Name: カエノラブディティス ・ エレガンスにおける縦断的イメージングのためのマイクロ流体プラットフォーム (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-02T13:30:00.000+00:00
Duration: 9 min
Description: 学ぶカスタムマイクロ流体デバイスを用いたC. elegansの縦断的ライブイメージング手法。個体の行動応答と遺伝子発現動態を追跡し、環境適応の定量的理解を深める。この技術は神経科学と行動研究に応用可能です。

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この研究は、PHY 1205494 を通じて全米科学財団および MCB 1413134 (EL)、韓国の国立研究財団助成金 2017R1D1A1B03035671 にサポートされていた (KSL)。

以下のプロトコルは、WormSpa5ワームの縦画像の説明したマイクロ流体デバイスを使用します。(リクエストの作成者から入手できる CAD ファイルから始まる) WormSpa の作製は簡単ですが、いくつかの専門知識が必要です。ほとんどの場合、中核施設やそのようなサービスを提供する商業企業は、作製を行う容易にことが。機能の高さは 50 μ m であることを指定するのには、デバイスを製造するときを確認します。
1. 実験装置
<ol><li>電動ステージと倒立蛍光顕微鏡のマイクロ流体デバイスをマウントします。</li>
	<li>顕微鏡に近い軌道シェーカーを配置、シェーカーから振動顕微鏡に直接影響しないかどうかを確認します。たとえば、光学テーブルとの接触を一切壁に固定棚にシェーカーを置きます。</li>
	<li>軌道のシェーカーにシリンジ ポンプを配置します。それは揺れながらプルプルしないので、シェーカーにポンプをテープします。</li>
</ol>2. マイクロ流体環境の準備
注: 実験中に 4 つの注射器に接続している注射器のチューブを介してマイクロ流体デバイス図 1で説明したよう。この手順では、これらの注射器の準備について説明します。特に記述がない限り、タウトをせずできるだけ短く注射器チューブを維持します。
<ol><li>アウトレットの注射器と注射器チューブを準備します。この注射器 (図 1では、S1) は後で注射器の管を通って装置のコンセントに接続され、デバイスから出てくる流体の一時ストレージに使用します。<ol>
<li>アダプター針を針 (金属部分) のみを維持する 20 x 1/2 インチのシリンジの先端のプラスチックの部品を削除してください。プラスチックや金属パーツをペンチで押しそれらを引き離すようにします。針の残りのプラスチック残渣は、ブンゼン バーナーと焼くことができます。</li>
		<li>ペンチでその 2 つの端を押しながら実験のセットアップの幾何学によると針を曲げます。ここで説明した設計、その真ん中に針を 〜 110 ° の角度に曲げ、最も便利です。</li>
		<li>アダプター針半分の方法をチューブに差し込みます。他の半分は後でデバイスに接続されます。注射器のチューブ リーク (たとえば、0.86 mm の内径と外径 1.32 mm チューブ) なし 20 G シリンジの先端と互換性があります。推奨チューブの長さは、~ 50 cm です。</li>
		<li>10 mL ルアーロック シリンジをシリンジ チューブ 20 x 1/2 インチ シリンジ チップを介しての他の (開いている) 端に接続します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>バッファー入口注射器を準備し、チューブを注射器します。これらの注射器の 1 つ (図 1の S2) が行くデバイスおよび注入の流れを制御する流体の貯水池として使用されます。その他の注射器 (図 1の S3) はバッファー交換に必要な手順 3.2 で説明したよう。<ol>
<li>注射器チューブ (図 1) を介して同じ弁三方弁に直接 10 mL ルアーロック シリンジ (S2) を接続し、別の注射器 (S3): シリンジ チップを介してチューブに S3 を接続し、バルブを介して別のシリンジの先端にチューブを接続します。 注: これらの材料は、接続されている順序は関係ありません。</li>
