Name: マウス網膜細動脈Ex Vivoでの反応性の測定の準備手順 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-08T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: 学ぶマウス網膜細動脈の反応性測定法。ビデオ顕微鏡を用いて高解像度で血管応答を評価し、眼疾患の病態生理を解明するための準備手順を解説します。

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この作品は、エルンスト ・ ウント ベルタ Grimmke 財団とドイツの Ophthalmologische 協会 (犬) からの助成金によって支えられました。

本研究の実験プロシージャによって、動物ケア委員会のラインラント = プファルツ州、ドイツが承認されました。動物の世話は、眼科における動物の使用のためのビジョンと眼科 (ARVO) ステートメントで研究・ ビジョン研究制度のガイドラインと協会に適合。動物は、動物実験のための EU 指令 2010年/63/EU によると扱われました。生後 3-4 ヶ月男性の c57bl/6 j マウス (のジャクソンの実験室、バー ハーバー、私、米国) は、実験に使われました。動物は、標準条件 (温度 23 ± 2 ° C、湿度範囲 55 ± 10%、12 時間の明暗サイクル) の下で収容された、標準的なマウスの食事と水広告自由にアクセスしていた。
1. マウス網膜の分離
<ol><li>準備テーブルに解剖器具を置き、すべての楽器がクイック準備を有効にするかどうかはチェックします。</li>
	<li>CO2吸入によるマウスを犠牲に。</li>
	<li>スチールはさみとマウスの首をはねる、頭蓋骨 sagitally をはさみの同じ組み合わせを使用して 2 つの半分に切る、皮膚と脳目はさみ (図 1) を使用して取り外します。</li>
	<li>目はさみを使って軌道の骨だけを残して頭蓋骨骨を断ちます。</li>
	<li>冷たい促進バッファーを含んでいる解剖皿に軌道を転送します。</li>
	<li>氷上解剖皿を維持または 10 分ごとのバッファーを変更します。</li>
	<li>目はさみを使用して軌道の骨を切り取って、タイプ 4 の精密ピンセットと学生 Vannas 春はさみ (図 2) を使用して眼窩組織とともに眼球を慎重に取り外します。</li>
	<li>タイプ 5 の精密ピンセットと眼動脈の主な枝を損傷しないように注意を取って、Vannas capsulotomy はさみを使用して外眼筋、結合組織、ハーダー腺を慎重に取り外します。</li>
	<li>眼動脈眼窩枝は、最終的に 10-0 ナイロン縫合糸 (図 3) を使用して眼動脈の主な枝の近位端を縛る。</li>
	<li>4 精密ピンセット 10 s を使用して入力の 70% のエタノールを含むペトリ皿に目グローブを転送します。目グローブ解剖皿に戻し、新鮮なクレブス ソリューションでバッファーを置き換えます。角膜が白っぽいエタノール曝露後表示されます。</li>
	<li>30 ゲージ針周辺の角膜を穿刺そして Vannas capsulotomy はさみを使用して角膜を解剖します。優しく虹彩組織を切断、Vannas capsulotomy はさみ脈絡膜と網膜の間の 1 つの鋭い点を配置し、脈絡膜と強膜を切断します。(図 4) 視神経の周りいくつかの強膜の組織を残します。</li>
</ol>2. 灌流チェンバで網膜の取付
注: 網膜細動脈実験用灌流チェンバは自家製です。透明な貯水池で、流出管 (図 5) で構成されています。シリコン チューブの一方の端は histoacryl 接着剤と三方活栓に接続されているもう一方の端の部屋の下に釘付けに。三方活栓に新鮮なクレブス バッファーを含む注射器を接続し、バッファーで管を埋めます。
<ol><li>ニードル ホルダーとガラス ピペットを取るし、灌流チャンバーの下部に管の端にそれをプッシュします。100 μ m 径の先端を取得する 4 型ハサミ、ピペットの先端を破る。</li>
	<li>マイクロ ピペットの先端に焦点を当てるし、経由で注射器をチューブに接続されているフラッシュします。毛細血管が残骸によって妨げられていません注意してください。閉塞の場合に、削除し、フラッシュ チューブ別マイクロ ピペットを挿入します。</li>
	<li>冷たいクレブス バッファーと灌流チャンバーし、ステレオ顕微鏡室を置きます。</li>
	<li>灌流チェンバに透明なプラスチックのプラットフォームを配置します。このプラットフォームは、視神経と眼動脈の幅 1.8 mm のインデントを持って、直径 1.6 mm の 2 つの鋼線が配置されます。次に、プラットフォームに 4.0 mm 外径内径 2.8 mm のステンレス製リングを配置します。</li>
	<li>スプーンを使用して細心の注意で、視神経と眼動脈の接続されている網膜を解剖室から灌流チェンバに転送します。この手順は、潜在的なを防ぐために重要な組織のストレッチとして、実験に支障をきたすことがあります。</li>
	<li>眼動脈の近位端の縫合部分を切断、マイクロ ピペットに 10-0 ナイロン縫合糸の前もって形成された 2 つのループを配置、ピペットと眼動脈を cannulate します。マイクロ ピペット (図 6) に動脈を結ぶ、罰金ポイント ピンセットを使用して透明なプラットフォーム上に網膜を配置します。</li>
	<li>優しく 2 つの細かい点ピンセットで前方レンズ被膜を開いて涙、レンズを抜くし、刀を使用して全体のレンズの被膜を断ちます。</li>
	<li>その後、網膜の視神経にパルス プラナから半分の距離に 4 つの放射状切開を作るし、下部にそれを修正する網膜上にステンレス製のリングを配置します。網膜は、(図 7) 実験の準備が整いました。</li>
</ol>3. 網膜細動脈の実験のための準備
<ol><li>光学顕微鏡の下で灌流チェンバを配置します。目的は 100 X 水浸対物レンズです。</li>
	<li>2 つビデのために- とアウト-flow をペリ ポンプに接続し、商工会議所でクレブス バッファー 95% O2と酸素し、37 ° C で 5% CO2炭酸循環100 と 120 mL/min の流量を使用します。</li>
	<li>貯留層シリコン ホースを介して三方活栓にピペットへ接続すると、シリコン チューブを接続します。それから、リザーバーは 50 mm Hg に対応する高さにクレブス バッファーがまだ三方活栓を開いていません。</li>
	<li>顕微鏡、網膜面に焦点を当てるの目標に目を通します。血管や赤血球を検索します。血管が完全に折りたたまれていること、時々 だけいくつかの赤血球は表示可能です。</li>
	<li>血管が見つかったら、それに焦点を当てるし、三方活栓を開きます。容器の直径がすぐに増やす必要があります、場合は、細動脈や小静脈の場合 centripetally、赤の血液細胞のいずれかを遠心に移動します。細動脈は直径同じ順序の静脈に比べて小さいです。</li>
	<li>よく見える壁と血管が見つかったら、次の 30 分 (図 8) の平衡期間の実験のためにも流用できます。平衡期間中に細動脈の弱い本質的な緊張の結果内腔の直径の減少の 10% 未満で開発します。</li>
</ol>4. 実験を実行します。
<ol><li>お風呂のソリューションに追加することによって、トロンボキサン擬態 9,11-dideoxy-9α 11α methanoepoxy プロスタグランジン F2α (U46619) と船の生存率をテストします。このエージェントは、≥ 10 の濃度で直径を休んでから約 50% によってマウス網膜細動脈を収縮-6 M。</li>
	<li>一度船を実行可能な確認は、ポンプを循環させることにより風呂からアゴニストを洗浄し、お風呂に新鮮なクレブス バッファーを供給します。</li>
</ol>

