Name: 再生の研究のための主な胃上皮単層培養のマウスおよびひと由来 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-07T13:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 48 s
Description: 学ぶ胃上皮単層培養法を用いたマウスおよびヒト由来の再生研究。この手法により、傷治癒アッセイで細胞遷移と再生メカニズムを詳細に解析でき、Helicobacter pylori感染などの胃疾患研究にも応用可能です。

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この作品は、NIH (NIDDK) 5 を支えられた R01 DK083402-07 (YZ) を付与します。

汚染を避けるためには、滅菌のティッシュ文化フードの内で完全にプロトコルを実行します。承認されたシンシナティ大学 IRB プロトコルに従ってスリーブ胃切除術を受けている患者から収集されたヒトの腺組織 (IRB プロトコル番号: 2015-4869)。 すべてのマウスの研究は、シンシナティ大学の制度的動物のケアおよび使用委員会 (IACUC) アメリカ協会の評価・認定の研究所動物ケア (AAALAC) 施設を維持するによって承認されました。
1. ひと由来 3 D 胃噴門オルガノイドの確立
注: このプロトコルは、以前このラボ8に発表された研究に基づいています。
<ol><li>50 %wnt エアコン、20% R spondin エアコン メディアから成っている 3 D におけるメディアを準備します。<ol>
<li>エアコン Wnt メディアの準備、Wnt 培地に L 細胞の培養 (ダルベッコ変法イーグル培地 (DMEM), 10% 牛胎児血清 (FBS)、1% ペニシリン/ストレプトマイシン) 7 日、中を収穫し、0.22 μ m フィルターを使用してフィルター処理します。</li>
		<li>R spondin 付きメディアを準備します。R spondin 培地に変更された HEK 293 t R spondin 分泌細胞ラインを育てる (ダルベッコ変法イーグル培地 (DMEM), 10% 牛胎児血清 (FBS)、1% ペニシリン/ストレプトマイシン)。2 時間後の添付ファイルに媒体を変更これらの細胞から OPTIMEM 成長中、1% ペニシリン/ストレプトマイシン。7 日間培養します。R spondin 付きメディアを収穫、0.22 μ m フィルターを使用してフィルター処理します。 注: このプロトコルは以前公開されておりより詳細なプロトコル6,7、8を参照してください。</li>
	</ol>
</li>
	<li>4 ° C で氷の上の 16 h の成長因子減少、フェノールレッド フリーの基底膜マトリックスを解凍します。氷冷 Ca2 +/Mg2 +組織を収集-大規模なプラスチック容器に DBP を無料します。開始ステップ 1.4 まで氷の上保存します。 注: 組織は、スリーブ胃切除術を受けている患者から収集されます。</li>
	<li>100 mL は Ca2 +/Mg2 +を含む滅菌ビーカーに積極的に組織を洗う鉗子を使用すると、-無料ダルベッコ リン酸緩衝生理食塩水 (DPBS)。洗って約 30 s の破片と血が削除されるまで、または。次に、この滅菌ガーゼを使用することは、上皮から粘膜層ぬぐいます。</li>
	<li>大きな鉗子を使用して、しっかりと筋層組織と力を把握、大きく湾曲した止血鉗子を使用して上皮を削り。滅菌、ポリスチレン シャーレにスクレイプの上皮の断片を収集します。</li>
	<li>カミソリを使用して組織の消化を最適化する約 2.0 × 2.0 mm サイズ2フラグメントに上皮性のティッシュをミンチします。Ca2 +/Mg2 +組織片を洗う-抗生物質を添加した DBP を無料 (Ca2 +/Mg2 + -無料の DPBS、1% ペニシリン/ストレプトマイシン、0.25 mg/mL アムホテリシン B 10 mg/mL ゲンタマイシン、カナマイシンの 50 mg/mL)、まで洗浄は血の無料です。必要な場合は、複数の洗浄を実行します。慎重に廃棄物ビーカーに滅菌ガーゼを洗浄をフィルタ リングによって洗浄を破棄します。</li>
	<li>丸底フラスコ 25 mm 攪拌棒と予め温めておいたインキュベーション メディア 125 mL グラスに断片を収集洗浄 (2 mM 1 %l-グルタミンを添加した基底メディア ペニシリン/ストレプトマイシン、10 mM HEPES 緩衝液、1 mg/mL コラゲナーゼ タイプ 1、2 mg/mL の細胞培養ウシ血清アルブミンの等級)。ゴム隔壁を有する丸底フラスコを密封してください。</li>
	<li>セプテムに 20 G 脊髄針を挿入し、ゴムをつけ込まれることで酸素タンクに接続します。を任意の汚染物質をフィルターするには、フィルターを作成するチューブにティッシュ ペーパーを挿入します。低酸素の流出を入れます。隔壁の破裂を避けるために隔壁に 10-15 流出針を挿入します。</li>
