Name: 巨核球分化および人間の血小板形成臍帯血由来 cd34 陽性細胞の+ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-12-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 46 s
Description: 学ぶ ヒト臍帯血からCD34陽性細胞を分離し、巨核球分化と血小板形成を研究する方法。密度勾配遠心と磁気ビーズ分離を用いて高純度の細胞を得られ、造血幹細胞の血小板産生メカニズム解明に貢献します。

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著者は、(プロジェクト助成 1012409 BHC にリンク) オーストラリア健康と医学研究評議会のサポートを認めます。

このプロトコルは南東シドニー人間研究倫理委員会で承認され、大学のニュー ・ サウス ・ ウェールズの人間研究倫理委員会によって批准されました。健康なドナーから得られる臍帯血によって、シドニーの臍帯血バンク (シドニー, ニューサウス ウェールズ州, オーストラリア) が提供されました。約 100 mL のボリュームは、この手順で使用されました。
メモ: クラス II バイオ セーフティ キャビネットの無菌技術を使用であります。70% エタノールで臍帯血バッグの外側を消毒します。この手順 (はさみ、ピンセット) 滅菌器具を使用します。
1. 臍帯血細胞調製と CD34 の単離細胞の+
<ol>
	<li>滅菌分離バッファー (SB) リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) で、pH 7.2, と含まれている 0.5% のウシの血清アルブミンと 2 mM EDTA を準備します。</li>
	<li>(血液の 10 mL あたり 1 つの管が必要) 50 mL コニカル チューブに SB の 10 mL を分注します。10 mL のシリンジにマウントされている G18 鈍針を使用して、バッグから 10 ミリリットルの血液を描画し、SB の 10 mL を含む 50 mL チューブに分注します。</li>
	<li>2 つの層を作成する、希釈血液の入ったチューブの底部に 15 mL のリンパ球分離培 (材料の表を参照) を追加します。 注: は、異なる層の混合を避けるために管の下でゆっくりとメディアを調剤します。</li>
	<li>区切りなしとアクセラレータなし室温 (RT) で 30 分間 1,200 × g でチューブを遠心します。</li>
	<li>パスツール ピペットを使用して新しい 50 mL チューブに単核細胞 (各チューブから約 5-10 mL) を格納筒の中心に近い層を転送します。各容量 50 mL のチューブに SB を追加します。</li>
	<li>RT。 破棄で 10 分の 400 × g で遠心上清。</li>
	<li>浮遊細胞 SB. コンバインの 5-10 mL のパスツール ピペットで注意深く細胞ペレットを再懸濁します、SB にて 50 mL にボリュームをもたらします。</li>
	<li>トリパン ブルー染色および診断を使用して、または自動のセルを数える細胞カウンター (材料の表を参照してください)。CD34 のパーセンテージを決定+のセルをサンプルでは、2.5 × 10 を再懸濁します5セル SB と染色の 100 μ L で 4 ° C で 15-30 分の抗 CD34 PE 抗体の 10 μ L を追加することによってフローサイトメトリー (図 1 a) によって分析します。</li>
	<li>4 ° C で 10 分間 400 × g で遠心管上清を捨てます。 注: すぐに必要でなければ、単核細胞はこの段階で冷凍することができます。</li>
	<li>SB の 300 μ L 108細胞/細胞を再懸濁します。FcR はヒト IgG の 100 μ L を追加 (ブロッキング試薬、材料表を参照) と 10 の8セルあたり CD34 磁気ビーズの 100 μ L。穏やかに混合し、, 4 ° C、30-40 分で。 メモ: 単一細胞懸濁液は必要です (必要に応じて、細胞を通過も 30 μ m フィルター試薬を追加する前に)。記載されている以下の 10 の8セルの試薬ボリュームを使用します。以上 10 の8セル試薬 (SB、ブロッキング、および、CD34 磁気ビーズ) をそれに応じてスケール アップします。</li>
	<li>マグネット ホルダーに LS 列を配置し SB. 破棄の 3 mL 洗浄廃液、潜伏期間中に LS 分離カラムを準備します。 注意: LS 分離カラムは最大 2 × 10 の8セルの総数をロードできます。小さくより大きい列があります。</li>
	<li>セルの混合物に SB の 5-10 mL を追加し、400 × g で 10 分間遠心上清を破棄します。</li>
	<li>SB の 1.5 mL の細胞を再懸濁します、LS 列に細胞懸濁液 (1.5 mL) を読み込みます。15 mL コレクション チューブ (負の分数 #1) のラベルのないセルを含む流れを収集します。ドレインし、SB の 1.5 mL でコラムを洗浄液ができます。</li>
	<li>(3 mL) を通じて収集した流れを列に読み込むし、同じ 15 mL コレクション チューブ (負の分数 #1) の流れを収集します。SB の 3 mL で 3 回 LS 列を洗います。 注: 必要な場合、負の分数 (12 mL) でセルと汚されることができる抗 CD34 抗体 CD34 のキャプチャを確認するために+ LS 列による細胞します。</li>
	<li>磁選機から列を削除し、SB の 2 mL で新しい 15 mL チューブに注射器のプランジャーをゆっくりと細胞をフラッシュします。</li>
	<li>列に戻って戻って磁気分離装置と負荷セルの 2 mL に列を配置します。流れを収集し、2 ml の SB を洗います。これは、負の分数 #2 (4 mL) です。</li>
	<li>磁気分離装置から LS 列を削除し、CD34 を収集するためにシリンジのプランジャーで着実に、しっかりと SB. フラッシュ セルの 2 mL を追加+細胞画分。トリパン ブルー染色、検定または自動化された細胞カウンターを使用してセルをカウントします。</li>
