Name: 哺乳類の細胞分裂量的共焦点反射顕微鏡を介して 3 D 行列 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 22 s
Description: 学ぶ哺乳類細胞分裂の3Dコラーゲン基質での動態と細胞外基質相互作用。共焦点反射顕微鏡とライブセルイメージングを用いて、HEK-293 T細胞とMDA-MB-231細胞で細胞周期同期化と分裂イベントの定量的解析を行う方法です。

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この作品は、NIH によって支えられた R01CA174388 と U54CA143868 を与えます。著者は魏堂陳のサポートのためのジョンズ ・ ホプキンス大学からプラ賞を認めたいと思います。この資料は、国立科学財団大学院研究奨学金助成金第 1232825 の下に支えられて仕事に基づいています。

提供されるプロトコルのホームウッド制度検討委員会 (HIRB) のガイドラインに従います。
1. 細胞分裂のマーカーとしての H2B mCherry 安定式
<ol><li>
(HEK 293 t) から人間の萌芽期の腎臓 293 t レンチ ウイルス粒子の生成細胞
	<ol>
<li>細胞培養培地 (ダルベッコ変更イーグル培地 (DMEM) 含む高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム 10% 胎仔ウシ血清 (FBS)、1% の 10 の6セル/皿 × 5 の密度で 10 cm 細胞培養ディッシュ上 HEK 293 t 細胞をプレートします。ペニシリン-ストレプトマイシン (ペン/連鎖球菌))。37 ° C、5% 二酸化炭素 (CO2) で 24 時間インキュベートします。当日 transfection の細胞の目的の密度は、約 70-80% です。 注: HEK 293 t 細胞はここで MDA MB 231 セルを変換する H2B mCherry を表現する安定したセルラインを生成するために後で使用されるウイルスの粒子を生成する使用は。細胞はプレート全体が均等かどうかを確認します。セルの追加ドロップ プレート、賢明なと軽く移動前後の板は均等に助けることができます。細胞をプレートまたは結果として、ウイルス粒子の異なるボリュームのコレクションその他のサイズのフラスコでシードもことができます。</li>
		<li>(レンチウイルスベクター、CMV ΔR 8.91、ままだった VSVG) 3 つのプラスミドとトランスフェクション試薬を用いた HEK 293 t 細胞を transfect します。ホスホ グリセリン酸キナーゼ プロモーター (PGK) とレンチウイルスベクターのエンコーディング H2B mCherry プラスミドが複製されます。CMV ΔR 8.91 3 必要な HIV 遺伝子、ギャグ、ポル、および回転が含まれています。ままだった VSVG には VSV G エンベロープ遺伝子が含まれています。 注: から選択する複数のトランスフェクション エージェントがあります。<ol>
<li>使用する前に室温 (RT) に到達するトランスフェクション試薬のバイアルを許可します。反転または渦流バイアルを簡潔に。</li>
			<li>H2B mCherry プラスミドの 6 μ g、CMV ΔR 8.91、8 μ g および 2 μ g のままだった-VSVG、低下した血清中メディアの 1 mL の成っている DNA のミックス 16 μ g。室温で 5 分間インキュベートします。 注: 量と 3 つのベクトル比変化は、別のレンチ ウイルスの転送ベクトルの最適化します。</li>
			<li>48 μ L を追加 (DNA の比率 1:3 の使用: トランスフェクション試薬) 上記の DNA 溶液にトランスフェクション試薬の少なくとも 15 分間インキュベート常温と。 注: トランスフェクション試薬と DNA の比率は様々 な異なるレンチ ウイルスの転送ベクトルの最適化します。トランスフェクション試薬は、1.5 mL 遠心管の側を接触しないことを確認します。</li>
			<li>セルに drop-wise ステップ 1.1.2.3 で行われた DNA 脂質複雑なソリューションを追加します。ゆっくり旋回プレートの複合体の均等を確保するためのプレート。</li>
		</ol>
</li>
		<li>トランスフェクション後、約 6 時間の培地を吸引し、新鮮な細胞培養液を追加 (高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs と 1 %dmem ペン/連鎖球菌)。</li>
		<li>培養上清中の 24、48、および 72 時間後トランスフェクションを収穫します。各収穫後媒体を交換 (DMEM、4.5 G/L グルコース、ピルビン酸ナトリウム 10 %fbs、1% とペン/連鎖球菌)。</li>
