Name: マイクロ流体デバイスにおける組織モデルと perfusable の血管ネットワーク (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 5 s
Description: 学ぶマイクロ流体デバイスを用いてスフェロイド内に灌流可能な血管ネットワークを構築する方法。PDMSキャスティングと細胞導入技術により、薬物送達シミュレーションと組織モデリング研究の新たな可能性を開きます。

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この作品は、CREST 科学技術振興機構 (許可番号 JPMJCR14W4)、社会のための科学振興) 費 (許可番号 25600060、16 K 16386) 文部科学省からキー評価技術の開発に焦点を当てたプロジェクト、科学技術振興機構からイノベーション プログラムのセンターによって支えられました。医学研究・開発、アメッド、みずほ財団法人科学振興財団日本代理店。微細加工は京都大学ナノ技術ハブによって支えられました。

1. マイクロ流体デバイス金型の作製
<ol><li>市販のソフトウェアを使用してマイクロ流体デバイスの模様 (Clewin5 または AutoCAD 2016など。)。Clewin5 の関数、ユーザー マニュアル (http://manualzz.com/doc/7159150/clewin-user-s-manual) を参照してください。 注: デザイン ファイルはファイル 1 の補足で利用できます。</li>
	<li>設計ファイルをマイクロ パターン発生器に転送し、ポジ型フォトレジストで被覆されたクロム マスク ツールを読み込みます。</li>
	<li>マイクロ パターン発生器を使用してパターン領域のポジ型フォトレジストを公開します。</li>
	<li>ポジ型フォトレジストの開発 (材料のテーブル) を使用して開発し、純水 (DI) を使用してマスクをすすいでください。</li>
	<li>クロム エッチング液 (資材表) を使用すると、ポジ型フォトレジストが削除された露出部のクロムをエッチングします。純水を使用してマスクをすすいでください。</li>
	<li>アセトンを使用してマスク上のフォトレジストの残りを削除します。 注: 透明度マスク Cr マスクのための代わりをすることができます。</li>
	<li>きれいなシリコンウェーハを準備 (4 インチ、P(100))、スピン コート ヘキサメチルジシラザン (HMDS) で 3,000 rpm 30 s。</li>
	<li>ソフトベーク HMDS 120 ° C とクールなウェハ常温で 5 分間で 5 分間。</li>
	<li>スピンコートで 10 秒の 500 rpm と 30 での 1,200 rpm ネガ型フォトレジスト (材料表) s。 注: スピン コーティング条件は、露光後ウェーハ上約 100 μ m の厚さでレジスト層を得られるです。</li>
	<li>95 ° C の 45 分のネガ型フォトレジストを prebake し、室温で 60 分のウエハーをクールします。</li>
	<li>各実験の UV 光の強度を確認し、250 mW/cm2での総線量をエネルギーの露出時間を計算します。ウェハにフォトマスク (ステップ 1.1 1.6) を置き、UV ライトにそれらを公開します。</li>
	<li>Postbake 1 分 65 ° C で、95 ° C で 5 分のネガ型フォトレジスト室温で 1 分間冷却してウェーハを許可します。</li>
	<li>15 分最初の開発者 (材料表) お風呂で、2 番目のバスで 2 分のネガ型フォトレジスト層を開発します。10 の最初のイソプロパノール (IPA) お風呂でウェハをリンス s と 10 の 2 番目の IPA お風呂で s。</li>
	<li>ハードベーク 200 ° C とクールなウェハ常温 5 分で 30 分のネガ型フォトレジストです。</li>
	<li>表面プロファイラーを使用してネガ型フォトレジスト層の厚さを測定します。</li>
	<li>真空ポンプに接続されたデシケータでウェハを配置し、シラン (trichloro(1H,1H,2H,2H-perfluorooctyl)silane) 200 μ L を追加します。10 分間、ポンプをオンにそれをオフにし、4 h 用デシケータでウェハを保持します。</li>
</ol>2. 作製手順と PDMS レイヤーのアセンブリ
<ol><li>ポリジメチルシロキサン (PDMS) 前ポリマーをキャスト (PDMS ベース: 硬化剤 = 10:1 (w/w)) 2 h の真空チャンバー内で脱ガスとします。</li>
	<li>治療 PDMS エアベント オーブン一晩で 80 ° c。</li>
	<li>シリコンウエハーから PDMS をはがします。</li>
	<li>パンチ穴 1A - 3B (図 1) とよく回転楕円体文化。穴 1 a の直径 2 mm のパンチを使用して - 3 b と 1 mm 径パンチも回転楕円体のため。</li>
	<li>PDMS スラブとガラス製カバー スリップ (24 mm × 24 mm) を粘着テープで繰り返しテープ剥がして付着してきれい。40 空気プラズマと PDMS スラブを扱う s (40 mW、50 sccm)。</li>
	<li>PDMS スラブとカバー スリップ 80 ° C 少なくとも 12 時間で治療の面から空気の泡を追放するガラス製カバー スリップの上に PDMS スラブを結合します。</li>
