まれています</li>。
	<li>植物の上部にあるメインの幹周り低迷テープ 1 m 長をネクタイします。弓スタイルのネクタイを使用して、フィールドのこの場所に繰り返しの訪問者に表示させたり、必要に応じてテープを簡単に移動できます</li>。
	<li>レコードの葉数と位置についてポータブル アナログまたは電子ノート (表 1)。位置情報がより細かくメモ場所 (例えば 1-1、1-2、1-4 セクター 1、2 および 4 #1 の葉の上に卵を示す) に葉のセクターを使用します</li>。
	<li>単一日に各コホートを確立します 。
	注: 指定したプロットのコホートは、50 卵合計の最小値で構成されます。
	<ol><li>良いコホートのメンバーを配布する植物あたり 2 つ以上の葉を使用します 。
		注: 昆虫密度によってこれを含みどこでも 3-4 卵各 13 葉からまたは 50 葉と卵 1 個。個々 の植物は、できるだけ行の多くに沿ってマークの葉を配布する選択されます</li>。
	</ol></li></ol> 3。ニンフのコホートを確立する <ol><li>1 st を新しく解決を検索する手のレンズ X 8 についての葉の裏側に幼虫の令使用綿植物の主要な茎の上部から下 3-5 葉。8 X を使用してマーキング レンズ前に識別を確認する 15 X レンズを使用します</li>。
	<li>は、ニンフの周りに小さな円を描画するのに非毒性、超微細点黒永続的なマーカーを使用します。後でサークル内でセトリング クローラーのチャンスを最小限に抑えるため十分に円の小さいの描画します 。
	注: 新たに孵化した 1 st 齢幼虫は、卵の孵化後最初の数時間の間にいくつかの cm を移動できるクローラーと呼ばれます。それ、&#34; 落ち着く &#34; それがフィード大人が出るまで再び移動もなく脱皮がサイトに。これらは 1 セント 齢幼虫 ( 図 1)、クローラーから特徴的な定住しました。まず、彼らが動かないと 2 番目、2 次元のより、タイトなレイアウトし葉にフラット、少し半透明の琥珀色。
	<ol><li>弓またはドリルしてペンを挿入し、描画するときに、レンズを通して見た、( 図 2 a) 手レンズ X 8 の側面に穴やスロットで切ります</li>。
	</ol></li> <li>単一の葉の以上 4 つのニンフとリーフ セクターあたり 2 つ以上のニンフをマーキング、他のニンフをマークする、可能であれば、同じ葉にこのプロセスを繰り返します。綿、葉は 3 つの主要な葉脈 ( 図 3) で 4 つのセクターに分割されます</li>。
	<li>ネクタイ マーク ニンフを含む葉の葉柄の周り小型軽量段ボール タグです。タグの数し、実験的なデザイン ( 図 2 b) によってプロットまたは治療番号の表記が含まれています</li>。
	<li>植物の上部にあるメインの幹周り低迷テープ 1 m 長をネクタイします。弓スタイルのネクタイを使用して、フィールドのこの場所に繰り返しの訪問者に表示させたり、必要に応じてテープを簡単に移動できます</li>。
	<li>レコードの葉数と位置についてポータブル アナログまたは電子ノート (表 1)。位置情報がより細かくメモ場所 (例えば 1-1、1-2、1-4 セクター 1、2 および 4 #1 の葉の上に幼虫を示す) に葉のセクターを使用します</li>。
	1 st 幼虫の齢期し、ないクローラーがマークされて、解決を確保するための <li>は、各マークの葉に戻るし、初期セットアップ後約 1-2 時間のマーク付きの昆虫を観察します。ニンフ必要があります解決のリマークします</li>。
	<li>は、1 日に各コホートを確立します 。
	注: 指定したプロットのコホートは、合計 50 のニンフの最小値で構成されます。2 つ以上の葉より良いコホートのメンバーを配布するあたりの植物使用されます。昆虫密度に応じてこれは 3-4 のニンフと 13 の葉からどこでも含むことができるまたは 1 つのニンフと 50 の葉します。個々 の植物は、できるだけ行の多くに沿ってマークの葉を配布する選択されます。1 st 齢クローラー段階のためプロトコル 2 でマークされている卵は、ニンフとして続いている同じ昆虫s. したがって、クローラーの死亡率を測定、卵とニンフのコホートは通常、同じ日に確立されたので、時間の生命表が不整合わずか。研究はクローラーを示した死亡率はごくわずかと本質的に無視された 30 をすることができます</li>。
</ol> 4。観察と記録の卵の孵化と死亡率 <ol><li>卵コホートの確立の後 8-10 d (28-32 ° C; 平均アリゾナ夏条件) 後、マークの卵を含む葉を収集し、観察のために検査室に戻ります、解剖顕微鏡。卵が小さすぎて死亡率とフィールドでの死亡率の原因を明確に評価します</li>。
	<li>の卵のための死の原因を特定してコホートの確立 (表 1) で開始されたノートブックに記録します 。
	注: 死は脱落、捕食または著者として特徴付けられます。脱落: 卵が気象現象 (雨、ほこりを吹きつける風) によりない場合や捕食を咀嚼します。捕食: 吸引捕食者を残して倒壊した絨毛膜 ( 図 4 K)。卵を孵化が折りたたまれている、表示できますが、卵の絨毛膜の垂直スリットがあります。このスリットを探すために、顕微鏡下の葉身の絨毛膜をいじめる minuten 地上ピンを使用します。著者: 卵 8-10 d の期間後に孵化に失敗し、暗い黄褐色の色。アリゾナの下で、夏条件 (28-32 ° C) 卵だろう通常 5-7 日で孵化します。これは他の地域で異なる場合があります、調整フィールドからコレクション時間の必要があります</li>。
</ol> 5。観察と記録の発育と死亡率 <ol><li>コホートの確立の後の 2 日に 1 つはニンフの開発を評価して死んだ場合の死亡率の原因を割り当てるには 15 倍レンズを使用します。少なくとも週 3 回 (隔日) 観察。
	<ol><li>使用相対的なサイズ ( 図 1 -G) と齢を評価するために確立の後時間 。
		注: があります幼虫齢期 4 とはアリゾナ州夏条件 (28-32 ° C) を各 2 d 前後を持続させる最初の 3 つの段階および 3-5 d を永続的な最終段階の下で急速な成長 (発育 2 週を合計またはそれ以下)。新しいオブザーバーは、研究室または関心のホスト植物の温室で飼育昆虫を観察することによって齢サイズを学ぶ必要があります。全体的な体の大きさを基準にして bacteriosomes (コナジラミの共生の遺伝子の器官) の腹部に相対的なボリュームは幼虫の令期の参考指標 ( 図 1 -G)。新しく脱皮ニンフは、非常にフラットと半透明です。幼虫脱皮する準備ができて、もっと仰々しいプロファイルでは、ドーム型、不透明な外観</li>。
		<li>ニンフのための死の原因を特定してコホートの確立 (表 1) で開始されたノートブックに記録します 。
		注: 死は脱落, 寄生, 捕食または令 ( 図 4) によって不明として特徴付けられます。脱落型: 任意の段階の幼虫気象現象 (雨、ほこりを吹きつける風) による行方不明または捕食を咀嚼します。与えられた観測日デッドとライブのニンフの平均の段階として外れのニンフの段階を推定します。寄生: 4 th でのみ観察可能齢幼虫。発展途上の寄生幼虫 ( 図 4 a); し避難しているペアの黄色 bacterisomes幼虫のステージが表示されます ( 図 4) ではあります。寄生蜂の蛹が独特であると特定属 ( 図 4 b 、4 D)。捕食: 捕食者をしゃぶりニンフの内容を避難され折りたたまれた死体を残し ( 図 4 -4I)。まれに、咀嚼の捕食者は、証拠 ( 図 4 j) になります。上記の原因のいずれかに起因することはできません: 不明な死。湿気の多い環境で真菌性疾患死の他の原因があります。このカテゴリは、寄生吸血によって殺されたニンフもあります。ぬけがら ( 図 1 H) で特徴的な t 形スロットを残して大人として生き残るためのニンフが出てくる</li></ol></li> <li>(生きている) 場合、開発段階を記録し、死とコホートで開始ノートブックの段階の原因設立 (表 1).</li>
	<li>単一の葉の観察されるすべてのニンフがどちらかしたら死亡した、または、大人のコナジラミとして浮上して葉を収集し、研究室に戻る。解剖顕微鏡の高倍率を使用して、フィールドに記載されている死因が正確なことを確認し、修正します 。
	注: すべての非剥がれ死んだ昆虫に残ります葉典型的な 2 週間の観察期間とので、いくつかの検証は可能なできません</li>。
</ol> 6。データの概要と解析 <ol><li>相談リソース データから生命表を構築するために利用できる収集 2 , 8 , 11 、 31。生命表の例は表 2 として表示 。
	注: 堅牢な生命表分析は、時間および/または異なるサイトを介した複数の独立した生命表を必要があります。B. タバココナジラミ のような multivoltine 虫 1 シーズンの季節やサイトの複数にわたって、複数の生命表この可能性があります。
	<ol><li>推定実際死亡 (x/l 0) 世代の初めに確立された昆虫の数に基づいています 。
		本当の死亡率 = (x/l 0) x はステージ x 中の死亡数、l 0 が昆虫の数世代の始まり。これらの死亡率、総死亡率率 (表 2) の世代のための段階の見積もりを添加剤と d x の合計</li>。