		<li>三方弁の残りのポートに注射器のチューブを接続します。ステップ 2.1.2 のように別のアダプターの針を準備、注射器管のもう一方の (オープン) の端に針を半分の方法を差し込みます。</li>
		<li>S3 が閉じている間、2.2.2 のステップと S2 で注射器管が接続されているようなバルブを設定 (図 1)。</li>
	</ol>
</li>
	<li>ワーム入口の注射器と注射器チューブを準備します。この注射器 (図 1の S4) がデバイスにワームを読み込むために使用されます。<ol>
<li>10 mL ルアーロック シリンジ (S4) に長い注射器のチューブを接続します。読み込み用に使用する流体の量からこのチューブの長さを決定します。たとえば、100 cm のチューブの液体 2 mL 以上をサポート (また、手順 4.2 を参照)。</li>
		<li>2.1.2 の手順のように別のアダプターの針を準備し、片方注射器管の他の (開いている) 最後に針の半分。</li>
	</ol>
</li>
	<li>すべての注射器とチューブ S 中12回すすぎます。S 媒体、すべての空気の泡を削除に世話、注射器やチューブを入力します。</li>
	<li>装置のコンセントにコンセント注射器のチューブを接続します。<ol>
<li>出口ポートに注射器管端アダプター針を差し込みます。</li>
		<li>少し S 中はバッファー入口とワームの入口から出てくるまでにデバイスを埋めるためコンセントを通じて S 媒体の少量を注入します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>ピン (1/32 インチ径ステンレス鋼ダウエルピン) ワーム入口を接続しながら、デバイスのバッファー入口ポートにバッファー入口注射器チューブを接続します。</li>
	<li>デバイスにバッファーの一定の流れを挿入します。シリンジ ポンプ13、上にバッファー入口シリンジ S2 を読み込み、S2 内の媒体は 3 μ L/分の流量でデバイスに連続的に注入するようにポンプを設定します。</li>
</ol>3. マイクロ流体デバイスへの細菌の読み込み
<ol><li>エシェリヒア属大腸菌OP50 S 中12で中断を準備します。<ol>
<li>標準プロトコル LB と単一コロニーの 50 mL の 250 mL フラスコに接種し、37 ° C で一晩インキュベート</li>
		<li>10 分間 4000 rpm で一晩かけて培養を遠心し、S 培地 30 mL にペレットを再懸濁します。</li>
		<li>5 μ m のシリンジ フィルターを介して懸濁液をフィルターします。600 でその光の密度によって細菌濃度を測定 nm (外径600) 外径 φ600 3 濃度を調整。この高密度は、ワームの供給を維持する必要があります。</li>
	</ol>
</li>
	<li>OP50 サスペンション デバイスのバッファーを交換します。<ol>
<li>OP50 懸濁液で満たされた清潔なシリンジ (S5) を準備します。注射器を垂直に保持し、それの上部にすべての気泡を収集する数回をタップします。</li>
		<li>デバイスへの接続を閉じますバッファー入口注射器の三方弁を切り、注射器 2 S2 と S3 を接続します。シリンジ ポンプから S2 を外します。</li>
		<li>バルブから S2 を外し、バルブに S5 を接続します。バルブを介しての S3 に S5 の上部に収集し、その少し OP50 バッファーの S3 に入るまでのすべての空気を押し出します。そう、S5 またはバルブで空気の泡が残っていないことを確認します。</li>
		<li>S3 と S5 の間の接続を閉じます、デバイスに S5 を接続し元の位置に戻る 3 方向バルブを回します。シリンジ ポンプに S5 をロードします。ポンプを保持する軌道のシェーカーを入れます。揺れの速度を約 200 rpm に設定します。</li>
		<li>100 μ L/分の流量を設定します。デバイスでワームに到着する新しいバッファーにかかる時間は、バッファー入口注射器チューブ (上記チューブで約 5 分) の長さに依存します。高速バッファー交換が必要な場合、高い流量を用いることができます。</li>
