Name: 麻酔下のマウスから脳脊髄液のコレクションのための改良法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: 学ぶマイクロマニピュレーターを用いたマウス脳脊髄液採取法。血液汚染を最小限に抑え、神経疾患バイオマーカー分析の精度を向上させる信頼性の高い技術です。

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この作品は、国家自然科学基金、中国の (81650110527, 81371400) とキー基本的な研究プログラムの中国国家 (2013CB530900) によって支持されました。

すべての動物実験を神経科学 (アメリカ)、復旦大学 (中国・上海) 倫理委員会の学会の方針に基づき行った。この手順は、生存非手術です。
1. CSF コレクション装置のセットアップ
<ol><li>ガラスの毛細管を引く (内径 0.75 mm、外径 1.0 mm) (劉らのように、マイクロ ピペットの引き手を使用10;シャープのキャピラリーは、図 1に示す)。</li>
	<li>マイクロマニピュレーター (図 1 a) にしっかりとマウントされている毛細血管のホルダーに尖ったガラスの場所。</li>
	<li>解剖顕微鏡の下でまっすぐ鉗子で削ったキャピラリーの先端を破る壊れた先端の内側の直径が 10-20 μ m (図 1)。</li>
	<li>キャピラリーのホルダーの他の端に細いチューブと注射器を接続し、三方バルブと細いチューブと注射器を接続します。</li>
	<li>開き、任意の汚染物質を追放し、キャピラリー チューブで肯定的な圧力を作成する毛細管ガラスに管を通して注射器から空気を吹き、シリンジを突入する三方弁をシフトします。</li>
	<li>これを数回投接続し再三方バルブにシリンジを接続し、注射器を策定によって繰り返し 〜 3 方向制御弁付き (図 1 b) 注射器の最後の再接続前に 100-200 μ L。</li>
	<li>ガラス管とマイクロマニピュレーターをマウス解剖時に損傷を防ぐために側に移動します。</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56774/56774fig1.jpg"> 図 1。顕微鏡、マイクロマニピュレーター、キャピラリー セットアップします。(A) 顕微鏡と接続されている毛細血管マイクロマニピュレーターをセットアップする (B) 像が近いだけでなく、接続されたシリンジと三方バルブを開き (図を参照) 閉じたり、配管、および (C) 切れ目のない (右)、(左) が壊れてキャピラリー先端 CSF コレクションの準備ができて。0.75 mm の内径、外径 1.0 mm. のキャピラリーの先端を持つ必要があります一度は壊れて<a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56774/56774fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
2. マウスの解剖
<ol><li>マウスを麻酔します。 注: このプロトコル、C57BL/6、アミロイド前駆体タンパク質/プレセニリン 1 (アプリ/PS1) 形質転換のため (アルツハイマー病モデルマウス) マウスは使用され、4% 水クロラール (dH20) 腹腔内投与によるマウスの重量の 10 μ L/g で麻酔インジェクション。</li>
	<li>完全に麻酔したときは、マウスが適切に麻酔したことを確認します。少し後肢を拡張する足の指をつまむと撤退の応答を見て、ピンチをつま先へ撤退の応答は、適切な麻酔を保証するために実行されます。すべての 4 つの手足をつまんでチェックします。反応がない場合、マウスは正しく麻酔します。カット、解剖はさみ (図 2 a) を使用して首の下へ耳の間、目の上からマウスの頭の後ろに髪の毛をトリミングします。また、バリカンまたは脱毛クリームは、脱毛で支援するために使用できます。</li>
	<li>マウスのアダプターを使用してマウスの頭部を固定 (背面に下向き鼻頭上向き 〜 45 °、図 2 a)。マウスの目、耳と耳のバーを固定・締付け。頭を移動できないアダプターで慎重にマウスの頭の上に押し下げてでしっかりと保護されてことを確認します。</li>
	<li>外科的切開を行う前にピンチをつま先まで撤退応答を再確認し、定期的に麻酔外科平面を確保するためにその後。視覚的に麻酔の平面の変化に示す手順の中に呼吸の変更に注意してください。きれいな、非無菌技術は、この短い非生存の手術に使用できます。頭蓋底は筋肉の薄い層のみで公開されるまで、皮膚、筋肉の最初のレイヤー カットはさみとカーブタイプ鉗子を使用しています。 注: マウス皮膚を通して首の後ろ全体を切り取ってマウスの目、耳と頭蓋骨の真ん中、切り傷。皮膚や組織がする上に引っ張った離れて、領域外槽。</li>