		<li>レンチ ウイルス粒子は、細胞の残骸を削除する 0.45 μ m のフィルターを通してフィルターします。また、細胞の残骸を分離する上清をスピンします。上澄みの伝達をすぐに使用できます。 または-80 ° C で保存することができます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
セルの世代ライン安定発現 H2B mCherry 注: このプロトコルは、MDA MB 231 セルの詳細で説明されます。実験前に、ひと乳癌細胞 MDA-MB-231 (物理科学腫瘍学センター, NIH) 高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs、および 1% を含む DMEM で培養しているペン/連鎖球菌。<ol>
<li>35 mm ディッシュで 1 x 10 の5セルの密度で MDA MB 231 細胞をプレートします。 注: 異なる培養細胞用めっきの密度最適化する必要があります、したがって MDA MB 231 セルの最適密度から異なる場合があります。</li>
		<li>セルをめっき後 24 h ウイルスと新鮮な培地 1 mL に 1 mL を追加 (DMEM、高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs、および 1% ペン/連鎖球菌)。</li>
		<li>セルを一夜にして 6 時間の期間にインキュベートします。 注: ウイルスとインキュベーション時間量の異なる培養細胞用に最適化する必要があります。たとえば、セル見ていない健康的なウイルスの付加の後で数時間場合、は、ウイルスと新鮮な培地 2 mL に 1 mL を使用して (DMEM、高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs、および 1% ペン/連鎖球菌) 1.2.2 のステップのため。1.2.3 のステップでインキュベーション時間の長さを削減できます。</li>
		<li>培地を吸引し、新鮮な培地 10 mL を追加 (DMEM、高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs と 1% ペン/連鎖球菌)。37 ° C と 5% CO2で 72 に 24 h の間孵化させなさい。</li>
		<li>落射蛍光顕微鏡を用いた細胞の H2B mCherry の式を確認します。 注意: 細胞の伝達効率が低い場合手順 2.2 でウイルスと 2.3 の手順でインキュベーション時間のボリュームを増加可能性があります。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 安定した H2B mCherry を発現している細胞の同期
<ol><li>24 ウェル プレートの各ウェルに細胞の 50 ~ 60% 合流、すなわちプレート 2 × 104 MDA MB 231 にセルのプレート。</li>
	<li>24 h の CO2を 37 ° C、5% で文化を孵化させなさい。</li>
	<li>0.5 ml 中の成長培地を交換 (DMEM、高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs、および 1% ペン/連鎖球菌) 2 mM チミジンを含むと 24 h のためのインキュベーターに残します。 注: 細胞チミジンは細胞増殖 (G1) の段階で阻止される/DNA 合成 (S) 遷移と DNA 合成が阻害されたため S フェーズを通して。インキュベーション時間の長さは、様々 な異なる培養細胞用に最適化する必要があります。</li>
	<li>リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) で 3 回、それらを洗浄することによりチミジン露出から細胞をリリースします。その後、正常な細胞培養培地で細胞をインキュベート (DMEM、高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs と 1% ペン/連鎖球菌) 5 時間。 注: チミジンの暴露から細胞のリリースにより、細胞の成長 (G2) に進行する細胞/細胞の分裂 (M) 期以前 G1/S 段階で逮捕、以前 s 逮捕のセル G1 期に相します。リリース時間の長さを変化、異なる培養細胞用に最適化する必要があります。</li>
	<li>12 h ノコダゾール 250 ng/mL で細胞をブロックします。 注: すべてノコダゾールにさらされる細胞の G2/M 段階で阻止されます。ノコダゾールは細胞傷害性です。ノコダゾールへの長期暴露アポトーシスを引き起こすことができます。細胞死が認められた場合は、期間または別のセル行のエクスポー ジャーの集中を調整します。正常に同期される細胞は球形の形態を展示いたします。</li>
	<li>45 セルを振る軌道シェーカーを使用して 150 を 200 rpm で 1 分に s。 注: が基板にこだわらず、分裂期の細胞はプロセス中に揺り動かされます。</li>
