Name: 初期と後期-段鳥モデルにおける器官形成を探索する 2 段階のアプローチ: 胸腺、副甲状腺腺器官パラダイム (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 43 s
Description: 学ぶ 鳥類モデルを用いたin vitro培養とin ovo移植の2段階アプローチによる器官形成の初期・後期段階の研究方法。胸腺と副甲状腺の発生過程を詳細に解析し、発生生物学の重要な知見を得ることができる。

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著者は原稿、ビデオ ナレーションのパドマ Akkapeddi の批判的アントニオ Cidadão、イザベル Alcobia レオノル パレイラし感謝しているし、セルバンテス ・ デ ・ Histologia e の組織サービスからビトー プロアに Biologia を行うDesenvolvimento、Faculdade ・ デ ・ メディチーナ ・ デ ・ リスボア、パラナ ・ デ ・ リスボア、テクニカル サポートのため。Faculdade ・ デ ・ Unidade ・ デ ・ audiovisuais (視聴覚ユニット) からサンパウロ Caeiro とヒューゴ ・ シルバに特にお世話になっておりますメディチーナ ・ デ ・ リスボア、このビデオの生産への顕著なコミットメントのパラナ ・ デ ・ リスボア。我々 は親切提供するビデオ システムと Interaves を装備した堅実ライカマイクロシス テムズ株式会社を認める - Sociedade 農業 Pecuária、ウズラに貢献してくれて S.A 受精卵。この作品は、Faculdade ・ デ ・によって支えられたメディチーナ ・ デ ・ リスボア、パラナ de Lisboa (FMUL)。

