Name: 齧歯動物で勃起機能評価 Intracavernosal 圧記録 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-06T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: 学ぶ齧歯動物の勃起機能評価法。陰茎脚カテーテル挿入と海綿体神経電気刺激による陰茎内圧記録により、男性勃起障害の治療薬評価や血流動態変化の正確な測定が可能になります。

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この作品は、中央大学 (020814380018、020814380077)、中国奨学金議会 (CSC、号 201606195024)、江蘇省の自然科学財団 (BK20160138)、およびキー プロジェクトの基礎的研究資金によって支えられました。科学と技術開発財団、南京医科大学 (2014NJMUZD053) によってサポートされています。

1 歳 3 か月と 18 ヶ月歳 Sprague-dawley ラットは本研究で使用されました。すべての動物は、ケアと実験動物の使用のため NIH ガイドラインに従って処理されていました。動物を対象とする手順は、動物の苦痛を最小限に抑える努力をローカル機関動物のケアと倫理委員会によって承認されました。プロトコル承認機関動物ケアおよび使用委員会 (IACUC) 南京工科大学 (中国南京市) で。
ラットは彼らの年齢および ICP 記録前に勃起機能の APO 誘発テストの性能によると 2 つのグループに分けられた: 若い正常群 (YN グループ) や高齢者の勃起不全グループ (AE グループ)10。
1. 手術前に、の準備
<ol><li>手動でバイポーラ電極誘導記録 (図 1) のペアを作る。若干、電極の両端を曲げるし、1-2 mm 幅、図 1 aに示すように 2 つの電極間の距離を調整します。</li>
	<li>(図 1 a, B) 2 つのワニのクランプを使用して刺激に電極を接続します。</li>
	<li>
カテーテル システムの構築:まず、皮下 23 G 針をチューブと三方活栓に接続、活栓を圧トランスデューサーに接続します。次に、ヘパリン生理食塩水を提供するために必要な活栓の 3 番目の最後に 10 mL 注射器を接続します。</li>
	<li>ヘパリン生理食塩水 (200 U/mL) でシステム全体を充填後漏れを慎重に確認します。注射器チャネルまたは圧力トランスデューサー チャネル (図 1) を閉じるに三方活栓を入れます。</li>
	<li>木製の台のレベルを 20 cm の針を持ち上げます。記録 20 cm H2o. システムの圧力を調整しその後、記録システムの精度を検証する針の高さを移動します。校正を繰り返して精度を確認しました。</li>
	<li>動物実験施設から手術室にラットを転送し、少なくとも 30 分手術室に慣れることができます。</li>
	<li>オートクレーブの楽器が手術直前に 70% エタノールを散布します。</li>
</ol>2. 手術の手順
<ol><li>45 mg/kg 体重の投与量でナトリウム ペントバルビ タールの腹腔内注入ラットを麻酔し、5 ~ 10 分ピンチ適切な anesthetization を確認するつま先を待ちます。</li>
	<li>腹部と首の毛皮を電気シェーバーで剃る、加熱パッド、背中でラットを配置します。</li>
	<li>70% エタノールに浸した綿球に続いて 10% ポビドン ヨード ソリューションに浸した綿球で外科領域を拭いてください。また、目の乾燥を防ぐために眼軟膏を適用します。</li>
	<li>左頚動脈カテーテルを入れて下さい。<ol>
<li>首の皮膚を鉗子でつかんで首の真ん中に横切開します。筋肉を切開、左頚動脈を公開、慎重に船の 5 mm のセクションを分離します。</li>
		<li>慎重に鉗子を用いた迷走神経から頚動脈を分離、頚動脈の下で絹糸を描画し、船の尾の端に緩くネクタイを入れて、容器の頭蓋の端に別のタイトな結び目を作る。</li>