	<li>4 ° C で 15 分間 400 × g で肯定的な分画遠心分離機管上清を捨てます。Cd34 陽性の血清自由な媒体の細胞を再懸濁します+細胞 (SFM、材料表を参照してください)。 注: すぐに必要でなければ、セルを固定できる液体窒素でこの段階で。</li>
</ol>
2. 純度チェック分離 cd34 陽性細胞の+
<ol>
	<li>2 x 104 10 μ L 抗 CD34 PE 抗体と 4 ° C (アイソタイプ コントロールのために個別のチューブ使用) で 15 分の 20 μ L 抗 CD45 PerCP 抗体陽性分画細胞を染色 (図 1 b)。</li>
	<li>洗浄する SB の 1 mL を追加します。400 × g で 10 分間の遠心分離機の SB の 200 μ L にペレットを再懸濁します。</li>
	<li>フローサイトメトリーによる解析を行い、ゲートの残骸 (図 1 b) を除外する生きているセルの人口。PE、PerCP アイソタイプ コントロール (図 1 b) を使って PE、PerCP の肯定的な人口のためにゲートを設定および cd34 陽性の割合を決定する+/CD45+細胞。</li>
</ol>
3. 巨核球分化
<ol>
	<li>シード 5 × 105セル/mL cd34 陽性細胞 12 ウェル プレートのウェルあたり 50 ng/mL の組換え人間トロンボポエチン (rhTPO) を添加した SFM の 2 mL の+ 。37 ° c、5% CO2加湿雰囲気の中で細胞を孵化させなさい。分析のために必要である前に、細胞が合流、セルを収穫し、新鮮なメディアと rhTPO の複数の井戸に分割します。 注: 2 つまたは 3 つの井戸は、異なる時点 (例えば7、9、および 10 日間) で分化を監視するために特に準備されるべき。</li>
	<li>他の井戸のセルを妨げないで分化を監視するために脇の井戸から細胞を採取します。</li>
	<li>20 μ L 抗アスピリン/CD41 FITC 抗体で染色細胞と 100 μ L の最終巻で 10 μ L 抗 GPIX/CD42a Alexa Fluor 647 抗体コントロール設定はそれぞれアイソタイプ コントロール抗体を用いた管します。4 ° C で 15-30 分間インキュベートします。</li>
	<li>洗浄する SB の 1 mL を追加します。</li></ol>400 × g で 10 分間破棄上澄みで遠心し、フローサイトメトリーによる SB. 分析の 200-300 μ L でペレットを再懸濁します。
	<li>各 fluorophore の FITC と Alexa 小麦粉 647 の肯定的な人口のためのゲートを設定するアイソタイプ コントロールを分析します。CD41 の割合を判断する染色細胞サンプルの分析+/CD42a+ダブル陽性細胞、成熟した MK (図 1) を表わす。</li>
	<li>可視化セルの表面マーカーは、3.3 で説明したように細胞を染色します。<ol>
		<li>洗浄する SB の 1 mL を追加します。400 × g で 10 分間遠心分離が 100 でペレットを再懸濁します SB と 30 s. 空気乾燥、メタノールで浸ることによってスライドの 5 分修正セル 1,000 x g でスライド ガラス上にスピンの μ L を追加 DAPI を含むメディアのマウントの 20 μ L (材料の表を参照)、、coverslip でカバーし、蛍光顕微鏡 (図 2 a) を使って視覚化。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>細胞内抗原の可視化は、PBS のセルを再懸濁します、室温で 15 分間パラホルムアルデヒド (最終濃度が 1%) で修正します。セルを permeabilize トリトン X100 (0.1%) を追加し、PBS/0.1% トリトン X100 2 mL を 15 分洗浄セル間インキュベートします。PBS/0.1% トリトン X 100 の 100 μ L で再懸濁します抗 vWf や抗 CD62p 抗体 (希釈 1: 200) 追加して、室温で 30 分間インキュベートします。<ol>
		<li>2 mL PBS/0.1% トリトン X100 で洗って 10 分 400 × g で遠心分離機、同じバッファーの 100 μ L で再懸濁し、抗マウス IgG Alexa 594 と抗うさぎ IgG アレクサ 488 (1: 100) を追加します。室温で 30 分間インキュベート、2 mL PBS/0.1% トリトン X100 で洗って、同じバッファーの 100 μ L で再懸濁します、CD42b APC アンチの 20 μ L を追加します。3.6.1 の手順で説明するようにスライド ガラスに細胞をスピンし、3.6.1 の手順で説明するよう、顕微鏡可視化のサンプルを準備します。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>倍数性決定のため日 12 または 13 分化細胞を収穫します。洗浄する SB の 1 mL を追加します。10 分の 100 μ L の最終巻に 20 μ L 抗アスピリン/CD41 FITC 抗体染色 400 × g で遠心 4 の ° c で 30 分間加温。<ol>
		<li>SB の 1 mL で 1 回洗浄し、低張性クエン酸バッファー (1.25 mM クエン酸ナトリウム、塩化ナトリウム 2.5 mM、3.5 mM ブドウ糖) 含む 20 μ g/ml propidium ヨウ化物及び 0.05% の 300 μ L でペレットを再懸濁しますトリトン X 100。光から保護 4 ° C で 15 分間インキュベートします。</li>
		<li>最終濃度 20 μ G/ml に RNase を追加し、光から保護 4 ° C で 30 分間インキュベートします。CD41 FITC+の人口 (図 2) の 30,000 に 50,000 イベントを収集して、フローサイトメトリーによる propidium ヨウ化物の強度を決定します。</li>
	</ol>
	</li>

