Name: 絞扼性損傷マウス自動歩行分析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 49 s
Description: 学ぶ 自動歩行解析システムを用いたマウスの絞扼性損傷モデルにおける機械的アロディニア評価法。末梢神経損傷後の感覚機能を客観的に測定し、疼痛研究と鎮痛薬の効果評価に応用できます。

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この研究は忠南大学、韓国研究所の東洋医学 (KIOM) と韓国健康技術総合研究所の助成金によって支持された &#38; 開発プロジェクトを通じて、韓国保健産業開発研究所 (KHIDI)、厚生省によって資金を供給&#38; 福祉、大韓民国 (許可番号: HI15C0007)。

すべての実験痛み研究の国際交流協会の倫理指針に従い実施し、忠南大学校 (で機関動物ケアおよび使用委員会によって承認されました。大田広域市, 韓国).
 1 坐骨神経の誘導の CCI <ol><li>家雄 ICR マウスの部屋温度 (20-25 ° C で維持される) と湿度 (40-60%) で 12 h 明暗周期下 20-25 g の重さで無料の食品へのアクセスと。水。手術する前に、少なくとも 1 週間の動物保育室でマウスの順応期間を許可します。
	<ol><li>住宅、外観とマウスの動作を見学し、異常行動を示すマウスを使用しないでください 。
		注: は、CCI 術前 1 日は von Frey フィラメントを適用することによって、後肢の機械的感度を測定し、通常のベースライン値を取得する自動歩行分析を実行します。その後、対照群と実験群にランダムにマウスを割り当てます</li>。
	</ol></li> <li>2,2,2 tribromoethanol (250 mg/kg、腹腔内 (IP)) を注入することによりマウスの麻酔手術の日 。
	注: 手術用ガウン、手袋、マスクなど保護具を着用します。
	<ol><li>は、2,2,2 tribromoethanol の 2.5 グラムの重量を量る、2-メチル-2-buthanol を 5 mL の最終的なボリュームに追加します。光をさえぎってを保つため (例えば、暗いコンテナーを使用して、ホイルで包む).</li>
		<li>40 ° C で加熱と 10-30 分攪拌して完全に溶解する許可する試薬</li>
		<li>200 mL の最終巻に蒸留水を追加し、よく混合されるまでかき混ぜる</li>。
		<li>は、4 ° C で因数を格納し、暗闇の中で保管します。2 週間後、麻酔薬の新しい因数を置き換える必要があります</li>。
		<li>は、1 g の体重ごと 20 μ L のボリュームを挿入します。たとえば、マウスの体重は 25 g、する場合は、500 μ L のソリューションを与えます。この麻酔の典型的な時間は 1 h. 
		注: このソリューションはライトに露出されたとき有毒になるおよび/または熱、ライトおよび熱への暴露を避けるために注意してください。ルートの注入はお勧めします</li>。
	</ol></li> <li>マウスは、深い麻酔に該当、する場合 (すなわち、腹臥位) を背側とオペレーティング テーブルの上に配置し、70% アルコール綿棒で右サイドの外側の半ば太もも領域を消毒します 。
	メモ: は、ピンチや後足は前足や尻尾に刺激の圧力への応答の欠如を確認することによって深い麻酔を確認します</li>。
	<li>誘発マウスの右の坐骨神経に CCI。
	<ol><li>1.0 〜 1.5 cm の長さの半ば太ももの領域の周りの皮膚にメス刃で切開を行います</li>。
		<li>坐骨神経を公開するマイクロ モスキート止血と太ももの筋肉を解剖ぶっきらぼう</li>。
		<li>4-0 クロム腸線縫合糸を使用して 1.0 〜 1.5 mm 間隔で 3 回の露出した坐骨神経の結紮します 。
		注: は、同側の後肢に表示される穏やかな揺れまで坐骨神経を結ぶことによって緩いを作る。マウスの偽のグループ受け取った神経結紮なしを除いて同様の条件で同じ外科的開口します</li>。
	</ol></li> <li>、5-0 絹糸を使用して 3-4 簡単な縫合と外科的開口を閉じて、手術の外側の領域の消毒をポビドン ヨードで消毒します</li>。