</ol>3. 回転楕円体の準備
注: 研究では, ひと臍帯を表現する赤色蛍光タンパク質静脈血管内皮細胞 (RFP Huvec) と緑の蛍光蛋白質の表現比較 (GFP Huvec) は、起源を区別するためにそれぞれ、回転楕円体とマイクロ流路で使用されます。Perfusable 血管網の構造の後の比較。比較の起源が必要ない場合ラベル比較実験のため十分では。
<ol><li>RFP Huvec (3.0 × 105セル/バイアル) およびひと肺線維芽細胞 (hLF) (1.0 × 106セル/バイアル) を解凍し、血管内皮細胞、線維芽細胞用培地 10 mL にそれぞれ追加 (材料表)。文化それら 37 ° C、5% CO2で 100 mm ディッシュで 2 〜 3 日のサブ合流 RFP Huvec hLFs の。この準備 〜 200 回転楕円体が得られます。</li>
	<li>RFP Huvec と 0.05% トリプシン-EDTA の 2 mL で皿から hLFs をデタッチして 10% (v/v) ウシ胎児血清 (FBS) および 1% (v/v) ペニシリン/ストレプトマイシンを含む DMEM の 4 mL のトリプシン反応を停止します。</li>
	<li>3 分の 220 × g で遠心分離後、上清を除去し、再懸濁します RFP Huvec と hLFs 2.5 × 104で 1.0 × 105セル/mL、最終的な細胞濃度に内皮細胞培地でそれぞれ。</li>
	<li>優しく超低結合表面の 96 ウェル プレートで、細胞懸濁液 (RFP Huvec の 5,000 セル) と 20,000 セル hLFs のウェルあたりの 200 μ L を追加します。</li>
	<li>2-4 日間の期間は 37 ° C および 5% の CO2の 96 ウェル プレートを孵化させなさい。 注: 回転楕円体の直径は、培養期間と 96 ウェル プレートで初期細胞数に依存、ので、これらの 2 つのパラメーターによってそれ制御できます。</li>
</ol>4 マイクロ流体デバイスにおける播種細胞
注: 穴、チャンネル、回転楕円体の命名規則も図 1に示すが。我々 は細胞のマイクロ流体デバイスに収穫が完了したときの日として 0 日を定義します。図 2に実験のタイムラインの概略図を示します。
<ol><li>日 − 1) 回転楕円体荷重 注: 次の手順は、コラーゲンとフィブリンのゲル化を防ぐために氷の上実行する必要があります。<ol>
<li>リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) 2.80 mg/mL の最終的な集中にフィブリノゲンを分解します。</li>
		<li>製造元のプロトコルに従って中和コラーゲン (PBS の 3.0 mg/mL) を準備します。</li>
		<li>フィブリノゲン液 (2.80 mg/mL) の 107.2 μ L、中和コラーゲン (3.0 mg/mL)、8.0 μ L と 3.6 μ L 反応管内ごとアプロチニン (5 U/mL) を結合します。このソリューションが「マスター ミックス ソリューション」をラベル (MS)。 注: ボリュームは十分な 1 つの回転楕円体をロードするためです。1 つ以上の回転楕円体、回転楕円体の数によって各ボリュームを乗算します。</li>
		<li>最終濃度 50 U/mL の PBS でトロンビンを溶解します。 注: 50 U/mL トロンビン (20 μ L/チューブ) の因数は +30 ° C で格納され、各実験の前に解凍されます。</li>
		<li>バイオ セーフティ キャビネットの内部回転楕円体を含む 96 ウェル プレートを配置します。</li>
		<li>2 35 mm シャーレ バイオ セーフティ キャビネット、氷 (1 皿) の上の 1 つの皿とベンチトップ (皿 2) 他の皿の中を準備します。ピペット 99年 μ L の MS 料理 1 (図 3 a) 液滴を形成するためのセンターです。</li>
		<li>2 黄色のヒント (10-100 μ L) をトリムし、3 MS、回転楕円体の正確なコレクション、デバイスに、回転楕円体を注入して、デバイスにメディアを挿入とトロンビンを混合、96 ウェル プレートから回転楕円体のコレクションのピペット チップ (1-100 μ L) をクリア、それぞれ。先端の気孔のサイズは穴 1A - チャンネル 1 と 3 の 3 b の直径よりわずかに大きくする必要があります。 または、チャネル 2 にぴったりの回転楕円体に合います。 注: 以下、特に断らない限り、ピペットのヒントを使用ここではカットします。カットのヒントの写真は図 4で利用可能です。</li>
		<li>96 ウェル プレートから媒体の 100 μ L で回転楕円体を収集し、皿 2 (図 3 a) に追加します。</li>
		<li>皿 2 からメディアの最低量と回転楕円体をピックアップします。直立した、pipettor を保持している間は重力によってピペット先端部の下部に向かって回転楕円体を移動してください。料理 1 (図 3 a) における MS 液滴のメニスカスにピペット先端部に触れることによって回転楕円体を取り出します。 注: 次の手順 4.1.10 & 4.1.11 を迅速に行う必要があります。</li>
		<li>トロンビン (50 U/mL) の 1 μ L を追加、黄色ピペット先端で軽く混ぜます。</li>
		<li>設定 7 μ L ピペット、回転楕円体を拾うし、ゆっくり回転楕円体よく (図 3 b) に入れます。</li>
