Name: インタラクトーム Seq: Domainome ライブラリーの構築、検証およびバクテリオファージの表示と次世代シーケンシングによる選択のプロトコル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-10-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 4 s
Description: 学ぶドメイノームライブラリーの構築と検証、ファージディスプレイによるタンパク質選択、次世代シーケンス解析の手法。タンパク質相互作用ネットワークの研究に応用可能です。

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この作品は、イタリア教育省と大学からの補助金によって支えられた (CP に 2010P3S8BR_002)。

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高品質非常に多様な Orf フィルター ライブラリの作成以来、それはパイプラインのすべての後続の手順に影響を与える全体の手順の最初の重要なステップであります。
本手法の有利な特徴は (intronless) DNA (cDNA、ゲノム DNA、派生した PCR または合成 DNA) の任意の元は図書館の建設に適しています。考慮するべきである最初のパラメーターは、pFILTER ベクターにクローニング DNA 断片の長さがゲノム ・ トランスクリプトーム、いわゆる"domainome"ドメインの全体のコレクションの表現を提供する必要があります。これはラインの報告は、タンパク質ドメイン正常に複製することができます、選択および、長さ分布 150 からにまたがる 750 bp33,34, DNA のフラグメントから始まって最後に識別できたほとんどのタンパク質ドメイン 100 aa の長さのことを示す文献 (50 から 200 までの範囲で aa)<sup class="xr...