		<li>尾の方の血流を停止する縫合上ブルドッグ クランプと船をクランプします。</li>
		<li>慎重に顕微鏡ハサミで容器の切開をする、ミクロ解剖フックと鉗子の支援を受けて心臓に向かって動脈カテーテルを挿入します。</li>
		<li>それを確保するカテーテルの周り緩い尾字を固定します。血流を回復するブルドッグ クランプを削除します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
CN を分離し、電極を配置
	<ol>
<li>鉗子のペアで皮膚や腹部の筋肉を持ち上げます。解剖はさみ正中切開する陰茎に下腹部をカットします。</li>
		<li>腹部キャビティの上部の部分に綿棒で腸をそっと押し込みます。</li>
		<li>鉗子のペアで膀胱をつかみ、腹腔内から膀胱を引き出します。尿道の腹側の部分にある前立腺の腹側の葉を公開します。</li>
		<li>前立腺、精嚢、精管、前立腺の背側葉を公開する・腹側葉を引き出します。精管や前立腺の接着のポイントを見つけます。</li>
		<li>前立腺と輸精管間のスペースで区切ります。前立腺および輸精管の接合点の後方にあり、線維性の被膜を慎重に公開します。主な骨盤神経節 (図 2) を探します。 注: 主要な骨盤神経節と海綿状神経を前立腺の表面で見ることができます。</li>
		<li>滅菌綿棒で慎重に乾燥した CN 地域。慎重に分離し、バイポーラ電極を有する右海綿状の神経をフックします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
左の Crura カテーテルを入れて下さい
	<ol>
<li>解剖はさみでペニスの皮膚に小切開をカットし、慎重に陰茎のシャフトの皮膚をはぎ取る。</li>
		<li>横紋筋性の陰茎の筋肉を解剖します。恥骨の骨の上部の枝を見つけます。</li>
		<li>Spongious 電球を覆う球海綿体筋筋を公開します。</li>
		<li>カーブタイプ鉗子を使用して坐骨海綿体筋、球海綿体筋筋を分割します。</li>
		<li>慎重にカーブタイプ鉗子で坐骨海綿体筋を分離し、cru 海綿体の白い逃げずに公開する坐骨海綿体筋を切り取ります。</li>
		<li>Cru 海綿体の解剖学的の方向に続いて慎重に白逃げずを通じて cru 海綿体に針を挿入します。 注: これは成功したカテーテルの重要なステップです。少量のヘパリン生理食塩水を注入することができますと、針が正しく挿入されている場合、わずかな陰茎勃起を観察する必要があります。</li>
		<li>慎重に針をリリース、針や接続チューブの混乱の任意のスライディングを避けるため。任意の漏れを確認します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. CN を刺激します。
<ol><li>圧力信号記録用ソフトウェア プログラムを開き、圧力信号の記録を開始します。</li>
	<li>刺激のパラメーターを設定: 15 ヘルツ、5 ミリ秒、5 v のパルス幅と 60 s 期間。5 ms のパルス幅の 15 Hz の周波数で CN を刺激します。 注: ICP の急激な上昇は、電気刺激を適用しながら観察できます。</li>
	<li>刺激間隔残り 30 分を許可します。それぞれの動物の連続刺激の最大は 3 回です。</li>
</ol>4. 最後の手順
<ol><li>録音後、150 mg/kg 体重の投与量でペントバルビ タール ナトリウムの過剰摂取を注入することにより安楽死を管理します。ラットの死を確認するには、自分の血圧をチェックします。ラットを削除し、手術道具の清掃します。</li>
</ol>5. データの解析
<ol><li>保存し、ソフトウェアからデータをエクスポートします。応答は、一般的全身平均動脈圧 (地図) と ICP の比率として表されます。ピーク ICP/マップの比は、勃起機能評価を算出しました。</li>
	<li>少なくとも 5 つのラットからのデータをプールし、統計ソフトウェアで分析します。とき、違いは統計的に有意なあるp < 0.05、スチューデントの t 検定を使用します。</li>
</ol>

