Name: 原子間力顕微鏡とゼブラフィッシュ胚の卵黄細胞のレオロジー (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-29T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 47 s
Description: 学ぶ原子間力顕微鏡を用いたゼブラフィッシュ胚の卵黄細胞のレオロジー測定法。最小限の操作で機械的特性を定量化し、発生メカノバイオロジーの理解を深める。

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これらのプロトコルのための基礎を設定するのに参加している、Amayra · エルナンデス ベガとフィリップ ・ アレクサンドル ・ Pouille に感謝します。我々 はまた、IBMB PCB、ザビエル ・ エステバン、継続的な支援のための研究室のメンバーから分子イメージング プラットフォームを感謝します。ジャナラリター ・ デ ・ カタルーニャ、DGI と EMB と DN に経済産業省、競争のスペインから Consolider 助成金の連結グループ プログラムはこの仕事を支えた。

下記載されているすべてのプロトコル手順我々 の機関の動物のケアのガイドラインに従ってください。
1. ゼブラフィッシュ文化
<ol><li>繁殖し、標準的な条件下で大人のゼブラフィッシュを維持します。 注: AB と TL の野生型胚は、本研究に使用されました。</li>
	<li>胚を収集し、E3 胚中24の 28.5 ° C でそれらを育てます。上記の19として形態によるとステージします。</li>
</ol>2. 原子間力顕微鏡
<ol><li>手動で dechorionate は、(個々 の興味に応じてさまざまな年齢層) のゼブラフィッシュ胚を上演しました。(材料の表を参照してください) 2 つの細くてシャープな鉗子で絨毛を削除します。<ol>
<li>1 つの鉗子を用いた絨毛膜をグリップし、他の鉗子でそれで涙。そして、涙とは逆の地域で絨毛膜を持ち、優しく開口胚を押します。</li>
		<li>8 X と 50 X 倍率の調整範囲を解剖顕微鏡の下で dechorionation を実行します。</li>
	</ol></li>
	<li>原子間力顕微鏡の胚をマウントします。
	<ol>
<li>胚中 2% アガロース溶液を準備し、これで 35 mm のペトリ皿を入力します。固めること。アガロース ベッド細い鉗子で 1.5 mm (2 回胚のサイズ) と約 350 μ m 深さ (半分胚のサイズ) の小さい穴を作る。</li>
		<li>Agarose のレイヤーで行われたポークで胚を置き、彼らが 0.5% 低のソリューションの周りを広めることで適所融解胚中アガロースを保証します。ちょうど穴にそれらを保護する胚の周りこの溶液を注ぐ。</li>
		<li>低融点アガロースは、室温で固化、前に afm プローブの関心領域が (図 1 a) 上向きに直面しているような方法で胚を回転します。</li>
	</ol></li>
	<li>原子間力顕微鏡による胎児を調べる
	<ol>
<li>画像反転原子間力顕微鏡で 20 × 対物を用いたペトリ皿で胚を見つけて (材料表25参照) 室温 (23-24 ° C)。 注: 胚は、胚の中に浸漬し、アガロース ベッドに添付に生きて保持されます。</li>
		<li>0.01 N/m. カンチレバー振動のピーク-ピーク振幅を 5 μ m と 1 hz の周波数に設定する名目のバネ定数のカンチレバーに接続されている直径 4.5 μ m の球状のポリスチレン ビーズを用いたキャストの胚の卵黄細胞表面をプローブします。</li>
		<li>ルーチンは、データの平均値として別の位置といくつかの胚は、テストする各地域のデータを収集します。 注: 良い出発点は、プローブ原子間力顕微鏡顕微鏡の XY の圧電アクチュエータを用いた片持ち梁の位置を制御する中央、10 μ x 10 μ m の正方形のコーナーをある 5 つの位置にです。画像とデータ収集は、胚あたり約 20 分を取った。胚の卵黄細胞表面のさまざまな地域のデータを記録、例えば植物極または EVL セル余白 (図 1 bと1 C) に近い別の地域のみ行えます異なる向きで異なる供試体を用いた。</li>
	</ol></li>
	<li>力を計算します。
	<ol>
<li>顕微鏡制御ソフトウェアと光てこ法による圧電アクチュエータとそのたわみ (d) 象限フォト ダイオードを用いた結合のひずみゲージ センサー AFM カンチレバー (z) の鉛直変位の測定 (材料の表を参照してください。25)。</li>
		<li>ガラス基板の裸地域から収集したデータから得られた d z 曲線の傾きを使用すると、フォト ダイオードの信号とカンチレバーのたわみ量 (d) との相関を調整します。 注: 測定の鉛直変位に等しいカンチレバーたわみ量と斜面光てこ26の偏向感度を表します。</li>
		<li>熱的ゆらぎから片持ちバネ定数 (k) 前述したように27を推測します。</li>
		<li>として (h) サンプルのインデントを計算します。 h = (z - zc) -(d - dオフ)          (1) 注: ここでzcは接触点の位置、dをフォト ダイオードのオフセット。</li>
		<li>片持梁としての力 (F) を計算します。 F = k · d (2)</li>
	</ol></li>
	<li>粘性液体を囲む張力 Tcの弾性層から成る液体バルーン モデルの観点から野の張力を計算します。このモデルで (胎児の大きさ) と比較すると小さいインデントに力比例して増加として4,28 。 F = 4 π Tc[(Rb / Re) +1)] h (3) 注: ここでRbはビーズの半径、 Reは胚の半径。ゼブラフィッシュ胚の胚 (400 μ m) の半径は 2 桁のビーズ (2.25 μ m) のそれより大きいと、この方程式として近似できます。 F = 4 π Tc h (4)<ol>
