Name: キイロショウジョウバエ成虫の間接飛翔筋の光学断面筋決定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-31T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 43 s
Description: 学ぶ光学断面法によるキイロショウジョウバエ成虫の間接飛翔筋面積定量化手法。筋萎縮やミオトニー性ジストロフィー研究における筋量評価に応用可能です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

著者は、このプロトコルのフィードバックと改善の並進のゲノム グループとキャスリン J ハンソンのメンバーに感謝したいと思います。このプロジェクトは研究助成金 SAF2015-64500-R、ヨーロッパ地域開発資金、Ministerio デ エコノミア y Competitividad R.A に授与を含むとを行った。

1. 固定と樹脂埋め込み
<ol><li>二酸化炭素 (CO2) もしくは氷ブロックを使用して低体温症ハエを麻酔します。(全体の飛行を参照する低倍率) と管の内径とはさみを使って、足、翼、頭、固定液の浸透を促進する腹部の末端部を外します。死体の処理は、胸郭の変形を避けるためにこのステップで必要な注意してください。 注意: 手順の最後で適切に処理された個人の十分な数を確保する遺伝子型あたりの少なくとも 12 のハエから始まります。</li>
	<li>ソリューション 1 の氷 (チューブあたり 6 人の最大を置く) 含む 200 μ L に 1.5 mL チューブに死体を転送します。 注: 死体は、20 分以上解決策 1 で残ることができません。<ol>
<li>解決策 1、これらのボリュームの割合でコンポーネントを混在させる: ¼ 0.2 M NaH2PO4¼ 0.2 M Na2HPO4 8% グルタルアルデヒドの ¼ ¼ 4% パラホルムアルデヒド。</li>
	</ol>
</li>
	<li>ソリューション 2 の 200 μ L を追加し、氷上で 30 分間インキュベートします。<ol>
<li>解決策 2: は、解決策 1 と 1:1 (v/v) の割合で OsO4を混ぜます。 注意: OsO4は非常に有毒です。適切な安全対策と発煙のフードを操作します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>すべての液体を削除します。解決策 2 を 200 μ l 添加し、1-2 時間の氷の上を孵化させなさい。</li>
	<li>ソリューションを削除して、傾斜エタノール シリーズを通してサンプルを次のように脱水: 一度で 30%、50%、70%、90%、2 回で絶対エタノール;5 分ごと。サンプルをカバーするエタノール 1 mL を追加します。 注: 組織は 90% エタノールで配置されると、後続の手順は室温で実行できます。</li>
	<li>各インキュベーション 2 回 10 分のプロピレンの酸化物のサンプルをインキュベートします。 注意: プロピレンの酸化物は有毒、発煙のフードで使用します。</li>
	<li>1:1 (v/v) エポキシ樹脂及びプロピレンの酸化物の混合物で酸化プロピレンを交換し、一晩室温で孵化させなさい。 注意: 樹脂は、液体状態非常に有毒です。樹脂 (A、B、C、D) の 4 つのコンポーネントのセットとして提供されます。<ol>
<li>エポキシ樹脂、追加使い捨てビーカーの樹脂 (A)、硬化剤の 44.5 g 54 g で 2.5 g 加速器の (C) と 10 g の可塑剤の (B) (D)。発煙のフードのすべての樹脂部品を組み合わせます。(6 ヶ月) のための-20 ° c または-80 ° c (数年) の因数で樹脂を格納します。</li>
		<li>樹脂を破棄するには、固体樹脂は有害ではないので 24 h 70 ° C で焼きます。ソリューションは、OsO の痕跡を含めることができますので、適切な国際手続に従って重金属グループのすべての以前のソリューションを破棄4.
</li>
	</ol>
</li>
	<li>100% 樹脂で以前の混合物を交換し、4 時間サンプルをインキュベートします。</li>
	<li>新しい樹脂 (金型の各ウェルで 1 つ死体) を含むプラスチック金型に死体を転送します。削った木の棒や針を使用して転送、井戸に死体を方向づけるし、一晩パスツール オーブン 70 ° C で重合する樹脂のまま 注: 臼歯トリミングとセクショニングの死体の適切な向きを確保するため、死体で横たわるべき彼らの長い側に井戸の端に近い非常に枝肉の前部で。</li>
</ol>2. トリミングとブロックの断面
<ol><li>金型から重合樹脂ブロックを削除します。かみそりの刃を使用して、樹脂をトリムし、死体を取り巻く台形形状を形成するミクロトームで適切な方向を与えます。匹敵する結果を得るため横縫合後すべての死体をセクショニングを開始します。 注: セクションは、サンプルを正しくトリムする DLMs の前後軸に垂直でなければなりません (図 3)。</li>