	<li>術後では、加熱パッドできれいなケージの中にマウスを置きます。動物が麻酔からリカバリされる場合、ホームのケージに戻ります 。
	注: この研究では、抗生物質使用されませんでした。肯定的な制御として 1 日 1 回 50 mg/kg の用量で CCI + ポンドを受け取ったグループ IP ガバペンチン (GBP).</li>
</ol> 2。機械的アロディニアの測定 (von Frey テスト) 注: 同側の後肢の足底の表面に von Frey フィラメントの 1 g を使用して撤退に対する機械的刺激の頻度を調べます。
<ol><li>それぞれの試験日に行動テスト部屋にマウスを持って来ると、テストする前に、少なくとも 30 分間自分のホーム ケージ内マウスを順応させる 
	注: 手術用ガウン、手袋、マスクなど保護具を着用します</li>。
	<li>金属メッシュの床に透明なアクリル ボックスにマウスを置くし、30 分マウスを順応させる</li>
	<li>フィラメントが曲がるまで優しく、後肢の足底の表面に von Frey のフィラメントの 1 g を適用します</li>。
	<li>適用フィラメント刺激同側の後肢に少なくとも 10 秒間隔で 10 回足し、結果を記録します 。
	注: この研究では、10 試験から足回収回答数は前足撤退周波数 (PWF、%) の割合として表示されます。Von Frey テストは CCI 手術後は 2 日おきに行った</li>。
</ol> 3。歩行分析の自動化を実行する 注: 動物が歩いている、自動的に様々 な歩行パラメーターを分析し、歩行解析システムは各足のプリントを可視化する、あしあと、足強度、歩幅のスタンス相、ステップ シーケンス、スイング、スイング スピード、等 本研究で示した足印刷領域とデータを割合に変換後単一姿勢変更対側の左同右後肢対。したがって、50% の結果は、印刷の足のサイズと前足部左側と右側の間の床との接触期間が同じであることを示します。さらに、下位のデータ値が 0% に近づいている示す対側と比較すると同側の後肢ではサイズと接触時間の両方が減少する ( 図 2 の B のパネルと 図 3).
<ol><li>順化、10 分の歩行分析装置内でマウスに CCI 術前に、5 日から一日一回を維持します 。
	注: 馴化を含む歩行分析テストは暗闇の中で実行する必要があります</li>。
	<li>歩行解析のためのテスト部屋にマウスを持参しテストする前に、少なくとも 30 分間、ホームのケージに順応
	<ol><li>[プログラム] メニューの [設定] タブでは、設定、&#34; 通路の長さ &#34; 30 cm とセットに、&#34; 最大期間を実行 &#34; 5 s と &#34; 最大のバリエーションを実行 &#34; 50%</li>。
		<li>から登録されているカメラを選択、&#39; セットアップ &#39; のタブ、&#39; プログラム &#39; メニュー</li>。
		<li>選択 &#34; 買収を開く &#34; から、&#39; を取得 &#39; のタブ、&#39; プログラム &#39; メニュー</li>。
		<li>次のステータス メッセージをクリックして、&#39; スナップ背景 &#39; 空 (すなわち ブランク) 通路の背景写真を撮る] ボタンをクリックします</li>。
	</ol></li> <li>クリックして、&#39; 集録を開始 &#39; ボタンをクリックし、歩道にマウスを配置、マウスの動きに合わせて自動的に記録を開始 。
	注: マウスが明らかに通路を歩くとき、プログラムは自動的としてこの動きを分類 &#34; 準拠を実行 &#34; 緑のアイコンで。フット プリントを検出するソフトウェアが失敗した場合、実験者は赤いアイコンが表示され、記録を繰り返す必要があります。解析に必要な少なくとも 5 つの成功した準拠実行します</li>。
	<li>テストの後、選択 &#39; の実行を分類する &#39; の取得] タブから、&#39; プログラム &#39; メニュー</li>。
	<li>は、分析とクリックのための実行を選択、&#39; 自動分類 &#39; ボタン 。
	注: 分類、統計パラメーターはすべて自動的に保存され、実験者をクリックして、結果を見つけることができます &#34; 実行統計を表示 &#34; 分析のメニュー</li>。
</ol>