ここでは、建設と任意の遺伝子/ゲノム開始ソースから折り返しと可溶性タンパク質ドメインの図書館の選択のための高スループット方法をについて説明します。3 種類のテクノロジーを組み合わせて方法: バクテリオファージの表示、データ分析のため折りたたみ記者と次世代シーケンシング (NGS) 特定の web ツールの使用。識別と新しいタンパク質/タンパク質ドメインのアノテーションの定義と同様、知られている蛋白質の構造と機能特性の評価のため蛋白質ベースの研究の多くの異なった文脈でメソッドを使用できます。タンパク質間相互作用ネットワーク。
蛋白質ベースの研究に多くの未解決の問題があるまだ最適なタンパク質生産技術の開発、調査のいくつかのフィールドの重要な必要性。たとえば、原核生物と真核生物のゲノム1の何千もの可用性、にもかかわらずコード化されたタンパク質・ ペプチドの直接アノテーション付き相対プロテオームの対応するマップはまだ不足している生物の大多数のため。完全なプロテオームのカタログは、時間とリソースの面で多大な努力を必要とする挑戦的な目標として現れています。すべて、開いたリーディング ・ フレーム (ORFs)、ゲノムのと呼ばれる"ORFeome"の構築のクローニング実験的アノテーションのゴールド スタンダードのままです。通常遺伝子の機能は知られている活動の関連遺伝子に相同性に基づいて割り当てられているが、この手法は不十分な参照のデータベース2,3,4、多くの不適切な注釈の存在のために正確 5。また、識別されていると、注釈が付けられた蛋白質のためもさらなる研究が豊富な構造特性と機能を含む別のコンテキストでの発現パターンの観点からの評価を達成するために必要なだけでなく相互作用のネットワーク。
さらに、蛋白質は、それらのそれぞれ異なるドメインから構成研究とこれらのドメインの正確な定義により包括的な画像、シングルで両方をできる特定の機能を示し、異なるタンパク質機能に貢献すること、遺伝子と全ゲノムのレベルで。このすべての必要な情報は、広く、やりがいのあるフィールドを蛋白質ベースの研究になります。
このような観点で蛋白質の生産のための公平かつ高スループット方法から重要な貢献を与えられます。ただし、かなりの投資が必要の横にある、このようなアプローチの成功は、水溶性/安定な蛋白質の構造を生成する能力に依存します。これは主要な制限の要因に蛋白質の約 30% が正常に表現し、実験的役に立つ6,7、8に十分なレベルで生産、それが推定されているので。この制限を克服するためのアプローチは、個々 の遺伝子の重複フラグメント表現を一緒に提供する別のポリペプチドを生成するランダムに断片化された DNA の使用に基づきます。それらの大多数 (終止コドンをシーケンス内の存在) のための機能性または非天然 (元以外のフレームで ORF) 用にエンコードしながら、ランダムに生成された DNA のフラグメントのわずかな割合、機能 ORFsない生物学的意味を持つポリペプチド。
当社グループはこれらの問題に対処するゲノム スケールの9,10、11,12に使用できるハイスループット蛋白質・表現と相互作用・解析・ プラットフォームを開発しました。このプラットフォームは、次のテクニックを統合: 1); 任意の有機体から DNA のコーディングの部分から正しく折られた蛋白質のドメインのコレクションを選択する方法2) ファージディスプレーの相互のパートナーを選択するため完全に調査の下で全体のインタラクトームを特徴付けるし、関心のクローンを識別する 3) NGS・ 4) ユーザー バイオインフォマティクスやプログラミングのスキルなし簡単で使いやすい方法で Seq インタラクトーム解析を実行するためのデータ解析のための web ツール。
このプラットフォームの利用調査の代替戦略上の重要な利点を提供しています。上記のすべてのメソッドは完全に公平な高スループット、および全ゲノムまで単一の遺伝子に至る研究のモジュール。パイプラインの最初のステップは、深く NGS によって特徴付けられる、調査の下でランダムに断片化された DNA からライブラリの作成です。このライブラリは、ペリプラズム空間 (すなわち、Sec リーダー) 蛋白質の分泌をシグナル配列と TEM1 β-ラクタマーゼ遺伝子間の興味の遺伝子/断片のクローン、組み換えベクターを使用して生成されます。融合タンパク質がアンピシリン抵抗性とクローンの断片がフレームの場合にのみ、アンピシリンの圧力の下で生き残るために能力を与えるこれらの要素とその結果の融合タンパク質が正しく折りたたまれた10,13 、14。すべてのクローンと呼ばれる「フィルターのクローン」抗生物質の選択後に救出 ORFs、それら (80% 以上) の大多数、実際遺伝子9から派生しました。さらに、この戦略の力は、すべてのフィルター ORF クローンが正しく折り返されて/水溶性蛋白質/ドメイン15エンコーディングが所見であります。ライブラリと同じ地域/ドメインのマッピングの存在の多くのクローンがある異なる開始点と終了点は、この水溶性製品で発生する可能性が最小の断片の公平なシングル ・ ステップの識別できます。
