Name: 郭清およびショウジョウバエ蛹卵巣の汚損 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-02T14:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: 学ぶショウジョウバエ蛹卵巣の郭清・染色・封入法。小さく透明な組織を扱うカスタムツールを用いて、幹細胞分化と組織発生を研究する詳細なプロトコルを習得できます。

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この研究は、国立衛生研究所によって支えられた (d. k. に GM079351 RO1)。ドロテア Godt に彼女の元のプロトコルに基づいて蛹卵巣の解剖に彼女の有用なアドバイスありがちましょう。我々 はまた、彼女の援助と原稿のコメントをエイミー Reilein を感謝します。

1. 仔
<ol><li>10 の男性と 15 女性ショウジョウバエ成虫酵母を添加した通常豊かなフライ食品の瓶で目的遺伝子の約を組み合わせます。バイアルを過密を避けるため、もはや 2-4 h14以上の卵を産む雌成虫の交尾を許可します。</li>
	<li>はえの食糧と異なるバイアルに対して開くバイアルをタップして、大人をバイアルから新しい瓶に転送します。3-4 日間室温で幼虫に成長する卵を許可します。</li>
</ol>2. 女性の幼虫を選択します。
<ol><li>しっとり細かいブラシを使用すると、柔らかい毛、放浪の 3 齢幼虫をバイアルからもリン酸緩衝生理食塩水 (PBS) × 1 であふれんばかりに満たされたガラスに転送するバイアルの壁に沿ってブラシで回転運動を作る。1x PBS で満たされた一つの井戸にそれらを転送することによって幼虫を食べ物のかすを洗浄します。</li>
	<li>鉗子を使用して男性と女性の幼虫を区切ります。その前方15から下脂肪体に体の約 3 分の 2 の側面に埋め込まれた大きくて丸いと半透明の精巣のペア、オス幼虫を識別します。メス幼虫は平均より大きく、男性よりも少ない半透明より困難に検出は、はるかに小さい生殖腺を持っています。</li>
	<li>オス幼虫に対する女性の幼虫を収集するを選択します。井戸から少なくとも 10 女性を収集します。1x PBS でいっぱいも別に女性の幼虫を配置します。</li>
	<li>新鮮なはえの食糧の新しいガラスびんに優しく女性の幼虫を転送する使用鉗子は、酵母を添加しました。</li>
	<li>Pupariation16を容易にするために暗い場所に女性の幼虫をバイアルを配置します。一日中、pupariation の幼虫を監視します。各幼虫は固定化し、イラガ前蛹に発展、バイアルに対してイラガ前蛹をサークル、最初、イラガ前蛹になるとおおよその時間を記録します。前気門の前突および蛹殻形成17のタイミングで前蛹を識別します。(蛹殻形成過程、APF の後の時間で測定) 希望の時間ポイントを開発する前蛹を許可します。 注: 約 10 h 間隔内で蛹殻形成過程を受ける動物、イラガ前蛹考えられます。内部の脱皮が行われた後、蛹期は蛹殻形成後約 12 時間を開始します。</li>
</ol>3. 抗体の汚損のため蛹の準備
<ol><li>
蛹の脂肪体をクリアするため、後の手順で使用する細いガラス ピペットを形成します。
	<ol>
<li>ブンゼン バーナーでガラス パスツール ピペット先端を溶かします。ガラスが溶け、薄く先端を形成するのにピペットの残りの部分から水平方向に先端をプルするのに鉗子を使用します。</li>
		<li>冷却した後、きちんとした円形の開口部を形成するピペット先端部の小さな部分を破る。電球をピペットのもう一方の端に取り付けます。</li>
		<li>1x PBS でピペットをロードします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>バイアルの壁に接着しているの蛹を収穫するには、蛹とバイアル間接触の地帯に沿って水の小滴を適用します。タンパク質に 1-2 分を待って接着剤を優しくしっとり細かいブラシで壁に蛹を持ち上げる前に解散。1x PBS でいっぱいよくガラスに蛹を転送します。単一の井戸井戸の混雑を避けるため蛹あたりを捧げます。</li>
	<li>1 組の鉗子で蛹の後端をつかんで、蛹の頭が見える位置まで慎重に別のペアに蛹のケースの前方の部分を引き裂きます。</li>