		<li>は、(表 2) 特定の段階の初めに生きている昆虫の数に基づいてステージ (q x) 内で明白な死亡率を見積もります。ステージ固有 q x またはステージ固有 q x 内の係数を推定します。このレートは、ステージ内でのみ添加剤</li>。
		<li>を決定する数式を使用して限界の死亡率: 
		M B d B =/(1 d A) M B が死亡要因の限界税率 B d B は明白な要因 B の死亡率率と d A 要約」することができますすべての死亡要因因子 B 13 , 32 (表 3) のための死亡率の見かけ速度です 。
		注: コナジラミのような無柄の昆虫および他の多くの昆虫は、複数の原因特定のライフ ステージの中で死の連続していません。代わりに彼らが同時期に行動し、ステージ固有死亡率のいずれかから発生する 32 , 34 を正確に推定する最底限の率の推定は必要なので。たとえば、コナジラミの幼虫寄生蜂を攻撃します。寄生の卵が孵化、幼虫はホストの開発可能性があります。ホストの昆虫を殺すため、このアクティビティは、最初、オブザーバーに無症候性、または、ほとんど死の原因として入金する必要があります。捕食者がこの同じニンフを攻撃可能性がありますいくつかのケースででも、ニンフが死因に捕食または脱落に注意するオブザーバーをリード葉から外れている可能性があります。限界の死亡率は、これを修正します。
		<ol><li>K 値 35 k に変換限界のステージ固有のレート = ln (1 M)、どこで ln 自然対数を M は利益の限界の死亡率。k 値は、添加剤、これをさらに簡略化解析。k 値は、比例して死亡率 1 - に戻る変換することができます e [-k].</li>
		</ol></li> <li>としてかけがえのない死亡の推定 [1 - e (-TotalK)]-[1 - e (-{話す - kvalue 私 })]. 
		注: これは特定の死亡要因が削除された場合が実現されるべき全体の世代別死亡率の部分を与えます。たとえば、どのくらいの世代の死亡率は捕食や寄生が殺虫剤スプレーのため削除された場合失われる可能性があります?この方法で推定されるかけがえのない死亡死亡率の密度依存性がないことを想定しています</li>。
		<li>キー要因 <ol><li>は、任意の 1 つの段階または任意の 1 つの死亡の要因 (または 1 つのステージ内の 1 つの死亡要因) の k 値をプロットする単純なグラフィカル分析を使用合計 K 値に対して全体の世代のため (合計 K = すべての個々 の k 値の合計). 
			注: 合計 K 最高のパターンを最も密接に模倣死亡要因は、重要な要因、世代別死亡率 35 の変化に最も貢献する要因です。定量法合計 K で個々 の k 値を復帰して最大勾配値 3 を持つものとして重要な要因を識別します</li>。
		</ol></li> <li>昆虫の人口密度を個別に測定した ( 13 例) の自然対数の利子の要因の回帰 k 値密度依存性をテストします。重要な肯定的な斜面は、直接密度依存性と負の傾き逆依存性を示唆している 。
		注: 大人の存続および再生、多くの追加のパラメーター (例えば 生成時間、純生殖率、増加、特定の段階等 で寿命の瞬時率) については追加の生活表と、解析 (マトリックス モデルおよび弾性解析 36 , 37 を実施することができます</li>。
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Deevey, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Life+tables+for+natural+populations+of+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Quart.+Rev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Life tables for natural populations of animals.</a> Quart. Rev. Biol. 22, 283-314 (1947).</li>
<li>Southwood, T. R. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSouthwood%2C+TRE+%22Ecological+Methods%22">Ecological Methods</a>. , 2nd Ed, Chapman and Hall. (1978).</li>
<li>Podoler, H., Rogers, D. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/3853">A new method for the identification of key factors from life-table data.</a> J Anim Ecol. 44, 85-114 (1975).</li>
<li>Stiling, P. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/4926">Density-dependent processes and key factors in insect populations.</a> J Anim Ecol. 57, 581-593 (1988).</li>
<li>Cornell, H. V., Hawkins, B. A. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/2462969">Survival patterns and mortality sources of herbivorous insects: some demographic trends.</a> Am Nat. 145, 563-593 (1995).</li>
<li>Morris, R. F. <a target="_blank" href="https://www.cambridge.org/core/journals/canadian-entomologist/article/the-interpretation-of-mortality-data-in-studies-on-population-dynamics1/E32F7C2D2471C976AF5880E8B22D37DB">The interpretation of mortality data in studies on population dynamics.</a> Can Entomol. 89, 49-69 (1957).</li>
<li>Morris, R. F. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/1929811">Single-factor analysis in population dynamics.</a> Ecology. 40, 580-588 (1959).</li>
<li>Varley, G. C., Gradwell, G. R., Hassell, M. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aVarley%2C+GC+%22Insect+Population+Ecology%3A+An+Analytical+Approach%22">Insect Population Ecology: An Analytical Approach</a>. , Blackwell Sci. Pub. London. 212(1973).</li>
<li>Southwood, T. R. E., Reader, P. M. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/3782">Population census data and key factor analysis for the viburnum whitefly, Aleurotrachelus jelinekii, on three bushes.</a> J Anim Ecol. 45, 313-325 (1976).</li>
<li>Royama, T. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/2937325">Fundamental concepts and methodologies for the analysis of animal population dynamics, with particular reference to univoltine speices.</a> Ecol Monogr. 51, 473-493 (1981).</li>