4. proplatelet カウント、血小板の列挙、および血小板の活性化
<ol>
	<li>1 × 104細胞/ウェル 50 ng/mL rhTPO を添加した新鮮な SFM の 200 μ L で 48 ウェル プレートでの日 8 または 9 の分化と種 (ステップ 3.1) から細胞を採取します。37 ° C、5% で 5 日間文化 CO2. 注: 定量用、種子は 3 通の井戸します。この低密度は可視化に必要な文化の 2 日後に表示される proplatelet 担 MK. Proplatelets 通常のカウント開始。ピークは、4 日から 5 日間です。</li>
	<li>10 X、20 X 目標を用いた倒立顕微鏡上全体の井戸の proplatelet ベアリング MK の数をカウントします。 注: 温水 (37 ° C) 顕微鏡のステージは、proplatelet 拡張子の収縮を引き起こす長時間室温で細胞を維持するので望ましい。Proplatelets は、MK の体から長い拡張子として観察されます。各 MK proplatelet いくつかの突起があります。Proplatelets を開発し、MK の本体サイズが小さくなります。</li>
	<li>細胞を収穫し、室温で 10 分間 400 × g で遠心分離機します。3.3 と 3.4 の手順で説明するように 20 μ L 抗ひと CD41 FITC 抗体で細胞を染色します。Proplatelet ベアリング MK (pbMK) のパーセンテージを計算: pbMK (%) = [(Proplatelet ベアリング MKs よく/)/(総 CD41+細胞/ウェル)] x 100</li>
	<li>培養液中に放出される血小板をカウントするには、優しくパスツール ピペットで細胞をミックスし、14 または 15 文化の日で 100 μ L を収集します。<ol>
		<li>4 ° C で 20-30 分の 20 μ L 抗ひと CD41 FITC 抗体で染色します。それぞれのアイソタイプ コントロール抗体を用いた制御管を設定します。</li>
		<li>SB の 150 μ L とビーズを数えるの 50 μ L を追加します。</li>
		<li>フローサイトメトリーによる解析、FSC と SSC を対数スケールを設定します。血小板豊富な血しょうから使用通常ひと血小板は、セクション 4.4.1 血小板 (図 3 a) のゲートを設定するの説明に従って CD41 FITC と汚れます。</li>
		<li>フローサイトメトリーによるビーズを数えるとステンド グラスの血小板を分析します。SSC 散布図 (図 3 a) と FSC を用いたビーズを数える 1,000 イベントを収集します。CD41 FITC ポジティブなイベント (図 3 b) 数式を使用してに基づく血小板の数を計算します。 Μ L あたり血小板 = [(CD41 FITC 肯定的なイベントの番号)/1,000 beads)] x [(number of beads in 50 µL)/ボリュームのサンプル)]</li>
	</ol>
	</li>
	<li>血小板の活性化を分析するには、優しくパスツール ピペットで細胞をミックスし、14 または 15 文化の日で 100 μ L を収集します。細胞のペレットに 5 分間、200 x g でタイロード バッファー (137 mM NaCl、2.7 mM KCl、1 mM MgCl2、1.8 mM CaCl2、 0.2 mM Na2HPO4、12 mM NaHCO3、5.5 mM D-グルコース、pH 6.5) および遠心分離機の 1 mL を追加します。<ol>
		<li>血小板サイズの粒子をペレットに 10 分間、800 × g で遠心、上清を収集します。</li>
		<li>上澄みを廃棄し、タイロード バッファーの 100 μ L で再懸濁します。PAC1 FITC 抗体とアデノシン二リン酸 (ADP) の 20 μ L を加える最終濃度 20 μ M の FITC 肯定的なイベントの割合を決定するため 20 分分析フローサイトメトリーによる部屋の温度で加温。肯定的な制御 (図 3) と同じように扱われる新鮮なひと血小板を使用します。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Nakeff, A., Maat, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+megakaryocytes+from+mouse+bone+marrow+by+velocity+sedimentation%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Separation of megakaryocytes from mouse bone marrow by velocity sedimentation.</a> Blood. 43 (4), 591-595 (1974).</li>
<li>Zeigler, F. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+megakaryocytopoietic+and+thrombopoietic+activity+of+c-mpl+ligand+%28TPO%29+on+purified+murine+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">In vitro megakaryocytopoietic and thrombopoietic activity of c-mpl ligand (TPO) on purified murine hematopoietic stem cells.</a> Blood. 84 (12), 4045-4052 (1994).</li>
<li>Reems, J. -A., Pineault, N., Sun, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Vitro+Megakaryocyte+Production+and+Platelet+Biogenesis%3A+State+of+the+Art%5BTitle%5D)+AND+%22Transfus.+Med.+Rev%22%5BJournal%5D)">In Vitro Megakaryocyte Production and Platelet Biogenesis: State of the Art.</a> Transfus. Med. Rev. 24 (1), 33-43 (2010).</li>
<li>Choi, E., Nichol, J. L., Hokom, M. M., Hornkohl, A. C., Hunt, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Platelets+generated+in+vitro+from+proplatelet-displaying+human+megakaryocytes+are+functional%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Platelets generated in vitro from proplatelet-displaying human megakaryocytes are functional.</a> Blood. 85 (2), 402-413 (1995).</li>
<li>Perdomo, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+monopartite+sequence+is+essential+for+p45+NF-E2+nuclear+translocation%2C+transcriptional+activity+and+platelet+production%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thromb+Haemost%22%5BJournal%5D)">A monopartite sequence is essential for p45 NF-E2 nuclear translocation, transcriptional activity and platelet production.</a> J Thromb Haemost. 8 (11), 2542-2553 (2010).</li>
<li>Shim, M. H., Hoover, A., Blake, N., Drachman, J. G., Reems, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+profile+of+primary+human+CD34%2BCD38lo+cells+differentiating+along+the+megakaryocyte+lineage%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Hematol%22%5BJournal%5D)">Gene expression profile of primary human CD34+CD38lo cells differentiating along the megakaryocyte lineage.</a> Exp Hematol. 32 (7), 638-648 (2004).</li>
<li>Feng, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scalable+generation+of+universal+platelets+from+human+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cell+reports%22%5BJournal%5D)">Scalable generation of universal platelets from human induced pluripotent stem cells.</a> Stem cell reports. 3 (5), 817-831 (2014).</li>
<li>Bruno, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+and+in+vivo+megakaryocyte+differentiation+of+fresh+and+ex-vivo+expanded+cord+blood+cells%3A+rapid+and+transient+megakaryocyte+reconstitution%5BTitle%5D)+AND+%22Haematologica%22%5BJournal%5D)">In vitro and in vivo megakaryocyte differentiation of fresh and ex-vivo expanded cord blood cells: rapid and transient megakaryocyte reconstitution.</a> Haematologica. 88 (4), 379-387 (2003).</li>
<li>Iraqi, M., Perdomo, J., Yan, F., Choi, P. Y. I., Chong, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immune+thrombocytopenia%3A+antiplatelet+autoantibodies+inhibit+proplatelet+formation+by+megakaryocytes+and+impair+platelet+production+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Haematologica%22%5BJournal%5D)">Immune thrombocytopenia: antiplatelet autoantibodies inhibit proplatelet formation by megakaryocytes and impair platelet production in vitro.</a> Haematologica. 100 (5), 623-632 (2015).</li>