<ol><li>Loeser, J. D., Treede, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Kyoto+protocol+of+IASP+Basic+Pain+Terminology%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">The Kyoto protocol of IASP Basic Pain Terminology.</a> Pain. 137 (3), 473-477 (2008).</li>
<li>Colloca, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Dis+Primers%22%5BJournal%5D)">Neuropathic pain.</a> Nat Rev Dis Primers. 3, 17002(2017).</li>
<li>Vranken, J. H. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20021340">Mechanisms and treatment of neuropathic pain.</a> Cent Nerv Syst Agents Med Chem. 9 (1), 71-78 (2009).</li>
<li>DeLeo, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+neuropathic+pain+model%3A+sciatic+cryoneurolysis+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Characterization of a neuropathic pain model: sciatic cryoneurolysis in the rat.</a> Pain. 56 (1), 9-16 (1994).</li>
<li>Kim, S. H., Chung, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+experimental+model+for+peripheral+neuropathy+produced+by+segmental+spinal+nerve+ligation+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">An experimental model for peripheral neuropathy produced by segmental spinal nerve ligation in the rat.</a> Pain. 50 (3), 355-363 (1992).</li>
<li>Seltzer, Z., Dubner, R., Shir, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+behavioral+model+of+neuropathic+pain+disorders+produced+in+rats+by+partial+sciatic+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A novel behavioral model of neuropathic pain disorders produced in rats by partial sciatic nerve injury.</a> Pain. 43 (2), 205-218 (1990).</li>
<li>Bennett, G. J., Xie, Y. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+peripheral+mononeuropathy+in+rat+that+produces+disorders+of+pain+sensation+like+those+seen+in+man%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A peripheral mononeuropathy in rat that produces disorders of pain sensation like those seen in man.</a> Pain. 33 (1), 87-107 (1988).</li>
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<li>Bonin, R. P., Bories, C., De Koninck, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simplified+up-down+method+%28SUDO%29+for+measuring+mechanical+nociception+in+rodents+using+von+Frey+filaments%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Pain%22%5BJournal%5D)">A simplified up-down method (SUDO) for measuring mechanical nociception in rodents using von Frey filaments.</a> Mol Pain. 10, 26(2014).</li>
<li>Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+assessment+of+tactile+allodynia+in+the+rat+paw%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw.</a> J Neurosci Methods. 53 (1), 55-63 (1994).</li>
<li>Chen, H., Du, J., Zhang, Y., Barnes, K., Jia, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+a+Reliable+Gait+Evaluation+Method+for+Rodent+Studies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Establishing a Reliable Gait Evaluation Method for Rodent Studies.</a> J Neurosci Methods. , (2017).</li>
<li>Kang, D. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antinociceptive+Profile+of+Levo-tetrahydropalmatine+in+Acute+and+Chronic+Pain+Mice+Models%3A+Role+of+spinal+sigma-1+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Antinociceptive Profile of Levo-tetrahydropalmatine in Acute and Chronic Pain Mice Models: Role of spinal sigma-1 receptor.</a> Sci Rep. 6, 37850(2016).</li>
<li>Huehnchen, P., Boehmerle, W., Endres, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+paclitaxel+induced+sensory+polyneuropathy+with+%26%2334%3BCatwalk%26%2334%3B+automated+gait+analysis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Assessment of paclitaxel induced sensory polyneuropathy with &#34;Catwalk&#34; automated gait analysis in mice.</a> PLoS One. 8 (10), e76772(2013).</li>
<li>Vrinten, D. H., Hamers, F. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%27CatWalk%27+automated+quantitative+gait+analysis+as+a+novel+method+to+assess+mechanical+allodynia+in+the+rat%3B+a+comparison+with+von+Frey+testing%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">'CatWalk' automated quantitative gait analysis as a novel method to assess mechanical allodynia in the rat; a comparison with von Frey testing.</a> Pain. 102 (1-2), 203-209 (2003).</li>
<li>Martinov, T., Mack, M., Sykes, A., Chatterjea, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+changes+in+tactile+sensitivity+in+the+hind+paw+of+mice+using+an+electronic+von+Frey+apparatus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Measuring changes in tactile sensitivity in the hind paw of mice using an electronic von Frey apparatus.</a> J Vis Exp. (82), e51212(2013).</li>
<li>Ferland, C. E., Laverty, S., Beaudry, F., Vachon, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gait+analysis+and+pain+response+of+two+rodent+models+of+osteoarthritis%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Biochem+Behav%22%5BJournal%5D)">Gait analysis and pain response of two rodent models of osteoarthritis.</a> Pharmacol Biochem Behav. 97 (3), 603-610 (2011).</li>
<li>Mogil, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypolocomotion%2C+asymmetrically+directed+behaviors+%28licking%2C+lifting%2C+flinching%2C+and+shaking%29+and+dynamic+weight+bearing+%28gait%29+changes+are+not+measures+of+neuropathic+pain+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Pain%22%5BJournal%5D)">Hypolocomotion, asymmetrically directed behaviors (licking, lifting, flinching, and shaking) and dynamic weight bearing (gait) changes are not measures of neuropathic pain in mice.</a> Mol Pain. 6, 34(2010).</li>
<li>Ferreira-Gomes, J., Adaes, S., Castro-Lopes, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+movement-evoked+pain+in+osteoarthritis+by+the+knee-bend+and+CatWalk+tests%3A+a+clinically+relevant+study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pain%22%5BJournal%5D)">Assessment of movement-evoked pain in osteoarthritis by the knee-bend and CatWalk tests: a clinically relevant study.</a> J Pain. 9 (10), 945-954 (2008).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

