Name: 傷害による老化と生体内での骨格筋におけるリプログラミングの評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 14 s
Description: 学ぶ 傷害後の骨格筋における老化細胞と多能性幹細胞の検出法。組織修復における細胞老化の役割を調べ、再生医療への応用可能性を探る。

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彼女の優れたテクニカル サポートの Clemire Cimper にお世話になっております。H.L. の研究室での仕事は、パスツール研究所、凝った科学センターの注ぐラ ・ アジャンス ナシオナル デ ラ凝った (フランス d'Excellence リバイブ、Investissement d'Avenir; によって賄われていたANR-10-LABX-73)、アジャンス ナシオナル デ ラ抜き (ANR-16-CE13-0017-01) および財団アーク (PJA 20161205028)。C. c. と交流は、博士・復活のコンソーシアムからドクターによって賄われています。

欧州共同体ガイドラインとの Institut パスツール (CETEA) 承認プロトコルの倫理委員会に従って処理された動物。
 1。 在庫ソリューションの準備 <ol><li>筋サンプル固定のための材料を準備します。筋固定のため凍結埋め込み媒体に RT で 20 mL の水で tragacanth ガムの 0.5 g を溶解します</li>。
	<li>SA β Gal の汚損のためのソリューションを準備します。
	<ol><li>溶液 K 3 Fe(CN) 6 (100 mM)、K 4 Fe(CN) 6 (100 mM)、MgCl 2 (1 M) 蒸留水でそれぞれの粉末を溶解することにより準備します</li>。
		<li>0.2% C 20 H 6 Br 4 Na 2 O 5 (エオジン) の原液を水で希釈して準備します</li>。
		<li>ない (ジメチルホルムアミド、DMF) C 3 H 7 X gal 粉末を溶解することにより原液 C 14 H 15 BrClNO 6 (X-gal) (50 mg/mL) を準備します</li>。
		<li>ストア K 3 Fe(CN) 6 と 4 ° c、K 4 Fe(CN) 6 ソリューションと室温 MgCl 2 
		注: X gal に格納できる因数-20 ° C で最大 6 ヶ月。エオシン ソリューションは常温保管し、必要に応じてフィルター処理後に再利用できます。K 3 Fe(CN) 6 K 4 Fe(CN) 6 ソリューションは、protectedfromthe ライト。光から保護するため、耐水性ではない X gal ソリューションです</li>。
	</ol></li> <li>Nanog 染色溶液の調製: 透過ソリューションを含む 0.1% Na 3 C 6 H 5 O 7 (クエン酸ナトリウム)、0.1% C 14 H 22 O (C 2 H 4 O) n (n = 9 10) (トリトン X-100) 蒸留水 4 で貯えられるべき ° C は、リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)、右に格納する必要がありますでブロッキング溶液 5% ウシ胎児血清 (FBS) を準備</li>
</ol> 2。TA 筋部の凍結に SA β Gal 染色 <ol><li>コルクのスライスにガム、tragacanth の少量を置くことによって脛骨筋の固定材料を準備します</li>。
	<li>負傷マウス雌雄 (2 ヶ C57/B6) の負傷した cardiotoxin (CDX) と 10 日前に 13 を前述のよう。負の制御として同じマウスから非負傷した (PBS インジェクション) TA を使用します。生体内で 書き換えが必要な場合治療 Dox (1 mg/mL) と各マウス水を飲んで (光から保護)、同じ日に CTX 損傷直後後 。
	注: Dox ソリューション 3 日総治療日数を 7 日に変更する必要があります。
	<ol><li>は、( 図 1 a) 13 を前述のマウスから両方の TA 筋肉 (負傷および制御) を分離します。横断切片を確保、tragacanth ガムに TA 筋の遠位腱を挿入し、( 図 1 b) 外筋の約 ¾ 一部を残して、液体窒素にて凍結する冷却のイソペンタン &#60; 1分 
		注: 脛骨筋が垂直な位置で、コルクの中心部にされていることを確認します。-80 ° C または直接 10 μ m のセクションで cryosectioned でサンプルを格納できます</li>。
	</ol></li> <li> 図 1 b のように TA 筋肉を処理します。