技術のそれ以上の改善は、ライブラリを特徴付ける NGS の使用によって与えられます。このプラットフォームとデータ解析のための特定の web ツールの組み合わせを与えるさらに広範な分析を必要とせず研究下参照 DNA に関する重要な公平な情報正確な塩基配列と選択された ORFs の場所または実験的努力。
Domainome ライブラリは、選択のコンテキストに転送し、機能研究を実行する汎用計測器として使用できます。高スループット蛋白質表現と相互作用解析プラットフォーム統合、phagemid ベクトルにフィルターの ORF を転送し、バクテリオファージ ORF の作成によってバクテリオファージの表示技術の活用インタラクトーム Seq と呼ばれるライブラリ。一度再バクテリオファージ ディスプレイ コンテキスト、ドメインが M13 粒子の表面に表示されているタンパク質に複製この方法で、特定の酵素活性を持つドメインをエンコードまたはバインディング プロパティ、プロファイル インタラクトーム ネットワークことができます遺伝子断片の domainome ライブラリを直接選択できます。このアプローチは、Zacchiらによって見出されました。16後でいくつか他のコンテキスト13,17,18。
(質量19、20酵母 2 ハイブリッド系など) 蛋白質蛋白質の相互作用を研究するために使用する他の技術と比較して、1 つの主要な利点はバクテリオファージの中に発生する結合パートナーの増幅選択範囲の複数回が表示されます。したがって低豊富な結合蛋白質のドメイン ライブラリの存在の識別を許可選択感度が向上します。ORF フィルター ライブラリで実行される選択の効率は非機能的なクローンの不在のため増し。最後に、技術は蛋白質および非蛋白質餌21,22,23,24,25に対して実行するを選択できます。
Domainome バクテリオファージのライブラリを使用してファージを選択は、餌として自己免疫疾患13がんや感染症など、病理学的条件の異なる患者の血清に由来する抗体を使用して実行できます。このアプローチを使用して、大規模を識別し、特に同時に患者の抗体によって認識される抗原/エピトープを特徴付けるように調査の下で疾患のいわゆる「抗体署名」を取得。他の方法と比較して、使用のバクテリオファージの表示により、線形および立体配座抗原エピトープの同定。特定の署名の識別には、病態理解、新しいワクチン デザイン、新しい治療標的の同定、新しいと特定診断と予後ツールの開発の重要な影響があります。また、感染症に関する研究をフォーカスすると、主要な利点ということです免疫原性タンパク質の検出病原体栽培から独立しました。
我々 のアプローチは、"domainome"を選択するゲノム スケールで折りたたみの記者が使える確認: DNA のコーディングの部分から正しく折られた、よく表現、可溶性タンパク質ドメインやすべての生物からの cDNA のコレクション。一度分離タンパク質断片が遺伝子アノテーションと同様構造の研究、抗体のエピトープ マッピング、抗原の同定などの本質的な実験的情報を提供する多くの目的のため役に立つ。NGS によって提供される高スループット データの完全性は、バクテリオファージの表示ライブラリなどの非常に複雑なサンプルの分析を可能し、伝統的な骨の折れるピッキングと救出された個々 の phage クローンのテストを回避する潜在性を保持します。
同時に極端な感度と NGS 解析の力し、フィルター処理したライブラリの機能のおかげで、それはそれぞれの相互作用を作成することがなく、最初の画面に直接責任がある蛋白質のドメインを識別することが可能それぞれの追加のライブラリは、タンパク質をバインドされています。NGS は、任意の遺伝子/ゲノム開始ソースの全体の domainome の包括的な定義を取得することができます、データ分析 web ツールにより、特異性の高い特性両方の定性・定量用のポイントのビューからの入手、インタラクトーム蛋白質のドメイン。