<ol><li>Toda, N., Nakanishi-Toda, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitric+oxide%3A+ocular+blood+flow%2C+glaucoma%2C+and+diabetic+retinopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Retin+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Nitric oxide: ocular blood flow, glaucoma, and diabetic retinopathy.</a> Prog Retin Eye Res. 26 (3), 205-238 (2007).</li>
<li>Schuster, A. K., Fischer, J. E., Vossmerbaeumer, C., Vossmerbaeumer, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography-based+retinal+vessel+analysis+for+the+evaluation+of+hypertensive+vasculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography-based retinal vessel analysis for the evaluation of hypertensive vasculopathy.</a> Acta Ophthalmol. 93 (2), e148-e153 (2015).</li>
<li>Cherecheanu, A. P., Garhofer, G., Schmidl, D., Werkmeister, R., Schmetterer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ocular+perfusion+pressure+and+ocular+blood+flow+in+glaucoma%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Ocular perfusion pressure and ocular blood flow in glaucoma.</a> Curr Opin Pharmacol. 13 (1), 36-42 (2013).</li>
<li>Faraci, F. M., Sigmund, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+biology+in+genetically+altered+mice+%3A+smaller+vessels%2C+bigger+insight%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Vascular biology in genetically altered mice : smaller vessels, bigger insight.</a> Circ Res. 85 (12), 1214-1225 (1999).</li>
<li>Kornfield, T. E., Newman, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+Retinal+Blood+Flow+Using+Fluorescently+Labeled+Red+Blood+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22eNeuro%22%5BJournal%5D)">Measurement of Retinal Blood Flow Using Fluorescently Labeled Red Blood Cells.</a> eNeuro. 2 (2), (2015).</li>
<li>Guevara-Torres, A., Joseph, A., Schallek, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Label+free+measurement+of+retinal+blood+cell+flux%2C+velocity%2C+hematocrit+and+capillary+width+in+the+living+mouse+eye%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Opt+Express%22%5BJournal%5D)">Label free measurement of retinal blood cell flux, velocity, hematocrit and capillary width in the living mouse eye.</a> Biomed Opt Express. 7 (10), 4229-4249 (2016).</li>
<li>Schallek, J., Geng, Y., Nguyen, H., Williams, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphology+and+topography+of+retinal+pericytes+in+the+living+mouse+retina+using+in+vivo+adaptive+optics+imaging+and+ex+vivo+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Morphology and topography of retinal pericytes in the living mouse retina using in vivo adaptive optics imaging and ex vivo characterization.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 54 (13), 8237-8250 (2013).</li>
<li>Gericke, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+the+muscarinic+acetylcholine+receptor+subtype+mediating+cholinergic+vasodilation+in+murine+retinal+arterioles%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Identification of the muscarinic acetylcholine receptor subtype mediating cholinergic vasodilation in murine retinal arterioles.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (10), 7479-7484 (2011).</li>
<li>Gericke, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+role+of+alpha1-adrenoceptor+subtypes+in+murine+ophthalmic+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Functional role of alpha1-adrenoceptor subtypes in murine ophthalmic arteries.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (7), 4795-4799 (2011).</li>
<li>Bohmer, T., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24749494">The alpha(1)B -adrenoceptor subtype mediates adrenergic vasoconstriction in mouse retinal arterioles with damaged endothelium.</a> Br J Pharmacol. 171 (16), 3858-3867 (2014).</li>
</ol>