	<li>遠心チューブに培地を分注して細胞を抽出するメディアを削除し、新鮮な媒体の 0.5 mL を追加 (DMEM、高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs、および 1% ペン/連鎖球菌) プレートの各ウェル。</li>
	<li>2.6 および 2.7 の 3 回の手順を繰り返します。</li>
	<li>収集した培 3 分の 800 の x g で分裂期の細胞を遠心します。 注: この手順は、細胞培地から、ノコダゾールを削除する使用されます。</li>
</ol>3. 同期された定款はマイク行列にコラーゲン細胞します。
注: タイプ I コラーゲン結合組織の ECM の人間の体内で最も豊富な蛋白質であるし、機能が、3 D 環境17,23,24 によってモジュレートされますどの真核細胞を調査するため多用されています。.コラーゲンは酢酸に可溶です。中和後 20-37 ° c コラーゲン溶液を温暖化、コラーゲン モノマーはコラーゲン線維の網目に重合します。
<ol><li>DMEM 粉末、炭酸水素ナトリウム (NaHCO3) 3.7 g、4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic 酸 (HEPES) に蒸留水を 50 mL に 1 g のパケットを溶解することにより 10 の x DMEM ソリューションを準備します。ソリューションをフィルターし、蒸留水 50 mL の NaOH ペレットの 2 g を溶解することにより水酸化ナトリウム (NaOH) の 1 M を準備します。フィルターそして因数 1.5 mL 遠心チューブにソリューション。 注: この手順では、通常 DMEM ソリューションを使用しないでください。大量のコラーゲン溶液添加培地を希釈します。したがって集中 DMEM 溶液を調製して、コラーゲン マトリックスに DMEM の最終濃度が通常 DMEM として同じであることを確認します。</li>
	<li>ステップ 2.9 から収集したセルと作業を続けます。新鮮な細胞培養液 0.5 mL、中、約 0.25 - の再中断セルを吸引 (DMEM、高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs、および 1% ペン/連鎖球菌)。 注: コラーゲン マトリックス内の特定のセル密度を到達するには、懸濁液における細胞の初期密度が低すぎるですることはできません。したがって、再度セルを中断するために使用中のボリューム使用可能なセルの合計数異なります。</li>
	<li>ステップ 3.2 検定とソリューションに細胞の密度の計算での再懸濁細胞ソリューションの場所 10 μ L。</li>
	<li>
3 D コラーゲン行列を作成するすべてのコンポーネントに必要なボリュームを決定します。500 μ L の 2 μ g/μ L コラーゲン ・ ゲルを使用ここでは例として。
	<ol>
<li>40,000 セル/mL (または 20,000 細胞コラーゲンゲルの 500 μ L) を取得するために必要な細胞液の量を計算します。この μ L に、DMEM を必要とされる 10 倍の X. 50 μ L。政府短期証券の 50 μ L 必要になります。</li>
		<li>コラーゲンは必要な私の在庫量を計算します。コラーゲンの濃度、私は 4 μ g/μ L の周りです。Μ L に必要なコラーゲンの量は Y です。</li>
		<li>コラーゲン溶液中の酢酸を中和するために必要な水酸化ナトリウム量を計算: Y μ L コラーゲン * 0.023 * 1000 = Z μ L 水酸化ナトリウムが必要があります。</li>
		<li>充填剤溶液の量を決定する: (500 μ L 合計ゲル - X µL 細胞 - 50 μ L 10 DMEM - FBS の 50 μ L - Y μ L コラーゲン - Z μ L X NaOH) = R μ L 注: フィラー ソリューションは蒸留水。フィラー ソリューションの計算量が負の数の場合、細胞懸濁液の元の細胞密度が低すぎます。再びスピンダウンし、中の小さいボリュームで再停止する必要がありますセル (DMEM、高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs、および 1% ペン/連鎖球菌)。</li>
	</ol>
</li>
	<li>きれいな 1.5 mL 遠心チューブに次の順序でコンポーネントを追加: 媒体、DMEM、FBS、純水 (DI)、コラーゲン、水酸化ナトリウム x 10 のセル。コラーゲン溶液のゲル化を遅く氷の上にすべてのコンポーネントを配置します。気泡の形成を防ぐために適切なピペッティング テクニックを使用します。</li>
	<li>水酸化ナトリウムを追加すると、ソリューションを 1 mL ピペットを使い、慎重に混ぜます。 注: コラーゲンのゲル化は水酸化ナトリウムの添加後すぐに右に開始されます。慎重かつ迅速に、ミキシングを行う必要があります。</li>