	<li>解剖顕微鏡を使って表示を離れて慎重に解剖最後薄い筋層鉗子を用いた頭蓋底の上、関心のある領域の内外側に筋肉のこれらの層を移動します。そこは出血している場合は、綿棒を使用して削除し、出血を止めるに役立ちます。</li>
	<li>一度槽上硬膜を公開 (形は三角形で通常流れる; 1-2 大きな血管や血管の間のいずれかの側に最適です毛細管挿入および CSF コレクション、図 2 b)、ウェットを使用綿棒膜をきれいに拭くし、領域を乾燥する乾燥綿棒を使用します。</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56774/56774fig2.jpg"> 図 2。CSF コレクションの毛細管挿入の代表的な画像とマウスと郭清のセットアップ。マウス (A) 髄液抽出の準備ができてのセットアップ坊主頭の郭清と (B) の詳細についてカバー彎解剖マウス硬のイメージ (10 x ビュー) の場所に固定 (破線の矢印が流れる血管を示していて、実線の矢印を示していますエリア毛細管挿入に最適)。詳細画像 (10 x ビュー) (C) の槽、(D) ポイントを毛細血管ほとんど穴タップ硬膜および (E) キャピラリー先端からいくつかの抵抗で、硬膜の硬膜に対して並べガラス管の先端を削ったを通じて CSF を収集する硬。CSF は、ガラスの管 (点線矢印) で収集した透明な液体をする必要があります。各顕微鏡画像の右下にすべてのスケール バーを示す 100 μ m.<a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56774/56774fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
3. 麻酔下マウスから CSF コレクション
<ol><li>尖った点で膜のすぐ後ろには、マウスの頭の後ろにガラス管を合わせ、~ 30 ~ 45 ° 角度 (図 2)。</li>
	<li>一度の注射器やいくつかの回し、注射器を策定 〜 (汚染物質がないと、毛細管ガラスに否定的な圧力があることを確かめる) を 100-200 μ L。</li>
	<li>毛細血管を移動、マニピュレーターを使用して抵抗を見ることができるまで膜に近い方のヒントがありません (図 2 D) それの穴をあけます。</li>
	<li>毛細血管の先端と膜の間に抵抗がわかれば優しくマイクロマニピュレーター コントロールをノックによって膜をキャピラリー チューブをタップします。顕微鏡を使用すると、大槽に毛細血管穿刺の削ったポイントを確認できます。開口部には穴を開けて一度はキャピラリー チューブに髄液を描画するかは自動的に (図 2 e)。</li>
	<li>ゆっくりと CSF を収集するために毛細血管を残します。CSF は、引き出しを停止している場合は少量を注射器の描画が遅い (~ 50 μ L) CSF を抽出すると毛細血管のより否定的な圧力を作成します。 注: 別の方法として、キャピラリー引っ張ることができる静かにゆっくりと微動マイクロマニピュレーター。 コントロールを使用して再び毛細血管に流れる脳脊髄液の脳。総額 ~ CSF の 10-15 μ L (~ キャピラリー中で 3-4 cm) かかる 〜 10 〜 30 分と時折 20 μ L 以上を集めることができます。全く必要のない、CSF コレクション中に熱パッドを使用することをお勧めします。室温で CSF コレクションを行った (~ 23 ° C)。</li>
	<li>必要な CSF の量を収集した後は、(CSF を描画を停止) に三方弁をシフトすることによってチューブを閉じます。</li>
	<li>管に接続されている注射器を取ると開くし、(キャピラリー、チューブ、キャピラリーの外側の領域でイコライズ圧力を作成する) にチューブを閉じます。三方バルブにシリンジを接続し、注射器を突入しません。</li>
	<li>慎重マニピュレーターを使用してマウスからガラス管を取り外します。</li>
	<li>キャピラリー ガラスのシャープ ポイントの下でコレクションの管 (プロテアーゼ阻害剤 x 20 の 1 μ L で 1.5 mL マイクロ チューブ) を配置します。</li>
	<li>管を開き、注射器をゆっくり突入: CSF は、キャピラリーとコレクションの管に流れる必要があります。</li>
	<li>コレクションの後すぐに遠心分離機 (5 のためのスピンをパルス ミニ遠心分離機を使用して最大速度で s) コレクションの管の下部にプロテアーゼ阻害剤とサンプルを混合する CSF。 注: CSF 試料検体でき、-80 ° C で詳しく分析するために格納されてマウスの残りの部分は、脳や脊髄などの他の組織の解剖することができます。マウスはこの段階ではまだ生きていると、このように血液収集することも、必要な場合。</li>
</ol>