<li>Lev, P. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+proplatelet+formation+in+immune+thrombocytopenia%3A+a+novel+mechanism+contributing+to+decreased+platelet+count%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Haematol%22%5BJournal%5D)">Impaired proplatelet formation in immune thrombocytopenia: a novel mechanism contributing to decreased platelet count.</a> Br. J. Haematol. 165 (6), 854-864 (2014).</li>
<li>Gandhi, M. J., Drachman, J. G., Reems, J. A., Thorning, D., Lannutti, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+strategy+for+generating+platelet-like+fragments+from+megakaryocytic+cell+lines+and+human+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood+Cells+Mol.+Dis%22%5BJournal%5D)">A novel strategy for generating platelet-like fragments from megakaryocytic cell lines and human progenitor cells.</a> Blood Cells Mol. Dis. 35 (1), 70-73 (2005).</li>
<li>Lu, S. -J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Platelets+generated+from+human+embryonic+stem+cells+are+functional+in+vitro+and+in+the+microcirculation+of+living+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Platelets generated from human embryonic stem cells are functional in vitro and in the microcirculation of living mice.</a> Cell Res. 21 (3), 530-545 (2011).</li>
<li>Moreau, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+production+of+megakaryocytes+from+human+pluripotent+stem+cells+by+chemically+defined+forward+programming%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Commun%22%5BJournal%5D)">Large-scale production of megakaryocytes from human pluripotent stem cells by chemically defined forward programming.</a> Nature Commun. 7, 11208(2016).</li>
<li>De Bruyn, C., Delforge, A., Martiat, P., Bron, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+expansion+of+megakaryocyte+progenitor+cells%3A+cord+blood+versus+mobilized+peripheral+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Ex vivo expansion of megakaryocyte progenitor cells: cord blood versus mobilized peripheral blood.</a> Stem Cells Dev. 14 (4), 415-424 (2005).</li>
<li>Nimgaonkar, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+unique+population+of+CD34%2B+cells+in+cord+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cells%22%5BJournal%5D)">A unique population of CD34+ cells in cord blood.</a> Stem cells. 13 (2), Dayton, Ohio. 158-166 (1995).</li>
<li>Italiano, J. E., Patel-Hett, S., Hartwig, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanics+of+proplatelet+elaboration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thromb+Haemost%22%5BJournal%5D)">Mechanics of proplatelet elaboration.</a> J Thromb Haemost. 5, Suppl 1. 18-23 (2007).</li>
<li>Matsunaga, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+large-scale+generation+of+human+platelets+from+cord+blood+CD34%2B+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cells%22%5BJournal%5D)">Ex vivo large-scale generation of human platelets from cord blood CD34+ cells.</a> Stem cells. 24 (12), Dayton, Ohio. 2877-2887 (2006).</li>
<li>Sullenbarger, B., Bahng, J. H., Gruner, R., Kotov, N., Lasky, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prolonged+continuous+in+vitro+human+platelet+production+using+three-dimensional+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Hematol%22%5BJournal%5D)">Prolonged continuous in vitro human platelet production using three-dimensional scaffolds.</a> Exp Hematol. 37 (1), 101-110 (2009).</li>
<li>Proulx, C., Boyer, L., Hurnanen, D. R., Lemieux, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preferential+ex+vivo+expansion+of+megakaryocytes+from+human+cord+blood+CD34%2B-enriched+cells+in+the+presence+of+thrombopoietin+and+limiting+amounts+of+stem+cell+factor+and+Flt-3+ligand%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Hematother.+Stem+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Preferential ex vivo expansion of megakaryocytes from human cord blood CD34+-enriched cells in the presence of thrombopoietin and limiting amounts of stem cell factor and Flt-3 ligand.</a> J. Hematother. Stem Cell Res. 12 (2), 179-188 (2003).</li>
<li>Bornstein, R., Garcia-Vela, J., Gilsanz, F., Auray, C., Cales, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cord+blood+megakaryocytes+do+not+complete+maturation%2C+as+indicated+by+impaired+establishment+of+endomitosis+and+low+expression+of+G1%2FS+cyclins+upon+thrombopoietin-induced+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Haematol%22%5BJournal%5D)">Cord blood megakaryocytes do not complete maturation, as indicated by impaired establishment of endomitosis and low expression of G1/S cyclins upon thrombopoietin-induced differentiation.</a> Br. J. Haematol. 114 (2), 458-465 (2001).</li>
<li>Chong, B. H., Choi, P. Y. I., Khachigian, L., Perdomo, J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23714310">Drug-induced Immune Thrombocytopenia.</a> Hematol Oncol Clin North Am. 27 (3), (2013).</li>
<li>Stasi, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Idiopathic+thrombocytopenic+purpura%3A+Current+concepts+in+pathophysiology+and+management%5BTitle%5D)+AND+%22Thromb+Haemost%22%5BJournal%5D)">Idiopathic thrombocytopenic purpura: Current concepts in pathophysiology and management.</a> Thromb Haemost. 99 (1), 4-13 (2008).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