<ol><li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIH+Consensus+Conference.+Impotence.+NIH+Consensus+Development+Panel+on+Impotence%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">NIH Consensus Conference. Impotence. NIH Consensus Development Panel on Impotence.</a> JAMA. 270 (1), 83-90 (1993).</li>
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<li>Giuliano, F., Bernabe, J., Rampin, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Telemetric+monitoring+of+intracavernous+pressure+in+freely+moving+rats+during+copulation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Telemetric monitoring of intracavernous pressure in freely moving rats during copulation.</a> J Urol. 152 (4), 1271-1274 (1994).</li>
<li>Bernabe, J., Rampin, O., Giuliano, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracavernous+pressure+changes+during+reflexive+penile+erections+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Intracavernous pressure changes during reflexive penile erections in the rat.</a> Physiol Behav. 57 (5), 837-841 (1995).</li>
<li>Bernabe, J., Rampin, O., Sachs, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracavernous+pressure+during+erection+in+rats%3A+an+integrative+approach+based+on+telemetric+recording%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Intracavernous pressure during erection in rats: an integrative approach based on telemetric recording.</a> Am J Physiol. 276 (2 Pt 2), R441-R449 (1999).</li>
<li>Adachi, H., Kodama, K., Ishihara, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+erectile+response+by+continuous+measurement+of+penile+diameter+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of erectile response by continuous measurement of penile diameter in rats.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 41 (4), 147-152 (1999).</li>
</ol>

著者がある何も開示するには

ICP は、勃起機能の直接測定、信頼性の高い方法14。ICP、勃起と detumescence 時、応答等の期間のピーク ICP、基底 icp データの取得が高原をことができます。他のいくつかのインデックス パラメーターがあります測定パラメーターを直接これらのほか: ICP; ピーク時の 80% に達するとは (1)「T80」、時間(2)「D20」、時間ピーク ICP; の 20% に減少するには(3) の「ΔT80」、の T80; (毎秒) 圧増加率(4)"ΔD20"、減少率 D20 で (秒単位) の圧力で。これらのパラメーターは、病の影響を反映することができます、薬14,17の有効性の検討の各段階と ICP 応答の品質の定量化のため可能です。この ICP 記録方式は ED 動物モデルで広くされます。このプロトコルでは、若者や高齢者の ED ラットにおける ICP 応答を比較しました。海綿静脈洞部カテーテル経由で薬の投与が必要な場合は...

ED は達成または陰茎の勃起を維持することができないこととして定義され、一般的な男性の性的障害1となっています。実験動物は使用され、勃起機能2を調査する再現性のあるモデルを提供します。長い間、勃起機能3,4,5を調査するためいくつかのより大きい動物モデルを採用されています。齧歯動物が他の動物と比較して比較的小さいが、彼らはまた、いくつかの利点6を展示のための男性の勃起不全の研究のため使用します。まず、人間の形態と機能の性的特徴は齧歯動物で締めくくっています。第二に、エドの研究で使用されるより大きい動物と比較して、齧歯動物は、家を購入し、維持するより経済的です。第三に、遺伝子組み換えの齧歯動物モデルは、再現性とその後の行動と神経生理学的研究にメリットをもたらします。したがって、齧歯動物すぐに男性の勃起不全の研究で使用される主な動物となっています。
純粋な遺伝的背景と一貫した培養条件の恩恵、齧歯動物モデルは、一貫して再現性のあるデータ5,6,7、8を提供しています。(APO) アポモルヒネ勃起機能の多くの面に関連する多くの利用可能な研究の間で-誘発勃起反応試験と電気刺激による ICP 応答試験は確実に勃起を反映する最も広く使用されるメソッド9,10、11,12を機能します。ヒートンらによって開発された、勃起機能の APO 誘発テスト13日は、アポモルヒネ ラットへの投与が勃起とあくびを引き出すという現象を利用したバイオアッセイです。容易、非侵襲的、および安定したバイオアッセイ勃起機能を評価するため、として APO 誘発勃起機能テストは広く多くの研究に使用されます。ただし、この試金は勃起または関連付けられて勃起反応14の血流の動的変化の質を十分に反映されません。ICP 測定、クインランらが開発された当初15します。 この方法ではカテーテルは全身の血圧を測定する頸動脈に置かれ、ICP を記録する cru 海綿体に別のカテーテルを挿入。前に、または記録、血管作動性エージェントおよび/または主要な骨盤神経節 (MPG) の電気刺激誘導中に CN もよくラット14に行われたか。この試金は、ED の治療と薬を評価するための信頼性の高いツールをされているし、将来6重要な評価方法として多分使用されます。
APO 誘発勃起機能を簡単に実行テストに比べると、巧妙な誘導録音詳細、実践、そして操作方法への付着に注意が必要。したがって、ここでは、ICP の記録を実行する方法の詳細な説明いたします。