<li>Carey, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+multiple+decrement+life+table%3A+a+unifying+framework+for+cause-of-death+analysis+in+ecology%5BTitle%5D)+AND+%22Oecologia%22%5BJournal%5D)">The multiple decrement life table: a unifying framework for cause-of-death analysis in ecology.</a> Oecologia. 78, 131-137 (1989).</li>
<li>Hawkins, B. A., Mills, N. J., Jervis, M. A., Price, P. W. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/3546654">Is the biological control of insects a natural phenomenon?</a> Oikos. 86, 493-506 (1999).</li>
<li>Naranjo, S. E., Ellsworth, P. C. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1570-7458.2005.00297.x/abstract">Mortality dynamics and population regulation in Bemisia tabaci.</a> Entomol Exp Appl. 116, 93-108 (2005).</li>
<li>Naranjo, S. E., Ellsworth, P. C. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S104996440900214X">The contribution of conservation biological control to integrated control of Bemisia tabaci in cotton.</a> Biol Control. 51, 458-470 (2009).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Applied+Demography+for+Biologist%3A+With+Special+Emphasis+on+Insects%22">Applied Demography for Biologist: With Special Emphasis on Insects</a>. Carey, J. R. , Oxford, NY. (1993).</li>
<li>Dinsdale, A., Cook, L., Riginos, C., Buckley, Y. M., De Barro, P. <a target="_blank" href="http://www.bioone.org/doi/abs/10.1603/an09061">Refined global analysis of Bemisia tabaci (Hemiptera: Sternorrhyncha: Aleyrodoidea: Aleyrodidae) Mitochondrial cytochrome oxidase 1 to identify species level genetic boundaries.</a> Ann Entomol Soc Am. 103, 196-208 (2010).</li>
<li>Oliveira, M. R. V., Henneberry, T. J., Anderson, P. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0261219401001089">History, current status, and collaborative research projects for Bemisia tabaci.</a> Crop Protect. 20, 709-723 (2001).</li>
<li>Jones, D. R. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1023/A:1022846630513">Plant viruses transmitted by whiteflies.</a> Eur J Plant Pathol. 109, 195-219 (2003).</li>
<li>United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Sticky+Cotton+-+Causes%2C+Impacts+and+Prevention%22">Sticky Cotton - Causes, Impacts and Prevention</a>. Hequet, E. F., Henneberry, T. J., Nichols, R. L. , Technical Bulletin No. 1915 (2007).</li>
<li>Palumbo, J. C., Horowitz, A. R., Prabhaker, N. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S026121940100117X">Insecticidal control and resistance management for Bemisia tabaci.</a> Crop Protect. 20, 739-765 (2001).</li>
<li>Horowitz, A. R., Kontsedalov, S., Khasdan, V., Ishaaya, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biotypes+B+and+Q+of+Bemisia+tabaci+and+their+relevance+to+neonicotinoid+and+pyriproxyfen+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Insect+Biochem+Physiol%22%5BJournal%5D)">Biotypes B and Q of Bemisia tabaci and their relevance to neonicotinoid and pyriproxyfen resistance.</a> Arch Insect Biochem Physiol. 58, 216-225 (2005).</li>
<li>Nauen, R., Denholm, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resistance+of+insect+pests+to+neonicotinoid+insecticides%3A+current+status+and+future+prospects%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Insect+Biochem+Physiol%22%5BJournal%5D)">Resistance of insect pests to neonicotinoid insecticides: current status and future prospects.</a> Arch Insect Biochem Physiol. 58, 200-215 (2005).</li>
<li>Naranjo, S. E., Ellsworth, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fifty+years+of+the+integrated+control+concept%3A+moving+the+model+and+implementation+forward+in+Arizona%5BTitle%5D)+AND+%22Pest+Manage+Sci%22%5BJournal%5D)">Fifty years of the integrated control concept: moving the model and implementation forward in Arizona.</a> Pest Manage Sci. 65, 1267-1286 (2009).</li>
<li>Palumbo, J. C., Castle, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IPM+for+fresh-market+lettuce+production+in+the+desert+southwest%3A+the+produce+paradox%5BTitle%5D)+AND+%22Pest+Manage+Sci%22%5BJournal%5D)">IPM for fresh-market lettuce production in the desert southwest: the produce paradox.</a> Pest Manage Sci. 65, 1311-1320 (2009).</li>