</ol><img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56179/56179fig3.jpg"> 図 3.筋強直性ジストロフィーの大人 thoraces を樹脂包埋の卵割セクション モデル ハエ。(A) 試料のトリミングは画像右背側部のセクションは完全に筋肉に横なかった正しいでした。結果として、上部右側にある 3 つの筋束は左サイドのものよりも大きく見えます。この間違いは、筋面積の過大評価になります。(B) 正しくトリム樹脂ブロックの断面。スケール バー: 200 μ m。
<ol><li>1.5 μ m、ウルトラミクロトームと分厚い部分をカットし、糊のスライドにわたって水滴にセクションを転送します。<ol>
<li>匹敵する結果を取得するすべてのサンプルの mesothorax セグメントからセクションを取得します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>H2O が蒸発するまでに 70-80 ° C で加熱ブロックのセクションを含むスライドを配置します。この時点で、サンプルは、OsO4コントラスト (図 4 a) で観察できます。</li>
</ol>3. IFM セクションを汚す
<ol><li>十分なトルイジン ブルー約 30 のセクションをカバー暖房のブロックの s。<ol>
<li>トルイジン ブルー ソリューション、トルイジン ブルーの 1%、H2o. のホウ砂の 1% を解散します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>H2O で洗浄し、水を蒸発する暖かいプレートにスライドを残します。染色トルイジン ブルー コントラストをする必要がある場合を繰り返します (図 4 b) を強化します。</li>
</ol><img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56179/56179fig4.jpg"> 図 4.異なるコントラスト染色と大人の thoraces を樹脂包埋の卵割セクション。両方のパネルは、DM1 モデル ハエ Abp1図 2Dのようにうんざりの画像を表示します。(A) OsO4コントラストを持つセクションのイメージ。(B) セクションとトルイジン ブルー染色により筋の筋束のより良い視覚化できます。スケール バー: 200 μ m。
4. 取り付け IFM セクション
<ol><li>H2O が蒸発するまで加熱ブロック スライドを乾燥します。</li>
	<li>セクションにメディアをマウントの 1 または 2 滴を入れて、上を置きます。 注意: は、メディアをマウントは有毒であるため発煙のフードでこの手順を実行します。</li>
</ol>5. 画像と筋肉領域の定量化の取得
<ol><li>DLM 筋肉のセット全体がフォーカスになるよう低倍率で画像を撮影します。我々 は通常、10 X を使用します。<ol>
<li>統計分析のためフライあたり少なくとも 5 連続画像を撮影し、, 実験群あたり少なくとも 5 ハエを分析します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>全身の筋肉群 (図 5 a) を含むイメージを選択します。軸またはセクションの向きを確認し、結果を歪める不適切な方向にサンプルを破棄 (図 3 a を比較/ひどく区別する 3 b と配向のセクション、それぞれ)。</li>
	<li>DLMs (図 5 a/5B) のみを含むピクセル単位で領域を選択するのに ImageJ ソフトウェアを使用します。使用する参照領域には異なる実験群間比較のため最大筋肉とフライ常でしょう。比較する異なる遺伝子型のすべての画像では、参照領域 (図 5 b) に等しい大きさの DLMs を含む領域を選択します。</li>
	<li>画像 J コマンドで画像を 2 値化する:プロセス/バイナリ/作るバイナリ分野や関心 (図 5) の筋肉に対応しないピクセルを削除します。<ol>
<li>Artefactual 黒い斑点が筋以外の領域に表示される場合は、描画ツールのコマンドでそれらを削除し、消しゴムのシンボルを選択します。</li>
	</ol>
</li>
</ol><img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56179/56179fig5.jpg"> 図 5.筋肉の領域を決定するための解析手順をイメージします。(A) 横断部筋強直性ジストロフィー 1 型モデルは、DLM を含む四角形で胸部を飛ぶ。(B) 選択したエリアだけ間接飛翔筋と腸 (*)。(C) Binarized 画像。黒の領域は、目的の筋肉に対応します。腸は、筋肉領域の正確な定量化のため消されています。スケール バー: 200 μ m。
<ol start="5"><li>コマンドの総数から筋肉組織 (黒のピクセル) に対応するピクセルの割合を数値化:分析/計測・面積率オプションを選択します。この領域の割合は、それぞれのフライの DLM 筋肉量の推定です。</li>
</ol>