<table><tbody><tr><td>Sonopuls 超音波ホモジナイザー</td><td>Bandelin</td><td>HD2070</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>GeneRuler 100 bp Plus DNA Ladder</td><td>Thermo Scientific</td><td>SM0321</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>GeneRuler 1 kb DNA Ladder</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>SM0311</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>Molecular Biology</td><td>Agarose BioRad</td><td>161-3102</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>Green Gel Plus</td><td>Fisher Molecular Biology</td><td>FS-GEL01</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>6x DNA ローディング色素</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>R0611</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>QIAquick Gel Extraction Kit</td><td>Qiagen</td><td>28704</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>Quick Blunting Kit</td><td>New England Biolabs</td><td>E1201S</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop 2000 UV-Vis 分光光度計</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>ND-2000</td><td></td></tr><tr><td>大容量cDNA逆転写キット</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>4368813</td><td></td></tr><tr><td>ストレプトアビジン磁気ビーズ</td><td>New England Biolabs</td><td>S1420S</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>QIAquick PCR精製キット</td><td>Qiagen</td><td>28104</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>EcoRV</td><td>New England Biolabs</td><td>R0195L</td><td></td></tr><tr><td>Antarctic Phosphatase</td><td>New England Biolabs</td><td>M0289S</td><td></td></tr><tr><td>T4 DNAリガーゼ</td><td>ニューイングランドバイオラボ</td><td>M0202T</td><td></td></tr><tr><td>酢酸ナトリウム3M pH5.2</td><td>一般的なラボサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>分子生物学用エタノール</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E7023</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>DH5aF 'バクテリア細胞</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,2mlチューブ</td><td>一般的なラボサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1,5 mlチューブ</td><td>一般的なラボサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,1 cm エレクトロポレーションキュベット</td><td>Biosigma</td><td>4905020</td><td></td></tr><tr><td>Electroporator 2510</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>2x YT medium</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Y1003</td><td></td></tr><tr><td>Ampicillin ナトリウム塩</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9518</td><td></td></tr><tr><td>Chloramphenicol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C0378</td><td></td></tr><tr><td>DreamTaq DNAポリメラーゼ</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>EP0702</td><td></td></tr><tr><td>デオキシヌクレオチド(dNTP)溶液ミックス</td><td>New England Biolabs</td><td>N0447S</td><td></td></tr><tr><td>96ウェルサーマルサイクラー(加熱蓋付き)</td><td>一般ラボサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>150 mmプレート</td><td>一般ラボサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>100 mmプレート</td><td>一般ラボサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>グリセロール</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5516</td><td></td></tr><tr><td>BssHII</td><td>New England Biolabs</td><td>R0199L</td><td></td></tr><tr><td>NheI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0131L</td><td></td></tr><tr><td>QIAprep Spin Miniprep Kit</td><td>Qiagen</td><td>27104</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>M13KO7 ヘルパーファージ</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>27-1524-01&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>ストレプトマイセス・カナマイセチカス由来の硫酸カナマイシン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>K1377</td><td></td></tr><tr><td>ポリエチレングリコール(PEG)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5413</td><td></td></tr><tr><td>クロライドナトリウム(NaCl)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3014</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>ジェネラルラボサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dynabeads Protein G for Immunoprecipitation</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>10003D</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>MagnaRack Magnetic Separation Rack</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>CS15000</td><td>または同等の</td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1379</td><td></td></tr><tr><td>Nonfat Dried milk powder</td><td>EuroClone</td><td>EMR180500</td><td></td></tr><tr><td>KAPA HiFi HotStart ReadyMix&nbsp;</td><td>Kapa Biosystems、Fisher Scientific</td><td>7958935001</td><td></td></tr><tr><td>AMPure XP ビーズ</td><td>Agencourt、Beckman Coulter</td><td>A63881</td><td></td></tr><tr><td>Nextera XT デュアルインデックスプライマー</td><td>Illumina</td><td>FC-131-2001 または FC-131-2002 または FC-131-2003 または FC-131-2004</td><td></td></tr><tr><td>MiSeq または HiSeq2500</td><td>Illumina</td><td></td><td></td></tr><tr><td>分光光度器</td><td>Nanodrop</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AgilentバイオアナライザーまたはTapeStation</td><td>Agilent</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forward PCRプライマー</td><td>一般ラボサプライヤー</td><td></td><td>5'TACCTATTGCCTACGGCA GCCGCTGGATTGTTATTACTC 3'</td></tr><tr><td>リバースPCRプライマー一般</td><td>ラボサプライヤー5</td><td></td><td>'TGGTGATGGTGAGTACTA TCCAGGCCCAGCAGTGGTTG 3'</td></tr><tr>NGS<td>一般ラボサプライヤー</td><td></td><td>用フォワードプライマー</td><td>5'TCGTCGGCAGCGTCAGA TGTGTATAAGAGACAGGCA GCAAGCGGCGCGCATGC 3';</td></tr><tr>NGS<td>一般ラボサプライヤー</td><td></td><td>用リバースプライマー</td><td>5'GTCTCGTGGGCTCGGAGA TGTGTATAAGAGACAGGGG ATTGGTTTGCCGCTAGC 3';</td></tr></tbody></table>