これらすべての実験動物の世話やセントロ Académico ・ デ ・ メディチーナ ・ デ ・倫理的なガイドラインに従うリスボア。
1. 受精ウズラと鶏の卵の孵化
<ol><li>それぞれ、3 と 8 日間ウズラ (について) と鶏 (ギャラス) 受精卵をインキュベートしてください。<ol>
<li>空気室 (卵の鈍い端) 38 ° C で加湿のインキュベーターで上向きに卵を配置します。</li>
		<li>この実験を実行するのに約 20 のウズラの卵と 40 の鶏の卵を使用します。 注: 初めてこの手順を確立するとき、これらの番号を倍増する必要があります。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 胸腺、副甲状腺の基礎の推定領域を含むウズラ胚領域の分離
メモ: 実行卵水平層流フードと滅菌器具と材料を使用して無菌状態で操作手順。
<ol><li>について大規模なホウケイ酸ガラスのボウルを準備 3/4 冷たいリン酸緩衝生理食塩水 (PBS) 液でいっぱい。</li>
	<li>シェルをタップ、曲線はさみでその鈍い端の反対側に円形の開口部を切断して 3 日間の培養後ウズラ卵を開きます。慎重に殻の部分を削除し、胚を冷 PBS で満たされたガラス ボウルに転送します。</li>
	<li>E3 でウズラ (q) 胚を保持 (qE3) (鶏の HH ステージ 21 に対応するウズラ ステージ) 細い鉗子の助けを借りて。曲線はさみを使用して卵黄を包み込む膜の膜へのカットをします。胚体外血管の周囲に外部から前後をカットし続けます。</li>
	<li>転送小さい胚ボウル 3/4 細い鉗子の助けを借りて冷 PBS でいっぱい。接続されている残りの卵黄から胚を徹底的に洗います。</li>
	<li>スキマーを使用して 100 ミリメートルのガラス シャーレと黒のベースに胚を転送する (材料の表を参照してください) 10 mL の冷 PBS を含みます。</li>
	<li>ペトリ皿を顕微鏡の下に配置します。 注: このポイントから、進歩的な倍率の顕微鏡下マイクロサージェリー手順を実行します。照明のソースとしては、限られた熱負荷を考慮した、顕微鏡や光ファイバーを組み込んだ LED ライトを使用することをお勧めします。</li>
	<li>薄い昆虫ピンとプレートの底に胚を保持します。胚体外域正方形の形成 4 本のピンを配置します。</li>
	<li>細い鉗子の助けを借りて、頭部領域の胚体外膜を外し、そこに 5 ピンを配置します。 注: 胚が正しく配置されている場合、耳胞、心臓の管と 1st、2ndと 3rd咽頭アーチ (PAs) が表示されます。</li>
	<li>時空警察ヴェッカーシグナ目はさみを使用しての関心、すなわち、3rd 4thの咽頭アーチ領域 (3/4PAR)、萌芽期の地域を分析します。<ol>
<li>長手方向と平行に体節神経・ チューブ領域と PAs の間の胚軸切断を開始します。</li>
		<li>それを切断することによって腹位置中心の管を削除します。同じ位置にはさみを維持する、カットの方向によると胚を再配置するシャーレを回転させます。</li>
		<li>2ndと 3rd PAs の間と 4thペンシルバニアの下カットします。</li>
		<li>細い鉗子の助けを借りて 3/4PAR から残りの膜をデタッチします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>隔離されたティッシュ (3/4PAR) と冷 PBS 2 mL 滅菌プラスチック ピペットを使用して 3/4 ガラスの皿に満ちて転送を吸い出しなさい。 注: 以下、組織 h 48 まで育てられた生体外ですることができます。 または E8 でニワトリ胚のカムに接木されるすぐに。</li>
	<li>生体外の試金の準備の間に氷の上分離 3/4PAR を含むガラスの皿を保ちます。</li>
</ol>3 切片培養の試金: 胸腺、副甲状腺の基礎の推定領域を含む萌芽期の地域の文化。
<ol><li>10 %fbs と 1% ペニシリン/ストレプトマイシン RPMI 1640 培で培養液を準備します。 注: 可溶性の薬理学的試薬は媒体 (たとえば、LY 411.575 (Ly) ・ ディ ・ benzazepine または cyclopamine とビスモデギブ、ノッチとハリネズミ (Hh) シグナル伝達経路、それぞれを阻害する追加できます。この試金のため 3 Notch シグナルを阻害する Ly の 50-200 nM または・ ディ ・ benzazepine の 5-15 μ M を使用して/4PAR. 3/4PAR5Hh シグナルを抑制する cyclopamine の 20 μ M またはビスモデギブの 10 μ M を使用します。</li>
	<li>6 ウェル プレートで 3/4 pp 外植体の in vitro文化を準備します。<ol>
<li>5 ml の培地の 6 ウェル プレートから 1 つの井戸を埋めます。24 ミリメートル ポリカーボネート膜挿入の場所 (材料表参照) 細い鉗子の助けを借りても。</li>
		<li>、実体顕微鏡下で 3/4PAR 外植体ガラス皿からに転送膜表面移植スプーン (またはヘラ) の助けを借りてをスライドさせて、と薄い鉗子。腹側と背側膜外植片を配置します。膜挿入ごとに最大 7 つの植を追加します。3.4 の手順に進みます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>また、文化外植体膜フィルターを浮<ol>
<li>35 mm 5 ml の培地のシャーレを準備します。細い鉗子、フロート膜フィルター (材料の表を参照) と乾燥空気との接触を保つための助けを借りて。</li>