著者は競合する金融興味を持ってないです。

マウス網膜における血管反応の測定は、網膜血管のサイズが小さいため困難です。紹介したテクニックを持つ網膜細動脈は透過光顕微鏡による可視化します。これは、孤立した網膜は半透明なので可能です。テクニックの利点は、高光学解像度です。計算された空間分解能は 11 px/μ m です。ただし、白色光を使用する光学系の実際の解像度は 200 と 300 nm、アッベの回折限界で説明されている間です。マウス網膜細動脈の最初の枝は 20 に 30 μ m の内部の直径は、約 1% の直径変化はこのシステムで検出。その他の技術的な装置または他の研究報告として蛍光染料の小さな網膜細動脈5,6,7を視覚化する必要はありません。技術の欠点は、訓練を受けた捜査によって 90 〜 120 分間は長い準備の時間です。準備時間は、180 分を超えた場合、血管内皮機能が減衰を開始します。
この手法ではいくつかの主要な重要なステップが...

網膜の血流障害は、糖尿病網膜症、高血圧性網膜症、緑内障1,2,3などの様々 な眼疾患の病態に関与しています。したがって、網膜の血管反応性の測定を目的とした研究がこれらの疾患の病態を理解することが重要、新しい治療法を開発するために近づきます。
マウスのゲノムに遺伝子操作の可能性があるためマウス心血管系4研究の広く使用されている動物モデルとなっています。しかし、網膜血管 (≤ 30 μ m) のサイズが小さいためマウス網膜における血管反応性の測定は難しい。たとえば、生体内計測表面技術の光学解像度で限られている、まさに搭載時 ≤ 30 μ m 径未満の少量の血液で直径または血の流れの変化を検出することがのみできます。蛍光染料または適応光学スキャン ・光検眼鏡5,6を使用して共焦点顕微鏡など、追加の高度なデバイスまた、ローカルの識別を目的とした体内測定の解釈は網膜血管のメカニズムは、麻酔薬、によって混同することができますシグナリング全身血圧と球後血管の影響で変更します。
したがって前のヴィヴォ高光学解像度とマウスの網膜の血管の反応を測定する方法を開発しました。ここに記載した技術光顕微鏡を介して送信される網膜細動脈の描出が可能します。ラットにも使用することができます、この方法は、眼血管研究の技術をターゲット遺伝子の利点へのアクセスを提供します。