		<li>OP50 バッファーはデバイスに広がる、かつては、流量を設定 3 μ L/分に戻します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. マイクロ流体デバイスにワームを読み込む
<ol><li>小さな低結合遠心チューブ (650 μ L) を準備し、OP50 懸濁液 100 μ L でそれを埋めます。まわりの伝達の 20-30 歳同期若い成虫 (46 時間後 25 ° C での L1 幼虫逮捕) NGM (線虫成長媒体) 寒天からチューブにワームで一つずつそれらを選ぶことによって選ぶ。次の標準プロトコル12歳同期を行うことができます。</li>
	<li>ワーム入口を埋める OP50 懸濁液管 (図 1の S4) をシリンジと注射器。ワームと流体の 〜 500 μ L の遠心管に挿入します。ワーム入口注射器管にワームを懸濁液を描画します。注射器管が十分な長さを確認 (> 1 m) S4 注射器に描かれたワームが注射器管に滞在し、そうでないとします。</li>
	<li>S4 をワーム インレットに接続します。マイクロ流体デバイスにすべてのワームはワーム入口注射器管を挿入します。S4 と注射器チューブを外します。ピンでワーム入口を差し込みます。</li>
	<li>機械ポンプ (図 1) からバッファー入口シリンジ S2 を外し、別のチャネルにすべてのワームをプッシュするには、S1 と S2 を手動で制御します。S2 を押すことにより、S1 を押すと逆方向にそれらを移動が、そのチャンネルにワームを移動します。チャネルが読み込まれると、各チャネルでワームは他のワームのエントリをブロックします。</li>
	<li>ワームの新しい環境に 2-3 時間の調整をしましょう。</li>
</ol>5. イメージング プロトコルを設定
<ol><li>安全にデバイスにあるすべてのワームを見つけるし、制御あなたの顕微鏡画像集録ソフトウェアでそれらのそれぞれの画像の位置を設定します。いくつかのケースで (例えば高倍率が必要な場合、または小さい CCD センサーのカメラを使用して) 複数の画像の位置が各チャンネルに必要。 注: これは手動で行うことができます、いくつかのソフトウェア パッケージは画像の撮影場所の位置を一覧表示するテキスト ファイルを読み込むことができます。これらの位置は WormSpa で定期的に並べられて、ユーザーはそのようなリストを自動的に作成する (例えばPython や商用ソフトウェア) の小さなスクリプトを書くことができます。このスクリプトの正確な形式は、取得ソフトウェア (補足資料 1の例を参照) されたファイル形式によって異なります。</li>
	<li>タイムラプス観察の必要な周波数を設定します。たとえば、感染症への免疫の遺伝子応答のイメージングは、フレームあたり 10 分の頻度で行われます。すべての時点ですべて必要なチャンネル (例:明視野、GFP 蛍光) を取得ことを確認します。</li>
</ol>6. ホストに対して緑膿菌感染症
注: この手順は、特定ホスト病原体の相互作用を研究するためです。また、1 つは興味 (生物的・非生物的ストレス、薬、シグナリング分子、等) の他の環境の手がかりが含まれているバッファーを準備できます。
<ol><li>緑膿菌PA14 SK 中14で中断を準備します。<ol>
<li>50 ml の LB と単一コロニーの 250 mL フラスコに接種し、37 ° C で一晩インキュベート</li>
		<li>50 mL の LB のと、文化の別の 250 mL フラスコに接種し、37 ° C で一晩インキュベート</li>
		<li>10 分間 4000 rpm で一晩かけて培養を遠心し、SK 培地 10 mL にペレットを再懸濁します。細菌の濃度を測定し、OD600に濃度を調整 = 4。</li>
		<li>きれいなフラスコに懸濁液を転送し、37 ° C 24 時間と揺れながら 24 時間は、25 ° C で孵化させなさい。この手順は、アッセイの14を殺す標準平板培養ステップを模倣します。</li>
		<li>5 μ m のシリンジ フィルターを介して懸濁液をフィルターします。これはデバイスを目詰まりから細菌の凝集を防ぐためです。</li>
	</ol>
</li>
	<li>ステップ 3.2 のように同じ手順に従って PA14 サスペンション デバイスで OP50 サスペンションを交換してください。10 時間のイメージングを維持します。</li>
</ol>