<ol><li>Fernandes, J., Bate, M., Vijayraghavan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+the+indirect+flight+muscles+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Development of the indirect flight muscles of Drosophila.</a> Development. 113, 67-77 (1991).</li>
<li>Fernandes, J. J., Keshishian, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterning+the+dorsal+longitudinal+flight+muscles+%28DLM%29+of+Drosophila%3A+insights+from+the+ablation+of+larval+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Patterning the dorsal longitudinal flight muscles (DLM) of Drosophila: insights from the ablation of larval scaffolds.</a> Development. 122, 3755-3763 (1996).</li>
<li>Hartenstein, V. <a target="_blank" href="http://www.sdbonline.org/sites/fly/atlas/00atlas.htm">Atlas of Drosophila Development.</a> Atlas Drosoph. Dev. , 1-57 (1993).</li>
<li>Tomlinson, A., Ready, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+fate+in+the+Drosophila+ommatidium%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell fate in the Drosophila ommatidium.</a> Dev. Biol. 123, 264-275 (1987).</li>
<li>Griffith, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osmium+Tetroxide+And+Its+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Platin+Met+Rev%22%5BJournal%5D)">Osmium Tetroxide And Its Applications.</a> Platin Met Rev. 18, 94-96 (1974).</li>
<li>Bird, T. D. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1165/">Myotonic Dystrophy Type 1.</a> GeneReviews. 1, 1-23 (1993).</li>
<li>Bargiela, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+autophagy+and+apoptosis+contribute+to+muscle+atrophy+in+a+myotonic+dystrophy+type+1+Drosophila+model%5BTitle%5D)+AND+%22Dis+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Increased autophagy and apoptosis contribute to muscle atrophy in a myotonic dystrophy type 1 Drosophila model.</a> Dis Model Mech. 8, 679-690 (2015).</li>
<li>Llamusi, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscleblind%2C+BSF+and+TBPH+are+mislocalized+in+the+muscle+sarcomere+of+a+Drosophila+myotonic+dystrophy+model%5BTitle%5D)+AND+%22Dis.+Model.+Mech%22%5BJournal%5D)">Muscleblind, BSF and TBPH are mislocalized in the muscle sarcomere of a Drosophila myotonic dystrophy model.</a> Dis. Model. Mech. 6, 184-196 (2012).</li>
<li>García-López, A., Llamusí, B., Orzáez, M., Pérez-Payá, E., Artero, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+discovery+of+a+peptide+that+prevents+CUG-RNA+hairpin+formation+and+reverses+RNA+toxicity+in+myotonic+dystrophy+models%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">In vivo discovery of a peptide that prevents CUG-RNA hairpin formation and reverses RNA toxicity in myotonic dystrophy models.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 11866-11871 (2011).</li>
<li>van der Plas, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+Dystrophin+is+required+for+integrity+of+the+musculature%5BTitle%5D)+AND+%22Mech.+Dev%22%5BJournal%5D)">Drosophila Dystrophin is required for integrity of the musculature.</a> Mech. Dev. 124, 617-630 (2007).</li>
<li>Lloyd, T. E., Taylor, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flightless+flies%3A+Drosophila+models+of+neuromuscular+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+New+York+Acad+Sci%22%5BJournal%5D)">Flightless flies: Drosophila models of neuromuscular disease.</a> Ann New York Acad Sci. , 1184(2010).</li>
<li>Babcock, D. T., Ganetzky, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+accurate+and+rapid+measurement+of+flight+performance+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">An improved method for accurate and rapid measurement of flight performance in Drosophila.</a> J. Vis. Exp. , e51223(2014).</li>
</ol>