ここで説明されているプロトコルは、MK と臍帯血から文化における血小板の一貫生産に適しています。これらの細胞は、MK 増殖、分化、proplatelet の形成と血小板の生産に及ぼす薬や生物学的活動など様々 なプロセスを研究に使用できます。
文化メディアとサイトカインの組み合わせの様々 な文献で紹介されています。また幹細胞因子、フェルマーの最終定理 3 配位子、IL-3、IL-6 サポート CD34 などサイトカインの+は細胞増殖です。しかし、この拡張は文化14の減らされた MK 純度の結果します。無血清メディアとだけでも、rhTPO を使用して、ここで提示法前駆細胞の大幅な拡大はできませんが unilineage 巨核球の増殖と分化、MK の一貫生産が可能 (90-99 %cd41+CD42a+二重陽性細胞) 他の血統からの汚染なし。MK の形成のための培養時間は 10 ~ 12 日間質をサポートまたはフィーダー細胞を必要とせずです。これはより大きい文化期間 (20 ...

通常研究室用プライマリ ヒト巨核球 (MK) の十分な数の分離は不可能です、骨髄での低周波による有核細胞1の ~0.01% のアカウントは、彼ら。便利な代替手段は、拡張前のヴィヴォと造血幹・前駆細胞の特定の成長因子の存在下で分化です。巨核芽球の文化の最も効果的な成長および分化因子は、MKs。 トロンボポエチン (TPO) を生産する培養システムの採用 (SCF; c キット リガンド) 幹細胞因子とインターロイキン (IL)-3 IL 11 などサイトカインの数がされています。単独で、または SCF と IL 32などの他のサイトカインが有効であります。TPO は、増殖と MKs2の成熟の両方で発生する幹細胞集団を操作できます。
1000 までは毎日 150-400 x 109/L. 血小板生産の in vitroの血小板数を維持するために形成された proplatelets と呼ばれる細胞質突起から MK プロデュース血小板や、生体内で約 1 × 10 の11の血小板が-これは CD34 を使用して多数の培養条件に上昇を与えているし体内の見積もり3より低いフォールド+を改善する MK と血小板生産体外造血前駆細胞。CD34 の初期ソース+ MK 分化用細胞は、ひと末梢血4だった。骨髄5,6、胚性幹細胞/誘導多能性幹細胞 (ESC/iPSC)7臍帯血 (UCB)8,9,10 などの他の細胞の源.ひと骨髄 CD34+ 11とマウス系統負, 骨髄細胞5生産 MK と血小板体外;人間の骨髄の可用性の欠如が CD34 のソースとしての使用を制限するそれにもかかわらず、+のセル。対照的に、ESC と iPSCの in vitro血小板の生産のための細胞の無制限のソースを表します。これらの細胞からの血小板の生産には、フィーダー細胞マウス OP9 細胞長期培養などが必要です。フィーダー無料条件で派生した血小板は、少ない機能12のように見えます。iPSC 由来血小板が大規模に拡張することができますので、臨床の現場で使用する可能性があります。このプロセスには、転写因子と長期的な細胞文化13レンチウイルスベクターを介した情報伝達が必要です。
UCB は CD34 のアクセス ソース+で容易に使用することができます細胞研究設定。TPO だけではコードの分化を促進することができます血由来 CD34+の血清添加またはフィーダー細胞との共培養を必要とせず非常に純粋な成熟した MKs を生じさせる細胞とこれ。他のサイトカイン SCF UCB CD34 から分化が低下するなど、+細胞、フェルマーの最終定理 3 配位子と IL-11 未熟な巨核球14の生産を推進中。このプロトコルは非常に純粋な臍帯血 CD34 から MK 文化+の生産を記述する無血清条件下で細胞。