		<li>フィブリンのゲル化の 37 ° C で 15 分間インキュベートします。</li>
		<li>ゆっくりとメディアで穴 1 a と 3 a と塗りつぶしのチャンネル 1 と 3 から内皮細胞培地を注入 (20 〜 30 μ L/チャネル)。</li>
		<li>メディア デバイス (図 3 c) からの蒸発を防ぐために濡れたキムワイプで 100 mm ディッシュにデバイスを配置します。</li>
		<li>24 h フィブリンとメディア間のインターフェイスで気泡を除去するための 37 ° C および 5% の CO2にデバイスを配置します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>ロード 0 日) 比較<ol>
<li>GFP Huvec (105セル/バイアル × 3.0) を解凍し、内皮細胞培地 10 mL にそれらを追加します。サブ confluency に到達する 2 〜 3 日の CO2を 37 ° C、5% で 100 mm ディッシュにそれらの文化.サブ合流 GFP Huvec の一皿は、8-10 デバイスを準備するために十分です。</li>
		<li>0.05% トリプシン-EDTA の 2 mL で皿から GFP Huvec をデタッチして 10% (v/v) ウシ胎児血清 (FBS) および 1% (v/v) ペニシリン/ストレプトマイシンを含む DMEM の 4 mL のトリプシン反応を停止します。</li>
		<li>3 分の 220 × g で遠心分離後に、、106セル/mL x 5.0 で内皮細胞培地で GFP Huvec を再懸濁します。</li>
		<li>Huvec 細胞懸濁液を注入穴 1 b を経由するチャネル 1 (20 μ L/チャネル)。</li>
		<li>マイクロ流体デバイス 90 ° のチルト、側に配置、比較のチャネル 2 のフィブリンに従うように 30 分の 37 ° C で孵化させなさい。<ol>
<li>フィブリンに関する比較の添付ファイルを確認します。ゲルと媒体間のインターフェイスで接続されている比較の数が不足しているとき、デバイスの文化 (図 5) の数日後、血管を血管ルートで切断できます。灌流の成功率は、プロトコルでは、> 50%。</li>
		</ol>
</li>
		<li>チャネル 3 の 4.2.4 および 4.2.5 章の手順を繰り返します。</li>
		<li>7-14 日間の CO2を 37 ° C、5% で湿らせたキムワイプを 100 mm ディッシュに培養細胞。</li>
	</ol>
</li>
	<li>日 1 ~) メディア交換<ol>
<li>チャンネル 1 と 3 でメディアの半分は毎日交換します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. 核染色
<ol><li>PBS で 4% パラホルムアルデヒド (PFA) を準備します。</li>
	<li>チャンネル 1 と 3 からメディアを削除し、4% の 20 μ L を追加チャンネルあたり PFA。4% でソリューションを置き換えるに PFA、繰り返しデバイスからソリューションを削除および追加 4% PFA 3 回します。</li>
	<li>4 ° C でデバイスを一晩インキュベートします。</li>
	<li>4% を削除デバイスと洗浄から PFA PBS でチャンネル 3 回します。</li>
	<li>細胞核を染色するチャネルあたり 10 μ G/ml 蛍光染料 (材料表) の 20 μ L を追加します。デバイスでソリューションを交換するには、デバイスからソリューションを削除し、10 μ g/mL を追加蛍光染料 3 回繰り返します。</li>
	<li>24 h の 4 ° C でデバイスを保存します。</li>
</ol>6 回転楕円体の液灌流
<ol><li>連続血管経路の完了を 37 ° C、5% CO2でデバイスに 7 日以上の培養後回転楕円体を準備します。</li>
	<li>穴 1 a、1 b、3 a、3 b からメディアを削除します。</li>
	<li>かに (FITC) の 10 μ M 溶液 10 μ L を紹介-穴 1A と 1B に PBS のデキストラン。</li>
	<li>ビーズや FITC 色素倒立顕微鏡下での流れを監視します。</li>
</ol>7. 芽長の定量化
注: ImageJ 版 1.49 ソフトウェアは、すべての研究ではこのイメージの分析に使用されます。
<ol><li>GFP Huvec 日 0、1、3、5、7 のイメージが重なります。</li>
	<li>1、3、5、7 の日に撮影した画像を同じ位置から 0 日の血管先端の位置を減算します。</li>
	<li>ルートの位置 (図 6) から血管の先端の成長を決定します。血管の先端とルート間の距離は、この研究では (図 7 b) スプラウト長さとして定義されました。</li>
</ol>8. 血管角度の定量化
注: 血管の角度は、角度によって血管角度、ルートおよび回転楕円体 (図 7 c) の中心から成っていたと定義しました。
<ol><li>RFP Huvec を含む共回転楕円体の蛍光画像を 2 値化するし、ImageJ の解析関数で「重心」の位置を測定します。本研究では測定の「重心」の位置は、回転楕円体 (図 6) の中心として定義されます。</li>
	<li>手順 7 で同じ方法で、血管のヒントを根の位置を決定します。</li>
	<li>ImageJ ソフトウェアで分析関数を使用して血管の角度を測定します。</li>
</ol>