	<li>一度ソリューションはよく混ぜ、24 ウェル プレートの各ウェルにソリューションの 500 μ L を追加します。37 ° C のインキュベーターで 24 ウェル プレートを配置します。新鮮な細胞培養培地を 37 ° C の水浴に配置します。 注意: プラスチック製の底板、低倍率生細胞顕微鏡レンズの作動距離が 1 mm. ガラス底高の短い作動距離のため高倍率生細胞顕微鏡用プレート上での使用します。倍率のレンズ。</li>
	<li>予め温めておいた媒体を 500 μ l 添加 (DMEM、高グルコース (4.5 g/L)、ピルビン酸ナトリウム、10 %fbs と 1% ペン/連鎖球菌) 3.7 のステップを完了した後 30 分のゲルの上に。</li>
</ol>4. ライブ 3 D コラーゲン マトリックス (低倍率) の分割の細胞の細胞イメージング
注: セルのイメージは、位相差顕微鏡は対物レンズ 10 倍搭載、イメージング ソフトウェアによって制御される電荷結合素子 (CCD) カメラを使用して 2 分間隔で収集されます。
<ol><li>対物レンズの上にマウントされている生きているセル ユニットをオンにします。温度は 37 ° C で安定、CO2の濃度は 5% で、湿度は 75% まで待ちます。</li>
	<li>顕微鏡でライブセル ユニットにゲルの 24 ウェル プレートを置きます。プレートの下部を見つけるし、プレートの底から約 500 μ m で焦点を当て顕微鏡まで対物レンズを移動します。 プレートの底は完全に 3 D のマトリックスに埋め込まれていないに近すぎるされているコラーゲン マトリックスのメモ: セル。イメージング プレートの底から 500 μ m にあるセルは、セルがエッジ効果16,17,25の影響を受けないことになります。</li>
	<li>セル、周りにステージを移動し、イメージングのための複数の位置を選択します。</li>
	<li>2 分間隔でコマ撮り実験を設定します。 注: 2 分間隔の間に取ることができる位置の最大数は、電動ステージの移動速度と画像を取り込むための露光時間の長さに制限されます。</li>
</ol>5. コラーゲン ネットワーク変形細胞分裂 (高倍率顕微鏡)
<ol><li>対物レンズの上にマウントされている生きているセル ユニットをオンにします。温度は 37 ° C で安定、CO2の濃度は 5% で、湿度は 75% まで待ちます。</li>
	<li>無染色の 3 D コラーゲン マトリックスのコラーゲン線維を視覚化するには、共焦点顕微鏡サンプルを照らすために使用 488 nm レーザー反射光 (488 nm) だけをキャプチャするを構成します。レーザーを使用して、水浸対物レンズ、NA X 60 = 1.2 WD = 200 μ m、イメージング ソフトウェアによって制御されます。</li>
	<li>生きているセル単位にサンプル (コラーゲン マトリックスのセル) を置きます。プレートの下部を見つけるし、プレートの下から約 100 μ m で焦点を当て顕微鏡まで対物レンズを移動します。イメージング プレートの底から 100 μ m にあるセルは、セルは、エッジ効果の影響を受けないことになります。 注: ここで水浸漬の目的はため油浸型レンズの代わりに油浸型レンズのワーキングディ スタンスは約 100 μ m で、のみです。プレートの底にガラスの厚さは通常約 100 μ m、油浸型レンズの使用が問題します。</li>
	<li>セル、周りにステージを移動し、イメージングのための複数の位置を選択します。 注: 共焦点顕微鏡光学的サンプルのセクション、焦点面からの信号をキャプチャします。ライブのセルは、タイムラプスの実験中にフォーカスを出入りして動くことがあります。時間の長い期間にわたって細胞画像のキャプチャを有効にするには、z は、5 μ m 間隔で連続スライスから画像を収集するために使用されます。25 μ m にまたがる 5 スライスの合計が作成されます。</li>
	<li>5 分間隔でコマ撮り実験を設定します。 注: 5 分を使用ここでは H2B mCherry、反射はコラーゲン、スキャンおよび Z スタックをスキャンするスキャン蛍光を含む複数のスキャン モードがそれぞれの位置に適用されるため、セクション 4 で使用 2 分ではなく間隔として。複数のスキャン ・ モードの使用は、低倍率の画像と比較して位置をスキャンの速度を低減します。</li>
	<li>コラーゲン マトリックス粒子画像流速測定法 (PIV) のサブピクセルの解像度20を用いたセルによって出る力により細胞近傍の変形を定量化します。H2B mCherry とコラーゲン線維の両方の信号を明確に可視化 2次元画像にこの分析を実行することができます。異方性のローパスのコラーゲン ネットワーク20の信号を向上させるフィルタ リングを適用します。</li>
	<li>K+1 のフレームは、15 × 15 のウィンドウ領域を抽出するフレーム k から (x,y) にあるサブ画像領域の局所変位を測定するためにピクセルがフレームk(x,y) を中心と。特定場所 (x,y) に一致する最適 * フレームk+1 で得られた画像で最大の正規化相互相関係数を特色にする場所。変形ベクトル (x,y) として計算されます *-(x,y)。</li>
</ol>