<table><tbody><tr><td>細胞培養試薬</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>組換えヒトTPO</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-094-013</td><td></td></tr><tr><td>StemSpan SFEM II</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>9605</td><td>CD34 +細胞用無血清培地</td></tr><tr><td>名前</td><td>Company</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>strongCD34 単離試薬</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CD34 MicroBeadキット 超高純度</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-100-453</td><td>このキットには、FcRヒトIgGブロッキング試薬とCD34マイクロビーズが含まれています。これらのビーズには、抗CD34抗体クローンQBEND/10が含まれています。純度チェックには、別の抗CD34クローン(クローン8G12など)を使用します。</td></tr><tr><td>Lymphoprep</td><td>Alere Technologies</td><td>1114545</td><td>リンパ球分離培地 (密度 1.077 g/mL)</td></tr><tr><td>滅菌分離バッファー (SB)</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-091-221</td><td>このバッファーには、0.5% ウシ血清アルブミンと 2 mM EDTA を含むリン酸緩衝生理食塩水 (PBS)、pH 7.2 が含まれています。無菌の細胞培養グレードのコンポーネントを使用して調製できます。気泡がカラムを塞ぐ可能性があるため、使用前にガスを抜いてください。</td></tr><tr><td>名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>Flow Cytometry and Cell Staining Reagents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PE Mouse anti-Human CD34</td><td>BD Biosciences</td><td>340669</td><td>Clone 8G12.CD34の純度チェックにお使いいただけます。最終抗体濃度1:10希釈。</td></tr><tr><td>PerCPマウス抗ヒトCD45</td><td>BD Biosciences</td><td>347464</td><td>1:10</td></tr>希釈 <tr><td>PerCPアイソタイプコントロール</td><td>BD Biosciences</td><td>349044</td><td>1:10</td></tr>希釈 <tr><td>FITC マウス抗ヒトCD41a</td><td>BD Biosciences</td><td>340929</td><td>最終抗体濃度1:5希釈。</td></tr><tr><td>APCマウス抗ヒトCD42b</td><td>BDバイオサイエンス</td><td>551061</td><td>この抗体は、成熟MK(通常、抗CD42aよりも低い陽性細胞の割合)を検出するためにも使用できます。最終抗体濃度1:10希釈。</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647 マウス 抗ヒト CD42a</td><td>AbD セロテック</td><td>MCA1227A647T</td><td>現在、バイオ・ラッドが販売しています。最終抗体濃度1:10希釈。</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647 Mouse Negative Control</td><td>AbD Serotec</td><td>MCA928A647</td><td>現在、バイオ・ラッドから販売されています。アイソタイプコントロール抗体</td></tr><tr><td>アンチフォンヴィレブランド因子ウサギポリクローナル</td><td>アブカム</td><td>AB6994</td><td>1:200</td></tr>希釈 <tr><td>V450マウス 抗ハムナ CD41a</td><td>BD バイオサイエンス</td><td>58425</td><td>1:20</td></tr>希釈 <tr><td>V450アイソタイプコントロール</td><td>BDバイオサイエンス580373</td><td></td><td>1:20</td></tr>希釈 <tr><td>PAC1-FITC 抗体</td><td>BDバイオサイエンス340507</td><td></td><td>1:10</td></tr>希釈 <tr><td>抗CD62pマウスモノクローナル</td><td>Abcam</td><td>AB6632</td><td>1:200 希釈</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 ヤギ抗ウサギ IgG</td><td>Invitrogen</td><td>A11008</td><td>1:100 希釈</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 ヤギ抗マウス IgG</td><td>Invitrogen</td><td>A11020</td><td>1:100 希釈</td></tr><tr><td>Ig アイソタイプコントロール カクテル-C</td><td>BD Biosciences</td><td>558659</td><td>アイソタイプコントロール抗体</td></tr><tr><td>ヨウ化プロピジウム</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P4864</td><td></td></tr><tr><td>CountBright Absolute Counting Beads</td><td>Molecular Probes, Invitrogen</td><td>C36950</td><td>カウンティングビーズ</td></tr><tr><td>名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>材料</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>LSカラム</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-401</td><td>小型および大型のカラムも市販されています</td></tr><tr><td>MidiMACSセパレーターマグネット</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-302</td><td></td></tr><tr><td>MACS MultiStand</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-303</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 5mL丸底ポリプロピレンFACSチューブ、スナップキャップ付き、滅菌</td><td>In Vitro技術</td><td>352063</td><td></td></tr><tr><td>スライドガラス</td><td>Menzel-Glaser</td><td>J3800AMNZ</td><td></td></tr><tr><td>封入剤 DAPI</td><td>付き Vector Laboratories</td><td>H-1200</td> 色<td>あせ防止封入剤 DAPI</td></tr><tr><td>名前</td><td>会社名</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>strong<>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>倒立顕微鏡</td><td>ライカ</td><td>DMIRB 倒立顕微鏡</td><td></td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡</td><td>ツァイス</td><td>Vert.A1</td><td></td></tr><tr><td>細胞分析装置</td><td>BD バイオサイエンス</td><td>FACS Canto II</td><td></td></tr><tr><td>サイトスピン遠心分離機</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td>サイトスピン 4</td><td></td></tr><tr><td>名称</td><td>会社名</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>ソフトウェア細胞</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>分析ソフトウェア</td><td>BD Biosciences</td><td>FACS Diva ソフトウェア</td><td></td></tr><tr><td>シングルセル解析ソフトウェア</td><td>Tree Star</td><td>FlowJo</td><td></td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡ソフトウェア</td><td>Zeiss</td><td>Zen 2 blue edition</td><td></td></tr></tbody></table>

巨核球分化および人間の血小板形成臍帯血由来 cd34 陽性細胞の+

Megakaryocyte Differentiation and Platelet Formation from Human Cord Blood-derived CD34+ Cells

血小板は、骨髄血小板と呼ばれるプロセスで主に発生します。血小板産生、中に造血前駆細胞は巨核球は、proplatelets と呼ばれる長い細胞質プロセスから血小板を解放する区別する末期と呼ばれるフォーム血小板前駆細胞に区別します。巨核球は骨髄に閉じ込められた珍しいセルであり、実験室の使用のための十分な数字で収穫することは困難であるため。ヒト巨核球を効率的に生産することができます達成体外CD34 を養殖+の適した条件下のセルします。ここで詳細なプロトコル CD34 の分離を記述する臍帯血液サンプルから磁気セルソーターによる細胞の+ 。無血清条件下で非常に純粋な成熟した巨核球の生成に必要な手順を示します。巨核球分化の表現型解析および proplatelet の形成と血小板の生産の決定の詳細もあります。巨核球分化および/または抗血小板抗体などトロンボポエチン ヒューマンミメティック最前線の proplatelet の形成に影響を与えるエフェクターは、生物学的機能を調べるための培養細胞に追加できます。

このプロトコルにより、コードから高純度の MK 文化準備血由来 CD34+細胞。CD34 の割合+細胞コード血は約 1.315 (図 1 a)、10 x 90-300 から単核細胞 (ステップ 1.8) 範囲の総数 UCB 単位6 。CD34 の純度 + CD45 陽性細胞分離範囲は 90 から 99% (図 1 b) 後。MK (CD41 として定義されている+細胞) 無血清 CD34 の早い段階で観察される+細胞 rhTPO の存在下で培養します。7 日の割合成熟 MK (CD41+と CD42a+細胞) は通常 30-40% (図 1)。最高レベルの CD41+と CD...