<li>Ellsworth, P. C., Martinez-Carrillo, J. L. <a target="_blank" href="http://profyh.com/assets/uploads/990613566d8e6d5a827b5d0ac3f1a27d.pdf">IPM for Bemisia tabaci: a case study from North America.</a> Crop Protect. 20, 853-869 (2001).</li>
<li>Naranjo, S. E., Ellsworth, P. C., Cañas, L. <a target="_blank" href="http://www.nhm.ac.uk/resources/research-curation/projects/chalcidoids/pdf_X/NaranjCaEl2008.pdf">Mortality and populations dynamics of Bemisia tabaci within a multi-crop system</a>. , USDA Forest Service (2009).</li>
<li>Naranjo, S. E. <a target="_blank" href="http://www.bioone.org/doi/abs/10.1603/0046-225X%282005%29034%5B1211%3ALAOTEO%5D2.0.CO%3B2">Long-term assessment of the effects of transgenic Bt cotton on the function of the natural enemy community.</a> Environ Entomol. 34, 1211-1223 (2005).</li>
<li>Naranjo, S. E. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/295962538_Establishment_and_impact_of_exotic_aphelinid_parasitoids_in_arizona_A_life_table_approach">Establishment and impact of exotic Aphelinid parasitoids in Arizona: A life table approach.</a> J Insect Sci. 8, 36(2008).</li>
<li>Asiimwe, P., Ellsworth, P. C., Naranjo, S. E. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/een.12340/abstract">Natural enemy impacts on Bemisia tabaci (MEAM1) dominate plant quality effects in the cotton system.</a> Ecol Entomol. 41, 642-652 (2016).</li>
<li>Naranjo, S. E. <a target="_blank" href="https://www.ars.usda.gov/research/publications/publication/?seqNo115=199997">Survival and movement of Bemisia tabaci (Homoptera: Aleyrodidae) crawlers on cotton.</a> Southwest Entomol. 32, 17-23 (2007).</li>
<li>Bellows, T. S., Van Driesche, R. G., Elkinton, J. S. <a target="_blank" href="http://www.annualreviews.org/doi/abs/10.1146/annurev.en.37.010192.003103">Life-table construction and analysis in the evaluation of natural enemies.</a> Annu Rev Entomol. 37, 587-614 (1992).</li>
<li>Buonaccorsi, J. P., Elkinton, J. S. <a target="_blank" href="http://meme.biology.tohoku.ac.jp/POPECOL/RP%20PDF/32(1)/pp.151.pdf">Estimation of contemporaneous mortality factors.</a> Res Popul Ecol. 32, 151-171 (1990).</li>
<li>Royama, T. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/2937326">Evaluation of mortality factors in insect life table analysis.</a> Ecol Monogr. 51, 495-505 (1981).</li>
<li>Elkinton, J. S., Buonaccorsi, J. P., Bellows, T. S., Van Driesche, R. G. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/BF02513520">Marginal attack rate, k-values and density dependence in the analysis of contemporaneous mortality factors.</a> Res. Pop. Ecol. 34, 29-44 (1992).</li>
<li>Varley, G. C., Gradwell, G. R. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/2213">Key factors in population studies.</a> J Anim Ecol. 29, 399-401 (1960).</li>
<li>Caswell, H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCaswell%2C+H+%22Matrix+population+models%22">Matrix population models</a>. , 2nd ed, Sinauer Associates, Inc. Publishers. (2001).</li>
<li>Mills, N. J. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1049964405000484">Selecting effective parasitoids for biological control introductions: Codling moth as a case study.</a> Biol Control. 34, 274-282 (2005).</li>
<li>Foltyn, S., Gerling, D. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1570-7458.1985.tb03527.x/abstract">The parasitoids of the aleyrodid Bemisia tabaci in Israel: development, host preference and discrimination of the aphelinid wasp Eretmocerus mundus.</a> Entomol Exp Appl. 38, 255-260 (1985).</li>
<li>Headrick, D. H., Bellows, T. S., Perring, T. M. <a target="_blank" href="http://digitalcommons.calpoly.edu/cgi/viewcontent.cgi?article=1006&context=hcs_fac">Behaviors of female Eretmocerus sp nr californicus (Hymenoptera: Aphelinidae) attacking Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) on sweet potato.</a> Environ Entomol. 24, 412-422 (1995).</li>
<li>Liu, T. X., Stansly, P. A. <a target="_blank" href="https://academic.oup.com/aesa/article-abstract/89/1/96/13893/Oviposition-Development-and-Survivorship-of">Oviposition, development, and survivorship of Encarsia pergandiella (Hymenoptera: Aphelinidae) in four instars of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae).</a> Ann Entomol Soc Am. 89, 96-102 (1996).</li>