	<li>鉗子で蛹の頭の前方の先端をグリップ、ケース蛹から蛹を軽く引いてください。 注: 脂肪体の部分はこのプロセス中にこぼれることがあります。</li>
	<li>分離し、腹部の袋だけが残るまで後部半分から蛹の前半分を破棄します。</li>
	<li>
腹部の袋から脂肪細胞を抽出します。
	<ol>
<li>別の手の 1x PBS でいっぱい細いガラス ピペットを押しながら片方の手でピンセットで井戸の底に対して腹部の袋を把握します。</li>
		<li>蛹卵巣を取り巻く脂肪体細胞を洗い流すため腹部に袋とゆっくりピペット 1 × PBS の開幕に向けて細いピペット先端部を目指してください。 注: 卵巣は、腹部の袋の中に残るべきである小さい、半透明、紋、長方形の構造体のペアです。</li>
		<li>体の脂肪細胞の脂肪体の少なくとも 3 分の 2 がなくなるまで、または卵巣が腹部の袋の口の近くに表示されるまでを洗い流します。非常にゆっくりと、この手順を実行することが重要だ偶然腹部の卵巣を洗うようにします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>脂肪体細胞洗浄中にうち卵巣が残っているかどうかをチェックする井戸を調べます。卵巣が井戸の中に表示されていない場合は、腹部に残っている必要があります。卵巣が出てきた、よく新しい蛹を配置し、この手順を繰り返します。</li>
	<li>固定バッファー (1 x PBS, 4% パラホルムアルデヒド) でいっぱいクリア coverglass 室に腹部を転送し、上に蓋を置き。染色と実装プロセスに耐えられる卵巣に十分な数を確保するため必要以上より卵巣を解剖。 注意: 固定バッファーには、有毒であるパラホルムアルデヒドが含まれています。適切な保護手袋、保護メガネなどを着用してください。</li>
</ol>4. 免疫組織化学
<ol><li>染色のプロセスを通して卵巣が抗体溶解液に完全に没頭していることを確保するためカバー ガラス井戸の底に任意浮動卵巣優しくプッシュする鉗子を使用します。</li>
	<li>場所は、Nutator の平らな表面に両面テープのストリップをテープの粘着面で、カバーグラスチェンバーを置きます。</li>
	<li>室温で 15 分間ステップ 3.7 から固定バッファーで卵巣を孵化させなさい。</li>
	<li>卵巣をすすぎ三回 1 %1 × PBS でトリトン X-100 5、10、および 45 分 (合計で 1 h)、それぞれ、徹底的な透過を許可します。</li>
	<li>0.5 %1 × PBS で 10% ヤギ血清で卵巣をブロック 30 分トリトン X-100。</li>
	<li>600 で卵巣を一晩インキュベート 4 ° C でトリトン X-100 0.5 %1 × PBS で適切な濃度に希釈して好みの一次抗体の μ L</li>
	<li>0.5 %1 × PBS で 5 分間 3 回卵巣をすすぎトリトン X-100。</li>
	<li>室温でトリトン X-100 0.5 %1 × PBS で適切な濃度に希釈して好みの二次抗体の 600 μ L で 2 h は、卵巣を孵化させなさい。</li>
	<li>1 × PBS 0.5% トリトン X-100 と 1x PBS で 5 分に 1 回で 5 分間 2 回卵巣をすすいでください。</li>
</ol>5. 解剖と蛹卵巣をマウント
<ol><li>顕微鏡のスライドに 1 × PBS の小滴を配置します。腹部の袋に、ガラスも、カバーグラスチェンバーから転送する使用鉗子は 1x PBS でいっぱい。単一の井戸井戸の混雑を避けるため蛹あたりを捧げます。</li>
	<li>鉗子で腹部の袋と、残りの脂肪体を引き裂きます。 注: 小さな、半透明、紋、長方形の構造体のペアは、卵巣は井戸の中見えるはずです。すべての脂肪体は徹底的に引き裂かれたことを確認することが重要だ、卵巣が脂肪体囲まれてしばしば密接離れて。</li>
	<li>1x PBS 顕微鏡のスライド把持鉗子の先端間の卵巣のセンターでのドロップに井戸から卵巣を転送します。非常に失うまたは転送中にそれらを破壊するそうなので卵巣を圧迫することがなくしっかりしたグリップを使用することが重要です。解決策が時間をかけて乾くときのスライドに 1 × PBS を数滴を追加します。</li>
	<li>一度、すべての卵巣は解剖され顕微鏡スライド、22 mm × 22 mm coverslip と卵巣の上にそっと coverslip の場所に取り付け中のピペット 40 μ に転送します。スライド画像の前に一晩を乾燥しなさい</li>
</ol>