巨核球の人口は非常に純粋なコードから得られる血由来 CD34+細胞。CD34 のメソッド+細胞分離と巨核球分化をここで説明します。

Platelet production occurs principally in the bone marrow in a process known as thrombopoiesis. During thrombopoiesis, hematopoietic progenitor cells ...

この手順の全体的な目標は、ヒト臍帯血サンプルを使用して純粋なCD34陽性細胞を分離し、巨核球の分化、プロプレートレット形成、および血小板産生に対する特定の薬物の影響を研究することです。この方法は、巨核球の分化や血小板の産生と機能に対する特定の処理の影響など、巨核球および血小板の分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、新鮮な臍帯血から生存可能なCD34陽性細胞を一貫して単離する方法を提供することです。この方法により、巨核球生成に関する洞察を得ることができ、リンパ球、赤血球、マクロファージなどの他の細胞タイプも研究することができます。まず、臍帯血10ミリリットルあたり150ミリリットルの円錐管に10ミリリットルの分離バッファーを追加します。10ミリリットルの注射器に取り付けられた18ゲージの鈍い針を使用して、各チューブに10ミリリットルの血液を移し、続いて各チューブの底に15ミリリットルのリンパ球分離培地を追加します。密度勾配遠心分離によって細胞を分離し、スピンの終了時に、バフィーコート層を含む5〜10ミリリットルの単核細胞をサンプルごとに1つの新しいチューブに慎重に収集します。各チューブ内の総容量を最大50ミリリットルまで増やし、新鮮な分離バッファーを使用して細胞を再度遠心分離します。ペレットを5〜10ミリリットルの新鮮な分離バッファーに再懸濁し、細胞サンプルをプールします。カウント用の新鮮な分離バッファーを使用して容量を50ミリリットルに調整し、フローサイトメトリーによるCD34陽性細胞の割合を決定するために100マイクロリットルの細胞を確保します。細胞を再度遠心分離し、ペレットを分離バッファー300マイクロリットル、FC受容体ヒトIgGブロッキング試薬100マイクロリットル、およびCD34磁気ビーズ100マイクロリットルに10×10〜8番目の細胞に再懸濁します。細胞を穏やかに混合してから、摂氏4度で30〜40分間インキュベーションします。インキュベーション中に、適切なサイズの磁気ビーズ分離カラムを対応する磁気ホルダーに入れ、3ミリリットルの分離バッファーでカラムを洗浄します。インキュベーションの終了時に、5〜10ミリリットルの分離バッファーで遠心分離して未結合ビーズを除去し、マグネティックビーズと細胞ペレットを1.5ミリリットルの新鮮な分離バッファーに再懸濁します。標識細胞をカラムにロードし、標識されていない流れを15ミリリットルの収集チューブに回収します。廃液をカラムに戻し、2回目のフロースルーを同じ収集チューブに収集します。次に、カラムを3ミリリットルの分離バッファーで3回洗浄し、カラムを磁石から取り外します。カラムプランジャーを使用して、2ミリリットルの分離バッファーをカラムを通して新しい15ミリリットルのチューブに徐々に洗い流し、カラムを磁石に戻します。フラッシュされたセルをカラムに戻します。流れを回収し、先ほど示したように 2 ミリリットルの分離バッファーでカラムを洗浄します。カラムを磁石から取り外した後、2ミリリットルの新鮮な分離バッファーでカラムをフラッシュして、先ほど示したようにCD34陽性細胞画分を回収し、遠心分離によりCD34陽性細胞を回収します。次に、ペレットをCD34陽性細胞の無血清培地に再懸濁します。巨核球の分化のために、2ミリリットルの無血清培地に1ミリリットルあたり5 x 10から5番目のCD34陽性細胞を播種し、12ウェルプレートに1ウェルあたり組換えヒトトロンボポエチンを補充して、摂氏37度でインキュベートし、加湿雰囲気で5%二酸化炭素をインキュベートします。適切な分化モニタリングの時点で、他のウェルの細胞を乱すことなく、タイムポイントごとに2〜3ウェルの細胞を回収し、収集した細胞を抗CD41抗体および抗CD42a抗体で染色して、培養物中の成熟巨核球の割合を決定します。細胞表面マーカーを顕微鏡で可視化するには、回収した細胞を1ミリリットルの分離バッファーで洗浄し、ペレットを100マイクロリットルのフレッシュバッファーに再懸濁します。サイトスピンを使用してスライドガラス上に細胞を播種し、メタノールに30秒間浸漬して細胞をスライドに固定します。風乾後、20マイクロリットルのDAPI添加封入剤で細胞を標識し、蛍光顕微鏡で可視化するために細胞をカバースリップで覆います。プロプレートレットをカウントするには、分化の8日目または9日目に細胞を採取し、採取した細胞を新鮮な無血清培地の200マイクロリットルあたり1 x 10〜4番目の細胞に播種し、48ウェルプレートにウェルあたり組換えヒトトロンボポエチンを補充します。摂氏37度、二酸化炭素5%で5日間過ごした後、倒立型光学顕微鏡でウェルあたりのプロプレート担持巨核球の数を、10倍または20倍の対物レンズを使用して数えます。血小板の活性化を分析するには、培養の14日目または15日目に、パスツールピペットで細胞を穏やかに混合し、100マイクロリットルの細胞を回収します。1ミリリットルのTyrodeの緩衝液を細胞に加え、遠心分離によりペレット化します。遠心分離用の上清を収集して血小板サイズの粒子をペレット化し、粒子を100マイクロリットルの新鮮なチロード緩衝液に再懸濁し、粒子を抗PAK1抗体で標識し、アデノシン二リン酸で室温で20分間活性化し、フローサイトメトリーによるPAK1陽性イベントの割合を分析します。臍帯血中のCD34陽性細胞の典型的な割合は約1.3%であり、単離後のCD34陽性CD45陽性細胞の純度は90〜99%の範囲であり、CD41陽性巨核球は無血清CD34陽性細胞培養の早い段階で観察され、成熟CD41陽性CD42a陽性巨核球の割合は7日目までに30〜40%に達し、分化の10日目から12日目の間に観察されるダブル陽性細胞の最高レベルが観察されます。培養された巨核球は、CD42bフォンヴィレブランド因子と細胞質中のP-セレクチンを発現する大きな、通常は多核細胞として現れます。これらの細胞培養では、少なくとも3種類の倍数性も一般的に観察されます。プロプレートレット、巨核球体から伸びる長いビーズ繊維を有する巨核球の割合は、典型的には約1.3%であり、細胞培養上清中のほとんどの血小板は末梢血小板の分析ゲート内に収まり、CD41血小板マーカーに対して陽性であり、アデノシン二リン酸のような血小板アゴニストによって活性化され得る、活性化特異的PAK1モノクローナル抗体の結合の増加によって示されるように。このビデオを見れば、臍帯血からCD34陽性細胞を単離する方法を十分に理解することができます。また、巨核球分化培養の設定、プロプレートレットのカウント、in vitroで産生された血小板と巨核球の分析も行うことができます。人間のサンプルを扱う作業は危険な場合があり、この手順を実行する際には、クラスIIの生物学的安全キャビネットで作業するなどの予防措置を常に講じる必要があることを忘れないでください。