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</ol>

著者は、彼らは競合する金銭的な利益があることを宣言します。

3 D の細胞分裂の前の研究は、実験的限界と技術的な課題18,19による効率的でした。3 D コラーゲン マトリックス中の哺乳類の細胞分裂の学習の効率化のための重要なステップは、: (1); 細胞分裂マーカーの蛍光標識定款(2) 細胞分裂; の同期(3) 生細胞イメージング、共焦点反射の時間分解顕微鏡と定量的イメージング解析を用いた 3 D マトリックス部イベントの監視します。
2 D 基板上の分裂期の細胞はその形態に基づく間期細胞と区別できる、すなわち分裂細胞は円形で、やっと基板を付ける間期細胞が広がる一方、基板にしっかりと接続します。3 D マトリックス中ただし、細胞の形態以来やっと広がるいくつかの細胞分裂期細胞のための信頼性の高いマーカーではない、マトリックス27,28の円形のまま。したがって、3 D の行列の細胞分裂の研究のための細胞に分裂の...

細胞分裂は、うち規制組織や臓器の開発において重要な役割を果たしている細胞の生命の重大なイベントです。異常な細胞分裂、自然な遺伝的変異、ヒトの老化プロセス、およびがん1,2,3,4、5の進行に関与しています。正常細胞と比較して腫瘍細胞の増殖の増加率は、癌細胞の挙動は腫瘍の種類と患者の中でもかなり異質であるという事実にもかかわらずの特徴のひとつです。前臨床試験の有望な結果にもかかわらずいくつかの新たに開発された抗がん剤薬が臨床試験6,7,8,9,10 に有効であるには表示されません。、11。実験および臨床モデルの妥当性は考慮すべき。三次元 (3 D) マトリックス、線維芽細胞とコラーゲンが豊富な 3 D 結合組織、線維肉腫細胞 3 D 間質の細胞外マトリックス (ECM) の転移性癌細胞などの正常な哺乳類やがん細胞の多くの種類を分けます。ただし、二次元 (2 D) 基板上に培養した細胞を実験哺乳類の細胞分裂との試金の大半を行った。組織, 機械的性質および両方正常と病理組織12,13,14,の 3 D の ECM の生化学的なシグナルを設計された 3 D マトリックスが要約より15,16,17。
どの哺乳類の細胞分裂の研究の規制環境が生理学的な関連性や治療の意義18,19にもかかわらず主未踏のまま 3 D で。技術的な問題と 3 D マトリックスの細胞分裂の勉強に関連する実験課題がある可能性があります。細胞分裂は、全体の細胞周期20のほんの時間を構成します。前の仕事は人間の乳房腺 MCF 7、ひと骨肉腫 U2OS、人間の肝臓などの多くの哺乳類細胞の増殖率を示す 2D 基板21、相手と比較して 3 D の行列の hepg2 細胞がはるかに低い 22。さらに、3 D マトリックスに埋め込まれた細胞は、フォーカスのうち住セルイメージ投射の間に移動します。これらすべての要因は、イメージング技術を用いた三次元培養における細胞分裂イベントのキャプチャの非常に低い効率に貢献します。
ECM と細胞間相互作用は、細胞分裂の調節に重要な役割を再生します。ここでは、3 D コラーゲン マトリックス中の哺乳類の細胞分裂を効率的に勉強する方法をについて説明します。メソッドは、細胞、細胞分裂、同期生細胞イメージング、共焦点反射の時間分解顕微鏡を使用して 3 D の行列の部イベントの監視に分裂のマーカーの取り込みを含むと定量的画像解析。蛍光標識ヒストン H2B が最初に導入された細胞に細胞分裂を区別し、中間期の細胞マーカーとして。その後、セルは、機械的振り払いテクニックが続きます、チミジンをブロックし、ノコダゾール治療の組み合わせを使用して同期されます。3 D コラーゲン マトリックスに同期された細胞が直接カプセル化されます。複数のセルの細胞分裂イベントは、効率的に低倍率のタイムラプス住セルイメージ投射を使用して監視されます。細胞マトリックスの相互作用の指標となるコラーゲン線維の変形は、高倍率で反射共焦点の顕微鏡検査を使用して監視されます。
監視し前に、中、後 2 つの転移性癌細胞株、ひと浸潤性膵癌 MDA MB 231、3 D コラーゲンのひと線維肉腫 HT1080 細胞の有糸分裂細胞マトリックスの相互作用を定量化するこのテクニックを使いました以前行列19。紹介した方法は、3 D 環境と細胞マトリックスの相互作用で両方の哺乳類の細胞分裂の研究に効率的で一般的なアプローチを提供します。MDA MB 231 細胞ラインは、ホワイト ペーパーで例として使用されます。このプロトコルは正常組織および病気の開発の分子基盤に新しい洞察力を提供し、新規診断と治療的アプローチの設計もできます。

<table><tbody><tr><td>ヒト胚性腎臓 293T</td><td>ATCC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MDA-MB-231</td><td>Physical Sciences Oncology Center, NIH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Corning</td><td>10-013-CV</td><td></td></tr><tr><td>DMEM powder</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>12100-046</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>Hyclone</td><td>SH30910.03</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン 100X</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P0781</td><td></td></tr><tr><td>Fugene HD</td><td>Promega</td><td>E2311</td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000</td><td>Life technologies</td><td>11668-07</td><td></td></tr><tr><td>レンチウイルスベクター中のH2B-mCherryをコードするプラスミド</td><td>Addgene</td><td>プラスミド 21217</td><td></td></tr><tr><td>チミジン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T1895</td><td></td></tr><tr><td>Nocodazole</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M1404</td><td></td></tr><tr><td>Opti-MEM</td><td>Life Technologies</td><td>31985-070</td><td></td></tr><tr><td>重炭酸ナトリウム</td><td>GibcoBRL</td><td>11810-025</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>113375-100</td><td></td></tr><tr><td>コラーゲン</td><td>コーニング</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>NaOH</td><td>J.T. Bake</td><td>3722-01</td><td></td></tr><tr><td>Millex-HV シリンジ フィルター ユニット、0.45-&mu;m, PVDF, 33 mm</td><td>ミリポール</td><td>SLHVM33RS</td><td></td></tr><tr><td>Nikon TE2000E 落射蛍光顕微鏡</td><td>Nikon</td><td>TE2000E</td><td></td></tr><tr><td>Cascade 1K CCD カメラ</td><td>Roper Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>NIS-Elements AR イメージングソフトウェア</td><td>Nikon Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>A1 共焦点顕微鏡</td><td>Nikon</td><td>A1</td><td></td></tr></tbody></table>