利害の対立が宣言されていません。

キイロショウジョウバエが人間の神経筋疾患7,10,11の出現によって特徴付けられる筋強直性ジストロフィーの研究に有用なモデルであることが実証されています。筋肉の萎縮。ここで提示されたプロトコルは、発症やフライのモデルの特定の病気の進行による筋変性を定量化するための便利なツールです。たとえばに従うし、さまざまな年齢層のハエでこの分析を実行することによって筋線維の変性を定量化することが可能ですも。
プロトコルの重要なステップがあります。組織の劣化を避けるために、固定する前にハエを分析するために必要な時間を最小限にする必要があります。(図 6) の筋肉の固定液の浸透、頭、翼とフライのインテリアへのソリューションのアクセスを確保するハエの足を削除することが重要です。関心の筋肉は全く見えない横断セクションを得るために不可欠です。定量化のためのサンプルの 2...

フルーツ フライの胸部には、飛翔筋は機能的、生理的、解剖学的に全く異なる 2 つの異なるクラスが含まれています。これらの筋肉: 間接飛翔筋 (IFM) 背縦 (DLM) や背腹 (DVM) の筋肉 (図 1) と同期のフライトから成る制御筋肉1,2。これらの筋肉は、一緒に飛行のために必要な昇格した機械力を生成します。サイズ、分布との間の吻尾処分横断面3 (図 2 a) の簡単なオリエンテーションを許可します。このため、ショウジョウバエ筋萎縮の研究にこれらの筋肉を選択しました。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56179/56179fig1.jpg"> 図 1。間接飛翔筋 (間) の配置を示すショウジョウバエ胸部の図。(左) は、横方向のビューを表します、(右) は、胸部の断面を表します。(赤) で (DLM) の背の縦筋から成る、間と背腹 (DVM) 筋肉 (緑) で。
保全組織構造と組織学的セクションの背腹軸方向の制御は、筋断面積の適切な評価を確保するために重要です。筋肉の構造を維持するために我々 はトムリンソンらから変更固定混合物を使用4 。また、筋肉は内部組織であるために、混合物は、標的組織を突き通すことができない固定として、ショウジョウバエの外骨格の不浸透性は問題であるとします。この問題を回避するためには、フライの頭、脚、翼、入力する固定混合物を許可する穴を作成する腹部の最後の 2 つのセグメントを削除しました。四酸化オスミウム (OsO4)5脂肪を修正する能力のために広く使用される治療を含めました固定プロトコルの一部としてトリグリセリドを含みます。OsO4は特に細胞レベルで非常によく、ほとんどの構造体を保持、同時にイメージにコントラストを提供しています。固定後、ショウジョウバエの thoraces は、横半薄い断面 (1.5 μ m) 用樹脂に埋め込まれていた。改良されたコントラストの組織汚すことができるさらにトルイジン ブルー。完全な thoraces の画像は、10 X で撮影された、筋面積が (等しい寸法) の画像を二値化すると ImageJ ソフトウェアの総数から筋肉組織 (黒のピクセル) に対応するピクセルの割合を定量化し, 定量化しました。
このプロトコルの導入、OsO4およびグルタールアルデヒド溶液の濃度の増加として組織化・固定化混合変更は、筋肉組織の独特な保存を許可しました。これは、プロトコルも神経筋変性疾患筋強直性ジストロフィー (DM) などに関連付けられている高度萎縮性条件で試料の事後分析の信頼性を高める、組織の変形と劣化を回避するためです。一般的な形式として、DM のタイプ 1、このまれな遺伝的疾患は、筋強直性ジストロフィー蛋白質キナーゼ(DMPK) 成績証明書の展開の CUG リピートによってもたらされます。突然変異体の DMPK RNA 集計隔離 muscleblind だったような核 RNA 結合蛋白質 (MBNL1-3; フォーム ribonuclear 巣ショウジョウバエの muscleblind だった (Mbl)) の6。筋肉のミオシン重鎖プロモーター (Mhc Gal4) 250 CTG の繰り返しを表現することにより筋強直性ジストロフィーのショウジョウバエモデルを生成されます。モデル ハエのアップ開催羽' 典型的な表現型と飛べないしていた深刻な筋萎縮の間 (図 2 b)。私たちの研究室で実行前の研究では、間の筋肉領域の決定は、これらモデル ハエ7筋萎縮のさまざまな化学物質や遺伝的修飾キーの効果を定量化する信頼性の高い方法を示しています。例として 250 CTG を表現するハエの C は筋肉で繰り返される Mbl アイソ フォームの発現は、隔離で Mbl 枯渇は DM1 病態8 (図 2) でトリガーの要因として筋地域の救助を達成しました。Abp1、実績のある反 DM1 活動9 (図 2 D) ヘキサペプチドとハエの DM モデルを供給した後が筋面積も助かった。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56179/56179fig2.jpg"> 図 2。大人の thoraces を樹脂包埋の卵割のセクションの定量化。関連遺伝子多型の指定されたショウジョウバエ(A ~ D) 間接飛翔筋。(A) 制御は飛ぶ (和田) です。(250 以外のコーディング CTG の式 B) を繰り返す筋肉で (UAS-CTG(250)x)コントロール ハエと比較して DLMs の筋面積の減少を引き起こした。(C) この筋萎縮の表現型は muscleblind だった (MblC) の過剰発現によって救出された (UA CTG (250) UAS MblC x) (D) を供給 (UA CTG (250) x Abp1) ヘキサペプチド Abp1 にモデル ハエ。すべての画像では、背側は上です。遺伝子が筋肉のミオシン重鎖プロモーター (Mhc) を使用してに追い込まれた-Gal4。(E) 定量制御ハエを基準として筋肉の割合の差が認められたことを確認しました。ヒストグラムを示しています意味 ± S.E.M. * *p< 0.01 と * p < 0.05 (Student´s t-テスト)。スケール バー: 200 μ m.<a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56179/56179fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
ここで報告する方法は、筋肉の発達、メンテナンスと高齢化、病の病理、薬物検査筋肉組織が内因性および外部要因に応答する方法についての信頼できる情報を提供に焦点を当て研究者に興味になります。