<li>緊張力-インデント (F・h) の計算の 5 つの異なる胚卵黄細胞地域ごとのカーブ ポイントの測定。</li>
		<li>各F用hカーブの非線型最小二乗フィッティングTcを計算します。統計分析、表層張力Tcの計算は異なるF-h曲線から平均する必要があります。</li>
	</ol></li>
	<li>低振幅を適用することによって大脳皮質の粘弾性特性 (レオロジー) を測定 (100 nm) AFM 中周波振動周波数の異なる25の正弦波で構成されます。
	<ol>
<li>として力押込み曲線から周波数領域における効果的な複素弾性率g*(ƒ)を計算します。 g *(f) = [F(f)/ h(f)]- ifb (5) ここでiは虚数単位、力とインデントの周波数 (f) スペクトルF(f)、 h(f)。bは表面に適用される振動から抽出したカンチレバーの粘性抵抗の補正です。</li>
		<li>実数と虚数の部分に別のg*(ƒ) : g *(Ƒ) = g' (f) + ig」(f)          (6) em > g'(f) は弾性、弾性エネルギーの測定の格納し振動のサイクルごとに回復します。g' (f) は消費エネルギーに占める粘性係数。</li>
		<li>固体状のインデックスを提供する損失のタンジェントを計算 (< 1) または液体状 (> 1) 材料の挙動として。 g'(f)/ g' (f)          (7) 注: このタイプの測定、それはパラメーターを抽出することが可能か粘性を示すとどのように弾性検出された材料であります。Bは少し表面にカンチレバーの端までの距離に依存、 gの非常に低い値を与えて ´´ 卵黄による展示 ( 2 D 図を下記を参照) を細胞、 bの小さな変化でごくわずかな影響があります。測定値29。</li>
	</ol></li>
</ol>3. 粒子追跡のレオロジー
<ol><li>
卵黄細胞に粒子マイクロインジェクションを実行します。
	<ol>
<li>水平マイクロ ピペットの引き手とキャピラリーのホウケイ酸ガラス (材料の表を参照) を使用して合わせたマイクロニードルを製作します。<ol>
<li>引き手設定を使用した 10 cm の長さ、0.58 mm 内径 1.00 mm の外径を持ちますマイクロニードルを準備: 圧力: 500;熱: 510;プル: 65;速度: 25;時間: 50。</li>
		</ol>
</li>
		<li>カスタム作られた金型 (材料の表を参照) を用いた胚中ベッドで 1% の agarose のストレート インデント レーンを作成してシャーレ、インジェクションのプレートを準備します。<ol>
<li>金型を逆さま回すと液体 agarose のゲルの上に置いて、ゲルは固化後、金型を削除します。1.2 倍の倍率で解剖顕微鏡の下で agarose の金型によって作られた溝に胚をピペットします。 注: 幅と金型の設計を自ら揃えるため胚を有効にします。</li>
		</ol>
</li>
		<li>注入前に (表面張力は、胚/絨毛膜を注入後、取り外しに針に付着防止) 注入を促進する媒体をほぼ完全に削除します。</li>
		<li>蛍光ナノ粒子を microinject (半径、= 100 nm、材料表を参照してください) 胚の卵黄細胞 (図 3 a) の植物の一部で水 (1:1, 000) で希釈しました。</li>
		<li>精密マニピュレーターにピペットを調整し、時間と圧力のコントロール (材料の表を参照) と自動マイクロインジェクターとビーズを注入します。10 ~ 20 psi 圧力を設定します。</li>
		<li>ビーズ ソリューションを注入前にキャリブレーションを注入する量 (0.5 nL) 1 x 0.01 mm ステージ マイクロメータをもつガラスシリンジで配信される液滴のサイズを測定することによって (材料の表を参照してください)。</li>
		<li>部屋の温度で行われる注射の中に胚を視覚化する解剖顕微鏡で 1.6 倍の倍率を採用してください。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
熱変動を記録することによって、卵黄の粘弾性挙動を評価します。
	<ol>
<li>Dechorionate として、microinjected の胚手順 2.1 と融解胚中溶液中 30 ° C でポイント agarose 0.5% 低に埋め込むその後、ガラス底板 (材料の表を参照してください) に転送して、オリエントし、agarose がまだ液体、coverslip に向かってそれらをプッシュします。 注: agarose が室温で固化、胚がイメージを作成する準備が。</li>
		<li>マイクロインジェクション後 2 h 倒立顕微鏡のステージ上にガラスの底板にマウントされた胚を配置します。26 のナノ粒子の画像をキャプチャ標準商業顕微鏡のソフトウェアを用いた倒立顕微鏡に室温で 63 × 対物と 25 の Hz のサンプリング レートで s (ピクセル サイズ = 166 nm、40 ms 毎の画像)。</li>
		<li>パーティクルの重心の位置を計算し、オープン ソース ソフトウェア ImageJ (図 3 b) の TrackMate プラグインで時間をかけて彼らの軌跡を定義します。</li>
		<li>特注ソフトウェア6,30として各粒子の二次元平均二乗変位 (MSD) を計算します。 < Δr2 (τ) > = < [x(t + τ) - x(t)]2 + [y(t + τ) - y(t)]2>          (8) 注: ここでtは経過時間とのタイムラグです。純粋な液体で MSD 増加反比例ストークス-アインシュタインの関係により粘度 (ν)。 < Δr2 (τ) > = 4kB Tτ/6πνa、          (9) ここでTは絶対温度です。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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</ol>