	各スライドの上部の左位置に 10 の異なるスライドに正しい順序で <ol><li>配布、1 st-10 th セクション。11 番目 のセクションを配置するには、1 st セクションに隣接して最初のスライド12 番目 のセクション、2 番目のスライドの 2 nd セクション以外にも右を配置する同じ順序に従います。10 セクション/スライドが 10 スライド (合計で 100 セクション) の最初のセクションと前のセクション間の最小 1 mm を確実に得られるまでこのプロセスを繰り返します</li>。
	</ol></li> <li>1% パラホルムアルデヒドと 0.2% グルタルアルデヒドを含む PBS では 4 分のセクションを修正します。2 x 10 分、PBS で洗浄します。次に、PBS でセクションを孵化させなさい (pH 5.5 を =) 30 分室温のすべての手順を実行します 。
	注: 固定は、酵素活性を維持するために軽度でなければなりません。この手順では、フードの下で。PBS の pH が重要であり X gal ソリューションは光から保護する必要があります</li>。
	<li>X gal のソリューションを含む加温セクション: pbs は、400 μ g/mL X Gal MgCl2、2 mM、4 mM K4Fe(CN) 6 4 mM K3Fe(CN) 6 pH 5.5 を =。孵化 24 時間洗浄の最小値の 37 ° C で暗闇の中、pbs 室温の 3 × 10 分のスライド 
	注: 孵化 24 時間の最小値を必要とし、SA β Gal 信号を最大にする 48 時間の最後のことができます。ソリューションは培養 24 時間後に変更する必要があります。スライドは、光から保護する必要があります。SA β Gal の染色が必要な場合にのみは、2.5 の手順に進みます。Nanog 染色が必要な場合してくださいにスキップ ステップ 3.1</li>。
	30 分洗浄 PBS の <li>修正スライド 1% パラホルムアルデヒドの 3 × 10 分 0.2% エオシン対比染色、pbs スライドします。エオシン溶液 1 分間のスライドを浸すし、簡単に蒸溜水でそれらをすすいでください。最後に、非蛍光剤取り付けの水溶液でのスライドをマウント (材料の表 を参照してください). 
	注: それはポストの固定を行うために不可欠です。この手順では、フードの下で。ルートですべての手順を実行</li>
</ol> 3。免疫組織化学を使用して反 Nanog 抗体 <ol><li>、スライドに直接透過液の 2 x 10 分追加 200 μ L の PBS で 10 分洗浄 4% パラホルムアルデヒドを含む PBS でスライドを固定し、5 分間インキュベートします。 <ol><li>洗浄スライド PBS、2 x 5 分と最後の洗浄、使用 200 μ L の PBS のスライドで直接 0.25 %bsa を含みます。室温のすべてのこれらの手順を実行します 
		注意: は、フードの下で固定の手順を実行します</li>。
	</ol></li> <li>主アンチ Nanog 抗体 加温スライド (最終濃度: 1.25 μ G/ml) 4 ° c 5% を含む PBS で一晩 FBS。PBS、2 x 10 分でスライドを洗って最後の洗浄で 5 分実行 0.25 %bsa を含む使用 200 μ L の PBS をすべての洗浄を室温ステップ 
	注: インキュベート蒸発を防ぐために湿らせたペーパー タオルをボックスのスライドです</li>。
	使用する準備ができてから rAb HRP 二次抗体の 100 μ L で <li>加温スライド キット (材料の表 を参照してください) に PBS、3 x 5 分付き 45 分洗浄用スライドの二次抗体を削除します。光から保護と RT ですべての手順を実行します</li>。
	<li>可視化 <ol><li>最初に、希釈、3, 3 &#39;-ジアミノベンジジン (C 12 H 14 N 4 C 12 H 18 Cl 4 N 4 (4 HCl) 軽くたたく) 基板バッファー内キット (基板バッファー溶液 1 mL のために軽打の 20 μ L) を使用する準備ができてによって提供されます。各スライドに直接 DAB 溶液 100 μ L を追加し、最大室温 10 分間インキュベート 
		注意: DAB 薄めたたて準備する必要があります、4 ° C で最大一週間保存することができます。インキュベーション時間バック グラウンド信号を最小限に抑えるために調整することができますが、すべてのスライドの同じを保持する必要があります</li>。
		<li>は、水ですすいで DAB ソリューションを削除します。Counterstain 速い赤ソリューション (準備 材料の表 を参照) を持つスライド 20 分洗浄水スライド再度簡潔にします</li>。