哺乳類の細胞分裂量的共焦点反射顕微鏡を介して 3 d 行列

Mammalian Cell Division in 3D Matrices via Quantitative Confocal Reflection Microscopy

どの哺乳類の細胞分裂の研究の規制 3 d 環境生理学的な関連性や治療の意義にもかかわらず主として未踏のままです。探査の欠如の原因は、実験的限界と非効率的な三次元培養における細胞分裂の研究をレンダリング技術の課題です。ここでは、哺乳類の細胞分裂と細胞マトリックス 3 D コラーゲン マトリックス相互作用を効率的に勉強するイメージング ベースの方法をについて説明します。蛍光 H2B の付いたセルは、機械的振り払いテクニックが続きます、チミジンをブロックし、ノコダゾール治療の組み合わせを使用して同期されます。同期セルに 3 D コラーゲン マトリックスに埋め込まれています。細胞分裂は細胞の顕微鏡を使用して監視されます。コラーゲン線維の変形中に、細胞分裂、細胞マトリックスの相互作用の指標である後の監視し、量的共焦点反射の顕微鏡検査を使用して量を示されます。メソッドは、哺乳類の細胞分裂と細胞マトリックス相互作用の生理学的関連性の高い 3 D 環境での勉強を効率的かつ一般的なアプローチを提供します。このアプローチは、正常組織および病気の開発の分子基盤に新しい洞察力を提供するだけでなく、新規診断と治療的アプローチの設計ができます。

この記事の目標は、3 D マトリックスは、哺乳類の細胞分裂過程を研究し、中と細胞分裂後にセルと 3 D の細胞外マトリックスの相互作用を定量化するイメージング ベースの方法を提示することです。細胞分裂の観察を容易にするには、我々 はレンチ ウイルス伝達を使用して MDA MB 231 セルに H2B mCherry を組み込みます。蛍光タンパク質を用いた共役 H2B は、間期の細胞分裂期の細胞を区別するためにセル有糸分裂19,20,26中のさまざまな段階を定義する分裂のマーカーとして使用されます。このメソッドを使用すると、安定した 3 D コラーゲン マトリックス (図 1 a) の H2B mCherry を表現する MDA MB 231 セル部門全体のプロセスを監視することができました。有糸分裂の段階 (前期; フレーム 1...

このプロトコルは細胞分裂の同期を統合することで効率的に 3 D コラーゲン マトリックス中の哺乳類の細胞分裂を研究生細胞イメージング、共焦点反射の時間分解顕微鏡を使用して 3 D の行列の部イベントの監視定量画像解析。

哺乳類の細胞分裂量的共焦点反射顕微鏡を介して 3 D 行列

The study of how mammalian cell division is regulated in a 3D environment remains largely unexplored despite its physiological relevance and therapeutic ...