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</ol>

著者の利害の衝突を宣言するあります。

このプロトコルの最も重要かつ困難なステップには、固定する前に蛹卵巣の準備が含まれます。抗体と、卵巣、小さくて蛹腹部内脂肪体細胞によって埋められること十分に汚れることを確認、鉗子、腹部の袋に大きな開口部を引き裂くだけでなくが、また妨げる脂肪体細胞を抽出することが重要です、抗体からの卵巣。この手順が正常に実行が必要です腹部の袋から脂肪体細胞を洗いながらパスツール ピペットで移しなさい電球の微妙な圧力のアプリケーション (例えば1-2 脂肪体細胞はこの手順中の 1 秒あたりの腹部におきます)。穏やかな力を使用する失敗可能性が卵巣では流出の腹部からとグラスにも。自分で卵巣は、半透明、小さくて鉗子で把握することは困難であるために、汚損プロシージャ全体で腹部の袋内にある必要があります。したがって、卵巣は、固定する前に準備段階腹部から出てくる場合、取得、汚れ、およびプロトコル間の分離の形式でそれらをマウントすることは非常に困難でしょう。
脂質小滴の主に、脂肪細胞がトリグリセリド貯蔵細胞小器官キイロショウジョウバエ19</su...

ショウジョウバエの卵巣を用いた幹細胞研究は、幹細胞ニッチ1,2,3,4の最初のドキュメンテーションから広く展開しています。リネージュ トレース遺伝的ツール、解剖がよく幹細胞を研究に使用されているショウジョウバエ卵巣の開発と幹細胞維持、増殖、および幹細胞ニッチの運命を制御するシグナルします。これらのシグナル伝達経路の知識は、異常な幹細胞活動5,6,7から由来する癌の潜在的な原因への洞察力をもたらす可能性があります。また、最近、卵胞幹細胞 (Fsc)、として知られているショウジョウバエ卵巣の体性幹細胞、彼らの組織の8の多くの側面で哺乳類の腸管幹細胞のように強く示されています。このため、ショウジョウバエ卵巣が幹細胞の挙動を研究するための非常に有用なモデル システムです。
幼虫及び成虫の卵巣はそれぞれ初期の幹細胞の開発とニッチで最終的な幹細胞組織への手がかりを提供、蛹卵巣は生殖細胞と体細胞で再編成、彼らのアイデンティティを確立中間構造9,10. 分化と空間構成に関する質問のままいくつかの研究は、蛹卵巣10、11,12,13組織開発の側面を検討しているが蛹の発育中の卵巣細胞型。特に、Fsc の仕様は、この期間中に発生します。このプロトコルの概要を解剖の目的の時点で蛹卵巣染色法-蛹卵巣における大人の段階に幼虫から詳細を分析時間コース実験で使用できるテクニック。
小型、半透明、蛹卵巣蛹腹部内の到達不能にする、このプロトコルは抗体アクセスを妨げる腹部脂肪体組織を除去するカスタムメイドの薄い先端パスツール ピペットなどのツールを利用して、卵巣。蛹の"Nutator"の卵巣を揺動の穏やかなプラットフォームを提供しています高い視認性を汚す抗体中に使用される明確なチェンバード coverglassMaimon、ギルボア14による幼虫卵巣の解剖のプロトコルに基づいて、トリトン X-100 の比較的高い濃度で採用されている染色の手順の最初の手順に細胞膜透過と抗体アクセスを最大化する、卵巣細胞。