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著者は、彼らは競合する金銭的な利益があることを宣言します。

過去のレポート表示 hLFs がカクテル アンジオポエチン 1、アンジオジェニン、肝細胞増殖因子、増殖因子-α、腫瘍壊死因子といくつか細胞外マトリックス蛋白質29、変換など、複数の血管新生因子を分泌します。 30です。この試金は hLFs 共回転楕円体法の制限である内から血管新生の分泌に依存しています。したがって、培養スフェロイドと Huvec チャンネル 1 と 3 の間の距離を短縮できるよう、井戸の底で共回転楕円体を設定する安定した血管形成のため重要です。線維芽細胞から血管の長さは短い距離は安定した血管形成有利である血管内皮細胞および線維芽細胞の31日間の距離に反比例します。ただし、有害なチャンネル 1 と 3 に開くと回転楕円体の穴 (直径 1 mm) にチャネル 2 の最小の幅 1.5 mm であった。
回転楕円体は、井戸の底で一段落、血管根時折 microposts またはマイクロ チャネル (<strong...

生活の細胞の機能を模倣文化モデルを使用する必要性によって動機づけられている三次元培養単分子膜 (二次元) 文化からシフト組織1,2,3。細胞培養でよく使用されるフラットとハードなプラスチック基板の上には、人間の体内で細胞外の環境のほとんどは似ていません。実際には、多くの研究を示す従来の二次元文化4でみられていない、三次元培養再作成組織固有のアーキテクチャに、機械的、生化学的手がかりと細胞間コミュニケーション 5,6,7,8。
多細胞集合体または回転楕円体は、この三次元培養9,10を実現するために最も有望な技術の一つです。細胞は、細胞外マトリックス (ECM) を分泌し、回転楕円体で他のユーザーと対話できます。ただし、いくつかの他の工学アプローチ11,12,13,14, 細胞が積層など人間の体の空間的複雑さを正常にレプリケートされる、これらのアプローチがある唯一の 2 つまたは 3 つ細胞分析の使いやすさと標的臓器の 1 つだけに焦点を当てた関数の種類。対照的に、回転楕円体の細胞は、栄養素や酸素、パラクリンやオートクリン シグナル分子回転楕円体での異種の供給のために回転楕円体のそれぞれの立場によって異なる文化環境にさらされています。回転楕円体のこの機能を部分的に模倣体内培養条件と有効にするはるかに複雑な整頓されていた組織を作成する回転楕円体のセル構造の in vitro積層組織9,の培養に比べて15,16. 場合は回転楕円体は、単一のセルの種類から成り、回転楕円体の細胞の機能が回転楕円体の異機種混在環境のため均一ではないことに注意してください。過去数年間でスフェロイド培養できる体内発生シーケンスを模倣し、17脳などミニ器官を再作成する住民組織幹細胞や胚性幹細胞 (Esc)、誘導多能性幹細胞 (Ips)肝臓腎臓と1819,20。
スフェロイド培養技術の大幅な進歩にもかかわらず長い間大きな回転楕円体の培養はまだ問題です。三次元組織の細胞は酸素と栄養素の21の限られた供給のため 150-200 μ m の血管内に存在する必要があります。回転楕円体の中で血管のネットワークは、血液と組織の生体間交換物質を要約する必要があります。そのためには、他のグループは共培養血管内皮細胞のターゲット細胞22,23,24か CD31 陽性細胞20多能性細胞の分化を誘導しました。それにもかかわらず、報告された血管のような構造は、回転楕円体の中心に酸素と栄養を供給するルミナの開いた端部を必要はありません。三次元培養細胞を養う血管の役割を模倣するには、オープン エンドと perfusable の血管網は、回転楕円体で開発されなければなりません。
過去数年間の間にマイクロ エンジニア リングの分野でいくつかの研究グループ報告遊走性に与える線維芽細胞25 から血管新生因子を用いたマイクロ流体デバイスで自発的に形作った perfusable 血管網を構築する方法 ,26。これらの血管のネットワークは、体内の対応する類似形態し、適してスフェロイド培養血管機能を模倣するための環境要因によって改造することができます。このプロトコルの目的は、マイクロ流体プラットフォーム27を使用して回転楕円体で perfusable 血管網を構築することです。回転楕円体に組み込むことができるように、マイクロ流体デバイスが以前に報告されたデバイス25から変更されます。マイクロ流路における内皮細胞と回転楕円体の線維芽細胞から血管新生の分泌を誘導血管新生は回転楕円体で吻合マイクロからもやしし、perfusable 血管網を形成します。このメソッドは、蛍光分子と血管網と長期培養のためのフレームワークを提供します回転楕円体の内部にマイクロ ビーズなどの物質の広い範囲の直接配信できます。