		<li>は 95% のエタノール 5 m のによってそれらを脱水します。100% エタノール, 2 x 5 分後に。最後に、迅速な硬化取付中のスライドをマウント (材料の表 を参照してください).</li>
		<li>は、バック グラウンドを避けるために 20 X に明視野顕微鏡でスライドを観察 。
		注: 高速赤色溶液常温保管して再使用できるフィルタ リングの後</li>。
	</ol></li></ol> 4。分析と定量化 <ol><li>SA β Gal 定量化 <ol><li>スライドをスキャンし、取得した画像に基づく各スライドのベスト セクションを選択します。定量化のため少なくとも 2 セクション/TA を使用します。セクションを判断 &#39; s 質組織の整合性、染色、counterstaining の品質に基づいています。定量化, 全体の TA 筋を通して SA β Gal 定量化のより豊かな表現を可能にするサンプル間に最大可能距離と 2 つの最高品質のセクションを選択します</li>。
		<li>SA β Gal 陽性細胞 ( 図 2) の定量化。
		<ol><li>の最小と最大の肯定的な SA β Gal セルを手動で選択してピクセルのサイズ ランクを決定します。
			<ol><li>ImageJ ソフトウェアを使用してスキャンしたスライドのデジタル画像を開きます</li>。
				<li>インターフェイスでは、をクリックして &#39; 分析 &#39; &#62; &#39; ツール &#39; &#62; &#39; ROI マネージャー &#39; &#62; &#39; 分析 &#39; &#62; &#39; 測定を設定 &#39; &#62; &#39; 領域を選択 &#39;。選択ツールを使用し、サラウンド、最小および最大正 SA-β-Gal 携帯しをクリックして ROI マネージャーに追加 &#39; 追加 &#39;。使用してサイズを測定、&#39; 測定 &#39; ボタンをクリックし、後で使用する値を保存します</li>。
			</ol></li> <li>すべての表示されている肯定的なセルが選択されてを確認するしきい値パラメーターを調整します。
			<ol><li>変換をクリックしてグレースケール画像 &#39; 画像 &#39; &#62; &#39; タイプ &#39; &#62; &#39; 8 ビット &#39; ( 図 2 a)。次へ &#39; 画像 &#39; &#62; &#39; 調整 &#39; &#62; &#39; しきい値 &#39;、すべての肯定的な SA β Gal のセルは赤 ( 図 2 b) で覆われるまで 2 番目のカーソルを移動し、クリックして &#39; 適用 &#39;.</li>
				<li>をクリックして分析粒子 &#39; 分析 &#39; &#62; &#39; 粒子の分析 &#39; &#62; &#39; サイズ (ピクセル ^2) &#39;、4.1.2.1 のステップで定義された値を適用して、入力 &#39; 循環 &#39;: &#39; 0.00 1.00 &#39;、クリックして &#39; ok &#39;; すべての概要が、カウント粒子が ROI マネージャー ( 図 2 D) で表示されます</li>。
			</ol></li> <li>元の画像を選択したすべての粒子を転送します。定量の正確さを確認する手動で選択範囲を調整します。陽性細胞 (緑色の矢印、 図 2 e) を追加および偽陽性細胞 (赤矢印、 図 2 e) を削除します。最後に、アウトラインのセクション ( 図 2 D) 使用によって区域を測定、&#39; 選択ツール &#39;。クリックして &#39; ROI マネージャー &#39; &#62; &#39; 追加 &#39; &#62; &#39; メジャー &#39;.</li>
			<li>重要なは、断面の面積によって陽性細胞数を正規化します</li>。
		</ol></li></ol></li> <li>Nanog 定量化 <ol><li>20 倍の倍率で手動で明視野顕微鏡 Nanog 陽性細胞をカウントします 。
		注: 高速赤 counterstaining TA 筋の形態の良い評価が可能します。ただし、染色は非常に軽い、セクションの明確な輪郭を欠いています。スキャナーは、しばしばセクションの境界を識別するために失敗し、フォーカスを正しくことはできません。マーカーを使用して、スキャンする前に、断面図のエッジを円またはセクションを検出するより敏感なスキャナーを使用することが可能です。現在のプロトコルの Nanog 陽性細胞を手動でカウントする効率的です</li>。
	</ol>
	</li>
</ol>