著者はない競合する金銭的な利益やその他の利害の関係を宣言します。

ここで、ふせ中ゼブラフィッシュ卵黄細胞のいくつかの生体力学的パラメーターと材料特性容易に推定できるナノ粒子と AFM レオロジーで紹介します。
AFM が生理的条件4,5,25,28の細胞や組織のレオロジー機能を取得するために採用されている、我々 が原子間力顕微鏡をそのまま開発に適用するためのプロトコルを開発ふせ中ゼブラフィッシュ胚の卵黄細胞表面をテストするを用いて胚。
私たちの AFM 測定では、胚の向きは半低融点アガロース中に埋め込むことによって確保されました。まだ、アガロースを埋め込む AFM 測定に影響ないです。Agarose の剛性は、球状の先端で、その表面をプローブで測定しました。4.2 0.2 のヤング率 (E) がわかった Pa、ハーツで力...

地形形成過程の力学的制御の基になる物理的な原則は、主として定義されていません。分子・細胞レベルの生体力学的研究がかなりの勢いを収集している組織・個体レベルでの生体力学的パラメーターの探査はその初期の段階で。流体の回帰1またはビデオ力顕微鏡2レーザー顕微鏡3、または解離細胞4のより少なく嵌入的原子間力顕微鏡 (AFM) 中のアクティブおよびパッシブ力を区別するために研究者を許可するまたは生体内で5やナノ粒子のマイクロレオロジー簡易6組織の力学的特性と応答の期待を許可します。
原子間力顕微鏡、表面粗さ、接触時に片持ち梁先端の変形からのプローブ表面7遵守の解決高原子分解能三次元地形手法です。原子間力顕微鏡を用いた異なる方法論は、摩擦、接着力、多様な材料の粘弾性特性の測定を含む表面の特性を調査するために開発されています。最近、原子間力顕微鏡は、試料の物性に関する情報を取得する強力なツールとして浮上しています。特に、原子間力顕微鏡の単一セルから知られている曲げ定数8のカンチレバーに接続されているマイクロ チップの振動のインデントを適用することによって複素すり弾性率抽出できます非侵襲的。これにより生じる力を推測できます。しかし、AFM は一意ではありません、異なる方法論は個々 の細胞からレオロジー データと機械的性質を抽出できるように (例えば、マイクロ ピペット吸引9、ねじれフローサイトメトリー (MTC)10、磁気または一軸引張11をのテスト)。
まだ、これらの新規方法論の複雑な地形形成過程への応用は簡単ではありません。萌芽期ティッシュの機械的性質を決定する際に直面する主要な課題、ソフト (mm μ m)、小 (102 - 104 Pa 範囲) と粘弾性 (時間依存現象に上昇を与えている) 自然素材12。したがって、胚や発展途上の生物の特定のケースに機械的性質 (剛性、粘度、接着性) の定量手法を適応する重要です。2 つの重要な問題が研究開発にレオロジー的アプローチを分析する際に考慮取られる必要: 侵入の干渉を避けるために、簡単にアクセスを提供します。このシナリオではマイクロ ピペット吸引、MTC、および引張試験は、制限を表わします。最初のケースでは、セルに苦しむ高変形はその生理学的・機械的性質9を変更可能性があります。2 番目のケースで適用応力がローカルの骨格を変形させるように基板に実験的組織を堅持する必要可能性がありますも細胞のアクティブ化の状態と、それ故に、機械的な機能10代で効果をご紹介.最後に、一軸引張アプローチは生物とアクセシビリティ11開発の幾何学によって限られます。