<li>Ardeh, M. J., deJong, P. W., vanLenteren, J. C. <a target="_blank" href="http://library.wur.nl/WebQuery/wurpubs/343851">Selection of Bemisia nymphal stages for oviposition or feeding, and host-handling times of arrhenotokous and thelytokous Eretmocerus mundus and arrhenotokous E-eremicus.</a> BioControl. 50, 449-463 (2005).</li>
<li>Zang, L. S., Liu, T. X. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1570-7458.2008.00667.x/abstract">Host-feeding of three parasitoid species on Bemisia tabaci biotype B and implications for whitefly biological control.</a> Entomol Exp Appl. 127, 55-63 (2008).</li>
<li>Hagler, J. R., Naranjo, S. E. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1570-7458.1994.tb01802.x/full">Determining the frequency of heteropteran predation on sweetpotato whitefly and pink bollworm using multiple ELISAs.</a> Entomol Exp Appl. 72, 63-70 (1994).</li>
<li>Hagler, J. R., Naranjo, S. E. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/48856005_Qualitative_Survey_of_Two_Coleopteran_Predators_of_Bemisia_tabaci_Homoptera_Aleyrodidae_and_Pectinophora_gossypiella_Lepidoptera_Gelechiidae_Using_a_Multiple_Prey_Gut_Content_ELISA">Qualitative survey of two Coleopteran predators of Bemisia tabaci (Homoptera, Aleyrodidae) and Pectinophora gossypiella (Lepidoptera, Gelechiidae) using a multiple prey gut content ELISA.</a> Environ Entomol. 23, 193-197 (1994).</li>
<li>Hagler, J. R., Jackson, C. G., Isaacs, R., Machtley, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Foraging+behavior+and+prey+interactions+by+a+guild+of+predators+on+various+lifestages+of+Bemisia+tabaci%5BTitle%5D)+AND+%22J+Insect+Sci%22%5BJournal%5D)">Foraging behavior and prey interactions by a guild of predators on various lifestages of Bemisia tabaci.</a> J Insect Sci. 4, (2004).</li>
<li>Price, J. F., Taborsky, D. <a target="_blank" href="http://www.jstor.org/stable/3495495">Movement of immature Bemisia tabaci (Homoptera, Aleyrodidae) on poinsettia leaves.</a> Florida Entomol. 75, 151-153 (1992).</li>
<li>Simmons, A. M. <a target="_blank" href="http://www.bioone.org/doi/abs/10.1603/0013-8746(2002)095%5B0464:SOCOBT%5D2.0.CO%3B2">Settling of crawlers of Bemisia tabaci (Homoptera : Aleyrodidae) on five vegetable hosts.</a> Ann Entomol Soc Am. 95, 464-468 (2002).</li>
<li>Royama, T. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/2265658">A fundamental problem in key factor analysis.</a> Ecology. 77, 87-93 (1996).</li>
<li>Stiling, P., Throckmorton, A., Silvanima, J., Strong, D. R. <a target="_blank" href="http://www.jstor.org/stable/1941566">Does spatial scale affect the incidence of density dependence - A field test with insect parasitoids.</a> Ecology. 72, 2143-2154 (1991).</li>
<li>Hassell, M., Latto, J., May, R. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/5130">Seeing the wood for the trees: detecting density dependence from existing life table studies.</a> J Anim Ecol. 58, 883-892 (1989).</li>
<li>Berryman, A. A. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1034/j.1600-0706.2002.12106.x/abstract">Population regulation, emergent properties, and a requiem for density dependence.</a> Oikos. 99, 600-606 (2002).</li>
<li>Sibly, R. M., Smith, R. H. <a target="_blank" href="https://eurekamag.com/research/008/812/008812476.php">Identifying key factors using lambda contribution analysis.</a> J Anim Ecol. 67, 17-24 (1998).</li>
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通常、広く世代を重複 multivoltine 昆虫用のテーブルは、垂直アプローチと様々 なグラフィカルな数学的テクニックでの人口の繰り返しのサンプリングに制約生命の開発されます。募集は、様々 な段階を推定し、様々 な生活段階2の密度を変更するから死亡率を推測します。ここでのアプローチの強さは人口から不動の等しい高齢者昆虫のグループを分離し、時間をかけて彼らの運命はこの制限を移動しました。死亡率を推定することができます直接と同様に重要なこの死亡率のエージェント以内に識別できます、少なくとも (例えば捕食、脱落をしゃぶり) のカテゴリ。
死亡率のこれらの広範なカテゴリは 15 X レンズとフィールドで区別する比較的簡単が、死亡原因の特定がより少なく特定。特定の吸引捕食者の種の更なる描写や脱落の原因の特定が可能です。ナランホ ・ エルズワース13ステージ固有の捕食速度の測定値とさまざまな咀嚼プレデター種と天気パラメーター (降雨量、風速) 料金の協会に関連する捕食者の種を識...