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<li>Cristofalo, V. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SA+beta+Gal+staining%3A+biomarker+or+delusion%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Gerontol%22%5BJournal%5D)">SA beta Gal staining: biomarker or delusion.</a> Exp Gerontol. 40 (10), 836-838 (2005).</li>
</ol>

著者は、彼らは競合する金銭的な利益があることを宣言します。

ここでは、リプログラマブル マウスの骨格筋の老化の両方を検出する方法と、多能性幹細胞を提示します。このメソッドは、評価、両方老化を定量化し体内細胞の可塑性、誘発して組織の修復・再生老化の役割を調べるに使用可能性があります。
現在のプロトコル老化関連 β ガラクトシダーゼ (SA β Gal) 試金を使用して、骨格筋における体内老化細胞を検出します。この試金は、この酵素の活性は通常酸性 pH 4.516,17で測定しながら老化細胞に具体的に関連付けられている値を受け渡す pH (6.0 あるいは 5.5) で増加ライソゾーム β-ガラクトシダーゼ活性を検出します。したがって、pH を調整することが重要だ (pH = 6 または 5.5) 老化関連アクティビティの特定の検出を確保するため。さらに、カウンター エオシンで染色が弱いと拡散反射光の信号をカウントされません SA β Gal+セルの自動定量化のため不可欠...

