2018年1月24日
ステージングの蛹期間およびショウジョウバエ guttiferaの翼色素沈着の測定のためのプロトコルを説明します。ステージングと色素沈着の定量化アダルト形質の発達のメカニズムを研究するための強固な基盤を提供して形質の開発に関する種間比較を有効にします。
この実験の全体的な目標は、蛹の期間をステージングし、ショウジョウバエの翼の色素沈着を測定することです。この方法は、ショウジョウバエの色素沈着パターンがどのように発達するかなど、進化発生生物学分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、形態学的発達と色素沈着プロセスに関する詳細な情報を取得できることです。
この方法は、ショウジョウバエguttiferaの形態学的発達と色素沈着プロセスについての洞察を提供することができますが、他のショウジョウバエ種にも適用できます。蛹の除去を開始するには、ペーパータオルに両面テープを貼り付けます。腹側を上にして、両面テープに蛹を置きます。
蛹の前面と内部の蛹の間のスペースを見つけます。鉗子を使用して、この隙間の周りの蛹をつかんで取り除きます。そして、蛹の頭の前面を露出させます。
鉗子の先端を前後軸と平行に動かして挿入します。鉗子の先端を持ち上げて、蛹を局所的に壊します。破損が蛹の後部に達するまで、このアクションを繰り返します。
蛹と蛹の脚の間に隙間が形成されていることを確認してください。そして、内部の蛹への損傷を最小限に抑えながら、蛹の腹側を壊します。蛹をできるだけ壊した後、細い絵筆を使って蛹を取り出します。
ddH2Oで湿らせたティッシュペーパーの上に蛹を置き、プラスチック製のペトリ皿に入れます。露出した蛹は脆弱で乾燥しやすいため、すぐに写真を撮ります。画像の準備を進め、鉗子で蛹の前部を切除します。
蛹を取り出し、プラスチック製のペトリ皿に入れたリン酸緩衝生理食塩水(PBS)に入れます。次に、翼の基部を切断します。翼を折りたたんだ状態で、ddH2Oを充填したプラスチック製のシャーレに入れ、浸透圧で翼を伸ばします。
新たに閉じた成虫を10分ごとにストックファイルから収集します。CO2麻酔パッドを使用してハエに麻酔をかけます。動かない状態で麻酔を確認し、翼の基底関節を切断します。
スライドガラスに10マイクロリットルのPBSを落とします。翼をドロップに置きます。そして、ドロップをカバースリップで覆います。
次に、実体顕微鏡のライトをONにして、最大に設定します。対物レンズを11.5倍に設定し、絞りを最も開いた状態に設定します。次に、カメラの電源を入れてカメラをセットします。
顕微鏡のフォーカスノブを動かして、サンプルに焦点を合わせます。リモコンのシャッターボタンを押して撮影します。カンパニフォームセンシラムを中心として、翼の遠位部を左側に、翼の内側を上側に配置した翼の画像を撮ります。
カンパニフォームセンシラムスポットを中央にした画像を開きます。[イメージ]、[タイプ 1]、[8 ビット] の順にクリックし、イメージを 8 ビット イメージに変換します。エリア選択ツールで長方形をクリックし、長方形を描きます。
長方形の右側を、カンパニフォームセンシラムスポットの右側にセットします。[編集]、[選択]、[マネージャに追加] の順にクリックし、[すべて表示] 列をオンにします。次に、線選択ツールの角度ツールをクリックします。
3番目の縦静脈の後線に最初の線を引きます。線の左端点を、前に描画した四角形の頂点に設定します。長方形の上側に 2 本目の線を引きます。
Mキーを押して、このステップで描かれた2本の線の間の角度を測定します。コンピューターの画面上の画像のウィンドウをクリックします。「編集」(Edit)、「選択」(Selection)、「マネージャに追加」(Add to Manager) の順にクリックします。
領域選択ツールで長方形をクリックし、画像ウィンドウの約1/9のサイズの長方形を描きます。Edit(編集)、Selection(選択)、Rotate(回転)をクリックします。以前に測定した角度のマイナス度を[角度]列に書き、[OK]をクリックして、この手順で描画した長方形を回転させます。
矢印キーを使用して描画した四角形を移動し、四角形の左側に 2 番目の縦静脈の後線の端点を設定します。そして長方形の下側は、3番目の縦静脈の後線に取り付けます。第2縦静脈の端点から第3縦静脈の後線まで垂線が引かれたことを確認した。
垂直線の足を点Aとして定義します。ポイントAにカーソルを置くときに、以下のエリア選択ツールに示されているポイントAのX座標とY座標を記録します。ポイントAを中心にして画像を開きます。[イメージ]、[タイプ]、[8 ビット] の順にクリックして、イメージを 8 ビット イメージに変換します。エリア選択ツールで長方形をクリックし、画像ウィンドウの約1/9のサイズの長方形を描きます。
「編集」(Edit)、「選択」(Selection)、「指定」(Specify) の順にクリックします。楕円形と中央揃えの列を確認します。幅と高さの列に 100 ピクセルを書き込みます。
X座標列に点AのX座標を書き込み、Y座標列に点AのY座標を書き込み、[OK]をクリックします。次に、「分析と測定」をクリックします。キャリブレーションがすでに終了している場合は、ODが平均列に示されます。複数のステージのデータを比較したところ、ステージP12は色素沈着の発症タイミングであり、脱落後12時間で色素沈着が完了することがわかりました。
その開発後、この技術は、進化発生生物学の分野の研究者がショウジョウバエ種間の蛹の発達と色素沈着プロセスの違いを調査する道を開きます。
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本記事では、Drosophila guttiferaの蛹期のステージングおよび翅の色素沈着の測定プロトコルについて解説します。これらの手法は、成体の形質の発生メカニズムに関する知見を提供し、種間比較を可能にします。
Drosophila guttiferaにおける蛹期の正確なステージングと翅の色素沈着の定量測定により、堅牢な比較発生学的研究が可能となり、初期探索におけるメカニズムのリスク低減がサポートされます。これらの手法は、進化発生生物学におけるターゲット検証およびパスウェイ解析に不可欠な、標準化され再現性のあるアウトプットを提供します。このアプローチは、表現型主導の研究および種間形質解析における予測の信頼性を高めます。
本手法は、初期の開発段階から定量的な表現型解析に至るまでの発見の連続性に統合されており、必要に応じてリード化合物の同定や前臨床モデルの選択を支援します。