2018年1月30日
ウランは、骨代謝に影響を与える知られています。ここでは、担当骨細胞破骨細胞の機能や分化、生存率に及ぼす天然ウランの影響の調査を目的としたプロトコルを提案する.
この手順の全体的な目標は、天然のウラン曝露が破骨細胞の生存率、分化、および機能に及ぼす影響を調査することです。この方法は、ウラン曝露が骨の生理機能と代謝に与える影響に関する環境毒性分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、ウランのオリジネーターをスクリーニングするための興味深い新しいツールを提供することです。
RAW 264.7細胞培養が85〜90%のコンフルエンシーに達したら、セルスクレーパーを使用して細胞培養フラスコの底部から細胞を機械的に持ち上げ、細胞を滅菌済みの50ミリリットルの円錐管に移します。細胞溶液を数回ピペットで動かして塊を砕き、得られた単一細胞懸濁液をカウントします。L-グルタミンと5%ウシ胎児血清を添加したα修飾最小必須培地で、細胞を1ミリリットルあたり10〜4細胞の濃度の1倍に希釈し、ウェルあたり1ミリリットルの細胞を24ウェル細胞培養プレートに加えて、摂氏37度で6時間インキュベートします。
破骨細胞の分化および再吸収アッセイの再現性にとって重要なパラメータは、細胞播種密度です。細胞をプレーティングする前に、細胞のカウント、細胞懸濁液の調製、およびその均質性に特に注意してください。小便器用塩溶液を調製するには、滅菌細胞培養試験済みの7.5%重炭酸ナトリウム水溶液から始めて、まず氷上で100ミリモルの重炭酸塩を調製して冷却し、100ミリモルの酢酸小便器溶液を1液ずつ、穏やかに振とうしながら9容量の氷冷重炭酸塩溶液に一滴ずつ加えます。
溶液を室温で平衡化させます。3時間後、所望の小便器作動濃度が達成されるまで、適量の小便器溶液をRANKLの1ミリリットルあたり50ナノグラムを含む分化培地に一滴ずつ希釈し、室温でさらに3時間の平衡化を待ちます。小便器塩を希釈するたびに長いインキュベーションステップを行うことは、溶液中の小便器複合体の安定化に不可欠です。
2回目の平衡化期間の終了時に、各ウェルの培地を必要に応じて1ミリリットルの小便器処理またはコントロール培地に穏やかに交換し、細胞をインキュベーターに戻します。多核破骨細胞は、培養の3日目から4日目の間に現れるはずです。新たに分化した破骨細胞のサイズと形態を評価するには、製造元の指示に従って酒石酸耐性酸性ホスファターゼで細胞を染色し、細胞核を区別するのに十分な解像度で各ウェルの全表面を画像化します。
すべてのウェルの画像化が完了したら、オープンソースのImageJソフトウェアで1つのウェルの画像を開き、スケール単位を確認します。次に、ポップアップウィンドウの[グローバル]チェックボックスをオンにして、新しいスケールユニットを後のすべての画像に適用します。「分析」メニューで、「測定値の設定」を選択し、「エリア」ボックスと「表示ラベル」ボックスにチェックを入れます。
他のすべてのボックスのチェックを外します。[分析]メニューで、[ツール]、[関心領域マネージャー]の順に開き、ImageJのメインウィンドウで長方形の選択ツールを選択します。約 1 、 000 x 1 、 000 マイクロメートルの関心領域をアウトライン化し、[ 追加 ] ボタンをクリックして、選択項目を Region of Interest Manager に追加します。
次に、[More]、[Save]の順にクリックして、リージョンを保存します。分析する 5 つの領域のいずれかのコピーを作成するには、Region of Interest Manager で関心領域を選択し、選択した領域内で右クリックして領域を複製します。[すべて表示] ボックスと [ラベル] ボックスをオンにし、ポリゴン選択ツールを選択して、重複した対象領域の破骨細胞の 1 つを手動でアウトライン化します。
このアウトラインを Region of Interest Manager に追加するには、「Region of Interest Manager」ウィンドウで「追加」をクリックします。すべての破骨細胞を追加したら、すべてのアウトラインを選択し、[計測] をクリックしてその表面を測定します。次に、結果ウィンドウに表示される測定値をスプレッドシートに転送します。