生命表は、生態1,2で長い歴史を持つ一般的なツールです。生命表が理解し、個体群動態を予測する重要なパラメーターの数を定量化する生れおよび時間とそのようなデータ上の人口の死の本質的にスケジュールを使用できます。生命表には、栄養の相互作用を理解するため、農業と自然システムで害虫を管理するため制御戦略の開発に重要な死の原因の情報も。昆虫の3,の4、5、数多くの生活のフィールド ベース テーブルが構築され、解析力学、規制と管理の多くの昆虫の個体数の予測に重要な洞察を提供していると自然のシステム6,7,8,9,10、11,12,13,14。主の生れおよび死が自然死亡力と現実的な環境変数に昆虫を公開しない人工条件下でのスケジュールを調べる研究室による研究を記述する用語生命表もよくされます。一般的に、研究室の研究の目的は、種の比較生物の可能性を推定するためです。ここで説明する方法の焦点は、フィールド ベース定義調査実現環境に対する潜在的なです。
等しい高齢者の実際のコホートがその死に至るまで自分たちの生活の初めから水平または垂直、安定した年代を想定して構造を持つ人口の時間を通して頻繁にサンプルを撮影する場所として特徴付けられる生命表重要な率は数学的に構築されたコホート2,15から推論されます。展開できる生命表の種類は、昆虫の性質によって異なります。このようなアプローチは複数と広く重複世代毎年 multivoltine 昆虫の非常にチャレンジングなことができますが多くの場合 univoltine (年間 1 世代) 昆虫の水平生命表を開発できます。分析法のホストを提案し、垂直生命表 (たとえばサウスウッド2参照) 昆虫の人口を開発するために使用します。ここで示す方法論は、無柄のライフ ステージの存在、特に特定の生活史特性を持つ multivoltine の昆虫フィールドにベースのコホート、水平の生命表の開発を可能します。モデル システムとして綿の主要害虫のメソッドを示します。
コナジラミ、タバココナジラミバイオタイプ B (シルバーリーフコナジラミを =、中東アジア マイナー 116) 収量および品質など多くの農業および園芸作物に悪影響を与える農業の世界的な害虫は、温帯地域の17の農業システムを保護します。師部は、幼虫の摂食、植物ウイルスや甘露18,19の付着による作物の品質効果の伝送による原因不明の疾患栄養流れを乱す給餌により発生する影響.昆虫は広いホストの範囲を持って、multivoltine、地域や利用できる食物資源20によって年間 12-13 世代として。管理上の課題もその高い生殖能、分散し、内および農業システム、静止舞台 (休眠または見積) と急速に抵抗を開発するその処分の欠如との間の移行の能力によって悪化抑制21,22用殺虫剤。
かなりの進歩は、効果的かつ経済的に影響を受ける作物23,24,25でこの害虫の個体数を管理する統合された害虫管理 (IPM) 戦略の開発にしました。B. タバココナジラミの個体群動態の音の基本的な理解を前提としていたこれらの管理システムと生命表は、このような理解を有効にしている重要な技術をされています。アリゾナ州の生命表は推定と複数作物システム13,26 B. タバココナジラミの重要な死亡率軍の識別を許可している、関連する死亡率ダイナミクス計測を有効にしています。殺虫剤14, 非標的効果を含む経営戦略 transgenic 綿殺虫タンパク質27の生産の潜在的な機能非標的効果を推定するための手段を提供している、厳格なをサポートしています。伝統的生物的防除プログラム28 (ナランホ、未発表データ) の評価、トップダウンとボトムアップに及ぼす害虫ダイナミクス29の比較効果を探索する助け。これらすべてのアプリケーションは、ここで説明した方法論を展開しています。アプローチは自然と管理対象システムの数の昆虫個体群生態学の研究の役に立つかもしれない。