		<li>、実体顕微鏡下で 3/4PAR 植から転送ガラス皿をメンブラン フィルター移植スプーン (またはヘラ) の助けを借りて穏やかなスライドし、薄い鉗子。腹側と背側膜外植片を配置します。メンブレン フィルターあたり最大 8 植を追加します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>植 3.2 と 3.3 5% CO2と 37 ° C で加湿のインキュベーターでの手順で準備して慎重に置きます。</li>
	<li>48 時間の潜伏期間の後に、インキュベーターから 6 ウェル プレートと 35 mm のペトリ皿を削除します。<ol>
<li>6 ウェル プレートの膜挿入から培養植を収集します。<ol>
<li>常温 (RT) 膜挿入に PBS を追加します。</li>
			<li>2 mL 滅菌プラスチック ピペットを使用して積極的なフラッシュによって膜から植をデタッチします。</li>
			<li>ヘラと細い鉗子の助けを借りて、転送した PBS でいっぱい 3/4 ガラスの皿に培養の植</li>
		</ol>
</li>
		<li>同様に、35 mm のペトリ皿でフローティングの膜フィルターから培養植を収集します。<ol>
<li>室温 PBS でいっぱい新しい 35 mm のペトリ皿に細い鉗子でメンブラン フィルターを転送します。</li>
			<li>2 mL の滅菌プラスチック ピペットを使用する積極的なピペッティングしてメンブレン フィルターから植をデタッチします。</li>
			<li>細い鉗子の助けを借りて、それを接続外植片が残存していないことを確認した後植無料メンブラン フィルターを放電します。</li>
			<li>ヘラと細い鉗子、外植片を室温 PBS でいっぱいガラス皿に転送します。</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>総 RNA の隔離のための試薬 1 mL にヘラで培養植を転送し、遺伝子発現の研究で使用します。 注意:この試薬への暴露は、深刻な健康被害をすることができます (材料の表を参照してください)。適切な保護眼鏡、衣類および手袋を着用します。取扱説明書に従うし、製造元から提供された安全性データシートを読みます。</li>
	<li>また、E8 で鶏胚のカムに培養組織を移植します。手順 4 に従ってください。</li>
</ol>4. カムの準備
<ol><li>インキュベーターから萌芽期の開発の 8 日間で鶏の卵を削除します。 注: 卵加湿のインキュベーターで 38 ° C で上向きに直面している空気室で培養。</li>
	<li>シェルの部分が空気室に陥るを防ぐために透明なプラスチック テープで卵の鈍端をカバーします。シェルをタップし、曲線はさみで卵円形の開口部をカットします。空気室が表示されます。</li>
	<li>細い鉗子で空気室の白い膜を慎重に削除します。カムは、表示され、異所性組織移植のアクセスです。 注: は、PBS をスライドさせ、外植片の存在を促進するため、カムを移植、前後に水和物に PBS を使用しないでください。膜が乾く場合は、卵を破棄します。</li>
</ol>5. カムに培養外植片の移植
<ol><li>ホルダーに microscalpel カムの小さい船の小血管病変/傷を作成します。 注: は、余分な出血の場合毛管現象によって血液を削除するのにパスツール ピペットの先端を使用します。</li>
	<li>ヘラと細い鉗子を使用して、カムの負傷者の領域に培養外植体を転送します。</li>
	<li>外植体よりわずかに大きいフィルター紙の一部をカットし、外植体の上に置きます。 注: フィルター ペーパー カムに開発後植場所を追跡ことができます。また、許可外植体への毎日の薬物送達ovo で開発中に必要な場合 (5.6 の手順で説明します)。</li>
	<li>透明なプラスチック テープで卵ウィンドウを密封し、木炭ペンシルを使用してそれを識別します。 注: プラスチック テープは、潜伏期間中に脱水から胚を保護します。</li>
	<li>38 ° C で加湿のインキュベーターで 10 日間の操作の卵を孵化させなさい手順 6 に従ってください。</li>
	<li>オプションのステップ: 毎日潜伏期間薬剤投与。<ol>
<li>フィルターにアクセスするため部分的にプラスチック テープを持ち上げて取り外します。一滴ずつ紙の上に薬液の 100 μ L を追加します。ウィンドウを再シールし、38 ° C で加湿のインキュベーターに卵を置き 注: この試金のため cyclopamine の 20 μ M の用量が抑制 Hh がovo で開発5時伝達します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>6 Ovo の開発の 10 日後、カム異所性器官形成
<ol><li>培養 10 日後卵をインキュベーターから削除し、慎重にプラスチック テープを撤回します。</li>
	<li>小さなガラスにろ紙をカム派生植ボウル 3/4 冷 PBS でいっぱい曲線はさみと転送を使用して、フィルター領域の周りには、カムをカットします。</li>
	<li>細い鉗子の助けを借りて、10 mL の PBS を含むブラック ベースで 100 mm のペトリ皿にカム由来外植体を転送します。フィルター紙と時空警察ヴェッカーシグナ目はさみや細い鉗子を使用して膜の過剰を慎重に取り外します。</li>
	<li>カム外植体を固定液に転送 (3.7 %pbs で PFA) スキマーで。大きなはさみの助けを借りて、胎児の頸部の正確なカットすることによって、卵から削除せず鶏胚を安楽死させます。</li>
	<li>従来の組織および免疫組織化学によってカム派生植のパラフィン切片における器官形成を評価します。</li>
</ol>