<table><tbody><tr><td>Animal</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ラット</td><td></td><td></td><td>株:Sprague-Dawley 年齢:2-3ヶ月</td></tr><tr><td>ラット</td><td></td><td></td><td>株:Sprague-Dawley 年齢:15-18ヶ月</td></tr><tr><td>名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号</strong</td><td><>strong>コメント</td></tr><tr><td>Reagents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>生理食塩水</td><td>Sigma-Aldrich、S7653</td><td></td> 蒸留<td>水に 8.5 グラムの塩化ナトリウムを溶解</td></tr><tr><td>ペントバルビタールナトリウム溶液</td><td>Sigma-Aldrich、P3761</td><td></td> 1 <td>グラムを 100 ml 生理食塩水</td></tr><tr><td>に溶解 ポビドンヨード</td><td>BTP Pharmaceutical Co. Limited</td><td></td><td>10% (V/V)</td></tr><tr><td>エタノール</td><td>中国国立製薬グループコーポレーション(SINOPHARM)</td><td></td><td>70%(V / V)</td></tr><tr><td>ヘパリン</td><td>シグマ-アルドリッチ、H3149</td><td></td>は<td>、20000Uヘパリンを100ml生理食塩水</td></tr><tr><td>に溶解します名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号</strong<></td><td>strongstrong>コメント</td></tr><tr><td>材料</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>皮下注射針</td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd.&nbsp;</td><td>23G</td><td></td></tr><tr><td>シリンジ</td><td>山東Weigaoグループメディカルポリマー株式会社</td><td>10 ml</td><td></td></tr><tr><td>三方活栓</td><td>成都楽器工場</td><td>TSK01</td><td></td></tr><tr><td>電極</td><td>成都楽器工場</td><td>JST-1</td><td></td></tr><tr><td>カテーテルチューブ</td><td>成都楽器工場</td><td>PE-10、PE-50</td><td></td></tr><tr><td>手術はさみ</td><td>上海操作機器工場</td><td>J22010、J22020</td><td></td></tr>眼<tr><td>科手術ハサミ</td><td>上海手術機器工場</td><td>Y00010、Y00020</td><td></td></tr>眼<tr><td>鉗子</td><td>上海手術機器工場</td><td>JD1010、JD1020</td><td></td></tr><tr><td>マイクロシザー</td><td>ズワールド精密機器</td><td>WAA260</td><td></td></tr><tr><td>シルク縫合</td>山<td>東偉高グループメディカルポリマー株式会社&nbsp;</td><td>5-0</td><td></td></tr><tr><td>名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stimulator</td><td>Nanjing medease science and technology co. ltd(モデル4C501H)</td><td></td><td>15 Hz、5 msパルス、5 V、60 s持続時間、5分間隔</td></tr><tr><td>マルチチャンネル信号収集処理システム</td><td>南京メディーズ科学技術有限公司(モデル4C501H)</td><td></td><td>血圧モデル</td></tr><tr><td>圧力トランスデューサ</td><td>北京新杭興Yeテクノロジートレーディングカンパニーリミテッド(モデルYP100)</td><td></td><td>40KPa</td></tr></tbody></table>