<table><tbody><tr><td>フラグテープ</td><td>ゲンプラー、ジェーンズビル、ウィスコンシン州 米国</td><td>52273</td><td>5色</td></tr><tr><td>マニラ商品タグ</td><td>アメリカンタグ アメリカンタグ 会社、ピコリベラ、カリフォルニア州</td><td>米国 12-104</td><td></td></tr><tr><td>ウルトラファインポイントマーカー</td><td>サンフォード、ベルウッド、イリノイ州、米国</td><td>451898</td><td>オフィスマックス、アマゾン</td></tr><tr><td>ピーク ルーペ 8X</td><td>Adorama、ニューヨーク、ニューヨーク 米国</td><td>2018</td><td></td></tr><tr><td>ピーク ルーペ 15X</td><td>Adorama, New York, NY USA</td><td>19621</td><td></td></tr></tbody></table>

フィールドを使用してでコナジラミ、タバココナジラミ、モデル システムとして綿の付着の昆虫のための生命表の開発のための方法論

Methodology for Developing Life Tables for Sessile Insects in the Field Using the Whitefly, Bemisia tabaci, in Cotton As a Model System

生命表は、生年月日と時間をかけて集団から死のスケジュールを測定する手段を提供します。彼らは、ソースおよび生態学、農業生態系を含むさまざまなアプリケーションを持っている集団で死亡率を定量化するも使用できます。水平、またはコホートに基づく、生命誕生から死、人口の個人のグループを従うために重要な人口率を定量化の最も直接的かつ正確なメソッドのテーブルを提供します。ここでは、実施プロセスとグローバルな害虫、タバココナジラミの未熟なライフ ステージの付着の性質を利用したフィールドでコホートに基づく生命表分析プロトコルが掲載されています。個々 の昆虫は綿の葉の裏側にある、非毒性ペンで昆虫の周りに小さな円を描画することによってマークされます。この昆虫、観察できる繰り返し測定する手レンズの助けを借りて時間をかけて自然と導入された死亡率力に関連付けられている 1 つの段階から次に死のステージ固有の原因を識別するために開発。解析はどのように正しく測定する複数死亡軍各ステージ内で同時期その行為と意味のある人口動的メトリックを提供するようなデータを使用する方法を説明します。メソッドは直接アダルト存続および再生は、未熟な段階のダイナミクスへの推論の制限については考慮しません。綿におけるボトムアップ (工場品質) とB. のタバココナジラミの死亡率のダイナミクスに対するトップダウン (天敵) 効果の影響の測定に焦点を当てて、例が表示されます。