<ol><li>Le Douarin, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Nogent+Institute-50+years+of+embryology%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">The Nogent Institute-50 years of embryology.</a> Int J Dev Biol. 49 (2-3), 85-103 (2005).</li>
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</ol>

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このメソッドの成功のための重要な側面は、ニワトリおよびウズラの両方の品質の卵。Ovoアッセイ、鶏の卵の質の良い、特に中に、長い潜伏期間の向上を考慮した生存率はプロシージャの最後で (90% 以下)。これを達成するために、別の業者から卵をテストします。長時間非操作の卵を孵化させなさい (最大 16-17 日) とその開発をチェックします。質の良いバッチを考えられる胚の 80% 以上は、正常な発達を提示しなければなりません。また、各インキュベーション ステップは信頼性を保証する再現性のある同期の発達段階および最後に本当に代表的な結果を提供することが重要です。卵シェル気孔率のためすべてのタマゴ孵化歩数のインキュベーターで加湿雰囲気を維持します。環境汚染を避けるためには、抗生物質は、(オプションの手順) の手順で PBS のソリューションに追加できます。
このメソッドは、ウズラ オルガン初歩を分離し、48 h の器官システムのそれらの成長によって開始します。この最初のステップ、胸腺、副甲状腺の初期開発5を勉強する既に使用され...

鳥類胚は、種子発達生物学で広く使用されています。鳥のモデルの主な利点は、卵、胚、マイクロマニピュレーションを実行する能力に比較的簡単にアクセスを開く可能性を含まれます。いくつかの例は細胞運命1カム1,3、異所性の細胞構造の成長と胚2、特定の成長因子の応用を勉強するためクラシック ウズラ鶏キメラ システムを構成します。 4。
器官形成の段階に新たな洞察を得る、萌芽期ティッシュ5体外操作と接木技術を組み合わせた方法最近開発しました。2 段階のアプローチにより、差別と探査の両方 - と後期 - の初期段階器官形成、非常にダイナミックで複雑な組織の相互作用2のために制限されます。さらに、適切な組織特異的マーカーの欠乏頻繁の使用を制限遺伝子組み換え動物モデル6。この 2 段階のアプローチ法は主としてこのような制限を克服します。
最初のステップで、器官形成の初期段階を研究するには、将来の臓器の原基を構成するウズラ胚領域は分離、48 時間培養切片システムで栽培します。この期間中に特定のシグナル伝達経路の薬理学的変調は培養培地5,7に薬を追加することによって実行できます。さらに、培養組織が体外で成長のあらゆる段階で収集され遺伝子発現プローブ ( qPCR、マイクロ アレイなどのメソッドを使用して)。
2 番目の手順では、48 h 培養組織が、接ぎ木 (cE8) (E) 8 日 (c) 鶏胚のカム (ハンバーガーとハミルトン (HH)-33-35 の段階)8。カムは栄養素の血管サプライヤーとして動作し、ガス交換1,3,4移植組織を有効にその開発ovo で時間の長い期間のためにことができます。この実験の手順は特に適しています器官形成の後期段階を研究するovo で開発5,9,10,11 の 10 日後、完全に形成された器官を得ることができるよう.形態素解析は簡単に適切な器官形成を確認する従来の組織によって実行され、(すなわち、MAb ウズラ核 (QCPN)) 特異的抗体を用いた免疫組織化学によってドナー細胞の起源を識別できます。カムの潜伏期間中に、移植できる薬理学的エージェントの存在下で成長してがも、器官形成の進行を評価するための開発のあらゆる段階で収集します。
深さで、ここで説明されている 2 段階のアプローチは、フィゲイレドらですでに採用されています。5鳥副甲状腺/胸腺共通原基開発を探検します。したがって、以下、萌芽期の地域の固有の特性と、胸腺・副甲状腺腺の器官形成に関与する開発の段階の設定が表示されます。
胸腺と副甲状腺腺上皮、咽頭の袋の内胚葉からも機能的に異なるを派生すると (PP)12。鳥、これらの器官の上皮に属します、3 番目と 4 番目 PP 内胚葉 (3/4 pp)12、哺乳類で、3PP から派生する胸腺の上皮と副甲状腺腺上皮に由来する 3PP と 3/4 pp マウスと人間、それぞれ13,14。
これらの器官の形成の初期の段階の一つは、離散胸腺・副甲状腺ドメイン共通の原基での登場です。鶏、E4.515、特定の分子マーカーの in situハイブリダイゼーションによるこれらのドメインを識別できます。開発が進むにつれて、これらの器官の基礎が個性し、神経堤由来細胞によって形成される薄い葉カプセル (E5; でそれらを囲む中咽頭から分離HH-stage 27)。後に、胸腺の上皮は造血前駆細胞 (E6.5; で植民地化します。HH-stage 30)12。
古典的なウズラ鶏研究1,12のように 2 段階のアプローチ、すなわち胸腺5リンパ ・造血器官の形成を研究に便利です。移植し、器官原基で、ウズラが外植体として鶏血液媒介性前駆細胞浸潤ウズラ胸腺上皮相手造血前駆細胞の植民地化前に鶏胚におけるキメラ胸腺が形成されて。このメソッドは、したがって、鳥の血液・ リンパ系の開発で造血細胞の貢献を探索する便利なツールです。