<ol><li>Anoop, A., Singh, P. K., Jacob, R. S., Maji, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CSF+Biomarkers+for+Alzheimer%27s+Disease+Diagnosis%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Alzheimers.+Dis%22%5BJournal%5D)">CSF Biomarkers for Alzheimer's Disease Diagnosis.</a> Int. J. Alzheimers. Dis. 2010, 1-12 (2010).</li>
<li>Blennow, K., Hampel, H., Weiner, M., Zetterberg, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebrospinal+fluid+and+plasma+biomarkers+in+Alzheimer+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Cerebrospinal fluid and plasma biomarkers in Alzheimer disease.</a> Nat. Rev. Neurol. 6 (3), 131-144 (2010).</li>
<li>Schoonenboom, N. S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebrospinal+fluid+markers+for+differential+dementia+diagnosis+in+a+large+memory+clinic+cohort%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">Cerebrospinal fluid markers for differential dementia diagnosis in a large memory clinic cohort.</a> Neurology. 78 (1), 47-54 (2012).</li>
<li>Molinuevo, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+clinical+use+of+cerebrospinal+fluid+biomarker+testing+for+Alzheimer%27s+disease+diagnosis%3A+A+consensus+paper+from+the+Alzheimer%27s+Biomarkers+Standardization+Initiative%5BTitle%5D)+AND+%22Alzheimer%27s+Dement%22%5BJournal%5D)">The clinical use of cerebrospinal fluid biomarker testing for Alzheimer's disease diagnosis: A consensus paper from the Alzheimer's Biomarkers Standardization Initiative.</a> Alzheimer's Dement. 10 (6), 808-817 (2014).</li>
<li>Fagan, A. M. <a target="_blank" href="https://www.hindawi.com/archive/2014/302712/">CSF biomarkers of Alzheimer's disease: impact on disease concept, diagnosis, and clinical trial design.</a> Adv. Geriatr. 2014, 1-14 (2014).</li>
<li>Ramautar, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+profiling+of+mouse+cerebrospinal+fluid+by+sheathless+CE-MS%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Bioanal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Metabolic profiling of mouse cerebrospinal fluid by sheathless CE-MS.</a> Anal. Bioanal. Chem. 404 (10), 2895-2900 (2012).</li>
<li>Liu, L., Herukka, S., Minkeviciene, R., Vangreon, T., Tanila, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Longitudinal+observation+on+CSF+A%CE%B242+levels+in+young+to+middle-aged+amyloid+precursor+protein%2Fpresenilin-1+doubly+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol.+Dis%22%5BJournal%5D)">Longitudinal observation on CSF Aβ42 levels in young to middle-aged amyloid precursor protein/presenilin-1 doubly transgenic mice.</a> Neurobiol. Dis. 17 (3), 516-523 (2004).</li>
<li>Schelle, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevention+of+tau+increase+in+cerebrospinal+fluid+of+APP+transgenic+mice+suggests+downstream+effect+of+BACE1+inhibition%5BTitle%5D)+AND+%22Alzheimer%27s+Dement%22%5BJournal%5D)">Prevention of tau increase in cerebrospinal fluid of APP transgenic mice suggests downstream effect of BACE1 inhibition.</a> Alzheimer's Dement. , (2016).</li>
<li>You, J. -S., Gelfanova, V., Knierman, M. D., Witzmann, F. A., Wang, M., Hale, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+impact+of+blood+contamination+on+the+proteome+of+cerebrospinal+fluid%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics%22%5BJournal%5D)">The impact of blood contamination on the proteome of cerebrospinal fluid.</a> Proteomics. 5 (1), 290-296 (2005).</li>
<li>Liu, L., Duff, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Technique+for+Serial+Collection+of+Cerebrospinal+Fluid+from+the+Cisterna+Magna+in+Mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A Technique for Serial Collection of Cerebrospinal Fluid from the Cisterna Magna in Mouse.</a> J. Vis. Exp. (21), (2008).</li>
<li>Maia, L. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+amyloid-%CE%B2+and+Tau+in+the+cerebrospinal+fluid+of+transgenic+mice+overexpressing+amyloid+precursor+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Transl.+Med%22%5BJournal%5D)">Changes in amyloid-β and Tau in the cerebrospinal fluid of transgenic mice overexpressing amyloid precursor protein.</a> Sci. Transl. Med. 5 (194), 194re2(2013).</li>
<li>Oshio, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduced+cerebrospinal+fluid+production+and+intracranial+pressure+in+mice+lacking+choroid+plexus+water+channel+Aquaporin-1%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Reduced cerebrospinal fluid production and intracranial pressure in mice lacking choroid plexus water channel Aquaporin-1.</a> FASEB J. , (2004).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