現在、von Frey フィラメントを用いた機械的アロディニアの測定は、最も広く触覚過敏症を示す痛みの動物モデルでメソッドを使用です。神経因性疼痛の動物モデルが開発され続けている、よう改良された8,9,10,15感覚機能の評価の方法論もされています。これらのレポートに、これらの変更は、古いメソッドのより正確な高速、かつユーザーフレンドリーな交換を提供できるが示唆されています。ただし、これらのメソッドからのデータをまだその主観やメソッドを実行するスキルや経験の要件によって制限される可能性があります。また、von Frey テストを実行するとき避けるためことはできません動物を抑制、動物の拘束ストレスが痛み応答結果にどのような影響を与えるため。
自動歩行解析システムは自動的に (例えば床に足の印刷、立ち時間等...

外傷、代謝異常、炎症、感染症、虚血による神経系の病理学的変化や病変や疾患の直接的な結果として生じる痛みとして定義されている神経因性疼痛の時折発生する自己免疫疾患1体性感覚系に影響を与えます。神経因性疼痛は通常、我慢、残念なことに、従来の鎮痛薬一般的に生産しない十分な痛み救済2。神経因性疼痛の主要な機能には、自然と刺激に対する反応 (すなわちアロディニア、痛覚過敏) の痛みが含まれています。アロディニアは、軽いタッチや暖かい刺激などの通常非痛み刺激に発生した侵害受容応答です。痛覚過敏は、有害な機械および/または熱刺激3に強化された痛み応答を示します。これらの 2 症状の両方は非常に患者さんの生活の質を損なう、穏やかな触覚刺激により誘発される機械的アロディニアが最も悪化症状ソフト コンタクトは日常生活の中で避けにくいので。
調べるための基本的なメカニズムと神経因性疼痛の治療のための新しい鎮痛薬、痛み反応の精密測定が不可欠です。多数の神経因性疼痛モデル動物が開発した後肢に侵害受容反応その高いアクセシビリティ4,5,6、7のための地域の足。したがって、ほとんど痛み応答評価されてきた、後肢の足底または背側表面に von Frey フィラメントなどの特殊な器具を使用して機械的刺激を適用することによって。最もよく使用される方法の 1 つは、アップ、ダウン ・ ディクソンによって記述方法8と後変更バージョン9,10。しかし、非常に熟練した、経験豊富な実験者は von Frey テストを実行する必要が、結果は主観的な可能性があります。
自動歩行解析システムは、齧歯動物を自由に移動で歩くの様々 なパラメーターを測定することにより、神経疾患、神経筋疾患を調べることができます。神経損傷モデル動物の様々 な侵害受容性といくつかの治療の鎮痛効果は、痛み刺激11,12,13,を追加することがなく評価できます。14. この解析システムなど静的および動的歩行パラメーターの検出することができます: 印刷領域 (床と接触する完全な足印刷の領域) の足、足の強度 (足との接触面積の平均強度)、ストライド長 (同じ足の連続配置間の距離)、姿勢相 (単一の後肢の接地の期間)、ステップ シーケンス (順序で、4 つの足が床に配置されます)、(遊脚相の期間)、スイング、スイング速度 (計算ストライド長期間をスイングと 1 秒あたりのピクセル数で表されます)。本稿では、分析システムの使用方法を示し、絞扼性損傷 (CCI) 神経因性マウスを用いた von Frey テストとデータの簡単な比較を提供しています。