齧歯動物で勃起機能評価 intracavernosal 圧記録

Intracavernosal Pressure Recording to Evaluate Erectile Function in Rodents

勃起不全 (ED) は達成するか、陰茎の勃起を維持することができないこととして定義され、この流行している男性の性的障害となっています。齧歯動物は、勃起機能の生理学・病理学を研究する多くの研究により雇われています。齧歯動物で勃起機能は intracavernosal 圧力 (ICP) を測定することによって評価できます。実習では、次の (CNs) の海綿状の神経への電気刺激誘導を監視できます。(平均動脈圧) 頸動脈の動脈の圧は、誘導のための参照として使用されます。ICP プロトコルを記録を使用して、ICP 応答曲線から勃起機能の多くの重要なパラメーターを測定できます。ICP 測定アポモルヒネ誘発勃起テストより多くの情報を提供しています、このメソッドに勃起機能を評価する最も人気のある 1 つを作る、海綿体テレメトリ監視よりも安いです。巧妙な誘導録音 APO 誘発勃起機能を簡単に実行テストと比較して、しかし、詳細、実践、そして操作方法への付着に注意が必要です。この作品は、ラットにおける ICP 記録への入門は効率的に手順を補完するために提供しています。

数多くの研究は、高齢者でその勃起不全を示している男性共通の問題となっています。しかし、医療は加 ED16の管理に制限されます。加 ED の齧歯動物モデルは、多くの治療法は高齢ラットの勃起機能にテストされます。我々 が上記で紹介した、ICP 録音テスト勃起機能の潜在的な治療や薬の効果を定量化する貴重なもである実験動物の総人口から ED の動物を区別するために使用可能性があります。
図 3 aに示すように、ED グループ (高齢者編ラット、AE、18 ヶ月歳) の典型的な ICP 応答曲線だったコントロール グループのカーブ (若い正常ラット、YN、3 ヶ月前) よりはるかに低かった。通常、最高の ICP は統計分析のために選ばれました。5 ラットからプールされたデータ, ICP/マップ比では AE グループ ICP/マップの比率を算出した後も減少大...

Intracavernosal 圧記録 (ICP) は、実験動物の勃起機能を評価する重要な方法です。ここでは、ICP の記録手順の crura ペニスを catheterizing とラットの海綿状の神経を電気刺激により詳細なプロトコルを示す.

齧歯動物で勃起機能評価 Intracavernosal 圧記録

Erectile dysfunction (ED) is defined as the inability to attain or keep an erection of the penis, and this has become a prevalent male sexual disorder. ...

この手順の全体的な目標は、ラットの勃起機能をテストすることです 海綿体をカテーテル法で固定し、海綿体神経の刺激後の海綿体内圧を記録します。この方法は、勃起不全の治療法や薬の評価など、男性の勃起不全分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。したがって、この技術の利点の1つは、勃起機能と反射、勃起反応に関連する血流の動的な変化をより正確に評価できることです。海綿体骨の白い内膜の小さな領域が陰茎の核に針を挿入するのを困難にするため、カテーテル法を学ぶのが難しいため、この方法の視覚的なデモンストレーションは重要です。手術の準備として、海綿体内圧記録用のバイポーラ電極を一対作ります。電極の端を少し曲げて、電極間の距離を1〜2ミリメートルに調整します。次に、2つのワニクランプを使用して電極を刺激装置に接続します。次に、カテーテルシステムを組み立てます。まず、チューブを使用して、皮下注射の23ゲージ針を三方活栓に接続します。次に、ストップコックを圧力トランスデューサーに接続します。次に、ヘパリン生理食塩水を充填した10ミリリットルの注射器をストップコックの3番目の位置に取り付けます。次に、システム全体にヘパリン生理食塩水を入れ、漏れがないか確認します。次に、針を20センチ持ち上げ、記録システムを20センチメートルの水に校正します。キャリブレーション後、針の高さを調整し、記録システムの精度を確認してください。必要に応じて、精度が確認されるまでキャリブレーションを繰り返します。次に、ラットを動物施設から手術室に移し、少なくとも30分間部屋に順応させます。その間、手術器具を70%エタノールで滅菌し、必要な手術材料を準備します。30分後、最初のラットを手術のために準備します。ペントバルビタールナトリウムで麻酔し、5〜10分間待ちます。次に、ラットのつま先をつまんで反射がないことを確認し、適切な麻酔がかかっていることを確認します。次に、腹部と首から毛皮を剃り、ラットを仰臥位にして手術用ボードの上に置きます。次に、露出した皮膚を10%ポビドンヨードと70%エタノールを交互に3回入れたスクラブで拭きます。また、眼の乾燥を防ぐために眼科用軟膏を塗布します。その後、手術を進めます。海綿状神経を分離する前に、テキストプロトコルに従って左頸動脈をカテーテル接続します。一対の鉗子で腹部の皮膚と筋肉を持ち上げることにより、神経分離を開始します。次に、はさみで、下腹部から陰茎まで正中線を切開します。次に、腸をそっと脇に動かして腹腔の上部に入ります。次に、一対の鉗子で膀胱をつかみ、腹腔から引き出します。次に、尿道の腹側部分にある前立腺の腹側葉を見つけます。次に、腹側葉、精嚢、輸精管を引き抜いて、前立腺の背葉を露出させます。次に、輸精管と前立腺の癒着点を見つけます。次に、前立腺と輸精管の間のスペースを分離