このプロトコルを記述する詳細に CSF 血からの汚染を最小限に抑え、CSF の豊富なコレクションでは、コレクションの現在の方法10向上させる手法 (平均 ~ 10-15 μ L を得ることができる) マウスから。キャピラリーの先端は小さすぎる (と、脳脊髄液が抽出されます非常にゆっくり) ならない先端部にキャピラリーを壊すときや大きすぎる (脳脊髄液を集めるための罰金し、組織は、毛細血管に引っかかってができませんが)。CSF のコレクションのための領域に切り裂く場合に注意が必要: 任意の出血を停止し、dH2サンプルの汚染を避けるために 0 とは、血液からきれいにガラス管の挿入のための領域。各マウスの解剖学は、ほとんどのマウスが 1-2 主な血管は、毛細血管が CSF のコレクションに挿入する必要がある領域を介して実行しています。挿入に接近しすぎると、重要な毛細血管の挿入のための正しい場所を選択する主要な血管は血液と脳脊髄液を汚染します。図 2のように、血管との間や主要な血管のどちら側の明確な領域は汚染を避ける...

脳脊髄液は神経科学研究の分析のための貴重な体液です。CSF (ない赤血球とだけいくつかの白い血液細胞) 数の細胞を含む血液の血漿から作られた主、ほとんどタンパク質無料します。中枢神経系 (CNS) と密接な接触で流体の一つだ、それは周辺システムに脳と脊髄からの多くの電解質渡すことができます。ヒトでは、CSF サンプル病の診断で支援するために収集することができますまたは臨床試験で研究目的のため脊髄をタップ (または腰椎穿刺) としてはマイナーな侵襲的なプロシージャ: CSF 流体は、これらに直接アクセスすることがなく中枢神経系に対する変更を反映できます組織。したがって、近年、診療所の研究目的のためアルツハイマー病や他の痴呆1,2,3などの神経変性疾患の患者から髄液のサンプルを得られています。潜在的クリニック2,3で病気の診断を支援するため髄液のサンプルを使用して開発している多くのバイオ マーカー分析があります。ただし、病4,5を具体的に診断する機密性の高い、一貫性のある結果を生成するこれらのアッセイの信頼性に関する多くの議論があります。だから、高い感度と特異性の神経変性疾患を診断する標準的な技術の生産を支援するより良いアッセイおよび CSF で見つけることができる、ターゲットの開発のための大きい必要があります。病気の人間の脳脊髄液サンプルの潜在的な重要性、神経科学研究の齧歯動物から CSF のコレクションも興味のです。
マウスは医学生物学の重要な動物のおよび潜在的な治療上の化合物とひと臨床試験の前に概念実証研究のテストを可能にします。マウスのそれは、小動物では、脳への近さのため髄液のサンプルを得ることが困難槽は、小脳と延髄の背側表面の開口部を介して取得するマウスにおける CSF コレクションの通常の方法は。これにより、難易度を分析することは困難は脳脊髄液サンプルを収集し、血液細胞からの汚染のリスクを増加させる、血管に近接。これらの難しさのためほとんどの研究者が分析 (通常 5-7 μ として記載) のため髄液の少量を取得できるだけで、血液細胞による CSF 試料の汚染分析6,7,8の最大の関心事,9. 血液汚染することができます結果を隠すし、本当に中枢神経系の状態を反映します。マウスから収集された量は、通常は (重複 3 通の) 1 つだけ測定のために十分に、限られたサンプルの収集研究を影響さらに、酵素免疫測定法 (ELISA) を使用します。したがって、脳脊髄液のサンプルは通常、十分なサンプルを複数のアッセイを実行するために複数のマウスからプールされます。豊富なプロトコルを開発、マウスから脳脊髄液の汚染されていないコレクション目的と大きくとげっ歯類を用いた神経科学研究の改善に有益になります。
このプロトコルでは、豊富な技術で (10-15 μ L の平均) 麻酔下マウスから CSF のコレクションで詳しく説明し、CSF コレクション血10からの汚染を最小限に抑えるための現在知られている方法の改善します。CSF のコレクションのための堅牢なプロトコルは、病を診断するに役立つだけでなく、中枢神経系に影響を与える疾患の根底にあるメカニズムに研究を向上させるために使用できるバイオ マーカーの CSF ベースの試金の開発に役立ちます。