<table><tbody><tr><td>0.9% 生理食塩水</td><td>JW 医薬品</td><td>N/A</td><td>医薬品用車両</td></tr><tr><td>1ml シリンジ</td><td>BD Plastipak</td><td>300013</td><td>注射装置</td></tr><tr><td>2,2,2-トリブロモエタノール (純度 97%)</td> <td>シグマ</td><td>T48402</td><td>麻酔薬</td></tr><tr><td>2-メチル-2-ブタノール (純度 99%)</td> <td>シグマ</td><td>152463</td><td>2,2-トリブロモエタノール用溶剤</td></tr><tr><td>キャットウォーク 自動歩行分析システム</td><td>ノルダス</td><td>N/A</td><td>アニアム歩行</td></tr><tr><td>クロミック キャットグット (4-0 厚さ)</td> <td>AILEE</td><td>C442</td> 結紮糸の自動分析ソフトウェア 坐骨神経 Gabapentin シグマ Y0001280 鎮痛剤の<td>慢性的な狭窄傷を作るために</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>、この研究でポジティブ コントロール ドラッグとして使用</td></tr><tr><td>Graefe 鉗子</td><td>F.S.T</td><td>11051-10</td><td>手術器具</td></tr><tr><td>加熱パッド</td><td>大神電子</td><td>M-303AT</td><td>体温調節</td></tr><tr><td>ICR マウス</td><td>サムタコ</td><td>N/A</td><td>実験動物</td></tr><tr><td>マーシルク (3-0 厚さ)</td><td>ETHICON</td><td>W598H</td><td>皮膚手術用縫合糸</td></tr><tr><td>Micro-Mosquito</td><td>F.S.T</td><td>13010-12</td><td>手術器具</td></tr><tr><td>マイクロハサミ</td><td>F.S.T</td><td>14090-09</td><td>手術用器具</td></tr><tr><td>ニードルホルダー</td><td>F.S.T</td><td>12002-12</td><td>手術器具</td></tr><tr><td>ポビドン ヨウ素</td><td>ファーソン</td><td>N/A</td><td>手術後の感染を防ぐための消毒剤</td></tr><tr><td>メスブレード</td><td>F.S.T</td><td>10010-00 (#10)</td><td>切開を行うための手術器具</td></tr><tr><td>メスハンドル</td><td>F.S.T</td><td>10003-12 (#3)</td><td>切</td></tr><tr><td>開を行うための手術器具フォンフレイフィラメントノース</td><td>コース</td>ト<td>NC12775-99</td><td>機械的刺激の感覚機能をテストするための測定装置</td></tr></tbody></table>

絞扼性損傷マウス自動歩行分析

Automated Gait Analysis in Mice with Chronic Constriction Injury

Von Frey テストは、神経因性疼痛の動物の感覚の機能を調べるため広く使用されている古典的な方法です。ただし、熟練した、経験豊富な実験者の要件と主観的データなどいくつかの欠点があります。さまざまな変更まで、von frey 毛方法の改善が、それはまだいくつかの制限があります。最近の報告では、歩行分析が神経因性動物からより正確で客観的データを生成することを示唆しています。このプロトコルはマウスの神経因性疼痛の程度を判断する自動歩行分析を実行する方法を示します。馴化の数日後、マウスは自由に足跡を照らすためのガラスの床の上を歩くを許されました。足印刷、スイング時間足等の角部などの様々 な歩行パラメーターの自動解析とビデオ クリップを足跡と歩行の定量化を行ったし、
本研究の主な目的は、自動歩行分析の方法論を記述して、簡単に von Frey フィラメントを使用して古典的な感覚のテストからのデータを比較することです。