細胞の老化は、安定した細胞周期の阻止によって特徴付けられるストレス反応の形式です。研究は過去 10 年間で、老化が萌芽期の開発、線維化、生物1,2の高齢化などさまざまな生物学的および病理学的プロセスに関連付けられていることをしっかりと確立しています。細胞の老化は、テロメアの短縮3によって引き起こされる彼らの分裂寿命の終わりに線維芽細胞で初めて確認されました。複製ストレスのほか、DNA 損傷、酸化ストレス、がん化シグナル ゲノム ・ エピゲノムの変化、うちのどれかが最終的に p21/p53 および pRB の細道を起動などの老化を引き起こすことができる他の多くの刺激があります。確立し、永続的な成長逮捕1を強化します。老化細胞の重要な特性の 1 つは、彼らは代謝活性が維持され老化関連の分泌形質 (SASP) を力強く表現: 多くの炎症性サイトカイン、増殖因子、細胞外マトリックスの分泌要因4。SASP の要因は、媒介と増幅老化作用、免疫細胞を集め、ローカルおよび全身の組織調査1を変更することで、強力な効果のために重要な役割を果たすに提案されている.興味深いことに、老化が最近組織修復と再生5,6の重要であると提案されています。さらに、我々 を含む、いくつかのラボからのデータは組織損傷が誘導する老化が再生7-9を促進するために、SASPs による細胞の可塑性を高める可能性を示唆しています。したがって、すべての新たなデータは、老化で生体を調査する重要性を強調表示します。
細胞の可塑性は、ポスト誘導多能性幹細胞 (iPSC) 時代文化とin vivoの10の異なる刺激にさらされると代替運命を採用する新しい id を取得するセルの能力です。におけるリプログラミング達成体内11,12, をすることができます知られている場所の表現、山中 4 因子を含むカセット: Oct4、 Sox2、 Klf4、C-myc (OSKM) が誘導体内の複数の臓器の奇形の形成を促進することができます。したがって、重要な規制当局と細胞の可塑性11にとって重要な経路を識別するために、強力なシステムとして再マウス モデル (i4F) を使用できます。
適切かつ敏感な体内システムがどのように細胞老化の理解に不可欠な組織再生における細胞の可塑性が調節します。ここでは、堅牢なシステムと老化と組織再生における細胞の可塑性の間のリンクを評価する詳細なプロトコルを提案します。(TA) 脛骨前方筋群、組織再生や i4F マウス モデルを研究する万全の体制で cardiotoxin (CTX) の組み合わせによる筋肉の損傷により細胞老化のin vivo検出筋再生中にプログラムし直します。
老化と細胞の可塑性の間のリンクを評価するには、i4F マウスは急性の筋肉の損傷を誘発する CTX と負傷、生体内でリプログラミングを誘発するドキシサイクリン (0.2 mg/mL) 7 日間で治療します。CTX 誘発急性筋肉の損傷、再生プロトコルは、倫理的な理由の最近公開された13をされている、現在のプロトコルでこの手順が省略されます。老化細胞のピークが以前14を観察されているとき、10 日間のポスト傷害13TA 筋サンプルが収集されます。ここでは、この詳細なプロトコルは、(SA β Gal) を経由して老化のレベルと (IHC 染色 Nanog) 経由でリプログラミングを評価するために必要なすべての手順を説明します。
老化関連 β ガラクトシダーゼ (SA β Gal) アッセイは、文化とin vivoの15の両方老化細胞を検出する最も一般的に使用される試金です。その他の試金に比べると、SA β Gal 試金はそのまま組織アーキテクチャでは、生体内で調査のため特に重要です彼らのネイティブ環境における老化細胞の同定をことができます。また、カップルは IHC を使用して他のマーカーと SA β Gal 試金することが可能です。ただし、SA β Gal 試金は、主な制限のまま新鮮なまたは冷凍のサンプルを必要は。新鮮なまたは冷凍の組織は TA 筋サンプルを冷凍など、日常的に使用できるが、SA β Gal は明らかに老化細胞を検出する最も適切な試金です。Nanog は 2 つの理由 reprogramed の細胞を検出するために使用されるマーカー: 1); 多能性の重要なマーカーは2) もっと重要なは、その表現はないドキシサイクリン (dox) によって駆動される、山中カセットの強制発現ではなく誘導多能性を検出するため。
本論文で示したプロトコルを汚す定量化手順を簡素化する個別に行うことができるが、また老化の両方を可視化する共同染色手順と同じセクションを多能性幹細胞で行うことができます注意してくださいが重要です。