小便器で処理した破骨細胞の機能を評価するために、分化培地を添加する1日前に、85〜90%のコンフルエント細胞培養のRAW細胞を成長培地中の24ウェル骨アッセイプレートにプレート化します。翌日、上清を分化小便器を含む培地にそっと置き換え、示したようにRAW細胞が破骨細胞に分化できるようにします。破骨細胞形成の5日目に、小便器含有培地を10%漂白剤溶液に交換して、骨模倣表面から細胞を除去します。
室温で5分後、井戸を脱イオン水で2回洗い、風乾させます。次に、各ウェルの非再吸収領域のカルシウム塩を1%Alizarin Red Sナトリウム塩溶液で染色します。10〜15秒後、アリザリン溶液を取り出し、ウェルを水で3〜4回やさしく洗います。
アリザリン染色ウェルのRGB画像をグレースケールの8ビット形式に変換するには、[画像]メニューで[タイプ]と[8ビット]を選択します。次に、楕円形の選択ツールを使用して、吸収について分析するウェルの表面全体の輪郭を描き、先ほど示したように関心領域を保存します。閾値の選択を容易にするために、[編集] と [外部のクリア] を選択して、定義された関心領域の外側にあるすべてのフィーチャをクリアします。
先ほど示したように関心領域を複製し、[画像] メニューの [しきい値の調整] を選択し、スライド バーを調整して適切なしきい値を選択します。再吸収されたすべての領域はしきい値を上回って白く表示され、再吸収されていない領域はすべてしきい値を下回って赤く表示されます。しきい値の選択を確定するには、[しきい値] ウィンドウで [適用] をクリックし、最終的なバイナリ イメージを適切な形式で保存します。
関心領域内で取得する測定を定義するには、[分析]メニューで[測定の設定]を選択し、[面積]、[面積の割合]、および[しきい値に制限]ボックスをチェックし、他のすべてのボックスのチェックを外します。次に、結果ウィンドウ内で再吸収された領域の割合を直接取得するには、[編集] メニューの [反転] を選択して、複製されたバイナリ イメージを反転し、最終的なバイナリ イメージで関心のあるメイン領域が選択されるように注意して、再吸収された領域の割合を測定します。ウランに応答した新たに分化した破骨細胞の数とサイズの変化は、ウェル全体の合成画像や、関心のある特定の領域の拡大写真で容易に見ることができます。
異なる培養条件下で成長した破骨細胞のサイズは、各領域内のすべての破骨細胞の輪郭を描き、各輪郭を描いた細胞の面積を測定することで、今示したように分析できます。破骨細胞の吸収活性に対するウランの影響を調べるために、RAW 264.7細胞を骨模倣表面プレート上にプレーティングし、分化させます。アッセイの最後に、破骨細胞を採取し、再吸収されていない領域を染色し、実証されているように画像化します。
その後、画像は 8 ビット グレースケールに変換され、吸収された領域の計算を容易にするためにしきい値が設定されます。この手順は、他の重金属が破骨細胞形成に与える影響の研究にも適用できます。
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この研究は、天然ウラン曝露が骨破壊細胞の生存率、分化、機能に与える影響を調査します。このプロトコルは、ウランの骨代謝への影響をより深く理解することを目指しています。
Quantitative analysis of uranium's effects on osteoclastogenesis enables mechanistic de-risking in bone toxicity studies and supports predictive confidence for environmental hazard assessment. This protocol provides standardized, reproducible workflows for evaluating cytotoxicity and functional impacts on bone-resorbing cells, informing early-stage target validation and risk triage. The approach is directly relevant for biopharma teams investigating bone metabolism, toxicology, and environmental exposure liabilities.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum for bone toxicity and environmental hazard assessment.