原子間力顕微鏡は、ことができます面倒なサンプル準備もせず、自然の環境で直接試料の研究発達過程の研究に適しているようです。さらに、萌芽期ティッシュの解離は一般的に困難である、原子間力顕微鏡プローブの縮小サイズ、メディア (水溶液や非水溶媒)、サンプル温度または化学の種類の選択の制限で汎用性の高いサンプルの組成物。原子間力顕微鏡は、大規模なドメインに適用され、時間スケールに十分な汎用性発達段階や生理的条件で組織の材料特性を取得するために採用されています。全くネイティブ組織機械的性質も取得した15されて動脈13または骨14は地形のポイントのビューから、強のようないくつかのケースで研究されているようです。地形は、アフリカツメガエル16の形態形成における細胞の配列などの視覚化を許可する生きている胚で検討されています。最後に、包括的なサンプル準備のプロトコルは、異なる発達過程における力学的パラメーターを決定する開発されています。ニワトリ胚の消化管11; ネイティブ非固定ティッシュ セクションのナノインデンテーション マップが生成されています。gastrulating ゼブラフィッシュ胚4; から分離された個々 の外胚葉、中胚葉、内胚葉前駆細胞の接着性と機械的性質を取得胚盤葉上層と鳥類胚17から植に原始線条の剛性測定アフリカツメガエル5の胎生期脳で直接定義されている剛性勾配の異なるパターン。
萌芽期の開発を探索する AFM を適用するため大幅な質的な飛躍は、簡単なアクセス可能な地形形成過程に近づいてから来るかもしれない。ゼブラフィッシュふせは不可欠であり、保存されたイベントは、さまざまな組織が、数時間で、胚の拡張を直接に制限された球状空間で調整。ゼブラフィッシュふせ (球面ステージ) の発症時は、包み込むレイヤー (EVL)、細胞の表層は大規模な卵黄の合胞体細胞の上に座って胚の動物極を中心とした割球の半球形キャップをカバーしています。ふせは、EVL、皮質植物区拡大の奥の細胞 (DCs)、胚と卵黄の周り合胞体卵黄細胞 (E YSL) の外部の層で構成されています。ふせ、EVL、植物極18,19,20DCs の閉鎖を終了します。方法と場所ふせ中に生じるし、どのように彼らは大域結合が明確ではない1,21。
ここで詳細にゼブラフィッシュ卵黄でふせ進行中に受動的な機械的組織プロパティが生体内で細胞を推論する AFM を適用する方法を示します。これを行うには、AFM カンチレバー プローブのように接続されている小さな微粒子を採用しました。これは非一様卵黄細胞表面での張力勾配とそのダイナミクスを時間をかけて勉強するに正確なローカルの情報の検索をことができます。代替 AFM アプローチ ウェッジ カンチレバー22を使用するものなど、ないローカルなレンダリング データも正確に。カンチレバーの終わりにサンプル サイズより大きいくさびを接着剤に非常に慎重に操作スキルが必要、くさびのテクニックは胚をプロービングのため適していません (~ 倍カンチレバーの長さより大きい) 力学。
モデリングと定性的および定量的な方法で細胞の粘弾性特性を特徴付ける、バイオメカニクスの改善された理解が可能です。生体力学的視点からそれは、ふせと張力測定と力学、原子間力顕微鏡; で抽出することができますだけでなく需要知識を理解しておく必要従って組織の生物物理学的特性に関する情報の必要性があります。この情報を抽出するには、23さまざまな生理学的な条件の下で種類の異なる細胞を特徴付けるために長年にわたってさまざまな細胞レオロジー技術きた。原子間力顕微鏡には、MTC、光ピンセット (OT) が含まれます。これらのメソッドは、ただし、証明されている胚または器官のスケールで解析は不十分。代わりに、我々 は正常に体内のレオロジー測定用ナノ粒子追跡マイクロレオロジー簡易6を適応しています。この手法は、個々 の粒子のブラウン運動の変位を分析し、ローカル マイクロメカニックス プロパティを推測します。
一緒に原子間力顕微鏡とナノ粒子のレオロジーは、ふせ時に皮質の引張力学の定義と卵黄の内部の機械的性質を許可します。この情報は、完全に、EVL の変形応答の相違の結果として成長する異方性応力 E YSL 皮質の等方性アクトミオシン収縮する卵黄細胞質層 (YCL) は欠かせないモデルを支持します。EVL とふせの進行1の方向の正味の移動。