この手順の全体的な目標は、生理学的に関連性のある3D環境で哺乳類の細胞分裂と細胞マトリックスの相互作用を研究することです。この手法の主な利点は、哺乳類の細胞分裂と細胞マトリックスの相互作用を研究するための効率的で一般的なアプローチを提供することです。この方法は、正常組織と疾患組織の発生の分子基盤など、細胞生物学における重要な質問に答えるのに役立ちます。トランスフェクションの前日に、100ミリリットルの細胞培養皿に500万個のHEK-293 T細胞を10ミリリットルの正常細胞培養培地にプレートします。これらの細胞を摂氏37度で24時間インキュベートし、5%二酸化炭素を含む加湿インキュベーターでインキュベートします。トランスフェクションを開始する直前の翌日、トランスフェクション試薬のバイアルを摂氏4度から取り出し、室温に戻します。次に、まず、1ミリリットルの還元血清培地を滅菌マイクロチューブに加えます。これに、トランスフェクションに使用するレンチウイルスベクタープラスミドを指定量加え、ピペッティングで混合します。チューブを室温で5分間インキュベートします。5分後、このチューブに48マイクロリットルのトランスフェクション試薬を加え、ピペッティングで穏やかに混合します。その後、この混合物を室温で少なくとも15分間インキュベートします。インキュベーションが完了したら、HEK-293 T細胞の入ったプレートをインキュベーターから取り出します。調製したDNAトランスフェクション試薬混合物を細胞上にゆっくりと滴下し、プレートを静かに渦巻かせてプレート内に均一に分布させます。プレートをインキュベーターに戻します。トランスフェクションの約6時間後、プレートを取り出し、培地を吸引します。10ミリリットルの新鮮な培地を加え、プレートをインキュベーターに戻します。トランスフェクション後24時間、48時間、72時間の複数の時点で、レンチウイルス粒子を含む培地を別々のチューブに回収します。次に、回収した培地を滅菌済みの0.45ミクロンフィルターでろ過し、細胞の破片を取り除きます。収穫のたびに新鮮な培地と交換してください。レンチウイルス粒子を含む濾液は、すぐに形質導入に使用することも、摂氏マイナス80度で保存することもできます。ヒト乳がん細胞MDA-MB-231を正常培地中の35mm培養皿にプレート化します。これらの細胞を摂氏37度で24時間インキュベートし、5%二酸化炭素を含む加湿インキュベーターでインキュベートします。翌日、プレートから培地を吸引し、1ミリリットルのレンチウイルス粒子と1ミリリットルの新鮮な培地を加えます。インキュベーター内で細胞を約16時間インキュベートします。ウイルス粒子とのインキュベーションが完了したら、プレートを取り外して培地を吸引します。次に、2ミリリットルの新鮮な培地を加え、24〜72時間インキュベーターに戻します。これらの形質導入細胞におけるH2B-mCherryの発現を落射蛍光顕微鏡を用いて確認します。同期実験を開始するには、まず、H2B-mCherryを発現するMDA-MB-231細胞を50〜60%のコンフルエント度で24ウェルプレートにプレートします。培養物を摂氏37度、二酸化炭素5%で24時間インキュベートします。翌日、培地を2ミリモルのチミジンを含む0.5ミリリットルの培地と交換します。プレートをインキュベーターに24時間放置します。インキュベーションが完了したら、細胞をPBSで3回洗浄して、チミジン処理から細胞を放出します。次に、細胞を0.5ミリリットルの通常の培養培地にインキュベーターで5時間放置します。この後、有糸分裂でこれらの細胞をブロックするために、ノコダゾールを培地に加えます。細胞をインキュベーターに12時間放置します。ノコダゾール治療終了後、プレートを取り出し、オービタルシェーカーを用いて細胞を45秒から1分間振とうし、有糸分裂細胞を放出します。続いて、抽出した有糸分裂細胞を含む培地を新しい遠心分離チューブに移します。次に、各ウェルに0.5ミリリットルの新鮮な培地を追加します。その後、細胞の振とうと抽出をさらに2回繰り返します。収集した培地全体をプールし、遠心分離機で有糸分裂細胞をペレット化します。スピン後、細胞ペレットを0.25ミリリットルの新鮮な細胞培養培地に再懸濁します。血球計算盤を使用して、細胞の数を数えます。このステップの開始時に、50ミリリットルの10x DMEM溶液を調製し、それをろ過滅菌します。次に、テキストプロトコルで指定されている3Dコラーゲンマトリックスの作成に使用されるすべての成分の体積を決定します。これらすべての成分を氷の上で事前に冷やして、コラーゲンのゲル化を遅らせます。次に、あらかじめ冷却した1.5ミリリットルの遠心チューブに、必要な数の細胞を培地に加え、次に10x DMEM、FBS、脱イオン水、コラーゲン、最後に水酸化ナトリウムを加えます。1ミリリットルのピペットを使用して慎重に混合します。溶液が十分に混合されたら、500マイクロリットルの混合物を24ウェルプレートの各ウェルに加えます。24ウェルプレートを摂氏37度のインキュベーターに入れます。30分後、プレートを取り出し、ゲルの上に500マイクロリットルの予熱した培地を加えます。イメージングの前に、位相差顕微鏡と共焦点顕微鏡の生細胞ユニットの電源を入れます。分裂する細胞を捕捉するには、コラーゲンマトリックスに埋め込まれた細胞を含む24ウェルプレートを蛍光顕微鏡の生細胞ユニットに配置します。10倍対物レンズを使用してプレートの底を見つけ、顕微鏡がプレートの底から約500マイクロメートルに焦点を合わせるまで上に移動します。ステージを動かして、有糸分裂のさまざまな段階にある細胞を見つけ、イメージングのために複数の位置を選択します。タイムラプス実験を 2 分間隔で設定します。次に、コラーゲンネットワークをイメージングするために、488ナノメートルレーザーからの反射光のみを捕捉するように共焦点顕微鏡を構成します。次に、コラーゲンマトリックス中の細胞を含むプレートをこの顕微鏡の生細胞ユニットに入れます。プレートの底部を見つけてから、対物レンズを上に動かして、プレートの底面から約100マイクロメートルのところにピントを合わせます。ステージを動かして細胞を見つけ、イメージングのために複数の位置を選択します。タイムラプス実験を 5 分間隔で設定します。コラーゲンマトリックスに埋め込まれた分裂性H2B-mCherry発現MDA-MB-231細胞の蛍光像を示します。有糸分裂のさまざまな段階は、予想どおりに容易に観察されます。共焦点反射顕微鏡を使用して同時に視覚化された白色のコラーゲン線維の分布は、有糸分裂の過程でほとんど変化しません。G2-M期と同期した細胞をコラーゲンマトリックスに包埋すると、最初の2時間で細胞分裂が完了し、制御非同期細胞はランダムに分裂します。間期および有糸分裂期におけるコラーゲン線維の分布の定量化は、細胞分裂中のマトリックス変形が最小限であり、間期細胞ではそれ以上であることが示唆されています。この手法を習得すれば、安定細胞株の生成から3Dマトリックスでのビデオ細胞分裂の解析まで、7日間で完了することができます。このビデオをご覧いただければ、ライブセルイメージングを使用して3Dマトリックス内の哺乳類細胞分裂を同期およびモニタリングする方法や、共焦点反射顕微鏡法と定量的イメージング解析技術を使用してマトリックスの変形を決定する方法について、十分に理解できることを願っています。