Von Frey テストを実行し、CCI 術後後 10 日目まで CCI マウスにおける歩行分析を自動化しました。統計解析、双方向分散分析 (ANOVA) の反復測定全体の効果が決まります、実験群 p 値を決定する Dunnett の事後分析を行った。
図 1に示すように示唆された古典的な von Frey テスト データの時間コース。CCI マウスの PWF (%) CCI 術後後 2 日目増加、Sham 群と比較して 10 日間持続します。CCI の肯定的な制御グループ、GBP (50 mg/kg、IP、開始 10 日手術後 1 日目に 1 日 1 回) で CCI が強化された PWF を大幅軽減。パネル A の偽のグループ、PWF (%) は 8.00 ± timepoint 前外科手術 (Pre) 6.00 ± 2.45 の日 2、4.00 ± 2.00 ± 2.0...

動物モデルでは神経因性の痛みの反応の正確な評価は、痛みの病気の病態を調査し、新しい鎮痛薬の開発に不可欠です。後肢足自動歩行解析システムによって齧歯動物の感覚機能は、機密かつ客観的手法を提案します。

The von Frey test is a classical method that has been widely used to examine the sensory function of neuropathic pain animals. However, it has some ...

この手順の全体的な目標は、自動歩行分析システムを使用して、慢性狭窄損傷のマウスの機械的異痛症を分析することです。この方法は、げっ歯類の末梢神経損傷後の感覚機能を測定することにより、疼痛研究分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この手法の主な利点は、分析システムが迅速かつ使いやすく、さまざまな歩行パラメータを自動的にスコアリングすることです。この研究では、体重20〜25グラムの雄のICRマウスを標準条件下で少なくとも1週間飼育します。マウスは、その外観と行動に基づいて選択します。脱毛、瘢痕化、動きの減少など、異常な外観や行動を示すマウスは使用しないでください。選択したマウスを使用して、手術の5日前から毎日自動歩行データを収集し、ベースライン測定を行います。手術の1日前に、後足に1グラムのフィラメントを使用してフォンフレイテストを行い、ベースラインの反応を得ます。傷害グループと偽グループの間の応答のバランスを取ります。各テスト日には、マウスを行動テストルームに連れて行き、テストの少なくとも30分間、マウスを自分の自宅ケージに順応させます。手術後1日おきに、フォン・フレイ試験を用いて機械的異痛症を測定します。金属メッシュの床の上のきれいな透明なアクリルボックスにマウスを入れ、30分間ボックスに順応させます。次に、フィラメントが曲がるまで、同側の後足の足底面に1グラムのフォンフレイフィラメントを静かに塗布します。この刺激のパターンを10回繰り返して、足の引き出しを観察します。刺激の合間に少なくとも10秒待ちます。引き出しの数を記録し、分析のためにその頻度をスコアリングします。一日おきに、暗闇で行わなければならない歩行分析テストも行ってください。繰り返しになりますが、マウスを自宅のケージの試験室に少なくとも30分間順応させます。歩行分析デバイスを設定するには、ソフトウェアコントロールに移動します。セットアップタブで、歩道の長さを30センチメートルに設定し、最大実行時間を5秒に設定し、最大実行変動を50%に設定します次に、プログラムメニューのセットアップタブから登録済みのカメラを選択し、取得タブから[取得を開く]を選択します。ステータスメッセージに続いて、スナップ背景ボタンをクリックして、空の歩道の背景写真を撮ります。次に、マウスを通路に置き、10分間デバイスに順応させます。装置は、マウス間で常にアルコールで洗浄する必要があります。マウスがデバイスに順応したら、取得開始ボタンをクリックします。マウスの動きに合わせて自動的に録音が始まります。マウスが歩道をはっきりと歩くと、プログラムは準拠したランを緑色のアイコンで自動的に分類します。ソフトウェアが足跡を検出できない場合は、赤いアイコンが点灯します。少なくとも 5 つの準拠実行を収集した後、プログラム メニューの [取得] タブから [分類実行] オプションを選択します。解析するランを選択し、自動分類ボタンをクリックします。結果は自動的に保存されます。結果を表示するには、分析メニューから「実行統計の表示」をクリックします。フォン・フレイ試験と自動歩行分析を用いて、術後10日間連続でCCI手術を受けたマウスを評価した。前足の離脱の頻度は手術の2日後に増加し、10日間持続しました。この影響は、ガバペンチンの術後注射を毎日行うことで大幅に軽減できます。歩行分析ソフトウェアを使用して、左右の後足プリントのサイズを比較できました。通常、領域は同じで、50%の値で示されます。CCI手術は足跡に大きな影響を与え、その影響はガバペンチンを使用して大幅に減らすことができました。歩行分析ソフトウェアは、マウスが片方の後足だけで体重を支えている場合の単一スタンス持続時間の変化を拾うこともできます。これは、変化率として計算され、表示されます。この指標は、CCI手術とガバペンチン治療で同じ効果を示しています。このビデオを見れば、慢性狭窄損傷などの動物モデルにおける神経障害性疼痛の病態生理学を調査するための自動歩行分析システムの操作方法と分析方法について十分に理解できるはずです。