<table><tbody><tr><td>倒立光学顕微鏡</td><td>ニコン</td><td>TE2000</td><td>サンプルとAFMカンチレバーの可視化</td></tr><tr><td>原子間力顕微鏡(AFM)</td><td>カスタムメイド</td><td>-</td><td>商品化されたAFMはどれでも採用可能</td></tr><tr><td>倒立共焦点顕微鏡</td><td>ツァイス</td><td>LSM780</td><td>ナノレオロジーデータ収集</td></tr><tr><td>アガロースD1 低EEO</td><td>Conda</td><td>8016.00</td><td>鋳造胚</td></tr><tr><td>超高純度LMPアガロース(低融点)</td><td>Invitrogen</td><td>16520-100</td><td>胚の確保</td></tr><tr><td>ゼブラフィッシュ マイクロインジェクションと移植 金型</td><td>ワールド精密機器</td><td>Z-MOLDS</td><td>胚の鋳造.元の寸法でカスタムメイドは、</td></tr><tr><td>デュモン5鉗子</td><td>FST</td><td>11251-20</td><td>1.5ミリメートル直径</td></tr><tr><td>Si3N4カンチ</td><td>レバーNovascan</td> PTも採用することができます<td>。GS</td><td>AFMによる胚の測定。球形チップ:4.5&マイクロ;m diameter and k=0.01 N/m</td></tr><tr><td>蛍光ナノ粒子</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ FluoSpheres F8811,</td><td>ナノレオロジー追跡用</td></tr><tr><td>マイクロピペットプーラー</td><td>Sutter Instruments</td><td>P-2000</td><td>テーラードマイクロニードルの作</td></tr>製 <tr><td>ホウケイ酸キャピラリーガラス</td><td>ワーナーインスツルメンツ</td><td>G100TF-4</td><td>テーラードマイクロニードルの作</td></tr>製 <tr><td>マイクロマニピュレーター</td><td>成茂</td><td>MN-153</td><td>マイクロピペットの操作</td></tr><tr><td>マイクロインジェクター</td><td>エッペンドルフ</td><td>FemtoJet Express</td><td>注入時間と圧力の制御</td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>ライカ</td><td>DFC365FX</td><td>注入中の胚の可視化</td></tr><tr><td>解析ソフトウェア</td><td>MathWorks</td><td>Matlab</td><td>AFMと粒子追跡データの解析</td></tr><tr><td>ゼブラフィッシュ</td><td>ABとTL野生型</td><td></td><td>胚収集に使用される株</td></tr><tr><td>ガラス底板</td><td>マットテック</td><td>P35G-0.170-14-C</td><td>ナノレオロジーデータ収集用胚の取り付け</td></tr><tr><td>ステージマイクロメーター</td><td>FST</td><td>29025-02</td><td>注入量の測定</td></tr></tbody></table>