インタラクトーム seq: domainome ライブラリーの構築、検証およびバクテリオファージの表示と次世代シーケンシングによる選択のプロトコル

Interactome-Seq: A Protocol for Domainome Library Construction, Validation and Selection by Phage Display and Next Generation Sequencing

折りたたみ記者、不十分な蛋白質またはランダムの開いたリーディング ・ フレームを折りに融合、その折りたたみそして機能が侵害された抗生の抵抗などのわかりやすい表現型を持つ蛋白質であります。、ゲノム スケールの TEM 1 β-ラクタマーゼ (アンピシリン耐性酵素) を使用して、我々 選択することが正しく折られた蛋白質ドメインのコレクションすべて intronless ゲノムの DNA のコーディングの部分から戦略を開発しました。呼ばれる"domainome"は、このアプローチによって得られるタンパク質の断片はよく表現された水溶性、構造・機能の研究に適してになります。
クローニングとファージ ディスプレーに直接"domainome"を表示する、我々 ことを示した (例えば、他の蛋白質に抗体)、目的の結合プロパティを持つ特定のタンパク質ドメインを選択することが可能不可欠提供実験的遺伝子アノテーションまたは抗原同定.について
選択したポリクローナル人口の最も豊かなクローンの識別は、新しい次世代シーケンシング技術 (NGS) を使用して実現できます。これらの理由から、ライブラリ自体の多様性、豊かさと選択したフラグメントのそれぞれの正確なマッピングに関する完全な情報を提供する選択出力のディープ シーケンス解析を紹介する.ここで紹介するプロトコルは、ライブラリーの構築、評価、検証にキーの手順を示します。

フィルタ リングのアプローチは、図 1で図式です。Intronless DNA の各種類を使用できます。図 1Aでフィルタ リングのアプローチの最初の部分は表されます: agarose のゲルまたは、バイオアナライザーに読み込み、興味の DNA の良い断片化 150 750 bp の目的のサイズの長さ分布とフラグメントの塗抹標本として表示されます。得られた断片化された DNA の代表的な仮想ゲル画像が与えられます。フラグメントは agarose のゲルにロードが、リカバリ、最後修理しリン酸化、およびランダムな DNA 断片のライブラリ作成する以前鈍化 pFILTER ベクターにクローンを作成します。最適な条件の下で複製の手順の各ステップを実行することが調査の下で DNA の全範囲で質の良いライブラリを取得する必要です。
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説明されているプロトコルは、建設、特性および DNA の任意のソースから作られた"domainome"ライブラリの (好みのターゲット) に対して選択を許可します。さまざまな技術を組み合わせた研究パイプラインにより、これ: バクテリオファージの表示、折りたたみ記者とシークエンサー データ解析のための web ツールを使用します。

インタラクトーム Seq: Domainome ライブラリーの構築、検証およびバクテリオファージの表示と次世代シーケンシングによる選択のプロトコル

Folding reporters are proteins with easily identifiable phenotypes, such as antibiotic resistance, whose folding and function is compromised when fused to ...