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</ol>

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マイクロ ツールは、ワームの勉強に複数の利点を提供します。PDMS のイメージング デバイスは標準 NGM 寒天プレートと比較してより高い画像品質を提供しています。複数の画像は、伝統的な方法で動物をプレートから選んだし、イメージングのための顕微鏡スライドのマウントとは異なり、1 つのワームから取得できます。さらに、定数または正確な環境の構成と動物の応答間のマッピングを許可する、必要に応じて変調は、ワームが存在する微小環境を維持できます。
ここで日和見病原体膿PA14 カスタム マイクロ流体デバイス (WormSpa) を使用して複数の個々 のワームの応答をイメージングして細菌感染に対する宿主の反応の縦断的測定を実行する方法を示しました。明視野と蛍光画像は継続的な実験の摂動なしで複数回撮影されました。特に、産卵とirg 1遺伝子発現の動態が 10 分ごとに従来の14,15間時間分解能の大幅な増加がプローブされます。
<p c...

環境条件の変化は、誘導と特定の遺伝子1,2発現の抑制を伴う遺伝的プログラムの活性化につながる可能性があります。これらの運動の変化組織同じ動物と異なる動物間の間で変数があります。このような遺伝的プログラムの研究したがって個々 の動物の縦画像および環境条件の正確な動的制御を提供するメソッドを呼び出します。
近年、マイクロ流体デバイスの応答とワーム、はえ、水クマより3,4,5,6などの小動物の行動の多くの側面を研究に使用されています。 7。アプリケーションがあります、たとえば、深い表現、光の化学刺激に対する応答における神経活動の記録と歩行などポンプ8,9,10モーター動作の追跡,11。
マイクロ ベースのアプローチは、環境手がかり、ローカルの微小のメンテナンスを可能にする柔軟な設計の正確な動的制御などへの応答の長期縦断的イメージングに恩恵を受ける可能性があります多くのプロパティを保持します。別の四分の一、およびイメージングのための有利な属性で個々 の動物。しかし、彼らの幸福に有害影響を最小限で長い時間のため流体チャンバーで動物を維持するは、実験の実行だけでなく、マイクロ流体デバイスの設計で特に注意を必要とする課題です。
ここで我々 は WormSpa、線虫の縦断的イメージングのためのマイクロ流体デバイスの使用を示します。5個々 のワームが部屋に閉じ込められました。ワームは、十分に供給し十分に健康を維持し、ストレスを軽減するために積極的、チャンバーの構造によって、ワームの卵を産むは液体や細菌懸濁液の定低流量を保証します。デザインのシンプルさと WormSpa の操作は、自分の研究計画にこのデバイスを組み込むマイクロ流路中は以前の経験を持つ研究者をようにします。

<table><tbody><tr><td>WormSpa</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>WormSpaのCADファイルは、Levineラボから入手できます。</td></tr><tr><td>複合顕微鏡</td><td>Zeiss</td><td>AxioObserver Z1</td><td>電動ステージ付き倒立型蛍光顕微鏡</td></tr><tr><td>シリンジポンプ</td><td>New Era Pump Systems</td><td>NE-501</td><td></td></tr><tr><td>Tubing</td><td>SCI Scientific Commodities Inc.</td><td>BB31695-PE/5</td><td>0.034インチ(0.86 mm) 内径 x 0.052インチ(1.32ミリメートル)O.D</td></tr><tr><td>シリンジ チップ</td><td>CMLsupply</td><td>901-20-050</td><td>20 ゲージ x 1/2" 鈍い先端 ステンレス鋼カニューレ</td></tr><tr><td>シリンジ フィルター</td><td>PALL</td><td>4650</td><td>Acrodisc 32 mm シリンジ フィルター 5 um スープル メンブレン</td></tr><tr>シ<td>リンジ</td><td>Qosina</td><td>C3307</td><td>10 mL オス ルアー ロック シリンジ</td></tr><tr><td>3 ウェイ バルブ</td><td>コールパーマー</td><td>FF-30600-23</td><td>大口径 3 ウェイ、オス ロック、ストップコック、10/パック、非滅菌</td></tr><tr><td>ダボピン</td><td>McMaster-Carr</td><td>90145A317</td><td>18-8ステンレス鋼ダウエルピン(1/32インチ直径x1/2インチLg。</td></tr><tr><td>低結合性マイクロ遠心チューブ</td><td>Corning</td><td>CL S3206</td><td>0.65 mL 低結合スナップキャップ マイクロ遠心チューブ</td></tr></tbody></table>

カエノラブディティス ・ エレガンスにおける縦断的イメージングのためのマイクロ流体プラットフォーム

A Microfluidic Platform for Longitudinal Imaging in Caenorhabditis elegans

過去 10 年間でマイクロ流体技術小動物、線虫、線虫などの研究に適用されているし、便利なライブ イメージング プラットフォームの正確な制御のための機能を提供すると役に立つことがわかりましたリアルタイムでの実験条件。この記事では、WormSpa、以前発行したカスタム マイクロ流体デバイスを用いた個々 のワームのライブ イメージングを示しています。デバイスに複数のワームは個別に分離室、さまざまな生物学的プロセスの多重縦監視を許可に限定されます。機能を示すためには、病原性細菌を持つデバイスに感染していたワームと産卵および免疫応答遺伝子発現の動態は個人で継続的に監視された原理実証実験を行った動物。シンプルなデザインとこのデバイスの操作では、マイクロ流路を用いた実験で以前経験がないユーザーに適してください。このアプローチは明確に定義された条件の下で生物学的過程の縦断的観察に興味がある多くの研究者に有用であることを提案します。