<table><tbody><tr><td>スチールハサミ</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>3576.1</td><td>1x 140 mm</td></tr><tr><td>アイハサミ</td><td>Geuder</td><td>G-19390</td><td>1x ストレート、10.5 cm</td></tr><tr><td>精密ピンセット、細い先端でまっすぐ</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>LH68.1</td><td>2x タイプ 4</td></tr><tr><td>精密ピンセット、超微細な先端でストレート</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>LH53.1</td><td>2x type 5</td></tr><tr><td>Vannas 嚢切開はさみ</td><td>Geuder</td><td>19760</td><td>1x straight, 77 mm</td></tr><tr><td>Student Vannas Spring Scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>91501-09</td><td>1x curved,</td></tr><tr><td>Barraquer Needle Holder</td><td>Geuder</td><td>G-17500</td><td>1x Curved, 120 mm</td></tr><tr><td>Needle</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>305128</td><td>1x 30 G</td></tr><tr><td>ガラス キャピラリー (マイクロピペット製造用)</td><td>Drummond Scientific Company</td><td>9-000-1211</td><td>1x (1.2 x 0.8 mm; 外径/内径)</td></tr><tr><td>ナイロン縫合糸</td><td>アルコン</td><td>198001</td><td>1x 10-0</td></tr><tr><td>Nunclon 細胞培養皿</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>153066</td><td>直径 1x 35 mm</td></tr> ヌ<tr><td>ンクロン細胞培養皿</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>172931</td><td>直径 1x 100 mm</td></tr><tr><td>Discofix C</td><td>Braun</td><td>16500C</td><td>10 cm</td></tr><tr><td>Histoacryl接着剤</td><td>B. Braun Surgical, S.A.</td><td>1050052</td><td></td></tr><tr><td>名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pericyclic pump&nbsp;(シクロII)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>EP76.1</td><td>1x</td></tr><tr><td>Vertical Pipette Puller Model 700C</td><td>David Kopf Instruments</td><td></td><td>1x</td></tr><tr><td>顕微鏡 (Vanox-T AH-2)</td><td>オリンパス</td><td></td><td>1x</td></tr><tr><td>水浸対物レンズ LUMPlanFL, 1.0 NA</td><td>オリンパス</td><td></td><td>1x</td></tr><tr><td>デジタルカメラ (TK-C1381)</td><td>JVC</td><td></td><td>1x</td></tr><tr><td>灌流チャンバー</td><td>自作</td><td></td><td>1倍</td></tr><tr><td>名前</td><td>会社名</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>Drugs and Solutions</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>K928.4</td><td></td></tr><tr><td>塩化カルシウム二水和物(CaCl2)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>5239.1</td><td></td></tr><tr><td>塩化カリウム (KCl)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>6781.1</td><td></td></tr><tr><td>リン酸二水素カリウム (KH2PO4)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>3904.2</td><td></td></tr><tr><td>硫酸マグネシウム (MgSO4)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>261.2</td><td></td></tr><tr><td>塩化ナトリウム (NaCl)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>9265.2</td><td></td></tr><tr><td>炭酸ナトリウム(NaHCO3)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>0965.3</td><td></td></tr><tr><td>&-(D)-(+)-グルコース一水和物</td>Carl <td>Roth GmbH</td><td>6780.1</td><td></td></tr><tr><td>9,11-ジデオキシ-9&、11&11;-メタノエポキシプロスタグランジンF2&アルファ;(U-46619)</td><td>ケイマン化学</td><td>16450</td><td></td></tr><tr><td>アセチルコリン塩化</td>物<td>Sigma-Aldrich</td><td>A6625-25G</td><td></td></tr></tbody></table>

マウス網膜細動脈ex vivoでの反応性の測定の準備手順

Preparation Steps for Measurement of Reactivity in Mouse Retinal Arterioles Ex Vivo