この方法は、新しいタンパク質またはタンパク質ドメインの注釈、既知のタンパク質の構造的および機能的特性の特徴化、タンパク質相互作用ネットワークの定義、または異なる条件における抗原抗体シグネチャなどのタンパク質ベースの研究における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、単一の遺伝子からゲノム全体に至るまで、あらゆる種類の研究に対して、完全に公平で高いスループットとモジュラーであることです。ドメイン1のライブラリの構築は、機能研究のために非常に有用です。ファージディスプレイコンテキストに移管し、結合タンパク質や精製抗体などの異なる標的に対する選択に使用できます。NGSとの結合は非常に敏感で強力な分析を可能にする。同時に、特に開発されたウェブツールは、ドメインの全体と相互作用の正確な特性を与えます。ORFライブラリを最初に構築するには、100%出力で30秒パルスでDNAを超音波処理します。超音波処理の後、1.5%アガロースゲルにはしごと超音波DNAをロードします。その後、電気泳動装置を15分間5ボルト/センチメートルで始動します。アガロースゲル電気泳動は、超音波処理を確認するDNAスミアの存在を示す。これは、超音波処理を受けていないDNAから得られた固体バンドと比較してである。次に、断片化したDNAスミアでゲル部分を切断し、カラムベースのゲル抽出キットを用いて精製する。UV分光光度計で精製されたDNAの濃度を測定します。その後、メーカーの指示に従い、迅速な鈍い酵素ミックスの1マイクロリットルで挿入物の5マイクログラムを扱います。その後、10分間摂氏70度で酵素ミックスを不活性化します。濾過ベクターを調製するために、まず、精製クローニングベクターの5マイクログラムをEcoRV制限酵素で消化する。その後、1%アガロースゲルに消化および未消化のベクターと分子マーカーをロードします。その後、摂氏80度で20分間加熱不活性化します。次に、ホスファターゼ酵素の5単位と10Xホスファターゼバッファーの1/10容量で消化されたベクターをリン酸化する。その後、15分間摂氏37度で混合物をインキュベートします。その後、5分間摂氏65度でホスファターゼ酵素を不活性化します。次に、ゲルからプラスミドを抽出し、DNAを精製します。次に、UV分光光度計におけるDNAの濃度を測定する。ライゲーション反応を行うために、400ナノグラムのリン酸化インサートを消化されたベクターの1マイクログラム、10X T4 DNAリガーゼバッファーおよびT4 DNAリガーゼを最終体積100マイクロリットルに加える。その後、ライゲーション反応を摂氏16度で一晩インキュベートします。翌日、熱は摂氏65度で10分間熱を不活性化する。次に、pH5.2で酢酸3モル酢酸ナトリウムの1/10容量を加え、100%エタノールの2.5容量を加え、ライゲーション生成物を沈殿させる。DNAを沈殿させるには、試薬を混合し、マイナス80度で20分間凍結します。20分後、摂氏4度で20分間最高速度で遠心分離します。遠心分離後、上清を出します。ペレットに、500マイクロリットルの冷たい70%エタノールと再び遠心分離機を加える。遠心の終わりに上清を捨てます。ペレットを空気乾燥したら、沈殿したDNAを10マイクロリットルの水に溶解する。エレクトロポレーションを行う前に、氷上のマイクロ遠心チューブと0.1センチメートルのエレクトロポレーションキュヴェットを適切な数に配置してください。次に、精製されたライゲーション生成物の1マイクロリットルを細胞の25マイクロリットルに加える。次いで、DNAをピペットし、細胞混合物を冷電気ポレーションキュベットにし、チューブをフリックする。その後、キュベットの外側から水を拭き、エレクトロポレーションユニットに入れてパルスを打つ。エレクトロポレーションが終わったら、キュベットの細胞に抗生物質をかけずに液体2X YT培地を1ミリリットル速く添加する。その後、細胞混合物を10ミリリットルのチューブに移します。1時間37°Cで毎分220回転でシェーカーにチューブを残します。クロラムフェニコール、アンピシリン、クロラムフェニコールのみを補った10センチメートル2X YT寒天プレートにライブラリの希釈液をプレートします。これは、PCRによって試験される単一コロニーを得るために、そして滴定を行う。次に、クロラムフェニコールとアンピシリンを補った15センチメートル2X YT寒天プレートに形質転換された管轄細胞をプレートします。その後、一晩摂氏30度でプレートをインキュベートします。翌日、彼らが数えられる希釈を選択するコロニーを数えます。次に、ライブラリのサイズを計算します。ライブラリーサイズは以下のように計算され、平均コロニー数は希釈因子の総ライブラリ体積を掛け合う。ライブラリサイズは、6つのクローンの累乗に対して10の順序にする必要があります。アンピシリン濃度がより多くのフィルタリングを行うことが最適である場合、クローン数はこの抗生物質の不在時に得られたものの1〜20に減少する。陽性のコロニーをテストするには、チップを使用して15〜20個のコロニーをピックアップします。その後、抗生物質なしで2X YT培地の100マイクロリットルでコロニーを希釈します。次に、PCRはTaq DNAポリメラーゼを用いたDNA鋳型として0.5マイクロリットルの培養液を増幅する。PCR中、摂氏55度のアニーリング温度と摂氏72度で40秒の延長時間を使用して、増幅の25サイクルを実行します。挿入の長さが 150 から 750 の基本ペアの予想される範囲内にあることを確認します。そして、その異なるコロニーは、異なるサイズで異なる挿入物を提示します。これは、可変性の点でライブラリの準備が良好であることを示しています。次に、新鮮な2X YT培地を3ミリリットルの新鮮な2X YT培地を150ミリメートルプレートに加え、細菌を採取します。その後、滅菌スクレーパーを使用して細菌を収穫する。完全に混合した後、 20%グリセロールを追加し、将来の使用のためにアリコートでマイナス80°Cに残します。即時使用のために、グリセロールを添加する前に、ライブラリーのアリコートの一つからプラスミドDNAを精製するためにカラムベースのプラスミド抽出キットを実行する。UV分光光度計でDNAの濃度を測定し、使用するまでマイナス20°Cでサンプルを保存します。PCR増幅のためのDNAテンプレートとして、ライブラリーの2.5マイクロリットルを使用してください。サーモサイクラーの条件を設定し、実行を開始します。次に、インデックス PCR キットを使用してインデックス PCR を実行します。これにより、多重化された Illumina 実行内の二重インデックス化されたライブラリがシーケンスされます。次にサーモサイクラー条件を設定し、実行を開始します。AMPure XPビーズで精製した後、サイズを確認し、バイオアナライザ上の最終ライブラリの1〜10希釈の1マイクロリットルを実行します。次に、最終的なライブラリ トレースの領域を選択して数値化します。これらの模式表現は、Pフィルターベクターにクローニングした後、ORFに対応するコロニーのみが抗生物質の存在下で機能的β-ラクタマーゼを産生することを実証する。フィルタ処理後は20倍のクローン数の減少が予想される。良いフォルダORFは、より高い抗生物質濃度で成長しています。さらに、ORFフラグメントは、フィルタされたライブラリから容易に回収することができる。ファージミドORFライブラリは、標的タンパク質または抗体に対してファージディスプレイ選択を行うために構築されます。その後、得られたすべてのライブラリと出力は、NGSによって深く分析されます。NGSは、選択した各断片のライブラリの多様性、豊富さ、および正確なマッピングに関する完全な情報を提供します。最後に、開発されたinteractome seek webtoolは、ゲノム注釈を持つ推定ドメインのリストに至るまでの生のシーケンシング読み取りを生成します。このビデオを見た後、目的のDNAソースからドメイン化ライブラリを構築し、検証する方法をよく理解する必要があります。そして次世代シーケンシングによりライブラリのハイスループットスクリーニングを行う。私たちは、Illuminaプラットフォームを使用してORFフィルタリングライブラリのシーケンスを最適化し、プログラミングスキルを必要とせずにこの種のデータの分析を可能にするウェブツールを開発しました。