原子間力顕微鏡とゼブラフィッシュ胚の卵黄細胞のレオロジー

AFM and Microrheology in the Zebrafish Embryo Yolk Cell

組織の進化の時空間的組織に直接因子の解明は、開発の研究の主な目的の 1 つです。さまざまな命題は、異なる発達と形成過程における時空間組織の細胞や組織の機械的性質の理解に重要な貢献をされていると主張します。ただし、材料特性と体内張力パラメーターを測定する信頼性とアクセス ツールの不足、これらの仮説の検証は困難でした。原子間力顕微鏡 (AFM) と粒子追跡ふせ中にそのままゼブラフィッシュ胚の卵黄細胞の機械的性質を数値化の目的と方法をご紹介します。ふせはその研究は胚の透明性によって促進される保存の初期発達過程です。これらのメソッドが実装する単純な信頼性、および広く適用以来、彼らは組織の力学に影響を与えることができる侵入の介入を克服します。単純な戦略は、標本、AFM 記録、およびナノ粒子注入の取り付けと追跡の適用されました。このアプローチでは、これらのメソッドは他の発達度や生物に容易に適応になります。

表層張力測定 各測定ポイントの 5 つの力 (F z) 曲線は AFM による 1 Hz で 5 μ m のピーク-ピーク振幅と片持ち梁を立ち上げることにより買収された (速度 = 10 μ m/s) 〜 2 μ m の最大インデントまで。この手順は、20 分未満を取っていたし、ふせ進行を受けませんでした。各実験条件は、少なくとも 5 胚でテストされました。
胚卵黄細胞に記録力-変位曲線、それどころかソフト周辺アガロースに対応したものの比例直線関係展示 (R2 > 0.999) (図 2 a)。コントロール F z 3 μ m/s と 30 μ m/s 時カーブし、カンチレバーの速度、張力 Tcの電位依存性を破棄する一連の追加を行った。Tcは増 13% だけ (p < 0.01, t 検定...

材料特性と体内張力パラメーターを測定するツールの欠如は、開発中に自分の役割を検証するを防ぎます。原子間力顕微鏡 (AFM) とふせ中そのままゼブラフィッシュ胚の卵黄細胞の機械的な機能を定量化するナノ粒子の追跡を採用しました。これらのメソッドは、信頼性が高く、広く適用できる侵入の介入を避けることです。

Elucidating the factors that direct the spatio-temporal organization of evolving tissues is one of the primary purposes in the study of development. ...

これらの手順の目的は、剛性、粘性、接着性などの機械的特性を決定するための特定の手法を、胚および成長中の生物という特定のケースに適応させることです。本論文で紹介する手法は、発生過程においてこれらの特性が遺伝的または物理的な入力にどのように反応するか、あるいは細胞活動の調節における変化にどのように反応するかといった、メカノバイオロジー分野の疑問に答えることができます。この技術の多くの利点は、最小限の操作で重要な情報を取得できることであり、他の手順では不可能な課題へのアプローチを可能にします。これらの手法は、卵黄細胞の役割を理解するための知見を提供し、その後、胚の異なる領域や異なる発達段階、さらには他のモデル生物にも適用することが可能です。胚の固定や取り扱いの習得は困難であるため、これらの手法を視覚的に提示することは極めて重要です。まず、ゼブラフィッシュの胚を回収し、E3胚培地を用いて28 °Cで育成します。形態に基づいて胚のステージ分けを行います。倍率を8倍から50倍まで調整可能な解剖用実体顕微鏡下で、目的の日齢に合わせてゼブラフィッシュ胚の卵膜を手動で除去します。2本の細く鋭いピンセットを用いて卵膜を取り除きます。一方のピンセットで絨毛膜を掴み、もう一方のピンセットでそこに切り込みを入れます。次に、切り込みとは反対側の部位で絨毛膜を保持し、胚を切り口からそっと押し出します。AFM用に胚を固定するには、まず35 mmのペトリ皿に2%アガロースと胚培地を満たし、凝固させます。その後、細いピンセットを用いて、アガロース床に直径約1.5 mm、深さ約350 µmの小さな穴を開けます。アガロース層に開けた穴に胚を配置します。次に、胚を穴の中に固定するため、0.5%低融点アガロースと胚培地の混合溶液を胚の周囲に注ぎます。低融点アガロースが室温で凝固する前に、AFMでプローブする目的領域が上を向くように胚を回転させて調整してください。胚を観察します。室温にて、原子間力顕微鏡を結合した倒立光学顕微鏡を用い、20倍の対物レンズでペトリ皿内の胚を探索して撮影します。これらのデータを取得するには、適切な角度、振動振幅、および周波数で卵黄細胞表面をプロービングすることが不可欠です。これらのパラメータを最適化するために、さまざまな試験を行う必要があります。直径4.5 micronの球状ポリスチレンビーズを、公称ばね定数0.01 Newtons per meterのカンチレバーに装着し、キャストした胚の卵黄細胞表面をプローブします。カンチレバー振動のピーク・ツー・ピーク振幅を5 micronsに、周波数を1 Hertzに設定してください。データの平均化をルーチンとして行うため、テスト対象の各領域について、異なる位置および複数の胚でデータを収集します。卵黄細胞に粒子をマイクロインジェクショ