<table><tbody><tr><td>AutoCAD 2017</td><td>Autodesk</td><td>AutoCAD 2017</td><td></td></tr><tr><td>AZP 1350でコーティングされたクロムマスク。</td><td>クリーン表面技術</td><td>CBL2506Bu-AZP</td><td></td></tr><tr><td>マイクロパターンジェネレータ</td><td>ハイデルベルク</td><td>uPG101</td><td></td></tr><tr><td>MF CD-26開発者</td><td>ロームとハース電子材料</td><td>-</td><td>プロトコル1.4</td></tr><tr><td>S-クリーン</td><td>佐々木化学</td><td>S-24</td><td>クロムエッチング液プロトコル1.5</td></tr>エー<tr><td>ストン</td><td>和光</td><td>012-00343</td><td></td></tr><tr><td>シリコンウェーハ</td><td>カノーシス</td><td>SiJ-4</td><td></td></tr><tr><td>スピンコーター</td><td>MIKASA</td><td>1H-D7</td><td></td></tr><tr><td>ヘキサメチルジシラザン (HMDS)</td><td>東京応化工業</td><td>H0089</td><td></td></tr><tr><td>SU-8 3050</td><td>MicroChem-Negative</td><td></td> <td>フォトレジスト in protocol 1.9</td></tr><tr><td>UV Exposure</td><td>Nanometric Technology Inc</td><td>LA310s</td><td></td></tr><tr><td>SU-8 Developer</td><td>MicroChem</td><td>Y020100</td><td>プロトコール1.13</td></tr><tr><td>2-プロパノール</td><td>ワ</td><td>コー163-04841</td><td></td></tr><tr><td>表面プロファイ</td><td>ラーVeeco</td><td>Veeco Dektak XT-S</td><td></td></tr><tr><td>(トリクロロ(1H、1H、2H、2H-パーフルオロオクチル)シラン</td><td>シガンシグマ</td><td>448931</td><td></td></tr><tr><td>ポリジメチルシロキサン(PDMS)</td><td>ダウコーニング東レ</td><td>184W / C</td><td></td></tr><tr><td>生検パンチ(1.0mm)&nbsp;</td><td>貝印工業</td><td>BP-10F</td><td></td></tr><tr><td>バイオプシーパンチ (2.0mm)&nbsp;</td><td>貝印工業</td><td>BP-20F</td><td></td></tr><tr><td>プラズマシステム</td><td>フェムトサイエンス</td><td>COVANCE</td><td></td></tr><tr><td>カバーガラス</td><td>松波ガラス</td><td>C024241</td><td></td></tr><tr><td>培養皿</td><td>いわき</td><td>1000-035</td><td></td></tr><tr><td>RFP 発現ヒト臍帯静脈内皮細胞</td><td>アンギオプロテオミー</td><td>cAP-0001RFP</td><td></td></tr><tr><td>正常ヒト肺線維芽細胞</td><td>ロンザ</td><td>CC-2512</td><td></td></tr><tr><td>内皮細胞増殖培地</td><td>ロンザ</td><td>CC-3162</td><td></td></tr><tr><td>線維芽細胞増殖培地キット</td><td>ロンザ</td><td>CC-3132</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>サーモフィッシャー サイエンティフィック</td><td>11965092</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>サーモフィッシャー サイエンティフィ</td>ック <td>26140079</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン溶液</td><td>和光</td><td>168-23191</td><td></td></tr><tr><td>0.05w/v% トリプシン-0.53mmol/l EDTA&bull; フェノールレッド</td><td>和光</td><td>204-16935</td><td></td></tr><tr><td>PBS(リン酸緩衝塩)</td><td>タカラバイオ</td><td>T900</td><td></td></tr><tr><td>96ウェルプレート</td><td>住友ベークライト</td><td>631-21031</td><td></td></tr><tr><td>1000ul</td><td>チップ NIPPON Genetics</td><td>FG-402</td><td></td></tr><tr><td>200ul&nbsp;チップ</td><td>NIPPON ジェネティクス</td><td>FG-301</td><td></td></tr><tr><td>10ul チップ</td><td>NIPPON ジェネティクス</td><td>37650</td><td></td></tr><tr><td>CO2インキュベーター</td><td>サーモフィッシャー サイエンティフィック</td><td>モデル 370</td><td></td></tr><tr><td>GFP 発現ヒト臍帯静脈内皮細胞</td><td>アンギオプロテオミー</td><td>cAP-0001GFP</td><td></td></tr><tr><td>ウシ血漿由来フィブリノーゲン</td><td>シグマ</td><td>F8630</td><td></td></tr><tr><td>ウシ肺由来アプロチニン</td><td>Sigma</td><td>A6279</td><td></td></tr><tr><td>コラーゲンI</td><td>コーニング</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>ウシ血漿由来トロンビン</td><td>Σ</td><td>T4648</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Invitrogen</td><td>H21492</td><td>プロトコール5.5</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド溶液</td><td>和光</td><td>163-25983</td><td></td></tr><tr><td>倒立蛍光顕微鏡</td><td>オリンパス</td><td>IX71</td><td></td></tr><tr><td>デジタルCCDカメラ</td><td>オリンパス</td><td>ORCA-R2</td><td></td></tr><tr><td>共焦点レーザー走査型生物顕微鏡</td><td>オリンパス</td><td>FV1000</td><td></td></tr><tr><td>倒立蛍光顕微鏡</td><td>オリンパス</td><td>IX-83</td><td></td></tr><tr><td>フルオレセインイソチオシアネート-デキストラン</td><td>シグマ</td><td>FD70S</td><td></td></tr></tbody></table>

マイクロ流体デバイスにおける組織モデルと perfusable の血管ネットワーク

Perfusable Vascular Network with a Tissue Model in a Microfluidic Device

回転楕円体 (多細胞集合体) は、人間の体内で生体組織の良いモデルとみなされます。回転楕円体の文化の重要な前進、にもかかわらずスフェロイドの perfusable 管のネットワークを維持し、タンパク質の発現、形態形成など、彼らの機能を開発するために必要な長期的な文化のための重要な課題のまま。プロトコルは、マイクロ流体デバイスの回転楕円体内 perfusable 血管網を統合する新しい手法を提案します。回転楕円体の perfusable 管ネットワークを誘導して、マイクロ チャネルに接続されている血管新生もやしは、回転楕円体の培養ひと肺線維芽細胞から血管新生因子を用いた回転楕円体に導かれました。血管新生もやしは、回転楕円体で共培養血管内皮細胞と結合、回転楕円体に達し、連続的な血管網を形成します。血管のネットワークをヌケモレなく回転楕円体の内部灌流でした。構築された血管網は、栄養素の供給と血液循環の生体を模倣した廃棄物の除去のためルートとしてさらに使用可能性があります。メソッドは、生体組織のよい反復に向かって回転楕円体文化の新しいプラットフォームを提供します。

