2018年3月8日
虹彩新生血管、網膜虚血性疾患の一般的な合併症は、血管新生緑内障の視力を脅かす可能性があります。ここでは、血管新生調節物質の非侵襲的評価に使用するかもしれない実験虹彩血管新生を誘導するためのマウス プロトコルについて述べる。
この手順の全体的な目標は、虹彩血管系を誘導することであり、これにより血管新生プロセスの生体内直接可視化が可能になります。この方法は、眼科分野、特に血管新生疾患における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、アルビノマウスを利用して血管の生体内可視化を指示できることです。
この方法により、眼の新生血管疾患についての洞察を得ることができます。また、新しい血管新生療法の試験など、血管新生の一般的なモデルとしても適用できます。マウスの目のサイズが小さいため、虹彩の解剖は困難であるため、この方法の視覚的なデモンストレーションは重要です。
しかし、練習すればマスターすることができます。P12.5マウスに麻酔をかけ、処置の準備をした後、ステレオスコープの下で横臥位に置き、マスクが適切に配置されていることを確認します。目は視野を埋める必要があります。
目の焦点をはっきりさせることが不可欠です。次に、利き手ではない手で小さな結束鉗子を使用して、まぶた、背側と腹側に下向きの圧力を加えて、慎重に目を突き出します。まぶたをしっかりと握り続けると効果的です。
先に進む前に、血管系を40倍で写真に記録します。次に、ステレオスコープを使用して角膜辺縁部を見つけます。アルビノBALB/cマウスの輪部は、角膜の後方にある円形血管神経叢として容易に識別できます。
次に、利き手で30ゲージの斜めの針を持ち、それを使用して、毛様体とオラセラタの間のブドウ膜の後縁限界近くで小さなブドウ膜穿刺を行います。針の先端のみを使用し、斜角の半分以下を使用して穿刺を行います。レンズの破裂を避けてください。
穿刺はセルフシールする必要がありますが、それでも創傷を通して研究物質の眼内注射を可能にします。次に、目の反対側の部位で2回目のブドウ膜穿刺を行います。穿刺を最適化して、最も背側と最も腹側の位置になるようにします。
P24.5まで4日ごとに同じ2つの位置でブドウ膜穿刺を繰り返します。また、穿刺を繰り返す前に、必ず外傷性白内障がないか確認してください。眼球を摘出し、テキストプロトコルに記載されているように固定した後、固定液を取り出し、新鮮なPBSで眼を3回すすいでください。
次に、前房を上にして、滑らかで乾燥した表面に目を置きます。次に、斜めの30ゲージの針をリンバスの後方に挿入して、エントリーポイントを作ります。次に、小さな結束鉗子で前部を固定し、Clayman-Vannasのまっすぐなハサミを使用して、目を回転させながら輪部の周りを切り取ります。
パーシャルカットを使用すると、プロセスが容易になります。完了すると、目の後部が解放されます。次に、前眼部を下にしてレンズを露出させます。
レンズを小さな鉗子でつかんで上に引っ張って、レンズを慎重に取り外します。次に、角膜を下に向けて、カットを視野に対して垂直になるように、前眼部を配置します。次に、利き手ではない手で小さな結束鉗子を使用して、毛様体の後方にある組織をそっとつかみます。
Clayman-Vannasは、小柱網を取り除き、虹彩を分離することを目的として、毛様体のすぐ前方をトリミングするストレートハサミです。その後、虹彩は角膜内を移動するはずです。次に、小さな結束鉗子を使用して角膜をつかみ、前眼カップを200マイクロリットルのPBSを含む96ウェルプレートに慎重に移します。
角膜を握ったまま、PBSで組織を洗い流すことにより、虹彩の解剖を続けます。必要に応じて、30ゲージの針を使用して虹彩を変位させることができます。次に、小さな結束鉗子を使用して角膜を取り除きます。
分離された虹彩は、実験が行われるまで一時的に摂氏4度のPBSに保存できます。P12.5のAlbino BALB/cマウスは、記載されているように、P24.5まで4日ごとに繰り返されるブドウ膜穿刺を受けました。角膜の透明性とBALB/cマウスのメラニン欠乏症により、虹彩血管系はP16.5の子犬で容易に見え、プロトコルの期間中、硬化します。
P27.5で、マウスを安楽死させ、その虹彩を注意深く解剖しました。穿刺は、創傷治癒系をトリガーすることにより、虹彩からの血管反応を誘発しました。免疫組織化学をPECAM1に対して行った。
結果として生じる染色は、対照と比較して、穿刺された眼の虹彩の全体的な血管系の増加を示しました。このビデオを見た後、虹彩血管新生を誘導し、マウスの虹彩をうまく分離する方法をよく理解しているはずです。この手順に続いて、血管新生促進性物質または抗血管新生物質の有効性をテストするなど、追加の分子的および細胞上の質問に答えるために、QBCRのような他の方法を実行できます。
その開発後、この技術は、研究者が小さなげっ歯類をモデルとして、生体内の非侵襲的な方法で血管新生疾患を探求する道を開きました。
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本記事では、虚血性網膜疾患や新生血管緑内障に関連する病態である虹彩新生血管を誘導するためのマウスプロトコルを紹介します。この手法により、虹彩血管系をin-vivoで直接可視化し、血管新生調節物質の非侵襲的な評価が可能になります。
このモデルにより、虹彩における血管新生プロセスの非侵襲的かつ縦断的な評価が可能となり、新生血管治療に向けた初期段階のターゲットバリデーションを支援します。アルビノマウスの目の透明性を活用することで、疾患に関連した眼科的コンテキストにおいて血管新生調節剤を評価するためのスケーラブルなプラットフォームを提供します。このアプローチは、エンドポイントにおける組織学的解析への依存を減らし、前臨床段階の血管新生スクリーニングにおける予測信頼性を向上させます。
この手法は、ターゲットの仮説検証からモジュレーターの有効性の前臨床検証に至るまで、特に眼科的な新生血管疾患プログラムにおける血管新生の探索プロセスの枠組みに適合します。