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

ボリューム圧力記録、テールカフ法を用いたマウスにおける測定血圧

頭蓋骨内の圧力を記録するための新たな手法が記載されています。低侵襲の方法では、正確に重要な脳外傷を引き起こすことなく、麻酔ラットの頭蓋内圧（ICP）を測定する光ファイバ圧力検出システムを使用しています。技術は、実験モデルの広い範囲で使用することができます。...

光ファイバ圧力トランスデューサを使用したラットの硬膜外頭蓋内圧測定

このビデオは、ラットの動脈圧の変化に応答した腎交感神経(RSN)の活動を研究する技術を示しています。大腿動脈に感圧カテーテルを装着すると、腎交感神経が露出します。次に、神経は記録電極上に持ち上げられ、その電気的活動が記録されます。次に、血管収縮薬を注射して血圧を上昇させ、対応するRSN活性の変化を監視します。...

ラットにおける動脈圧応答性腎交感神経活動の変化の記録

このビデオは、海綿体内の血圧変化を研究するために、麻酔をかけたラットの海綿体神経の分離と刺激を示しています。...

海綿体内圧を測定するためのラットの海綿状神経刺激の実施

この原稿は、妊娠中の子宮内圧を測定する目的でマウスにテレメーターを埋め込むためのプロトコルを提供します。...

マウス収縮圧力を測定するために子宮内テレメトリ<em&gt;インビボ</em

麻酔下のマウスを表わす非生理的全身血圧血圧と自律神経の密接な関係を与え自律神経の調子の意味のある評価を排除します。したがって、同時に腎交感神経活動と意識下マウスにおける静脈内投与による血圧の新しい手法を説明します。...

腎交感神経活動と意識、持続静脈内投与による血圧の同時記録への新しいアプローチ気ままなマウス。

このプロトコルは最初外尿道括約筋電極と第二に、膀胱と尿道の外部関数の測定と組み合わせて膀胱カテーテルの永久的な注入の手術を記述します。注入の目がさめている動物で括約筋。...

注入カテーテル電極の繰り返し測定を可能にすると目がさめているラットの膀胱内圧測定と外部尿道括約筋の測定

本研究は、手術手順の簡略化と神経電極の絶縁の海綿状の神経刺激を実行する方法について説明します。...

海綿神経刺激とラットの海綿静脈洞部の圧力の記録

ここでは、動物施設で標準的な装置で行うことができますし、生理学的または薬理学的に適用することができます実験のラットの心電図検査と動脈内の血圧 (BP)...

心電図の同時記録と侵襲的血圧ラットにおける測定

このプロトコルは、麻酔をかけたげっ歯類の膀胱の内腔におけるATP濃度を測定するための手順を説明しています。...

インビボ げっ歯類における膨満誘発性尿路上皮ATP放出の内腔測定

学ぶ齧歯動物の勃起機能評価法。陰茎脚カテーテル挿入と海綿体神経電気刺激による陰茎内圧記録により、男性勃起障害の治療薬評価や血流動態変化の正確な測定が可能になります。

齧歯動物で勃起機能評価 Intracavernosal 圧記録

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