<table><tbody><tr><td>デュモン #5 鉗子、生物学</td><td>ファインサイエンティフィックツール</td><td>11252-20</td><td></td></tr><tr><td>Nunc Lab-Tek チャンバーカバーガラス</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>155383</td><td></td></tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td>ニコン</td><td>SMZ-10A</td><td></td></tr><tr><td>共焦点顕微鏡</td><td>カールツァイス</td><td>LSM 700</td><td></td></tr><tr><td>分析ソフトウェア</td><td>カールツァイス</td><td>ゼン</td><td></td></tr><tr><td>9窪み ガラススポットプレート</td><td>パイレックス</td><td>7220-85</td><td></td></tr><tr><td>パスツールピペット</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>13-678-6B</td><td></td></tr><tr><td>パスツールピペットバルブ</td><td>様々なベンダー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ブンゼンバーナー</td><td>様々なベンダー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>フィッシャーファイネストプレミアムつや消し顕微鏡スライド</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>12-544-2</td><td></td></tr><tr><td>22 x 22 mm ガラスカバースリップNo 1</td><td>VWR</td><td>48366-067</td><td></td></tr><tr><td>Dapi Fluoromount-G</td><td>SouthernBiotech</td><td>0100-20</td><td></td></tr><tr><td>両面テープ</td><td>スコッチ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ニューテーター</td><td>クレイ・アダムス</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ファインブラシ #0, #3-#5</td><td>各種ベンダー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ギルソン・ピペットマン スターターキット</td><td>トーマス・サイエンティフィック</td><td>F167300</td><td>p20, p200, p1000 入っていますピペッター</td></tr><tr><td>16% パラホルムアルデヒド</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>15710</td><td>1x PBS</td></tr><tr><td>Triton</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9002-93-1</td><td></td></tr><tr><td>10x PBS</td><td>Ambion</td><td>AM9624</td><td>1x PBS</td></tr><tr><td>Normal Goat Serum</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>5000121</td><td>0.5% Triton 濃度</td></tr><tr><td>の PBST で 10% 正常ヤギ血清に希釈一次抗体(プロトコル中:7G10抗ファシクリンIII希釈1:250、ウサギ抗ホスホヒストンH3希釈1:1000)</td><td>さまざまなベンダー(プロトコル中:Developmental Studies Hybridoma Bank、Millipore)</td><td></td><td>PBSTで0.5%トリトン濃度で希釈</td></tr><tr><td>二次抗体(プロトコル中:Alexa-546、FITC標識抗ウサギ血清)</td><td>さまざまなベンダー(プロトコル中:Molecular Probes、Jackson ImmunoResearch Laboratories、Inc.)</td><td></td><td>0.5% トリトン濃度でPBSTで希釈</td></tr><tr><td>フライバイアル</td><td>デンビルサイエンティフィック</td><td>V9406</td><td></td></tr><tr><td>コットンボール、ワイドバイアル用</td><td>ジェネシーサイエンティフィック</td><td>51-102W</td><td></td></tr><tr><td>酵母、パン屋乾燥アクティブ</td><td>MPバイオメディカル</td><td>101400</td><td></td></tr><tr><td>フライフード</td><td>実験室</td><td></td><td>で生産水、ビール酵母、コーンミール、糖蜜、寒天、EtOH、ペニシリン、メチル4-ヒドロ安息香酸、およびプロピオン酸の混合物</td></tr><tr><td>オスとメスショウジョウバエハエ(プロトコルで使用される遺伝子型:yw;P[Fz3-RFP, w+]/TM2)</td><td>ブルーミントン・ショウジョウバエ・ストック・センター</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

郭清およびショウジョウバエ蛹卵巣の汚損

Dissection and Staining of Drosophila Pupal Ovaries

大人のショウジョウバエ卵巣とは異なり蛹卵巣は比較的アクセスし、彼らの小型のため確認することは困難、サイズ、半透明、蛹のケース内で被覆。蛹卵巣の解剖の課題はまた蛹内の物理的な場所にある: 卵巣蛹腹部内脂肪体細胞に囲まれているし、これらの脂肪細胞は適切な抗体の汚損のため許可を削除必要があります。これらの課題を克服するためには、このプロトコルは、蛹の腹部からの脂肪体細胞を抽出するためのカスタマイズされたパスツール pipets を利用しています。また、蛹の可視性を改善するために染色のプロセス中に、カバーグラスチェンバーを遠心管の代わりに使用します。ただし、これらとこのプロトコルで使用するツールの他の利点にもかかわらず、これらの技術の実行が成功は、まだ蛹卵巣のサイズが小さいため練習のいくつかの日を伴うことがあります。このプロトコルに記載されているテクニックは、蛹の開発のさまざまな段階で卵巣を解析時間コース実験に適用でした。