プロトコルで説明されているようにデバイスに読み込まれた (46 時間ポスト L1 幼虫逮捕 25 ° C で)12歳同期の若い大人ワーム。ワームは、病原体に対する動物の反応の縦断的測定を有効にする別のチャネルで個別に位置していた。実験が成功したら、ほとんどのワームは、実験の期間の彼らのチャネルに残る。この場合、動物を積極的に検索する必要がある、画像パスに彼らのチャネルを置くだけで、各ワームの画像。図 2Aデバイスの 10 時間にわたって 1 つの代表的なワームの明視野画像を示しています。ワームは、チャネル内に閉じ込められて、彼らは移動することができますアップおよびダウン ストリームと頭を自由に変えることができます。これは、デバイス自体がストレスの原因、動物に害を与えるまたはしないことを保証するため重要です。
我々...

この記事では、カスタム マイクロ流体デバイスを用いた個々 のワームのライブ イメージングを示しています。デバイスに複数のワームは個別に分離室、さまざまな生物学的プロセスの多重縦監視を許可に限定されます。

In the last decade, microfluidic techniques have been applied to study small animals, including the nematode Caenorhabditis elegans, and have proved ...

この手順の全体的な目標は、制御された環境条件下で成虫の線虫の動的プロセスを縦断的に画像化し、線虫の行動応答と線虫の遺伝子発現の動態を追跡することです。この方法は、動物が中核行動、遺伝子発現、記憶、学習の違いなど、環境の変化にどのように適応するかという重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術により、動的に制御された環境下での個々の動物の多重縦断的観察と、適応の複数の側面の高解像度での同時サンプリングが可能になります。この手法の意味するところは、高精度の動力学データを取得することで、数学的モデリングや複雑な仮説の定式化とテストを容易にすることができるため、動物の適応の定量的理解にまで及びます。手順のためにデバイスをセットアップするには、最初に出口シリンジの先端を50センチメートルのシリンジチューブに接続します。アダプターニードルを作成するには、ペンチを使用して20ゲージのニードルハブからニードルシャフトを1/2インチの針で引っ張り、ブンゼンバーナーを使用して残りのプラスチック残留物を取り除きます。針の両端をペンチで保持し、実験装置の形状に従ってアダプター針を曲げ、針を出口シリンジチューブのもう一方の端に半分差し込みます。次に、1つのバッファーインレットシリンジチップを三方弁に直接接続し、バッファーインレットシリンジを1メートルのシリンジチューブに接続します。アダプター針をチューブの開放端に半分挿入し、バッファー交換シリンジをシリンジの先端を介して50cmのシリンジチューブに接続します。シリンジチューブを三方弁の残りのポートに接続し、バルブを閉じます。アダプターニードルを使用して、先ほど示したように、ウォームインレットシリンジを1メートルのシリンジチューブに接続します。その後、S-mediumですべての材料を2回すすぎ、すすぎたシリンジとチューブに新しいS-mediumを充填し、気泡を取り除くように注意します。次に、コンセントシリンジチューブをデバイスのコンセントに接続し、コンセントシリンジチューブの端にあるアダプター針をコンセントポートに差し込みます。出口から少量のS-mediumを注入して、S-mediumがバッファー入口とワーム入口の両方から出てくるまでデバイスを充填します。バッファーインレットシリンジチューブをデバイスのバッファーインレットポートに接続し、ウォームインレットを直径1インチ30秒のステンレス鋼ダウエルピンで塞ぎます。電動ステージを備えた倒立型蛍光顕微鏡にマイクロ流体デバイスを取り付け、シリンジポンプを顕微鏡の近くのシェーカーにテープで固定して、ポンプが揺れないようにします。次に、バッファーインレットシリンジをシリンジポンプにロードし、S媒体の連続的な流れを毎分3マイクロリットルの流量でデバイスに供給するようにポンプを設定します。細菌をマイクロ流体デバイスにロードするには、まず、大腸菌OP50の高密度懸濁液を新しいシリンジにロードします。シリンジを垂直に回し、バレルを数回タップして、シリンジの上部にあるすべての気泡を収集します。オービタルシェーカーの電源を切り、バッファーインレットシリンジの三方弁を閉じます。