図 1は、設計とマイクロ流体デバイスの写真を示しています。3 つ並列チャンネル、どのチャネルで 2 が含まれている回転楕円体もいます。チャンネル 1 と 3 は螢光文化のため使用され、チャネル 2 は、回転楕円体。各チャンネルは、PDMS のパターンに設計された台形 microposts で区切られます。Microposts チャネル 2 のハイドロゲルの表面張力によってチャンネル 1 と 3 に漏れを防ぐし、マイクロ28回転楕円体と比較との間の物質の交換を許可します。
図 7 aは、細胞播種後マイクロ流体デバイスの中心を示しています。明視野/蛍光画像の 0 日目に撮影したフィブリン ゲルは、チャンネル 1、3 に、ヌケモレなくチャンネル 2 のみを充填し、比較はフィブリン ゲルの側壁に...

プロトコルでは、回転楕円体の perfusable 管ネットワークを設計する方法について説明します。血管新生を誘導するマイクロ流体デバイスのマイクロに回転楕円体を接続する回転楕円体の周囲の微小環境が工夫されています。メソッドでは、三次元培養での待望の技術は、回転楕円体の血流をことができます。

A spheroid (a multicellular aggregate) is regarded as a good model of living tissues in the human body. Despite the significant advancement in the ...

この手順の全体的な目標は、マイクロ流体プラットフォームを使用して、多細胞凝集体またはスフェロイドに灌流可能な血管ネットワークを構築することです。この方法は、血管ネットワークがin vivoおよびin vitro組織モデルでどのように重要であるかなど、再生医療分野の別の形状における重要な問題に対処するのに役立ちます。この手法の主な利点は、薬物およびサプリメントの投与経路を、関心領域をスフェロイドに直接送達することにより、in vitroでシミュレートできることです。一般に、この方法に不慣れな個人は、マイクロ流体デバイスの標的領域に細胞を導入するのが難しいため、苦労します。PDMSプレポリマーを鋳造した後、真空チャンバー内で材料を2時間脱気し、その後、通気オーブンで摂氏80度で一晩硬化させます。翌朝、シリコンウェーハからPDMSを剥がし、直径2mmの穴あけパンチを使用して、材料に指定された位置に穴を開けます。直径 1 mm のパンチを使用して回転楕円体ウェルを作成し、粘着テープを使用して PDMS スラブと 24 x 24 mm ガラス カバー スリップをクリーニングします。きれいなスラブをエアプラズマで40秒間処理し、PDMSスラブをカバースリップに接着します。その後、PDMSを摂氏80度で少なくとも12時間硬化させます。マイクロ流体デバイスを播種する2〜3日前に、5回目の解凍したばかりのhLF、RFP-HUVECs、およびGFP-HUVECsに10回10を3回加え、10mm皿に10mlの新鮮な内皮培地を加えます。hLFおよびRFP-HUVECがサブコンフルエンシーに達したら、内皮培地中のhLFおよびRFP-HUVECを、それぞれ1ミリメートルあたり1.0×10〜5番目、2.5×10〜4番目の細胞で最終濃度まで懸濁します。懸濁培養で2日間過ごした後、バイオセーフティキャビネットで、調製したばかりのマスターミックス溶液の99マイクロリットルの液滴を氷上の35ミリメートルのシャーレの中央に加えます。マイクロ流体デバイスをロードするには、改造された100マイクロリットルのマイクロピペットチップを使用して、回転楕円体と100マイクロリットルの培地を2番目の室温のシャーレに移します。次に、スフェロイドを最小限の培地で吸引し、ピペットを直立させて、重力によってスフェロイドがピペット先端の底に移動するようにします。ピペットの先端をマスターミックス液滴の半月板に接触させて、ピペットプランジャーを押さずにスフェロイドを溶液に排出します。次に、調製したばかりのトロンビン1マイクロリットルを液滴にすばやく加え、トロンビンを溶液に穏やかに混合します。ピペットを7マイクロリットルにセットした状態で、スフェロイドをPDMSスラブのスフェロイドウェルにゆっくりと移します。この手順の最も重要なステップは、スフェロイドがデバイスの底部に沈殿するのに十分なゲルをスフェロイドに注入することです。ロード後、マイクロポスト間の漏れを防ぐために、ピペットチップをそっと取り外します。スフェロイドを摂氏37度で15分間インキュベートします。