急性および慢性毒性試験ターコイズ メダカによる furzeriのためのプロトコル

この実験の全体的な目標は、ターコイズメダカNothobranchius furzeriに対する毒物の影響を研究することです。この方法は、重要な生活史形質に対するストレッサーの長期的な影響、成熟時間、成長、繁殖力など、生態毒性学の分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。この実験の主な利点は、ライフサイクルが非常に速い脊椎動物を使用しているため、時間とコスト効率の高い実験が可能になることです。

これらのメダカは、ストレッサーの長期的および多世代にわたる影響の影響を研究するための理想的なモデルです。最終的には、毒物の環境への影響についての理解を深めることに貢献します。この方法は、毒物と温度の複合的な影響に関する新たな洞察を提供することができますが、紫外線、食物欠乏、PHの変化などの他のストレッサーにも適用できます。

メダカは、生態毒性学の新しいモデルシステムであり、多くの汚染物質に対する感受性がまだ不明であるため、取り扱いが困難です。この実験方法のアイデアは、メダカの非常に短い寿命と、棚に何年も保存できる休眠卵を生成する能力について最初に知ったときに開発されました。この方法を視覚的に示すことは、実験の種類や個々の取り扱いによって結果が変わる可能性があるため、非常に重要です。

まず、D3ステージでゴナレイ動物園、またはGRZの卵を選択します。これは、金色の目の存在によって認識できます。また、柔らかいピンセットを使用して、プラスチック製の2リットルタンクにそっと移します。12°Cの孵化媒体を1cm加え、水温を徐々に室温に調整します。

24時間後、孵化したばかりのアルテミア・ノープリウスを孵化したばかりの子ガメに濃縮して給餌し、魚用培地を加えて水深を5センチメートルに増やします。孵化後48時間後、健康で浮力のある幼生を、テキストプロトコルに記載されているように、曝露培地と毒物濃度を個々の容器に移します。毎朝と夕方、魚の死亡率、ストレス、病気をチェックし、テキストプロトコルに従ってLC50値を計算します。

個々の容器に正しい露光媒体を充填し、ジャーにエアチューブを追加して、慢性暴露試験を実施します。実験の残りの部分で魚を瓶に移します。孵化後2〜23日またはDPHで、魚のアルテミアノープリウスを1日2回自由に給餌します。

その後、みじん切りにしたキロノムスの幼生を37DPHまで補給した後、冷凍のキロノマスの幼生を使用して、1日2回、毎日自由に魚に餌を与え、前進します。成長を判断するには、貯水池から培地で満たされたシャーレに魚を移すことにより、毎週体のサイズを測定します。固定された高さで魚の4〜5サイズ調整された背側の写真を撮ります。

また、空間測定プログラムを使用して、それらをデジタル分析します。15 DPH以降、オスの魚の色を目視検査して、成熟を判断します。婚姻の色の最初の兆候がないかひれをチェックし、拳の色が見えた日を男性の成熟時間の代理として使用します。

30DPH以降は、雄の水槽からの曝露媒体を用いて、各処理内に成熟した雄と雌の夫婦用の1リットルの産卵槽を設置して繁殖力を確認し、産卵基質を補充します。オスとメスの両方を産卵タンクに移します。また、産卵コンテナの周りの人間の活動や妨害を最小限に抑えながら、2時間産卵できるようにします。

その後、産卵基質の卵を渦巻くような水を不必要に混ぜることなく、魚を元のハウジングコンテナにゆっくりと戻します。産卵基質を500マイクロメートルのメッシュに注いで卵をろ過します。卵を数え、ピペットを使用して、ペトリ皿の湿ったピートモスに移します。

死んだ卵を毎日取り除きます。1週間後、シーリングフィルムを使用してペトリ皿をシールします。そして、摂氏28度の温度制御されたインキュベーターに、14〜10の明暗サイクルで保管し、D3フェーズにすぐに進行させます。

長期的な保存のために、卵を摂氏17度の一定の暗闇に保管し、その時点で卵は休眠期に入り、数年間生存可能になります。休眠卵から魚を動員するには、卵を摂氏28度に移し、14〜10の明暗サイクルを約3週間移動して、D3フェーズに成長させます。成魚の臨界熱極大値(CT max)を測定するには、まず、毎分0.33°Cの一定速度で加熱された連続循環水浴から始めます。

個々の魚ごとに、いくつかの1リットルの水槽を追加します。水が魚の実験的な飼育温度に達したときに、魚を水槽に追加してトレイルを開始します。デジタル温度計を使用して、CT maxバスの1リットルの水槽の温度を5分ごとに監視します。

魚が背側の腹側直立姿勢を維持できない、または激しくけいれんし始めた場合は、臨界最高温度である1リットルの水槽内の温度を測定します。その後、魚を実験用の住居に戻して回収します。このグラフに示されているように、エンフルゼリが異なる濃度の銅に急性曝露すると、毒物濃度の増加に伴って死亡率が増加しました。

LC50の値は時間の経過とともに減少するため、濃度が減少すると、反復の50%が死ぬまでに経過する時間が長くなります。水由来銅を使用した慢性暴露アッセイでは、テストされた最高濃度で飼育した場合、3週間後に測定された魚の体長は短くなります。水系クロルピリホスまたはCPHを使用したこの実験では、摂氏28度で飼育すると、魚は最高CPF濃度にさらされたときに産む卵が少なくなりましたが、摂氏30度では、対照魚はいずれかの濃度のCPFにさらされた魚よりも多くの卵を産み、CPFと温度上昇の組み合わせが各ストレッサーよりも繁殖力に大きく影響したことを示しています。

ここで報告されているのは、摂氏28度と30度のCPFにさらされたエンフルゼリの男性に最初の着色の兆候が現れた平均年齢です。CPF1リットルあたり4マイクログラムに曝露した後、雄の魚は対照魚よりも成熟するのに18%長くかかりました。摂氏24度または28度で飼育された魚のCTマックスを測定し、汚染物質3、4-DCAへの曝露により、魚を摂氏24度で飼育すると、不規則な遊泳、手術運動の増加、背腹側直立姿勢を維持する能力の喪失が、摂氏24度で飼育された魚の低温で発生することが明らかになりました。

習得すると、繁殖力への影響を含むこのプロトコルは、2か月で測定できます。生殖期間全体または次の世代への影響を測定するために、プロトコルを延長することができますが、それでも6か月で実行できます。