interactome-seq-protocol-for-domainome-library-construction

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

このビデオでは、T7ファージディスプレイペプチドライブラリーのQCMバイオセンサーベースのバイオパニングを使用して、タンパク質と薬物の相互作用を研究する方法を示しています。QCMバイオセンサー上に特定のペプチドを示すファージのバイオパニングにより、高親和性ペプチドの特異的な単離が可能になり、その後のアミノ酸シーケンシングにより、標的タンパク質上の特異的な相互作用部位の同定に役立ちます。...

タンパク質-薬物相互作用を研究するための水晶マイクロバランスバイオセンサーベースのバイオパニング

ファージディスプレイは、関心対象の固定化分子と相互作用するタンパク質又はタンパク質部分をキャプチャするための強力な技術である。作成するファージcDNAライブラリーの種類や画面の決定がなされると、ここで説明するプロトコルは、相互作用物質の同定をもたらす効率的な親和性選択を可能にする。...

組換えタンパク質ベイトを用いてファージディスプレイおよび親和性選択のためのプロトコル

この方法は、同時に、抗原の何百に対するファージディスプレイコンビナトリアル合成抗体ライブラリーから、スケーラブルで高スループットの選択を行うための視覚的な伴奏して説明する。このパラレルアプローチを使用して、我々は、標準的な免疫アッセイにおいて機能的に多様な抗原に対する高い親和性および特異性を示す抗体断片を単離した。...