mammalian-cell-division-3d-matrices-via-quantitative-confocal

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

このような細胞遊走などの細胞プロセスは伝統的に二次元、硬いプラスチックの表面に研究されている。このレポートは、直接タンパク質の局在を可視化し、より生理学的に関連する、三次元マトリックスに移行する細胞で蛋白質のダイナミクスを分析するためのテクニックを説明します。...

三次元マトリックスの蛍光タグ付きタンパク質を発現する遊走細胞の生細胞イメージング

我々は、細菌のFtsZ-リングの構造、組織、細胞分裂に不可欠な装置を検査する、超解像イメージング法を説明します。この方法は、光活​​性化ローカライゼーション顕微鏡（PALM）画像の定量分析に基づいており、他の細菌の細胞骨格タンパク質に適用することができます。...

細菌分裂機械の超解像イメージング

神経前駆有糸分裂は、神経新生の重要なパラメータである。神経前駆糸分裂の我々の理解の多くは、固定された組織の分析に基づいている。胚性脳スライス内のライブイメージングは​​、制御された環境で、高い時間·空間分解能で有糸分裂を評価するための汎用的な手法である。...

発生中のマウス胚性皮質における有糸分裂のライブイメージング

この資料は、乳癌細胞の浸潤を定量化するための3次元（3D）のアッセイの使用のための詳細な方法論を提供する。具体的には、細胞が侵入したときに発生する膜の完全性の喪失を検査するためにこのようなアッセイ、定量化、およびデータ分析だけでなく、メソッドを設定するために必要な手順を説明します。...

3次元（3D）モデルを用いた乳癌細胞浸潤の定量化

ここで提示する方法は、マイクロパターニングと定量イメージングを使用して、哺乳類培養における空間的組織を明らかにする。この技術は、標準的な細胞生物学研究室で確立することが容易であり、インビトロでのパターニングを研究するための扱いやすいシステムを提供しています。...

マイクロパターンと定量イメージングを用いた哺乳類細胞の新しい空間組織のマッピング

細胞分裂は、蛍光タグ付きタンパク質とタイムラプス顕微鏡を使用してリアルタイムで可視化することができます。ここで提示されるプロトコルを使用して、ユーザーは細胞分裂タイミングダイナミクス、ミトチックスピンドルアセンブリ、および染色体の議会と分離を分析することができます。RNA干渉(RNAi)媒介遺伝子ノックダウン後のこれらの事象の欠陥を評価し、定量することができる。...

細胞分裂のライブイメージングのためのショウジョウバエS2細胞の使用

このプロトコルは、生きた3次元イメージングのための細菌サンプルを調製し、マウントする方法と、それらの画像から大腸菌の三次元形状を再構築する方法を説明します。...

正確な細胞表現と正確なタンパク質局在化のための細菌細胞の三次元イメージング

Ex Vivo Live Imagingを用いたマウス歯の再生中の細胞分裂と動きの調査

多次元顕微鏡データを正確に分析するには、複雑なワークフローが必要です。この記事では、ソフトウェアCell-ACDCの使用方法を示します。最先端の AI...

Cell-ACDCを用いた多次元顕微鏡データの解析

カスタム、リアルタイムの走査型共焦点イメージングシステムの完全な構造が記載されている。容易にビデオレートの顕微鏡とmicroendoscopyに使用することができるこのシステムは、コストのほんの一部で、標準的な商用共焦点システムを使用してアクセスできませんイメージングジオメトリとアプリケーションの配列が可能になります。...

ビデオレートでスキャニング共焦点顕微鏡とMicroendoscopy

学ぶ哺乳類細胞分裂の3Dコラーゲン基質での動態と細胞外基質相互作用。共焦点反射顕微鏡とライブセルイメージングを用いて、HEK-293 T細胞とMDA-MB-231細胞で細胞周期同期化と分裂イベントの定量的解析を行う方法です。

哺乳類の細胞分裂量的共焦点反射顕微鏡を介して 3 D 行列

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