この手順が正常に実行明確な抗体の汚損構造とショウジョウバエ蛹卵巣の細胞組織を明らかにする必要があります。このプロトコルで説明されている免疫組織化学は、幼生及び成体卵巣における一般染色の種類の細胞を識別するために使用できます。派生した蛹の茎の細胞群細胞18 (白ファシクリン III で説明します)、図 3に示します。蛹卵巣の細胞の組織を強調表示、に加えて (リン酸化ヒストン H3 染色図 3緑色で表示) などの細胞増殖に固有を汚す抗体を幹細胞と他の細胞分裂パターンの研究に使用できます。有糸分裂アクティブ セルの種類。共焦点顕微鏡の下で検査するとき蛍光抗体信号が弱ければ、にくい卵巣が蛹腹部の体脂肪が不足している抽出のための抗体を十分に公開されていなかったこと。別の可能性は、染色中に折りたたまれている蛹袋開くことかもしれません。
<p class="jove_content" fo:ke...

ショウジョウバエ卵巣は、幹細胞ニッチの開発を研究するためのエクセレント モデル システムです。幼虫及び成虫の卵巣を解剖するための方法を公開されている、蛹卵巣解剖詳しく公開されていない別のテクニックが必要です。ここでは、解離性、染色、および蛹卵巣をマウントするためのプロトコルを概説します。

Unlike adult Drosophila ovaries, pupal ovaries are relatively difficult to access and examine due to their small size, translucence, and encasing within a ...

この手順の全体的な目標は、ショウジョウバエの蛹の卵巣を解剖して染色することです。この方法は、モデル生物ショウジョウバエの幹細胞分化や組織発生に関連する問題など、生物学の発展における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、カスタマイズ可能なツールを使用して、他の方法では分離が困難な蛹の卵巣の小型で半透明の性質に対応することです。私たちは、彼の方法を使用して、蛹のショウジョウバエの発生中に卵巣の幹細胞分裂を追跡するために、タイムコース実験を行うというアイデアを持っていました。プロトコルを開始するには、酵母を補給した通常の豊富なフライフードのバイアルに、10匹のオスと15匹のメスの成虫ショウジョウバエを組み合わせます。卵が室温で3〜4日間幼虫に成長するのを待ちます。3〜4日後、柔らかい毛の湿った細いブラシを使用して、バイアルの壁に沿ってブラシで転がる動きをし、さまよう3番目の幼虫をバイアルからガラスウェルに移し、1Xリン酸緩衝生理食塩水またはPBSで縁まで満たします。幼虫から食物の残骸を洗い流し、1X PBSで満たされた別の井戸に移します。鉗子でオスとメスの幼虫を分離します。オスの幼虫は、前端から3分の2下の外側の脂肪体に埋め込まれた大きな丸くて半透明の精巣のペアによって識別されます。次に、井戸から少なくとも10匹の雌を集め、雌の幼虫を1X PBSで満たされた別の井戸に入れます。鉗子を使用して、雌の幼虫を酵母を補給した新鮮なフライフードの新しいバイアルに優しく移します。雌の幼虫が入ったバイアルを暗い場所に置いて、蛹化を促進します。一日中、幼虫の蛹化を監視します。各幼虫が葉化して前蛹に成長するにつれて、前蛹をバイアルに対して円で囲み、最初に前蛹に形成されるおおよその時間を記録します。ペスターピペットのガラス先端をブンゼンバーナーで溶かします。ガラスが溶けたら、鉗子を使用してチップをピペットの他の部分から水平に引き離し、より細いチップを形成します。冷却後、ピペットの先端の小さな部分を折って、きちんとした円形の開口部を形成します。ピペットのもう一方の端に電球を取り付け、ピペットに1X PBSをロードします。バイアルの壁に接着された蛹を収穫するには、蛹とバイアルの間の接触ゾーンに沿って少量の水滴を塗布します。タンパク質接着剤を1〜2分間溶かした後、湿らせた細いブラシで蛹を壁からそっと持ち上げます。1X PBSで満たされたウェルごとに1匹の蛹を移します。1対の鉗子で蛹の後端をつかみながら、もう1対の雌羊ケースの前部を蛹の頭が見えるまで慎重に引き裂きます。蛹の頭の最前端を鉗子でつかみ、蛹を蛹ケースからそっと引き出します。次に、蛹の前半分を後半分から分離して捨て、腹部嚢だけが残るまで捨てます。片手で鉗子で腹部嚢をウェルの底につかみ、もう片方の手で1X PBSを充