<table><tbody><tr><td>K3Fe(CN)6</td><td>Sigma</td><td>13746-66-2</td><td>SA-&beta;ギャル染色液</td></tr><tr><td>K4Fe(CN)6</td><td>Sigma</td><td>14459-95-1</td><td>SA-&beta;Gal染色液</td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma</td><td>7786-30-3</td><td>SA-&beta;ガル染色液</td></tr><tr><td>X-Gal</td><td>Sigma</td><td>B4252</td><td>SA-&β;Gal染色液</td></tr><tr><td>ドキシサイクリン</td><td>シグマ</td><td>D3447</td><td>in vivo リプログラミングの誘導用</td></tr><tr><td>Cardiotoxin</td><td>Lotaxan Valence, France</td><td>L8102</td><td>筋肉損傷用</td></tr><tr><td>グルタルアルデヒド</td><td>Sigma</td><td>111-30-8</td><td>固定液用</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>50-980-487</td><td>固定液用</td></tr><tr><td>NaCitrate : Sodium Citrate monobasic bioxtra, anhydre</td><td>Sigma</td><td>18996-35-5</td><td>透過処理液用</td></tr><tr><td>Triton</td><td>Sigma</td><td>93443</td><td>透過処理液用</td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン</td><td>Σ</td><td>A3608</td><td>洗浄液</td></tr><tr><td>抗体 抗ナノ</td><td>細胞シグナル伝達</td><td>8822S</td><td>ウサギモノクローナル抗体</td></tr><tr><td>EnVision+ Kits (HRP.兎。DAB+)</td><td>Dako</td><td>K4010</td><td>For Nanog revelation</td></tr><tr><td>Eosin 1%</td><td>Leica</td><td>380159EOF</td><td>Counterstainning</td></tr><tr><td>Fast red</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-3403</td><td>Counterstainning</td></tr><tr><td>Thermo Scientific Shandon Immu-Mount</td><td>Fisher scientific</td><td>9990402</td><td>Mounting solution</td></tr><tr><td>顕微鏡用速硬化封入剤 : Eukitt&reg;</td><td>Sigma</td><td>25608-33-7</td><td>埋込ソリューション</td></tr><tr><td>顕微鏡 位相差 明視野 CKX41: 10X-20X-40X 対物レンズ</td><td>オリンパス</td><td>CKX41</td><td>ナノグラフ定量用顕微鏡</td></tr><tr><td>マウス: i4F-A</td><td>Abad et al., 2013</td><td>該当なし</td><td>再プログラム可能なマウスモデル</td></tr><tr><td>骨格筋, 脛骨筋 前スライド</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>スキャナー</td><td>Zeiss</td><td>Axio Scan Z1</td><td>スライドスキャン</td></tr></tbody></table>

傷害による老化と生体内での骨格筋におけるリプログラミングの評価

Evaluation of Injury-induced Senescence and In Vivo Reprogramming in the Skeletal Muscle

細胞の老化は、がんや高齢化など多くの生理学的および病理学的プロセスのために重要である安定した細胞増殖停止によって特徴付けられるストレス反応です。最近では、老化は組織の修復と再生にも関与しています。したがって、それは体内老化細胞を識別するますます重要になっています。老化関連 β ガラクトシダーゼ (SA β Gal) アッセイは、老化細胞の文化とin vivoの両方を検出する最も広く使われている試金です。この試金は、ライソゾームの β-ガラクトシダーゼ活性の組織化学的検出 (6 または 5.5) 以下の pH でことができます老化細胞のライソゾーム含量の増加に基づいています。これにより形態, 組織アーキテクチャに関する場所など貴重な情報を提供しています彼らの居住環境における老化細胞の同定、フローサイトメトリーなど、他の試金と比較して、免疫組織染色 (IHC) を介して他のマーカーとの結合の可能性。SA β Gal 試金の主要な制限は、新鮮なまたは冷凍サンプルの要件です。
ここで、どのように細胞老化を理解するための詳しいプロトコルは提示細胞の可塑性と組織再生の生体を促進します。怪我の組織再生を研究するのに確立されたシステムに骨格筋の老化細胞を検出するのに SA β Gal を使用します。さらに、トランスジェニック マウス モデルの Nanog、多能性幹細胞のマーカーを検出するのに IHC を使用します。このプロトコルを調べるし、細胞の老化誘導細胞の可塑性と生体内でリプログラミングのコンテキストでを定量化することが出来ます。