automated-gait-analysis-in-mice-with-chronic-constriction-injury

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

矢状面における歩行の運動学的分析には、運動の実行方法に関する非常に正確な情報が得られます。マウスの自己免疫を介した脱髄を受けるため歩行障害を識別するためにこれらの技術の応用について述べる。これらのメソッドは、障害者の歩行の特徴他のマウス...

MOG35 55 を受ける c57bl/6 マウスの矢状面運動歩行解析による実験的自己免疫性脳脊髄炎

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ここで提示されるプロトコルは、前臨床研究のためのげっ歯類の四足歩行の3次元運動学を収集し、分析するためのプロトコルである。...

げっ歯類の前臨床研究のための3Dキネマティック歩行分析

フットプリント分析は、マウスの運動異常を定量化する研究者のためのデジタル化された歩行分析プログラムに代わる低コストの代替手段です。その速度、シンプルさ、縦方向の可能性のために、それはマウスモデルの行動表現型に最適です。...

神経筋疾患のマウスモデルの行動表現型に関する低コスト歩行分析

自動歩行分析は、末梢神経損傷および脊髄失調損傷のげっ歯類モデルにおける機能回復を評価するための実現可能なツールである。様々な実験モデルで運動機能を評価するために1つのセットアップしか必要としませんが、動物の細心の硬とソフトウェアの調整と訓練は非常に重要です。...

末梢神経または脊髄損傷を伴うげっ歯類の機能回復を評価する自動歩行分析

坐骨神経クラッシュ傷害後のラットの行動検査用電池を介して運動行動評価のためのプロトコルを提供する。...

一方的坐骨神経クラッシュ傷害後のラットにおける運動行動の多因子的評価

本プロトコルは、シミュレートされた廃用環境への曝露後のラットの歩行運動変化を描写するための3次元運動追跡/評価を記載する。...

げっ歯類における不活動誘発歩行変化の包括的理解

MouseWalker(MW)ツールボックスを使用して自由に歩くマウスの自発運動パターンを定量的に記述するための実験パイプラインが提供されており、初期のビデオ録画や追跡から定量化後の分析まで、さまざまな結果が得られています。マウスの脊髄挫傷損傷モデルを用いて、MWシステムの有用性を実証した。...

MouseWalkerを用いた脊髄損傷マウスモデルにおける自発運動機能障害の定量化

このプロトコルは、マーカーレストレッドミルテストと深層学習駆動の多関節軌跡自動ラベリングを用いて、ラット後肢の運動学的評価パイプラインを構築し、再現可能な動きの定量化を可能にします。...

ラットにおける後肢の運動運動学の客観的定量化のための深層学習に基づく多関節同期追跡

我々は、神経形態を分析するためにコンピュータプログラムを開発しました。つの既存のオープンソースの解析ツールと組み合わせることで、私たちのプログラムは、ショール分析を実行し、神経突起、分岐点、および神経突起の先端の数が決まります。分析は、神経突起の形態で局所的な変化が観察できるように実行されます。...

複数のスケールでデジタル化された神経形態の自動化されたショールの分析

学ぶ 自動歩行解析システムを用いたマウスの絞扼性損傷モデルにおける機械的アロディニア評価法。末梢神経損傷後の感覚機能を客観的に測定し、疼痛研究と鎮痛薬の効果評価に応用できます。

絞扼性損傷マウス自動歩行分析

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