2017年11月3日
このプロトコルを記述する発現解析、文化と脾臓、および長期的な再構成のコロニー形成単位の培養大動脈生殖巣中腎を使用して造血幹に及ぼす制御因子、シグナル伝達経路を決定するには細胞の開発。これは、造血幹細胞生物学、機能を研究するための効果的なシステムとして実証されています。
この実験の全体的な目標は、大動脈-生殖腺-中腎外植片培養を使用して、造血幹細胞発生の重要な調節因子を調査することです。この方法は、哺乳類のHSC発生の調節に関与する因子をどのように特定するかについて、HSC生物学および機能分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、これらの調節因子をDNA発現解析とHSCのコロニー形成能および再構成能によって検証できることです。
一般に、この方法に不慣れな個人は、体幹領域の周囲の組織からAGMを正確に分離するには習得する練習が必要なため、苦労するでしょう。手順を開始する前に、ウェルごとに2ミリリットルの新たに調製されたフルオキセチン添加培地を含む6ウェルプレートの個々のウェルにステンレス鋼メッシュを配置します。実験ウェル1つにつき1つのUV滅菌0.65マイクロリットルフィルターを、新鮮な沸騰水を入れたガラス細胞培養皿に入れて3分間洗浄し、各洗浄後にフィルターを室温PBSの容器に2分間浸します。
次に、各ウェルの気液界面の各スチールメッシュに1つのフィルターを配置します。次に、解剖ハサミを使用して、妊娠11日目の胚マウスから子宮を剥ぎ取り、子宮から胚を採取します。解剖ハサミを使用して、卵黄嚢、臍帯、内臓を胚体から取り除きます。
そして、背側の神経組織と周囲の筋肉組織を慎重に取り除きます。鉗子を使用して、前肢と後肢から組織を取り除きます。そして、AGM領域を胚体から分離します。
次に、各AGMを各ウェルの気液界面にある1つのフィルターに配置します。培養物を摂氏37度、CO2 5%のインキュベーターに入れます。2〜3日後、AGMサンプルを200マイクロリットルのコラゲナーゼを含む個々の1.5ミリリットル微量遠心チューブに移し、摂氏37度で約20分間、5分ごとに振とうしながら解離します。
消化の終わりに、外植片あたり200マイクロリットルの血清で反応を停止します。各チューブの内容物全体を、ウェルあたり500〜600マイクロリットルのM3434培地を含む24ウェル超低アタッチメントプレートの個々のウェルに移します。各ウェルの細胞を針のない1ミリリットルの注射器で混合します。
プレートを細胞培養インキュベーターに入れます。各ウェル内のコロニー形成ユニットの数は、7〜10日間の培養後にスコアリングできます。今示したように、AGM培養の2〜3日後のin vivo AGM外植片移植では、8〜10週齢の雄C57黒色マウスに9つの灰色の放射線を致死的に放射します。
4〜5時間後、示されているように、サンプルごとに200マイクロリットルのコラゲナーゼで収穫した外植片を解離します。得られた単一細胞懸濁液の0.5〜1つの胚相当物を、レシピエント動物1匹につき1ミリリットルの注射器にロードします。最初に照射したマウスを拘束具に入れ、75%エタノールに浸した綿棒で尾を拭いて尾静脈の血管拡張を促進します。
1つのシリンジの内容物全体を拡張した尾静脈に静脈内注射します。.針を抜いた後、消毒用綿棒を使用して出血を止めます。その後、動物をケージに戻し、次の動物を注射します。
養子縁組の移植から11日後、脾臓は、目に見える脾臓コロニーの巨視的列挙のためにBouinの溶液に固定することができます。フルオキセチンを添加したAGM培養物は、mRNAおよびタンパク質発現レベルでのHSC発生の極めて重要な遺伝子であるRunx1の発現増加を示しています。フルオキセチンは、バースト形成ユニット赤血球、コロニー形成ユニット顆粒単球、コロニー形成ユニット顆粒球、赤血球、マクロファージ、巨核球など、AGMにおけるHSCのコロニー形成能力も大幅に向上させることができます。
さらに、AGM外植片から単離されたフルオキセチン処理HSCのin vivo移植は、放射線を照射した成体レシピエント動物の脾臓におけるコロニー数の増加をもたらす。このビデオを見れば、AGMの単離方法と、AGM内でのHSC開発の重要なレギュレーターを特定するためのAGM外植片培養の実施方法について十分に理解できるはずです。
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本プロトコルでは、造血幹細胞(HSC)の発達を研究するために、培養した大動脈-生殖腺-中腎(AGM)領域を用いた発現解析およびコロニー形成能(CFU)アッセイの手法について解説します。これは、HSCの生物学に関与する調節因子やシグナル伝達経路を調査するための有効なシステムです。
AGM外植片培養システムは、生殖細胞系列のノックアウトモデルを必要とせずにメカニズムの研究を可能にすることで、造血幹細胞(HSC)研究における主要なボトルネックを解消します。このアプローチは、生理学的に適切な胚ニッチにおいて薬理学的または遺伝学的なレスキュー実験を可能にし、初期創薬におけるターゲット検証およびリスク低減を支援します。これにより、HSC分化の重要な調節因子の特定における予測信頼性が高まり、造血に焦点を当てた治療領域におけるポートフォリオ決定に有用な情報を提供します。
AGM外植片培養は、標的同定からリード最適化、そして前臨床検証に至るディスカバリー・コンティニュアムに適合し、特に造血および再生医療プログラムにおいて有用です。