ファージディスプレイされた合成抗体ライブラリーから、スケーラブルな高スループットの選択

ここでは、推定ファージ遺伝子の機能的特徴付けのための現象的アプローチを提示します。技術には、宿主の同化代謝を監視できる開発されたアッセイ、マルチ表現型アッセイプレート(MAP)、確立されたメタボロミクスの方法に加えて、異化代謝への影響を測定することができます。...

ファージフェノミクス：小説のウイルスタンパク質を特徴づけるために、生理的アプローチ

バイオパニング細菌の表示ライブラリは、抗体に堅牢な代替ペプチド親和性試薬の発見の実績のある手法です。半自動ソーティング法を本書は誤検知の発生を減らすバイオパニングを合理化します。ここでは、思考プロセスと候補者を評価し、下流の解析を最小限に適用される技術を示しています。...

結果菌株のペプチド親和性試薬の発見と解析のため細菌表示ライブラリの半自動バイオパニング

肯定的な酵母 2 ハイブリッド相互作用の可能性があります選択酵母集団のディープ シーケンスには、パートナーの相互作用の蛋白質についての情報の富が得られます。ここでは、特定のバイオインフォマティクス ツールとこのような画面からシーケンス...

バッチ酵母 2 ハイブリッド スクリーンからシーケンス データの情報解析

遺伝子および調節配列の物理的な相互作用の同定が困難な染色体構造をキャプチャする方法によって促進されています。これは 4 C seq プロトコルを修正は PCR テンプレートが過大に増幅を最小限に抑えることによって PCR バイアスを軽減、追加制限の酵素のダイジェスト ステップを組み込むことによって読み取りの mappability...

円の染色体構造の次世代シーケンシングによる遺伝子制御配列の高スループット識別キャプチャ (4 C seq)

記載されているプロテオミクスワークフローは、目的とするタンパク質の免疫親和性濃縮と標識フリー質量分析法を用いて核細胞内分画からタンパク質相互作用パートナーを同定するためのプロテオミクスワークフローである。このワークフローには、細胞内分画、免疫沈降、フィルター支援サンプル調製、オフラインクリーンアップ、質量分析、下流バイオインフォマティクスパイプラインが含まれます。...

大規模核インターロームプロファイリングのためのラベルフリー免疫沈降質量分析ワークフロー

任意の与えられた低分子リガンドに対して所望の親和性および特異性を有する化学的に誘導されたタンパク質二量体化システムを作成することは、多くの生物学的センシングおよび作動アプリケーションを有するであろう。ここでは、ファージディスプレイコンビナトリアル単一ドメイン抗体ライブラリーの段階的選択を介した化学的に誘導された二量体化システムのde...

組み合わせ単一ドメイン抗体ライブラリーの段階的ファージ選択による高特異的化学的誘起タンパク質二量体化システムの作成

本研究は、薬物とペプチドの相互作用を同定するための戦略を提示することを目的とした。この戦略は、水晶結晶マイクロバランス(QCM)バイオセンサーに基づく薬物認識短いペプチドのバイオパンニングを含み、続いてタンパク質上の薬物認識および薬物結合部位の注釈のために得られた情報を定量的に評価するためのバイオインフォマティクス分析を行う。...

バイオセンサーベースの高スループットバイオパンニングおよびバイオインフォマティクス分析戦略による、薬物-タンパク質相互作用のグローバル検証

ユビキチン化は翻訳後修飾の重要なタンパク質であり、その中で多くのヒト疾患に関与している調節不全である。このプロトコルは、ファージディスプレイを使用して、ユビキチン化の特異性、効率、パターンを制御するE3リガスの活性を結合および調節できる新しいユビキチン変異体を分離する方法を詳述する。...

ファージディスプレイを使用してE3リガーゼ用ユビキチンバリアント変性変性器を開発する

学ぶドメイノームライブラリーの構築と検証、ファージディスプレイによるタンパク質選択、次世代シーケンス解析の手法。タンパク質相互作用ネットワークの研究に応用可能です。

インタラクトーム Seq: Domainome ライブラリーの構築、検証およびバクテリオファージの表示と次世代シーケンシングによる選択のプロトコル

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