megakaryocyte-differentiation-platelet-formation-from-human-cord

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

このビデオでは、巨核球の分化と血小板の形成の技術を示しています。造血幹細胞(ヒト臍帯血から単離)は、トロンボポエチンの存在下で成熟した巨核球に分化します。成熟した巨核球は、プロプレートレットと呼ばれる細胞質の伸長を産生し、個々の血小板を生じさせます。...

巨核球と血小板形成の分化のためのIn Vitro法

ここで、提示ひと多能性幹細胞 (hPSC) 培養のプロトコル、CD34 に hPSCs を区別するために使用される+造血前駆細胞。このメソッドは、排他的に決定的なまたは原始的な造血プログラムのいずれかのセルを指定するカノニカル WNT...

ひと多能性幹細胞からプリミティブかつ決定的な造血前駆細胞の分化を監督

ここでは、4つの骨髄系統に対する臍帯血由来CD34+造血幹細胞および前駆細胞の免疫発食特性特性およびサイトカイン誘導分化のためのプロトコルを提示する。このプロトコルの応用には、CD34+細胞の骨髄性分化に対する骨髄疾患変異または小分子の影響に関する調査が含まれる。...

ヒト臍帯血由来CD34+造血幹細胞および前駆細胞のパンミエロイド分化

この方法は、マウス大腿骨、脛骨、および骨盤骨からのMEPおよびMKpのフローサイトメトリーによる精製を記述する。...

マウスメガ核球前駆細胞の分離

このプロトコルは、ロイコフィルター由来CD34+造血前駆物質の取得に関与するすべてのステップと、培養培地中の血小板を放出することができる原血小板を持つ巨核球への それらの体外...

巨核球分化と血小板形成を研究する細胞源としての白血病の枯渇フィルター由来CD34+細胞

ここでは、巨核球分化の特徴付けに関する免疫型付け戦略を紹介し、その戦略が蛍光活性化細胞選別機を用いて異なる段階で巨核球を選別する方法を示す。この方法論はヒトの一次組織に適用できるが、...

ヒトの一次源または造血前駆体からの分化 インビトロ からのヒトMKの免疫フェノタイピングと細胞選別

赤血球生成のモデリングは、このプロセスにおけるアクターの生物学的意義を理解し、分化欠陥を緩和する可能性のある新しい治療アプローチを評価する貴重な機会を提供します。ここでは、ex...

ヒト赤血球生成の効率をin vitroおよびex vivoで評価するための包括的なパイプライン

我々は、単一のヒトの血液ドナーからの規制は、メモリとナイーブT細胞を生成する方法を説明します。偏Tregsのは、その後もここで詳述抑制アッセイを含む遺伝的均一性を持つ遺伝子や機能のさまざまなアプリケーション内の他のサブセットと比較することができます。...

初代ヒトナイーブおよびメモリーT細胞から誘導した調節性T細胞の生成

CD19特異的キメラ抗原受容体（CAR）を発現するT細胞は、私たちのファースト·イン·ヒトの遺伝子治療の臨床試験におけるB細胞悪性腫瘍の治験治療として注入される。我々は、使用して、T細胞の遺伝子改変を記述...

の臨床応用<em&gt;眠れる森の美女</em遺伝的に末梢及び臍帯血由来のT細胞を変更する&gt;と人工抗原提示細胞

ここでは、血管の炎症や生きたマウスにおける血栓形成の間に活性化内皮上の異血小板、好中球の相互作用を可視化する蛍光生体顕微鏡の実験手法を報告する。この顕微鏡技術は、血管疾患の分子メカニズムを研究することが、病態生理学的な条件下での薬理学的薬剤をテストするためにも役立ちます。...

生きたマウスにおける血管炎症及び血栓形成の間に活性化内皮上に異型血小板、好中球の相互作用のリアルタイムイメージング

学ぶ ヒト臍帯血からCD34陽性細胞を分離し、巨核球分化と血小板形成を研究する方法。密度勾配遠心と磁気ビーズ分離を用いて高純度の細胞を得られ、造血幹細胞の血小板産生メカニズム解明に貢献します。

巨核球分化および人間の血小板形成臍帯血由来 cd34 陽性細胞の⁺

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