<table><tbody><tr><td>クロラール水和物(麻酔薬として使用)</td><td>シノファームケミカルズ・リーゲン(株)</td><td>30037517</td><td>CAS番号302-17-0。</td></tr><tr><td>解剖ハサミ</td><td>66 ビジョン技術</td><td>54002</td><td></td></tr><tr><td>湾曲した鉗子の解剖</td><td>66 ビジョン技術</td><td>53072</td><td></td></tr><tr><td>ストレート鉗子の解剖</td><td>66 ビジョン技術</td><td>53070</td><td></td></tr><tr><td>マウスアダプター(イヤーバー付き)</td><td>自社製。</td><td>N/A</td><td>World Precision Instrumentsから入手可能な同様の機器。</td></tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td>明治Labax</td><td>Model 15381</td><td></td></tr><tr><td>マイクロマニピュレーター</td><td>ワールド精密機器</td><td>M3301</td><td></td></tr><tr><td>マイクロマニピュレーター用マグネットベース</td><td>カネテック</td><td>MB-K</td><td></td></tr><tr><td>ガラスキャピラリー</td><td>ワールド精密機器</td><td>1B100-4</td><td></td></tr><tr><td>マイクロピペットプーラー</td><td>Sutter</td><td>Instruments Model P-1000</td><td></td></tr><tr><td>シリンジ (1ml)</td><td>タンソール</td><td>02024692</td><td>1ml用。</td></tr><tr><td>マイクロチューブ(1.5ml)</td><td>Axygen</td><td>MCT-150-C</td><td></td></tr><tr><td>プロテアーゼ阻害剤カクテルセットIII EDTA</td><td>フリーCalbiochem</td><td>539134</td><td></td></tr><tr><td>Human A&beta;42 ELISAキット</td><td>Invitrogen</td><td>KHB3441</td><td></td></tr><tr><td>配管(テフロンチューブ)</td><td>World Precision Instruments</td><td>MMP-KIT</td><td>マイクロインジェクションキットから取得し、キャピラリーホルダーとシリンジに取り付けます。</td></tr><tr><td>ミニ遠心分離機</td><td>Tiangen Biotech</td><td>OSE-MC8</td><td></td></tr><tr><td>綿棒</td><td>あらゆる家庭用店/薬局から入手。</td><td></td><td>該当なし</td></tr></tbody></table>

麻酔下のマウスから脳脊髄液のコレクションのための改良法

An Improved Method for Collection of Cerebrospinal Fluid from Anesthetized Mice

脳脊髄液 (CSF) は、神経科学研究の分析のための貴重な体液です。それは流体の 1 つは、最も身近な中枢神経系、したがって、これらの組織に直接アクセスしなくても脳や脊髄の病気の状態を分析する使用できます。ただし、マウス血管への近さのため槽から取得することは困難だ、これはしばしば、サンプルを汚染します。マウスにおける CSF コレクションのエリアもに解剖することは困難、(最大 5 7 μ l 以下) に頻繁にだけ小さいサンプルが得られます。このプロトコルは、血液からの汚染を最小限にし、(1 日平均 10-15 μ L を収集できる) CSF の豊富なコレクションは、コレクションの現在の方法を改善する技術を詳しく説明します。この手法は、CSF の抽出時に任意の組織は影響しません、マウスから組織の採取その他の郭清方法で使用できます。したがって、脳と脊髄をこの手法で受けず、そのまま。大きい CSF 標本と純度より分析はこのさらに流体援助神経科学研究で使用できるし、脳と脊髄に影響を与える疾患を理解します。

(図 1および図 2) ここで説明する手順を使用して、すぐに毛細血管で収集した CSF は、ピンクや赤ではなく、クリア (図 2 e) をする必要があります。毛細血管に収集流体に赤い色合いをピンク、血液の混入があった。
CSF のサンプルのアプリケーションの例は、このメソッドで収集された、elisa 法を用いたタンパク質のアミロイド β (a β) のレベルが測定されました。一般に脳脊髄液の a β のレベルはアルツハイマー病研究7で測定します。CSF は主蛋白質無料です。アルツハイマー病 (アプリ/PS1 マウス) のマウス モデルは、人間の a β42のレベルが大幅増加これらのマウス ノザン人間アプリ。...