筋肉傷害による細胞老化の検出
最近では筋損傷が細胞の老化が過渡14を誘導すること示されています。10 日後に損傷 (DPI)、損傷した筋線維の大部分は、中心部にある核、再生、筋線維の特徴と再生を受けているし、筋のアーキテクチャが再確立されました。浸潤炎症細胞が特定の地域で表示を維持しながら大幅に減少します。10 DPI 少ない壊死と炎症性細胞は染色を妨害する筋の存在があるので、SA β Gal が老化細胞を検出する良い時間点であります。染色の特異性を決定するには、同じマウス (図 1 a) から PBS を注入した TA は重要なネガティブ コントロールとして使用されます。
SA β Gal 陽性細胞のより良いより正確な評価を確保するため、TA 筋肉の別の平...

ここで生体内でリプログラミングを誘導しながら傷害時に骨格筋の老化の両方を検出するための詳しいプロトコルおよび多能性幹細胞を提示します。このメソッドは、組織の再生中に細胞の老化の役割を評価し、生体内リプログラミングに適しています。

Cellular senescence is a stress response that is characterized by a stable cellular growth arrest, which is important for many physiological and ...

本プロトコルの全体的な目的は、組織損傷後の骨格筋におけるin vivoでの細胞老化とリプログラミングの両方を評価することです。この手法は、筋肉の再生を促進するためにどのように細胞可塑性を高めるかといった、再生医療分野における重要な課題の解決に寄与します。本技術の主な利点は、生体内の環境において老化細胞を検出および定量化するための信頼性の高い手法を提供できる点にあります。細胞老化は、近年、組織の修復および再生に関与していることが示唆されています。老化が組織修復や再生にどのように寄与するのか、そのメカニズムを解明することは、再生医療に大きな影響を与えると考えられます。私たちは、骨格筋におけるin vivoリプログラミングに対する組織損傷の潜在的な影響を調査していた際に、初めてこの手法を考案しました。本手順を開始するには、筋肉サンプルのスライドを1%パラホルムアルデヒドおよび0.2%グルタルアルデヒドを含むPBSで4分間固定します。次に、スライドをPBSで10分間ずつ2回洗浄します。その後、pH 5.5のPBSでスライドを30分間洗浄します。次に、切片をX-gal溶液とともに、暗所、37°Cで最低24時間インキュベートします。その後、スライドをPBSで3回、各回10分間洗浄します。続いて、1%パラホルムアルデヒドを含むPBSで、スライドを30分間後固定します。最後に、スライドをPBSで3回洗浄します。続いて、スライドをエオシン溶液に1分間浸し、0.2%エオシンで対比染色を行います。その後、蒸留水で短時間すすぎます。水溶性の非蛍光封入剤を用いてスライドを封入します。4%パラホルムアルデヒドを含むPBSで10分間固定します。PBSで10分間ずつ2回洗浄します。続いて、透過化溶液を加え、5分間インキュベートします。その後、スライドをPBSで2回、それぞれ5分間洗浄します。最後の洗浄では、0.25%BSAを含むPBS 200 microlitersをスライドに直接滴下し、5分間置きます。5% FBS含有PBS中で、1.25 µg/mLに希釈した一次抗Nanog抗体とともにスライドを4°Cで一晩インキュベートします。PBSでスライドを2回、各10分間洗浄します。最後の洗浄では、0.25% BSA含有PBS 200 µLを用い、5分間洗浄します。その後、市販のキットに含まれるRAB-HRP二次抗体100マイクロリットルをスライドに滴下し、45分間インキュベートします。次に、二次抗体を除去するため、PBSで5分間ずつ3回洗浄します。その後、市販キット付属の基質バッファーでDABを希釈します。激しくボルテックスします。各スライドにDAB溶液を100 µL直接加え、室温で最大10分間インキュベートします。次に、スライドを水で洗浄してDAB溶液を除去します。Fast Red溶液を用いて、スライドを2分間対比染色します。その後、スライドを再度水で短時間洗浄します。続いて、95% ethanolで5分間脱水し、さらに100% ethanolで5分間ずつ2回脱水します。その後、速乾封入剤を用いてスライドを封入します。