フィブリンが固まったら、穴1のAと3つのAに20〜30マイクロリットルの内皮培地をゆっくりと注入して、それぞれチャネル1と3に負荷をかけます。次に、100mm皿のウェットラボワイプに装置を移し、装置を摂氏37度、CO25%で24時間インキュベートして、培地とフィブリンとの間の界面の気泡の除去を促進します。翌日、サブコンフルエントGFP-HUVECsに0.05%トリプシン-EDTAの2ミリリットルを追加し、細胞が完全に分離したときに完全な培地の4ミリリットルでトリプシン反応を停止します。遠心分離により内皮細胞を採取し、ペレットを新鮮な内皮培地に10〜6細胞/ミリリットルの濃度の5倍で再懸濁します。次に、20マイクロリットルのHUVECを穴1 Bに注入してチャネル1をロードし、デバイスを摂氏37度に30分間置き、90度の角度で傾けて、HUVECがチャネル2のフィブリンに付着するようにします。同様にチャネル3をロードした後、細胞培養インキュベーター内の湿ったラボワイプを入れた新しい100mmディッシュにデバイスを7〜14日間置き、チャネル1と3の培地の半分を毎日交換します。HUVECローディングの0日目に撮影されたこれらの代表的な画像は、フィブリンゲルがチャネル2のみにロードされ、チャネル1または3に漏れることなく、HUVECがフィブリンゲルの側壁に正常に付着していることを示しています。また、スフェロイドはデバイスの底部に適切に沈殿していることも観察できます。血管新生芽は1日目から観察され、この実験では最も長い芽が3日目にスフェロイドに到達し、血管新生芽のほとんどが7日目までにスフェロイドに到達します。最適には、装置内で4日後、血管の先端の方向と血管根からのスフェロイドの中心として定義された血管角度で、血管内腔を通る流れを観察できます。血管角は時間依存的に減少し、血管新生芽がスフェロイドに向かって移動することを示しています。RFPおよびGFP-HUVECは、単一の血管内腔を協調的に形成することができ、チャネル1および3から血管新生がスフェロイド内のRFP-HUVECに吻合して連続的な血管網を形成する様子を明確に示しています。また、チャネル1に注入されたFITC-デキストランは、構築された血管網とスフェロイド内部に流れ込み、最終的にチャネル3に到達することから、統合された血管網がスフェロイドに栄養を供給し、スフェロイドから老廃物を除去できることが示唆されます。開発後、この技術は、有機電界の研究者がin vitro組織モデルで関心のある薬物やサプリメントの有効性を探求する道を開きました。

perfusable-vascular-network-with-tissue-model-microfluidic

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

微小サイズのチャネル（&lt;30μm）を持つマイクロ流体デバイスの全体の内部の三次元表面全体に文化内皮細胞単層をに方法が記載されています。この...

血液疾患における血管相互作用を研究するためのEndothelializedマイクロフルイディクス

Primary Human Umbilical Vein endothelial cells...

の開発と特性評価<em&gt;インビトロ</em&gt;微小血管ネットワークおよび内皮の定量的測定の[Ca<sup&gt; 2+</sup&gt;]<sub&gt;私</sub&gt;と一酸化窒素の生産

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サイズとパターンの柔軟性を備えた標準的な 6 ウェルプレートにおける血管透過性をモデル化するためのハイスループットバイオプリンティング法

ここでは、肺切除術を模倣するように設計されたオルガンオンチップ(OOC)システムを構築するためのプロトコルを提示します。このシステムは、グリコカリックス障害と肺切除後の合併症との潜在的な相関関係を調査します。...

3D流体チップにおける肺切除術後の内皮グリコカリックスのモデル化 - 血管ベースの臓器オンチップシステムの構築へのアプローチ

学ぶマイクロ流体デバイスを用いてスフェロイド内に灌流可能な血管ネットワークを構築する方法。PDMSキャスティングと細胞導入技術により、薬物送達シミュレーションと組織モデリング研究の新たな可能性を開きます。

マイクロ流体デバイスにおける組織モデルと perfusable の血管ネットワーク

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