afm-and-microrheology-in-the-zebrafish-embryo-yolk-cell

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

マイクロインジェクションは受精ゼブラフィッシュの胚への外来物質を導入するための十分に確立し、効果的な方法です。ここで、我々は、ゼブラフィッシュでのmRNAの過剰発現、およびモルフォリノオリゴヌクレオチドの遺伝子のノックダウンの研究を行うための堅牢なマイクロインジェクション法を示しています。...

ゼブラフィッシュ胚におけるmRNAおよびモルホリノアンチセンスオリゴヌクレオチドのマイクロインジェクション。

このビデオでは、我々は共焦点顕微鏡による単一細胞の解像度でのライブゼブラフィッシュの胚で開発脊椎動物の脳を分析するためにする方法を示しています。これは、我々は、単一セルのゼブラフィッシュの胚を注入し、その後、脳の発達をマウントし、イメージする方法が含まれています。...

共焦点顕微鏡によるゼブラフィッシュ胚の脳のイメージングを生きる

このビデオでは、ゼブラフィッシュの卵黄嚢に化合物を送達するための胚マイクロインジェクションの技術について説明しています。...

胚マイクロインジェクション:ゼブラフィッシュの卵黄に化合物を送達する技術

このような増殖、パターニング、分化、および軸索ガイダンスとして発生プロセスを容易にゼブラフィッシュ脊髄でモデル化することができる。この記事では、これらのイベントの可視化を最適化した、ゼブラフィッシュ胚の取付け手順を説明します。...

解剖やゼブラフィッシュ胚の横方向の取付：脊髄発達の解析

&gt;jove_content&lt;細胞小器官や他の細胞内構造の動的挙動をin...

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ライブゼブラフィッシュ胚における有糸分裂とダイナミクスを観察します

繊毛の開発は適切な器官形成に不可欠です。このプロトコルでは、ラベルを付けると、ゼブラフィッシュの繊毛細胞を可視化する最適化されたメソッドについて説明します。...

全体のマウント蛍光In Situハイブリダイゼーション、免疫組織の結合されたプロトコルを介してゼブラフィッシュにおける Multiciliated の細胞を可視化します。

ここでは、光学トラップによる直接力測定を用いて、3次元閉じ込めで単離した胚ゼブラフィッシュ細胞の細胞内の機械的特性を調べるプロトコルを提示する。...

光ピンセットを用いた閉じ込めにおける細胞下力学の直接力測定

私たちは、高速走査型共焦点顕微鏡法を利用して、発生中のゼブラフィッシュの視蓋でミクログリア細胞のライブイメージングを行い、これらの細胞のin...

ゼブラフィッシュ胚におけるミクログリア動態のライブイメージングとキャラクタリゼーション

ライトシート顕微鏡を使用して、無傷の絨毛膜内の初期のゼブラフィッシュ胚をイメージングするためのサンプル調製戦略について説明します。これは、70%エピボリーおよび芽の段階で胚が絨毛膜内で獲得するさまざまな向きを分析し、ライトシートシステムを使用して胚全体で細胞スケールの分解能を得るためのイメージング戦略を詳しく説明します。...

初期ゼブラフィッシュ胚のライトシート顕微鏡イメージングとマウント戦略

学ぶ原子間力顕微鏡を用いたゼブラフィッシュ胚の卵黄細胞のレオロジー測定法。最小限の操作で機械的特性を定量化し、発生メカノバイオロジーの理解を深める。

原子間力顕微鏡とゼブラフィッシュ胚の卵黄細胞のレオロジー

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