<table><tbody><tr><td>Image-J software</td><td>国立衛生研究所</td><td></td><td>https://imagej.nih.gov/ij/</td></tr> <tr><td>ウルトラミクロトーム</td><td>ライカ</td><td>ライカ UC6</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>ライカ</td><td>MZ6</td><td>明視野法.</td></tr><tr><td>かみそりの刃、</td><td>電子顕微鏡、科学</td><td>、71970</td>、<td>いくつかの代替プロバイダーが存在します。</td></tr><tr><td>はさみ</td><td>ワールドプレシジョンワールド</td><td>14003</td><td>いくつかの代替プロバイダーが存在します。</td></tr><tr><td>金型の埋め込み</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>70900</td><td>いくつかの代替プロバイダーが存在します。</td></tr><tr><td>グルタルアルデヒド</td><td>フルーカ(シグマ)</td><td>49624</td><td>有毒。</td></tr><tr><td>OsO4</td><td>Polyscience</td><td>0972A</td><td>非常に有毒です。</td></tr><tr><td>酸化プロピレン</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>82320-250ML</td><td>非常に有毒です。</td></tr><tr><td>樹脂(Durcupan)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>44611-44614</td><td>未重合の場合、発がん性があります。</td></tr><tr><td>トルイジンブルー</td><td>パンレアック</td><td>251176</td><td>有毒です。</td></tr><tr><td>封入剤ミディアム(DPX)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>44581</td><td>危険です。</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>P6148-500G</td><td>有害。</td></tr><tr><td>Na2HPO4</td><td>Panreac</td><td>122507</td><td>0.2 M希釈。</td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Panreac</td><td></td><td>0.2 M希釈121677。</td></tr><tr><td>ホウ砂</td><td>panreac</td><td>3052</td><td>有毒。</td></tr></tbody></table>

キイロショウジョウバエ成虫の間接飛翔筋の光学断面筋決定

Optical Cross-Sectional Muscle Area Determination of Drosophila Melanogaster Adult Indirect Flight Muscles