血管不全と通常の網膜血流の変化、様々 な視力を脅かす眼疾患、糖尿病網膜症、高血圧性網膜症と緑内障などの発症の主な要因です。したがって、網膜微小血管の準備、基本的な病態生理学的メカニズムを記述する生理学的および薬理学的研究とデザイン疾患の治療に極めて重要なツールです。眼科研究マウス モデルの普及にもかかわらず網膜血管反応性に関する研究がこの種の不足しています。この矛盾の主な理由はであるこれらの網膜血管のサイズが小さいため挑戦的な分離のプロシージャ 〜 ≤ 内腔の直径 30 μ m。前のヴィヴォ近く生理条件下でマウス網膜血管反応の研究をできる分離および準備の技術を設けてこれらの網膜微小血管の機能研究のための直接分離の問題を回避するために.現在実験準備は特にマウス網膜細動脈を参照、ただしこの方法容易にラットから微小血管を利用します。

U-46619 は、c57bl/6 j 背景の野生型マウスから網膜細動脈の濃度依存性血管収縮反応を生産しました。10-6 M の濃度で内腔の直径の減少安静時直径から ≈50% であった。図 9 aは、1 つの網膜細動脈の代表的な濃度応答曲線を示します。細動脈 U46619 と preconstricted、累積アセチルコリン投与誘発濃度依存性内腔の直径上昇 ≈ 25 %10-5 M、そのまま血管内皮細胞 (の説法で preconstricted の直径から図 9 b)。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56199/56199fig1.jpg"> 図 1: マウス頭蓋骨の解剖します</s...

多くのビジョンを脅かす眼疾患は、網膜血管の機能不全に関連付けられます。したがって、網膜血管応答の測定は、根本的な病態生理学的メカニズムを調査することが重要です。この記事では、マウスの網膜細動脈の分離と血管作動性物質の血管径に及ぼす影響を評価するために準備のための詳しいプロトコルについて説明します。

マウス網膜細動脈Ex Vivoでの反応性の測定の準備手順

Vascular insufficiency and alterations in normal retinal perfusion are among the major factors for the pathogenesis of various sight-threatening ocular ...