バッファーインレットシリンジをバクテリア充填シリンジと交換し、細菌懸濁液が少しバッファー交換システムに入り、OP50充填シリンジまたはバルブに気泡が残らなくなるまで、シリンジの上部に集めた空気をすべて押し出します。バルブを閉じた状態で、バクテリアを装填したシリンジをシリンジポンプに接続し、オービタルシェーカーをオンにします。振とう速度を約200RPM、流量を毎分100マイクロリットルに設定します。OP50バッファがデバイス全体に広がったら、流量を毎分3マイクロリットルに戻します。装置に線虫を装填するには、まず、650マイクロリットルの低結合マイクロ遠心チューブに100マイクロリットルの新鮮なOP50懸濁液を充填し、ワームピックを使用して、20〜30匹の年齢同期した若成体寄生虫を線虫増殖培地寒天プレートからチューブに個別に移す。ウォームインレットシリンジとシリンジチューブに新しいOP50懸濁液を充填し、約500マイクロリットルの懸濁液をマイクロ遠心チューブに注入します。次に、ウォーム懸濁液をウォームインレットシリンジチューブに引き込み、ウォームインレットシリンジをウォームインレットに接続します。すべてのワームをワームインレットシリンジチューブからマイクロ流体デバイスに注入し、ウォームインレットシリンジとシリンジチューブを外します。ウォームインレットをピンで塞ぎ、バッファーインレットシリンジをメカニカルポンプから外します。バッファーインレットシリンジを使用してワームを手動でチャネルに移動し、アウトレットシリンジを使用して必要に応じてワームの動きを逆にします。動物を積み込むには、いくつかの調整が必要です。シリンジプランジャーを優しく押してチャネルに合わせ、やや強く押してワームを奥まで押し込みます。次に、実験を開始する前に、ワームが新しい環境に2〜3時間順応するのを待ちます。ワームはチャネルに限定されていますが、固定されていません。ほとんどの線虫は実験中、その水路に留まりますが、一部の線虫は逃げたり、微小亀裂に巻き込まれたりすることがあります。ここでは、デバイス内で10時間にわたる単一の代表的な線虫の明視野画像を観察できます。免疫応答遺伝子1プロモーターの下でGFPを発現するトランスジェニック線虫を用いて、P.Aeruginosa、PA14感染時には、病原体への曝露の最初の5時間で線虫の体中部および尾部でGFP発現が観察され、その後5時間で強固な全身発現に増加する。各線虫の全蛍光を感染後の時間の関数としてプロットすると、免疫応答遺伝子の1回の誘導のダイナミクスと、誘導のタイミングと程度における線虫間の変動性がわかります。各チャネルで線虫が産んだ卵のタイムラプスイメージングにより、各線虫が産んだ卵の累積数を感染後の時間の関数としてプロットでき、動物から動物への変動性、および感染が進行するにつれて病原体による産卵の減少を捉えることができます。習得すれば、マイクロ流体デバイスは1時間で準備し、ロードすることができます。装置が装填され、線虫が順応すると、特定の薬剤や目的の化学的手がかりなどの他の試薬を線虫に送達して、線虫の神経細胞および遺伝システムの制御に関する追加の質問に答えることができます。開発後、私たちと共同研究者は、この技術を用いて、線虫の摂食行動や、さまざまな環境下での熱ショック感染や飢餓に対する線虫の遺伝的応答を解剖しました。このビデオを見た後、マイクロ流体デバイスを使用して縦断的なエッセイを実行する方法について十分に理解しているはずです。

a-microfluidic-platform-for-longitudinal-imaging-caenorhabditis

Research

JoVE Journal

Bioengineering

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ここでは、生涯にわたる生理学的パラメータの追跡と蛍光定量のために、単離された個々の線虫を固体培地上で培養するためのプロトコルを紹介します。この培養システムには、動物が逃げるのを防ぐために、シングルワームウェルの周りにパルミチン酸バリアが含まれており、病原菌や化学的ストレッサーなどの嫌悪的介入を使用できます。...

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学ぶカスタムマイクロ流体デバイスを用いたC. elegansの縦断的ライブイメージング手法。個体の行動応答と遺伝子発現動態を追跡し、環境適応の定量的理解を深める。この技術は神経科学と行動研究に応用可能です。

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