筋肉を無駄に、筋萎縮症として知られている神経筋症ショウジョウバエモデルの共通の表現型であります。我々 は異なった遺伝の原因によってもたらされる萎縮性表現型測定対象実験として背縦走筋 (DLM) では、具体的には、ハエの間接飛翔筋 (間) を使用しています。このプロトコルで半薄い断面のフライの胸部筋肉を埋め込む方法、筋と周囲の組織との間の良好なコントラストの入手方法、定量データの半自動獲得のための光学顕微鏡画像を処理する方法を述べると解析。方法論のパイプラインの 3 つの特定のアプリケーションについて述べる。まず、筋強直性ジストロフィー飛ぶモデルで筋変性を定量化する方法を適用する方法を示す第二に、筋断面積の測定を促進または筋萎縮や筋変性を防ぐ遺伝子を識別するために助けることができます。第三に、このプロトコルを適用して、候補化合物が病気を引き起こす突然変異による与えられた萎縮性表現型を大幅に変更することができるかどうかを判断できますまたは環境トリガーによって。

MblC の過剰発現または Abp1 の管理は筋強直性ジストロフィーのフライ モデルの萎縮性の表現型効果をもたらしたかどうかを定量化するには、間 (図 1) の一部である Dlm に着目。我々 はミオシン重鎖プロモーター (Mhc) によって駆動される筋肉全体で 250 以外のコーディング CTG の繰り返しを表現するモデルが飛ぶことを決定-Gal4、いたハエをコントロールと比較して筋面積の 50% 削減。対照的に、同じドライバーの MblC と拡張 CTG の繰り返しの共発現が強くこのような表現型を抑制し、crossectional 筋エリア コントロール (通常の) ハエの 70% であった。栄養媒体の Abp1 ヘキサペプチドの管理は同様に萎縮性表現型と (DM1 ハエ; 典型的な 50% ではなく正常な筋肉の面積の約 60% を示した化合物を撮影していたモデル ハエを抑制図 2 e)。これらのサンプルの定量化、トルイジン ブルー...

ショウジョウバエ大人の筋肉量を決定するための間接的な手法である筋面積を定量化する手法を報告する.筋筋強直性ジストロフィー症ショウジョウバエモデルの間接飛翔を分析することによって私たちの方法論の適用を示します。

Muscle mass wasting, known as muscle atrophy, is a common phenotype in Drosophila models of neuromuscular diseases. We have used the indirect flight ...

本手順の全体的な目的は、ショウジョウバエ（Drosophila）成虫の筋肉面積を定量化することで、間接的に筋肉量を定量化し、筋肉の増生または萎縮の程度を正しく測定することです。この目的のため、サイズ、分布、およびこの部位における横断切断のしやすさと配向性の良さから、背側縦走筋に着目しました。まず、固定および樹脂包埋を行います。手順の最初のステップは、CO2でショウジョウバエを麻酔し、鋏とピンセットを用いて、脚、翅、および腹部の末端部分を取り除くことです。次に、胸部の変形を避けるため、死骸を慎重に氷上の1.5 mLチューブに移します。このとき、200 µLの溶液1を含むチューブあたり最大6個体まで入れます。死骸をこの溶液の中に20分以上放置してはいけません。最後に、溶液2を200 µL加え、氷上で30分間インキュベートします。インキュベート後、液をすべて取り除き、再び溶液2を200 µL加えて、死骸を氷上で1～2時間インキュベートします。次のステップでは、溶液を取り除き、段階的なエタノール系列を用いて試料を脱水します。サンプルをプロピレンオキシドで10分間ずつ2回インキュベートします。次に、プロピレンオキシドを樹脂500 µLとプロピレンオキシド500 µLの混合液に交換し、室温で一晩インキュベートします。翌日、この混合液を100%樹脂に交換し、サンプルを4時間インキュベートします。その後、死骸を新しい樹脂を入れたプラスチック製モールドに移し、モールドの各ウェルに死骸を1体ずつ入れるようにします。木製のスティックを使用してウェル内の死骸の向きを調整し、パストゥールオーブンにて70 degrees Celsiusで一晩樹脂を重合させます。樹脂を廃棄する場合は、固化して焼成された樹脂は毒性がないため、70 degrees Celsiusで24時間焼成してください。2つ目に、ブロックのトリミングと薄切を行います。カミソリを用いて樹脂部分を取り除き、ミクロトームで適切な方向で切断できるよう、死骸の周囲を台形に整えます。顕微鏡で、筋肉が完全に正しい方向に向いているかを確認してください。その後、ウルトラミクロトームを用いて厚さ1.5 µmの切片を作成し、ゼラチンコートスライドガラス上の水滴に切片を回収します。最後に、切片が載ったスライドガラスを70〜80 °Cのヒーティングブロックに置き、水分が完全に蒸発するまで乾燥させます。3．IFM切片の染色。加熱ブロック上で、切片をトルイジンブルーで約30秒間染色します。その後、数回水で洗浄し、スライドをウォームプレートに置いて水分を蒸発させます。4つ目は、IFM切片の封入です。スライドを取り出し、切片上に封入剤を1〜2滴滴下し、長いカバーガラスを被せます。5つ目に、画像の取得と筋肉面積の定量化を行います。ImageJソフトウェアを