dissection-and-staining-of-drosophila-pupal-ovaries

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

開発時にどのようにニッチと幹細胞の形態は、実用的な意味を持つ重要な問題です。の...

の解剖と染色ショウジョウバエ幼虫卵巣

ショウジョウバエの蛹の腹部の免疫組織化学

ショウジョウバエの成体構造は、虚数円盤と呼ばれる袋のような構造に由来します。これらのディスクの解析により、組織決定、コンパートメント境界の確立、細胞増殖、細胞運命の仕様、平面細胞の極性など、多くの発生過程に関する洞察が得られます。このプロトコールは、光/蛍光顕微鏡用の架空ディスクを調製するために使用されます。...

解剖や成虫の免疫染色からキイロショウジョウバエ

この技術の目標は、研究者があらゆる年齢のショウジョウバエの眼板の解剖、免疫染色、および装着を行うことを可能にすることです。...

解剖と実装<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;蛹アイディスク

このプロトコルで説明されている直立イメージング法は、発育中のDrosophila melanogasterの卵の極の詳細な視覚化を可能にします。...

のアップライトイメージング<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;エッグチェンバース

アブラムシの胚に対する全量免疫染色のプロトコルが提示され、バックグラウンド染色の減少と組織透過性の増加のための重要な条件が対処されます。これらの条件は、アブラムシの胚組織におけるタンパク質発現を効果的に検出するために特別に開発されました。...

エンドウアブラムシ胚における免疫染色のための重要な条件の同定：組織透過性を増大し、バックグラウンド染色を減少

私たちは、解剖、固定、およびステロイドホルモンの生合成とその調節機構を研究するために、ショウジョウバエの幼虫と大人の女性のステロイド産生器官の免疫染色のためのプロトコルを記述します。ステロイド産生臓器に加えて、我々は、ステロイド産生器官の神経支配並びにそのような生殖細胞系列幹細胞のようなステロイド産生標的細胞を可視化します。...

フルーツフライで免疫染色でステロイド合成器官とそのインタラクティブ臓器を可視化するためのプロトコル<em&gt;キイロショウジョウバエ</em

ここでは、ショウ ジョウバエ...

後期胚 性ショウジョウバエ生殖腺 の解剖とライブイメージング

このプロトコルの目的は、ショ ウジョウバエ...

ライブイメージングを用いたショウジョウバエ卵チャンバに対する酸化損傷の効果の可視化

基底膜は、発生中の組織および器官の形態形成に不可欠である。この構造の適切な配置につながるメカニズムをよりよく理解するために、提示されたプロトコルは、共焦点および超解像顕微鏡法を用いて上皮細胞における基底膜タンパク質の細胞内輸送および分泌を視覚化および特徴付ける方法を記載している。...

ショウジョウバエの卵子形成期における分極細胞内輸送と基底膜タンパク質の分泌の共焦点および超解像イメージング

ショウジョウバエは、筋形成の基本的なメカニズムを理解するための強力なモデルです。胸部半切片の解剖と調製のためのこのプロトコルは、蛹と成虫の両方の段階からの間接飛行筋の顕微鏡分析を可能にします。このプロトコルは、細胞形態、タンパク質局在化、筋肉構造、および筋形成の他の複数の側面の共焦点イメージングを可能にします。...

顕微鏡アプローチのための ショウジョウバエ の間接飛行筋の解剖

学ぶショウジョウバエ蛹卵巣の郭清・染色・封入法。小さく透明な組織を扱うカスタムツールを用いて、幹細胞分化と組織発生を研究する詳細なプロトコルを習得できます。

郭清およびショウジョウバエ蛹卵巣の汚損

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