炭水化物輸送基質結合タンパク質 SP0092 の生化学的および構造特性

この手順の全体的な目標は、肺炎連鎖球菌由来の炭水化物基質結合タンパク質の生化学的および構造的特性評価です。この方法は、バッファーの安定性プロファイル、オリゴマー化状態、原子構造の同定など、基質結合タンパク質の教育研究に役立つ重要なデータを提供するのに役立ちます。この手順の利点は、基質結合タンパク質の結晶化および構造溶液の成功率を堅牢かつ簡単な方法で向上させることができるデータを提供することです。

まず、pH範囲が4.0〜9.5、塩化ナトリウム濃度が0〜0.5モルの範囲の48種類の緩衝液を調製します。各溶液の40マイクロリットルを96ウェルプレートに分注します。選択した基質結合タンパク質の精製溶液を得る。

各ウェルに5マイクロリットルのSBP溶液を加えて、1ミリリットルあたり1〜2ミリグラムの濃度にします。次に、20倍濃縮された蛍光染色液を5マイクロリットルずつ各ウェルに加えます。ピペッティングで上下に動かして溶液を混合します。

プレートを透明粘着フィルムで密封します。プレートをGの112倍にして室温で2分間遠心分離します。リアルタイム PCR システムを、10 秒のホールドタイムで 1 分あたり 3 度の速度で摂氏 4 度から 99 度まで上昇するように設定します。

半度ごとに蛍光を読み取るようにシステムを設定します。蛍光フィルターの設定を行います。をクリックし、サンプルを割り当てます。

実験を実行し、融解温度が最も高いバッファー条件を特定します。次に、選択したpHと、2.5体積%のグリセロールと0.5ミリモルのTCEP濃度を含む塩化ナトリウム濃度の緩衝液を調製します。精製したSBPを、マルチアングル光散乱を用いた分析サイズ排除クロマトグラフィーで特性評価します。

結晶化に適した最も安定した分子種を特定し、前処理SECを使用してそれらの分子種の純粋な画分を取得します。結晶化前試験を実施して、結晶化に最適なタンパク質濃度を決定します。結晶化ロボットシステムを使用して、目的の市販の結晶化溶液を光学式96ウェルシッティングドロッププレートの溶液リザーバーに分注します。

次に、システムを使用して、100ナノリットルのタンパク質溶液を各結晶化液滴ウェルに分注します。各結晶化溶液100ナノリットルを貯留層ウェルから対応するウェルドロップに移します。プレートを光学接着フィルムでシールします。

顕微鏡または自動イメージングシステムを使用して、2週間は1〜2日ごとに、その後は週に1回、結晶の形成と成長を評価します。十分に大きく、良好な形状の結晶が形成されたら、凍結保護剤として機能するグリセロールの25体積%を追加で結晶化溶液のバッチを準備します。次に、フォームデュワーに液体窒素を入れます。

ユニパックサンプルエンクロージャーを液体窒素に浸し、エンクロージャーを冷まします。次に、目的の結晶を含む一滴の上でフィルムを切り取ります。0.5マイクロリットルの凍結保護剤を、液滴の近くまたは可能な場合は同じ条件の空の液滴チャンバーにカバースライドに堆積させます。

SPINE標準ベースに取り付けられたクライオループを磁気ワンドに取り付けます。クライオループを使用して、目的の結晶をクライオプロテクタントの滴下に移します。次に、クライオループを使用して、結晶をクライオプロテクタントから水中のユニパックサンプルエンクロージャの最初の空の位置に移します。

このプロセスを繰り返して、追加のクリスタルを収集します。目的のすべての結晶をサンプルエンクロージャーにロードしたら、パックワンドを使用してユニパックベースプレートをエンクロージャーに置きます。液体窒素中のユニパックをビームラインに輸送します。

クライオトングとパックデュワーローディングツールを用いて、ユニパックをビームライン試料チェンジャーデュワーに装填し、試料筐体を取り外してください。次に、ビームラインソフトウェアでサンプルを選択してロードし、サンプルをX線ビームの中央に自動的に配置します。X線蛍光スペクトルを取得し、異常回折実験に使用できる元素を特定します。

X線吸収エッジエネルギースキャンを実行して、異常な回折データを収集するための最適な波長を決定します。次に、標準発振モードで45度間隔で3つのX線回折パターンを取得し、結晶単位セルのパラメータ、対称性、回折限界を自動的に決定します。推奨データ収集パラメータをビームラインソフトウェアにインポートし、必要に応じて単一または多波長の異常回折実験を実施します。

さまざまな塩緩衝液中の基質結合タンパク質SP0092の安定性を評価して、最適な緩衝液を特定しました。最も高い融解温度は、pH が 6.5 で、塩化ナトリウム濃度が 0 から 0.2 モルの範囲のバッファーで見られました。この手順には、pH 6.5、塩化ナトリウム濃度0.2モルの緩衝液を選択しました。

SP0092のさまざまなオリゴマー化状態を同定し、SEC-MALSで分離しました。さまざまなタンパク質濃度でのSECプロファイルの解析では、タンパク質濃度の増加がオリゴマー化を引き起こすことが示され、より大きなオリゴマーは高濃度でより安定していることが示唆されています。これと一致して、大きなオリゴマーは結晶化試験で結晶を生成しましたが、モノマーは生成しませんでした。

未変性結晶とセレノメチオニン標識SP0092結晶の両方の蛍光X線は、両方の形態でタンパク質に結合した亜鉛を示しました。異常な信号は、入射X線の波長を亜鉛またはセレンのいずれかのX線吸収端に調整することにより最大化されました。その後、完全な異常データセットを取得し、異常シグナルの存在によってトリガーされた自動解析により、タンパク質構造の初期マップを生成しました。

これらの初期マップに組み込まれたモデルは、最終的なモデルを生成するために改良および検証されました。このビデオを見れば、基質結合タンパク質や潜在的なタンパク質ターゲットの包括的な構造特性評価を完了する方法について十分に理解できるはずです。この技術の意味は、ミロコックス性疾患の新しい治療法の開発にまで及び、このクラスのタンパク質に対する阻害剤の構造ベースの設計に基本的な洞察を提供します。

これらの方法は、他の生物由来の基質結合タンパク質にも適用でき、あらゆる種類のタンパク質に使用できる可能性があります。