optical-cross-sectional-muscle-area-determination-drosophila

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

筋肉の損傷のメカニズムの同定は非常に重要です。ここでは、ショウジョウバエの胸部筋肉のパラフィン包埋して凍結切片を調製するための組織学的手法を提示する。これは筋肉の形態やタンパク質と他の筋肉の細胞成分の局在の分析を行うことができます。...

のパラフィン包埋して凍結切片ショウジョウバエアダルトの筋肉

成人を準備するために標準的なアプローチ...

大人の準備ショウジョウバエ</emシンセクショニングおよび顕微鏡分析のための>アイズ

ショウジョウバエの飛行筋は、筋肉の発達と生理学のモデルシステムとして使用されます。このビデオでは、成体の飛行筋組織について説明し、蛹からのRNAシーケンシングに適した発達中の間接飛行筋を解剖するためのプロトコルに焦点を当てています。...

ショウジョウバエ後期蛹間接飛行筋(IFM)解剖:ハイスループット組織収集の方法

C. elegans筋面積測定:横紋筋の形態を定量化するための標準化された方法

このプロトコルではシリアル セクション電子線トモグラフィーのショウジョウバエ間接飛翔筋のミトコンドリアの構造を解明への応用を示す.

シリアル セクション電子線トモグラフィーによるショウジョウバエ間接飛翔筋のミトコンドリア微細構造 3D

生体内でショウジョウバエの蛹の筋腱の形態形成の観察

ここでは、ショウジョウバエ胚における胚筋収縮を非侵襲的かつ詳細指向的に記録する方法を提示する。...

ショウジョウバエ胚における筋収縮のライブイメージングと解析

ショウジョウバエ飛行筋は、転写調節、代替スプライシング、代謝、およびメカノバイオロジーを研究するための強力なモデルです。我々は、プロテオミクスおよび深いシーケンシングに最適な高濃縮サンプルを生成するために、生きている子犬から蛍光標識飛行筋を解剖するためのプロトコルを提示する。これらのサンプルは、筋肉の発達の多様な側面に重要な機械的洞察を提供することができます。...

オミクスアプローチに対するショウジョウバエメラノガスター飛行筋肉の解剖

神経筋接合のアーキテクチャを維持し、成人 ショウジョウバエ 脚の運動ニューロンの詳細な免疫細胞化学的研究を可能にする解剖技術について述べています。...

認識された運動ニューロンの神経筋接合部における変化を検出する ショウジョウバエ 成脚の解剖と免疫染色

ここでは、成虫の ショウジョウバエ...

成人の ショウジョウバエ の外部構造を定量するための迅速でシンプルなワークフロー

ショウジョウバエは、筋形成の基本的なメカニズムを理解するための強力なモデルです。胸部半切片の解剖と調製のためのこのプロトコルは、蛹と成虫の両方の段階からの間接飛行筋の顕微鏡分析を可能にします。このプロトコルは、細胞形態、タンパク質局在化、筋肉構造、および筋形成の他の複数の側面の共焦点イメージングを可能にします。...

顕微鏡アプローチのための ショウジョウバエ の間接飛行筋の解剖

学ぶ光学断面法によるキイロショウジョウバエ成虫の間接飛翔筋面積定量化手法。筋萎縮やミオトニー性ジストロフィー研究における筋量評価に応用可能です。

キイロショウジョウバエ成虫の間接飛翔筋の光学断面筋決定

さらに動画を探す