<table><tbody><tr><td>鶏の受精卵(Gallus gallus)</td><td>ポルトガル、</td><td></td>ピントバール養<td>鶏場&nbsp;</td></tr><tr><td>ウズラの受精卵 (Coturnix coturnix)</td>ポルトガル<td></td><td>、インタラーブス</td><td>バードファーム&nbsp;</td></tr><tr><td>15 mL PP遠心分離管</td><td>Corning</td><td>430052</td><td></td></tr><tr><td>50 mL PP遠心分離管</td><td>Corning</td><td>430290</td><td></td></tr><tr><td>60 x 20 mmパイレックス皿</td><td>デュラングループ</td><td>21 755 41</td><td></td></tr><tr><td>100 x 20 mmパイレックス皿</td><td>デュラングループ</td><td>21 755 48</td><td></td></tr><tr><td>ポリカーボネートメンブレンインサート&nbsp;</td><td>Corning</td><td>3412</td><td>24 mm トランズウェル 0.4 mm ポアポリカーボネート製メンブレンインサート付き&nbsp;</td></tr><tr><td>メンブレンフィルター</td><td>ミリポア</td><td>DTTP01300</td><td>0.6 mm イソポア メンブレンフィルター</td></tr><tr><td>6 ウェル培養プレート</td><td>Nunc, Thermo Fisher Scientific</td><td>140675</td><td></td></tr><tr><td>ペトリ皿, 35 x 10 mm</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5112&nbsp;</td><td></td></tr><tr>スーパーマーケットの<td></td><td></td><td>パイレックスボウル</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>トランスファーピペット</td><td>Samco Scientific, Thermo Fisher Scientific</td><td>2041S</td><td>2 mL プラスチックピペット</td></tr><tr><td>ガラスパスツールピペット</td><td>normax</td><td>5426015</td><td></td></tr><tr><td>Whatman&nbsp;定性的な濾紙</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>WHA1001090</td><td>濾紙</td></tr><tr>スーパーマーケットの<td>透明なプラスチックテープ</td><td></td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>サイトケラチン(汎、酸性および塩基性、I型およびII型サイトケラチン)、クローンLu-5</td><td>BMA Biomedicals</td><td>T-1302</td><td></td></tr><tr><td>シクロパミン水和物</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C4116</td><td>Hhシグナルの薬理学的阻害剤</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Invitrogen、サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td></td><td>Standart FBS</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン</td><td>Invitrogen、サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)</td><td>GIBCO、サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>10010023</td><td></td></tr><tr><td>QCPN 抗体</td><td>Developmental Studies ハイブリドーマバンク</td><td>QCPN</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 ミディアム、GlutaMAX サプリメント&nbsp;</td><td>GIBCO, Thermo Fisher Scientific</td><td>61870010</td><td></td></tr><tr><td>Bluesil RTV141A/B シリコーンエラストマー 1.1Kg キット</td><td>ELKEM/Silmid</td><td>RH141001KG</td><td>ペトリ皿の背部を調製するには</td></tr><tr><td>Stemolecule LY411575</td><td>Stemgent</td><td>04-0054</td><td>Notch シグナル伝達の薬理学的阻害剤</td></tr><tr><td>TRIzol 試薬</td><td>Invitrogen, Thermo Fisher Scientific</td><td>15596026</td><td>全RNA単離用試薬</td></tr><tr><td>デュモン#5鉗子</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>11251-30&nbsp;</td><td>細い鉗子</td></tr><tr><td>極細ボンハサミ、湾曲</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>14085-08</td><td>湾曲ハサミ</td></tr><tr><td>昆虫ピン&nbsp;</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>26001-30</td><td></td></tr><tr><td>マイクロスパチュラ&nbsp;</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>10087-12</td>移植<td>スプーン</td></tr><tr><td>ミニューティアンピン</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>26002-20</td><td>マイクロメス</td></tr><tr><td>モリアニッケルメッキピンホルダー</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>26016-12</td><td>ホルダー</td></tr><tr><td>モリア穴あきスプーン</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>10370-17</td><td>スキマー</td></tr><tr><td>ウェッカーアイシザー</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>15010-11</td><td></td></tr><tr><td>カメラ</td><td>ライカマイクロシステムズ&nbsp;</td><td>MC170 HD</td><td></td></tr><tr><td>ステレオスコープ</td><td>ライカマイクロシステムズ&nbsp;</td><td>ライカM80</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>ライカマイクロシステムズ&nbsp;</td><td>DM2500</td><td></td></tr></tbody></table>シリーズ