このプロトコルではない汚染血液から脳脊髄液 (CSF) の豊富なコレクションのための改善された技術について説明します。大きいサンプル コレクションと純度で、脳や脊髄に影響を与える病気の私達の理解を促進するため CSF を使用してより分析を実行できます。

The cerebrospinal fluid (CSF) is a valuable body fluid for analysis in neuroscience research. It is one of the fluids in closest contact with the central ...

この手順の全体的な目標は、血液による汚染なしにマウスからの脳脊髄液の収集を改善することです。この方法は、神経疾患のバイオマーカーをモニタリングするためのCSFを収集するための簡単で信頼性の高い方法を提供します。この技術の主な利点は、マウスからのCSF収集を支援するマイクロマニピュレータを添加することで、収集中の血液の汚染が減少することです。まず、引っ張ったガラスキャピラリーを、マイクロマニピュレーターにしっかりと取り付けられたキャピラリーホルダーに入れます。次に、解剖顕微鏡で見ながら、鋭利になった毛細血管の先端をまっすぐな鉗子で折れ、折れた先端の内径が10〜20ミクロン程度になるようにします。次に、キャピラリーホルダーのもう一方の端に細いチューブとシリンジを取り付け、細いチューブとシリンジを三方弁で接続し、三方弁を開位置に移動します。次に、シリンジを突っ込んで汚染物質を排出し、毛細管に陽圧を作り出します。シリンジを三方弁に切断して再接続することにより、これを数回繰り返します。次に、シリンジを三方弁に最終的に再接続する前に、空気を100〜200マイクロリットルに吸い込みます。ガラスキャピラリー付きのマイクロマニピュレーターを横に動かして、手術中の損傷を防ぎます。手術を開始する前に、マウスが4本の手足すべてをつまんで反応がないことを確認して、マウスが完全に麻酔されていることを確認してください。次に、解剖ハサミを使用して、マウスの頭の後ろの毛を目の上から耳の間から首の下までカットしてトリミングします。マウスの頭部を固定装置用フレームマウスアダプターで固定します。マウスのヘッドをそっと押し下げて、ヘッドが動かず、アダプターにしっかりと固定されていることを確認します。はさみと湾曲した鉗子を使用して、首の後ろを横切ってマウスの皮膚を切り取り、次にマウスの耳と目の間の頭蓋骨の中央を下ります。皮膚と組織を引き離し、大槽の上の領域から引き出します。解剖顕微鏡で観察しながら、鉗子を使用して頭蓋骨の基部上の最後の薄い筋肉の層を慎重に解剖し、これらの筋肉の層を側面に移動して関心領域から外します。大槽の上の硬膜が露出したら、濡れた綿棒を使用して膜をきれいに拭き、次に乾いた綿棒を使用してその領域を乾かします。大槽は三角形に見え、1〜2本の大きな血管がその領域を通っています。血管の両側または血管間は、毛細血管の挿入とCSFの収集に最適です。大槽が露出したら、マイクロマニピュレーターを使用してガラスキャピラリーをマウスの頭の後ろに合わせ、鋭利な点が30〜45度の角度で膜のすぐ後ろになるようにします。次に、シリンジを1回または数回突っ込み、プランジャーを100〜200マイクロリットル戻して、汚染物質がなく、ガラスキャピラリーに負圧があることを確認します。次に、抵抗が見えるまで、しかし膜に穴を開けずに、毛細血管の先端を膜に近づけます。マイクロマニピュレーターのコントロールをノックして、キャピラリーチューブをメンブレンを通して優しく叩きます。CSFは、開口部に穴が開けられると、自動的にキャピラリーチューブに引き込まれます。キャピラリーをそのままにして、CSFをゆっくりと収集します。CSFの流れが止まった場合は、シリンジをゆっくりと約50マイクロリットルまで引き上げて、キャピラリーにさらに負圧を作り出します。.10〜15マイクロリットルのCSFが10〜30分で収集されます。必要な量のCSFが収集されたら、三方弁を動かしてチューブを閉じ、チューブに接続されているシリンジを取り外してチューブを閉じます。チューブを開閉して、キャピラリー、チューブ、およびキャピラリーの外側の領域に均等な圧力を作り出します。次に、シリンジを再接続し、マイクロマニピュレータを使用してマウスからガラスキャピラリーを静かに取り外します。次に、1マイクロリットルの20Xプロテアーゼ阻害剤を含む収集チューブをガラスキャピラリーの鋭利な点の下に置きます。チューブを開き、シリンジを静かに突っ込みます。CSFはキャピラリーから収集チューブに流れ込む必要があります。収集後、CSFをパルス遠心分離機にかけ、サンプルを収集チューブの底にあるプロテアーゼ阻害剤と混合します。CSFサンプルは分注し、マイナス80°Cでさらに分析するために保存できます。APP / PS1マウスから収集されたCSFは、生後12か月でヒトAベータ42のレベルが有意に増加したことを示しました。野生型マウスでは、ヒトAベータ42は検出されませんでした。この手順をマスターすると、適切に実行すれば1時間で完了します。この手順を試みる際には、毛細血管を挿入するときに血管を避け、血液による汚染を避けるために、CSF収集中にマイクロマニピュレーターで微調整を行うだけであることを覚えておくことが重要です。