背景を除去するため、顕微鏡の明視野にて20倍でスライドを観察します。この手順では、スライドをスキャンし、組織の完全性、染色の質、および対比染色の状態に基づき、可能な限り離れた位置にある最高品質の切片を各スライドから2つ選択します。これら2つの切片におけるSA-Beta-Gal陽性細胞をカウントし、平均値を算出します。次に、最小および最大のSA-Beta-Gal陽性細胞を手動で選択し、ピクセルサイズの順位を決定します。ImageJのインターフェースで、Analyze、Tools、ROI Manager、Analyze、Set Measurementの順にクリックします。次に、「Area（面積）」を選択します。選択ツールを使用して、SA-Beta-Gal陽性細胞の中で最小のものと最大のものを囲み、「Add（追加）」をクリックしてROIマネージャーに追加します。その後、「Measure（測定）」ボタンを使用してサイズを測定し、後で使用するために値を保存します。次に、可視化されたすべての陽性細胞が選択されるように、しきい値パラメータを調整します。[Image]、[Type]、[8-bit]の順にクリックして、画像をグレースケールに変換します。その後、[Image]、[Adjust]、[Threshold]へと進みます。2番目のカーソルを動かし、陽性のSA-Beta-Gal細胞がすべて赤色でカバーされるまで調整し、「Apply」をクリックします。次に、「Analyze」、「Analyze Particles」の順にクリックし、「Size」を選択して、先に定義した値を適用して粒子を解析します。「Circularity」に0.00-1.00と入力し、「OK」をクリックします。カウントされたすべての粒子の要約がROI Managerに表示されます。次に、選択したすべての粒子を元の画像に転送します。正確な定量化を行うため、手動で選択範囲を調整してください。陽性細胞を追加するか、偽陽性細胞を削除します。最後に、選択ツールを用いてセクションの外郭を描き、面積を測定します。ROI ManagerのAddをクリックし、次にMeasureをクリックします。顕微鏡下で、明視野像におけるNanog陽性細胞を20倍の倍率で手動でカウントします。ここでは、筋損傷後のin vivoリプログラミングおよび老化レベルを評価するための概略図を示します。以下は、損傷した骨格筋の凍結切片におけるSA-Beta-GalおよびNanog染色の代表的な画像です。これらの画像は、エオシンで対比染色したSA-Beta-Gal染色と、ファストレッドで対比染色したNanog染色を示しています。上段に非損傷筋肉、下段に損傷筋肉を示します。このグラフは、受傷後10日目の連続切片におけるSA-Beta-Gal陽性細胞とNanog陽性細胞の定量化および相関を示しています。この手順を行う際は、染色の特異性を確保するために、常に陰性対照を含めることが重要です。この手順に従い、免疫蛍光染色などのあらゆる手法や、異なる老化マーカーの選択を用いることで、老化細胞の細胞アイデンティティなどの追加的な疑問に答えるために、あらゆる細胞型で解析を行うことが可能です。この技術は発展を重ねるごとに、老化や組織修復・再生分野の研究者が、哺乳類において細胞老化がいかに細胞可塑性を促進し、組織修復と再生を促進し得るかを探究するための道を開いてきました。したがって、このビデオを視聴することで、in vivoにおいて老化細胞とリプログラミング細胞の両方を同定する方法について、十分に理解できたはずです。

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

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大人と胚骨格筋のMicroexplantの文化と骨格筋幹細胞の単離

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口腔顔面筋線維症モデルを確立するためのマウス咬筋の凍結損傷

学ぶ 傷害後の骨格筋における老化細胞と多能性幹細胞の検出法。組織修復における細胞老化の役割を調べ、再生医療への応用可能性を探る。

傷害による老化と生体内での骨格筋におけるリプログラミングの評価

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