この網膜標本作成法の全体的な目的は、ビデオ顕微鏡を用いてマウスの網膜動脈の反応性を測定することです。この手法は、網膜血流調節の分野における重要な疑問の解決に寄与し、さまざまな眼疾患の病態生理の理解を深めるのに役立ちます。この新しい技術の主な利点は、極めて高い光学分解能で網膜血管の反応性を測定できることです。同時に、高度な装置を多く必要としません。一般的に、この手法に不慣れな方は、眼動脈とその分枝を特定するのが困難なため、苦労することがあります。ここでは、私の研究室の大学院生であるJenia Kouchek Zadeh氏およびWael Omran氏と共に、この手順を実演します。必要な器具を準備し、実験手順に備えます。次に、鋼製ハサミを用いてマウスの頭蓋骨を正中線に沿って矢状方向に2等分し、眼科用ハサミで皮膚と脳を除去します。眼科用ハサミを用いて、眼窩骨のみが残るまで頭蓋骨を除去し、手術顕微鏡下で、氷上の氷冷Krebs-Henseleit緩衝液が入った解剖皿に眼窩を移します。眼科用鋏で眼窩骨を切断し、4番精密ピンセットと学生用Vannasバネ鋏を用いて、眼球と眼窩組織を慎重に除去します。5番精密ピンセットとVannas嚢白切開鋏を使用し、眼動脈の主枝を損傷しないように注意しながら、ハードナー腺、結合組織、および外眼筋を慎重に取り除きます。10-0ナイロン縫合糸を用いて眼動脈主枝の近位端にある眼窩枝を結紮し、4番精密ピンセットを用いて眼球を70% ethanolを含むペトリ皿に移します。実験中の漏出を防ぐため、眼動脈のすべての眼窩分枝を結紮することが非常に重要です。10秒後、眼球を解剖皿に戻します。エタノールの曝露により、角膜は白っぽく見えます。バッファーを新鮮なKrebs溶液に交換し、顕微鏡と3ゲージの針を用いて角膜周辺部を穿刺します。Vannas被膜切開用ハサミを使用して角膜を剥離し、虹彩組織を慎重に切り離します。次に、Vannas被膜切開用ハサミの鋭い先端の一つを脈絡膜と網膜の間に挿入し、脈絡膜と強膜を切除します。カスタムメイドの灌流チャンバーに網膜を固定するには、まずニードルホルダーを使用して、先端径100 µmのガラスマイクロピペットの端をチャンバーのシリコンチューブに押し込みます。次に、チューブの反対側にシリンジを接続し、マイクロピペットの先端から不純物を洗い流します。灌流チャンバーに冷えたKrebs緩衝液を満たし、チャンバーを実体顕微鏡の下に配置します。灌流チャンバー内に、直径1.6 mmのステンレスワイヤー2本を配置し、その上に1.8 mmのくぼみがある透明なプラスチックプラットフォームを設置して、プラットフォームの上にステンレス製リングを置きます。スプーンを用いて、眼動脈が付着したままの視神経付き網膜をプラットフォーム上に移し、眼動脈の縫合端を取り除きます。10-0ナイロン縫合糸で作成した2つのループをマイクロピペットにかけ、縫合糸で動脈をマイクロピペットに固定します。1本の精細ピンセットを使用して網膜を透明プラットフォーム上に配置し、別の精細ピンセットを使用して前嚢を慎重に切り開きます。水晶体を取り出し、マイクロシザーズを用いて水晶体嚢全体と硝子体を切除します。次に、pars planaから視神経までの距離の半分で、網膜に4本の放射状の切開を加え、ステンレス製リングを網膜上に配置して、網膜をプラットフォームに固定します。網膜細動脈を解析の準備にするため、灌流チャンバーを光学顕微鏡下に移動させ、100倍の水浸対物レンズを選択します。チューブをパラサイクリックポンプの流入および流出ポートに接続し、95% oxygen で酸素供給し 5% carbon dioxide で炭酸ガス化した 37 degrees Celsius の Krebs buffer でチャンバー内を循環させます。マイクロピペットを備えたシリコンチューブを三方活栓を介してリザーバーシリコンホースに接続し、リザーバーに Krebs buffer を 50 millimeters of Mercury に相当する高さまで満たします。対物レンズを使用して、網膜表面に手動でピントを合わせ、血管または赤血球を探索します。血管が見つかったら、その血管にピントを合わせ、三方コックを開きます。すると、直ちに血管径が増大し、赤血球が現れます。30分間の平衡化期間後、細小動脈には10%未満の管腔径減少を伴う弱い固有緊張が生じます。マウス網膜制限試薬をバス溶液に加え、血管の生存能を確認します。次に、ポンプを循環させてバス内からアゴニストを洗浄し、チャンバーに新鮮なKrebs緩衝液を加えます。この代表的な実験では、トロンボキサン模倣剤であるU46619を用いて、野生型C57Bl/6Jマウスの網膜細動脈において濃度依存的な血管収縮反応を誘導しました。1×10⁻⁶ Mの濃度において、管腔径は静止時から約50%減少しました。アゴニストで事前収縮させた細動脈にアセチルコリンを累積的に投与したところ、1×10⁻⁵ Mのアセチルコリン濃度で管腔径が事前収縮時の約25%まで濃度依存的に増加し、血管内皮が正常に機能していることが示されました。習熟すれば、適切に実施することでこの手法は90分から120分で完了できます。これらの手順を行う際は、眼球を開く前に眼窩後方のすべての動脈枝を結紮して眼球をエタノールに浸し、眼動脈の捻転を防ぐこと、および最後にガラス製マイクロピペットチップに詰まりがないかを確認することを忘れないでください。このビデオを視聴することで、in vitroでのビデオ顕微鏡による動脈測定に向けて、マウス網膜をどのように準備するかについて十分に理解できたはずです。

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医学

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マウス網膜血管系は、血管パターン形成のメカニズムを理解する上で特に興味深いものです。このプロトコルは、視神経乳頭から一定の距離にある蛍光血管造影眼底画像からマウス網膜血管の直径を自動的に測定します。...

マウス蛍光血管造影画像からの網膜血管径の測定

私たちは最近、糖尿病に関連する網膜機能障害の新しいパラダイムとして網膜毛細血管硬化を特定しました。このプロトコルでは、網膜内皮培養物からマウス網膜毛細血管および内皮下マトリックスを単離する手順を詳しく説明し、続いて原子間力顕微鏡を用いた剛性測定技術について説明します。...

原子間力顕微鏡を用いた剛性測定のためのマウス網膜毛細血管および内皮下マトリックスの単離

学ぶマウス網膜細動脈の反応性測定法。ビデオ顕微鏡を用いて高解像度で血管応答を評価し、眼疾患の病態生理を解明するための準備手順を解説します。

マウス網膜細動脈Ex Vivoでの反応性の測定の準備手順

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