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大槽マウスでの脳脊髄液のシリアル収集のためのテクニック

出典: Sweeney, A. M., et al.蛍光マクロスコピーを用いた無傷のマウス頭蓋骨を通る脳脊髄液輸送のin vivoイメージングJ. Vis. Exp. (2019)このビデオは、蛍光イメージングを使用してマウス脳内の脳脊髄液(CSF)の流れを視覚化するプロセスを示しています。蛍光トレーサーが大槽 (CM) に注入され、くも膜下腔および血管周囲腔を通して CSF によるその動きを追跡できるようになります。タイムラプス...

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ここチステルナ マグナ カニュレーション (CMc)、脳脊髄液 (CSF) にトレーサー、基板、シグナル分子を提供する低侵襲の方法を実行するプロトコルについて述べる。別の画像診断装置と組み合わせると、CMc が glymphatic システム、CSF のダイナミクス評価、様々...

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経頭蓋光学イメージングは、無傷の頭蓋骨を介して生きているマウスの皮質における脳脊髄液輸送の広視野イメージングを可能にする。...

蛍光マクロスコピーを用いた無傷マウス頭蓋骨を介した脳脊髄液輸送の生体内イメージング

高い脊髄液タンパク質レベルは、変化した血液脳関門または細胞内合成を横切る血漿タンパク質の拡散の結果であり得る。この記事では、両方のケースを判別するのに役立ち、インテコール内合成タンパク質の定量的測定を提供する最適化されたテストプロトコルを紹介します。...

マウスにおけるインテコール内合成タンパク質の定量測定

この記事では、マウスの脳脊髄液(CSF)中のグルコース濃度を高めるための詳細なプロトコルについて説明します。このアプローチは、マウスの神経変性、認知、および末梢グルコース代謝に対する高CSFグルコースの影響を研究するのに役立ちます。...

マウス脳脊髄液中のグルコース濃度上昇のための浸透圧ミニポンプ植込み

プロトコルは連続的なビデオ脳波(EEG)のモニタリングと並行して行なわれるてんかんラットからの繰り返された脳脊髄液および血のコレクションを示す。これらは、さまざまな体液分子の変化と発作活動との関連性を探るのに役立ちます。...

脳波記録中のラットの側尾静脈からの脳脊髄液および血液のサンプリング

In vivoでの脳血流調節を研究するためのCisterna Magnaナノインジェクションとレーザースペックルコントラストイメージングアッセイの組み合わせ

ここでは、複数の神経疾患に重要な役割を果たすマウス髄膜リンパ管(MLV)を評価するプロトコルを提示します。このプロトコルの目的は、トレーサー排出の機能的評価と背面MLVネットワークの詳細な形態的特徴付けの両方を可能にする統合的手法を提供することです。...

髄膜リンパ質評価のための統合プロトコル:大胸椎注射、リンパ節画像診断、髄膜郭清、全マウント染色

学ぶマイクロマニピュレーターを用いたマウス脳脊髄液採取法。血液汚染を最小限に抑え、神経疾患バイオマーカー分析の精度を向上させる信頼性の高い技術です。

麻酔下のマウスから脳脊髄液のコレクションのための改良法

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