例のコホートは、典型的なプレゼンテーションと生命表の結果の計算を表示する表 2で示されます。最も役に立つデータは、各ステージ内で各要素の限界の死亡率に取り込まれます。これらの料金を k 値 (プロトコル セクション 6) に変換することによってすべての要因の上ステージ特異的死亡率とすべての段階で因子特異的死亡率簡単に推定できる世代の死亡率を合計することができますよう。かけがえのない死亡、キー係数と密度依存性解析も容易になります。
Asiimweらの研究から代表的な結果を示す29. この研究生活表綿におけるボトムアップ (工場品質) とトップダウン (自然の敵への影響) に及ぼす影響* タバココナジラミ個体群の死亡率の比較の結果を測定します。3 年間の複製 (n = 4) 分割プロット研究は主要なプロットと自然の敵操作の 2 つのレベルと...

生命表、昆虫の個体数のソースの定量化と死亡率との理解、予測、生態系の動態を操作します。導電性付着の未熟なライフ ステージと昆虫のフィールドにコホートに基づく生命表を分析するための方法が掲載されています。

Life tables provide a means of measuring the schedules of birth and death from populations over time. They also can be used to quantify the sources and ...

このコホートベースの生命表アプローチの全体的な目的は、野外における昆虫個体群の死亡率を直接定量化し、死亡の原因を特定することです。この手法は、個体群の死亡に寄与する要因の把握や、最終的には個体群の増減率の理解など、個体群動態における重要な疑問への回答に役立ちます。この手法の主な利点は、野外の現実的な条件下で、複数の原因による死亡源と死亡率を直接的に測定できることです。この手法のアイデアは、この昆虫が未成熟段階では移動しないことを知った際に得られました。これにより、個々の昆虫の運命を直接追跡することが可能になります。手順のデモンストレーションは、大学院生のIsadora Bordiniと、ラボテクニシャンのFrancisco Bojorquezが行います。害虫が出現した後であれば、作物の生育期間中のいつでも生活史表（life table）を作成してください。調査の開始時期の選択は、研究の目的や目標によって異なります。周囲の区画や未耕作地からの縁辺効果（edge effect）を最小限に抑えるため、区画の中央付近から作物を2列選択してください。各列の端をワイヤーフラグまたは木の杭で標示します。列から3〜4m入った地点をサンプリングサイトとして選定してください。後の観察を簡略化するため、1つの列を卵コホートの確立に、もう1つの列を幼虫コホートの確立に使用するように選択します。卵のコホートには、少なくとも50個の卵を含める必要があります。行動および植物の成長の結果、Bemisia tabaciの生活史ステージは通常、キャノピー内で垂直に分布しており、上部に卵が、その下に段階的に高齢の幼虫ステージが位置します。8倍のハンドレンズを使用して、葉の裏側にある産みたての卵を探してください。理想的には、ハンドレンズの側面にペンが通る穴があるものを使用してください。研究対象となる各植物について、卵が付いた葉を1枚ずつ見つけます。次に、15倍のレンズを使用して、より詳細な観察を行います。卵は成熟するにつれて褐色に変化するため、新鮮な卵は明るい白色をしており、古い卵と区別できます。このプロトコルの最も重要な点は、産卵直後の卵と、定着したばかりの1齢幼虫を正確に識別することです。正確な結果を得るためには、各生活史ステージの開始直後からライフテーブルの観察を開始することが不可欠です。卵を見つけたら、無毒の極細黒色油性マジックを使用して、卵の周囲に小さな円を描きます。他の卵が円の中に産み付けられないよう、円は小さく維持してください。同じ葉の4つの異なるセクターに、最大4個までの卵に印を付けます。綿の葉には、主脈によって分けられた4つのセクターがあります。葉のセクターにつき卵を1つだけ選択してください。実験計画に応じて、プロット番号または処理番号を記載した小型で軽量のカードボードタグを葉柄

methodology-for-developing-life-tables-for-sessile-insects-field

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JoVE Journal

Environment

環境

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学ぶコホート型生命表法による昆虫個体群の死亡率測定と死因特定の手法。Bemisia tabaciの不動な幼生期を用いて、農業生態系における個体群動態の理解と害虫管理戦略の構築に貢献します。

フィールドを使用してでコナジラミ、タバココナジラミ、モデルシステムとして綿の付着の昆虫のための生命表の開発のための方法論

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