初期と後期-段鳥モデルにおける器官形成を探索する 2 段階のアプローチ: 胸腺、副甲状腺腺器官パラダイム

Two-step Approach to Explore Early- and Late-stages of Organ Formation in the Avian Model: The Thymus and Parathyroid Glands Organogenesis Paradigm

鳥類胚実験モデルとしてされている精液の発見の最も重要な発生生物学。いくつかのアプローチ、ウズラ鶏キメラ形成および漿膜 (CAM) の最後の世紀に戻る日を異所性組織の開発を維持するために使用です。今日では、最近の in vitro方法論とこれらの古典的な手法の組み合わせはさらに器官形成を探索する新しい見通しを提供しています。
ここ初期- と - の後期段階の器官形成を研究する 2 段階のアプローチを記述します。簡単に言えば、臓器の推定領域を含む萌芽期の地域は (48 h) 最大の器官システムでウズラ胚および成長の in vitroから分離されます。培養組織にその後鶏胚のカムに接木されます。Ovo の開発の 10 日後、完全に形成された臓器は移植組織から取得されます。このメソッドでは、薬理学的エージェントの通常の管理と生体外でそしてovo発達ステップ全体にわたって組織遺伝子操作によるシグナル伝達経路の調節もできます。さらに、組織の開発は遺伝子発現プロファイル (量的な PCR (qPCR)、マイクロ アレイ等を用いた)、形態 (従来の組織像と免疫評価) を分析する任意の期間で収集できます。
外に完全に形成された器官形成の初期段階と機能の器官からの鳥の胎児の器官形成に従うツールとして記述されていた実験プロシージャを使用できます。

上記のプロトコルの詳細調査の両方 - と後半-初期頻繁複雑な細胞および分子相互作用によって限られる器官形成を可能にするメソッド。
以前フィゲイレードらの手法は5ノッチと Hh 鳥副甲状腺/胸腺共通原基開発におけるシグナル伝達の役割を解明します。
ここで、図 1と図 2の器官形成の同じモデルを使用して新しい結果が表示されます。図 1 aは、胸腺・副甲状腺形成の初期段階を探るための実験的なデザインを示しています。将来の臓器基礎 (3/4PAR) を構成するウズラ胚領土は切片における分離と栽培<e...

この資料では、新規生体外でそしてovo実験手順を組み合わせることによって器官の形成を研究する古典的なウズラ鶏キメラ システムへの更新されたアプローチを提供します。

The avian embryo, as an experimental model, has been of utmost importance for seminal discoveries in developmental biology. Among several approaches, the ...

この手順の全体的な目標は、胚組織のin vitro操作と鳥類モデルを使用したin ovoグラフト技術を組み合わせることにより、器官形成の初期段階と後期を研究するための2段階のアプローチを提供することです。この方法では、将来の臓器原始を含む胚領域を単離し、器官型システムで48時間成長させます。このin vitroアプローチは、正常な発生を模倣することにより、特定の分子マーカーを必要とせずに胚領域への容易なアクセスを可能にし、非常に動的な空間修飾と複雑な組織相互作用に依存する臓器形成の初期発生段階の実験的操作を可能にします。次に、培養した組織をニワトリ胚の絨毛尿膜に移植します。絨毛尿膜は、栄養素の血管供給者として振る舞い、移植された組織へのガス交換を可能にし、卵子でのその発達を可能にします。このステップは、10日間の卵子発生後に完全に形成された臓器を達成できるため、器官形成の後期の研究に特に適しています。さらに、薬理学的薬剤は、in vitroおよびovo開発に沿って投与することができ、発生段階特異的な方法でシグナル伝達経路を調節することができます。最終的には、発生中の組織を任意の時間枠で収集して、器官形成の進行を評価し、遺伝子発現と形態学的特徴を分析できます。この方法は、鳥類胚の外側の臓器形成を追跡することにより、器官形成の明確なステップに関与するシグナルの特定など、発生生物学における重要な問題を解明するのに役立ちます。この実験的手順は、胸腺と副甲状腺の器官形成を研究することによって例証されます。鳥類では、これらの器官の上皮は、第3および第4の咽頭嚢の内胚葉共通原基に由来し、ウズラの4日目とニワトリの4/5日目の胚の頃に個別のドメインとして出現します。発達が進むにつれて、臓器の基本は個別化され、咽頭から分離します。発生の後半では、胸腺上皮は造血前駆細胞によってコロニー形成されます。ここで提示する方法は、これらの器官の推定領域を含むウズラの胚領域、つまり胚の3日目に3番目と4番目のアーチを含む咽頭領域を分離することから始まります。受精したウズラの卵を、加湿インキュベーター内で38°Cで空気室を上にして3日間インキュベートしました。まず、ウズラの卵をインキュベーターから取り出します。水平層流フードと滅菌された器具および材料を使用して、無菌状態で卵操作手順を実行します。冷たいPBSで満たされた大きなパイレックスボウルを準備します。湾曲したハサミで、殻を軽くたたいて空気室の反対側に円形の開口部を開けて、ウズラの卵を開けます。胚を慎重に皿に注ぎます。細い鉗子の中に胚を保持し、湾曲したハサミの助けを借りて、ヨークを囲むビテリン膜に切り込みを入れます。連続的な動きで余分な胚血管の周囲と外部に切断します。胚を冷たいPBSを入れた小さなボウルに移します。次に、スキマーを使用して

two-step-approach-to-explore-early-late-stages-organ-formation-avian

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

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初期と後期-段鳥モデルにおける器官形成を探索する 2 段階のアプローチ: 胸腺、副甲状腺腺器官パラダイム

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