	<li>クランプを使用してリング スタンドにセットをセキュリティで保護し、37 ° c 30-45 分間撹拌プレート校正水浴。組織は、15 分間培養されている後、は、50 μ L の培養メディアと解離腺を視覚的に確認するを削除します。腺は密ではないまたは組織から分離されていませんが、さらに 5-10 分のままにします。</li>
	<li>50 mL を追加し、孵化の直後無菌血清ピペットを使用して培養メディア、または培養混合物に直接注ぐことによって DMEM/f12 キーを予熱します。</li>
	<li>4 つの 50 mL の円錐管に滅菌ガーゼで腺の混合物をフィルターします。円錐形の管の底に沈殿するために抽出された腺を許可するように 15 分間氷の上濾液を保ちます。定住の腺を乱す取り外して上 40 mL の血清ピペットを使用して上清を廃棄しないように注意します。残り 10 mL を 10 mL の DPBS 抗生物質を添加したに再懸濁します。</li>
	<li>5 mL の細胞培養試験管に均等に混合物を配布します。4 ° c の 65 の x g で 5 分間遠心し、慎重にピペットを使用して上清を除去します。ピペットまたは 200 μ L ワイドのピペット チップを使用して解凍の基底膜マトリックスで腺ペレットを再懸濁します。まで均一に混ぜます。 注: それは氷の上でこの手順を実行して混合しながら基底膜マトリックスの重合を避けるために重要です。また、50 μ L のサンプリングによる腺の密度を目視で確認することが重要です。最適な密度である ~ 70% の confluency。</li>
	<li>次に、プレート全体の先端のピペットを使用して基底膜マトリックスの 50 μ L の腺。めっき中任意の気泡を生み出すを避けます。</li>
	<li>重合、37 ° C で 10-15 分間インキュベートする基底膜マトリックスを許可するには12 ウェル培養プレートのメッキ、hFGO メディアの 1 つの mL を追加 (高度なダルベッコ改変イーグル培地/F12 培地を添加した 2 mM L-グルタミン, 1% ペニシリン/ストレプトマイシン, 0.25 mg/mL アムホテリシン B 10 mg/mL 10 mM HEPES 50 ミリグラム/ml カナマイシン、ゲンタマイシンバッファー、1 mM n-Acteylcystine、1 x N2、B27、wnt シグナル調節された媒体の 50%、20% R spondin エアコン ミディアム 100 ng/mL を添加した × 1 骨形成タンパク質阻害剤、1 nM ガストリン、50 ng/mL 上皮成長因子、200 ng/mL の線維芽細胞成長因子 10、10ニコチン酸アミド、mM と 10 μ M Y-27632 ROCK 阻害剤) ウェルあたり。ない場合は基底膜マトリックス バブルが水没するのに十分なメディアを追加 12 ウェル培養プレートを使用します。</li>
	<li>5% CO2加湿細胞文化のインキュベーターで 37 ° C で培養します。メディアのすべての 4-5 日を変更します。</li>
</ol>2. マウス由来 3 D 胃噴門オルガノイドの確立
注: このプロトコルは、以前に発行された6をされています。氷の上の基底膜マトリックスを解凍し、開始する前にすべての試薬を準備します。
<ol><li>研究が実行されている研究機関によって承認されたメソッドを使用してマウスを犠牲に。マウスから胃を削除し、以前に公開されたプロトコル6によると分析します。20 mL の氷冷 Ca2 +/Mg で2 +洗浄-無料の DBP。 注: 8-10 週齢の c57bl/6 マウスは、腺胃における文化に使用されます。マウスは、胃の除去前に手動の頚部転位続いて二酸化炭素の吸入による安楽死されました。</li>
	<li>胃から筋層を除去し、目に見える血管は前述6を公開しました。</li>
	<li>前庭部から胃滅菌かみそりの刃を使用して眼底を区切ります。断片約 2.0 × 2.0 mm. 使用鉗子に手術用のハサミを使用してカットの眼底は、EDTA インキュベーション バッファーを含む 15 mL の円錐管にかけらを集める (Ca2 +/Mg2 +-無料の DPBS、5 ミリメートルの EDTA)、4 ° C で 2 時間インキュベート穏やかな攪拌。</li>
	<li>無菌フードでは、円錐管のまま、約 5 分間氷の上の断片が断片はそのまま可能な限り潜伏バッファーを削除するピペットを使用します。5 mL のバッファーを揺れを追加 (1 g 1.47 g ショ糖 100 mL の Ca2 +/Mg2 +に D-ソルビトール-無料の DPBS) 2 分の解決し、1000 p のピペットを使用して、急いで削除まだ解決しなければならない小さな断片に大きなフラグメントを許可の力で手を振るとトップ層。</li>
	<li>65 x g で 4 ° C で 5 分間削除されたフラグメントをスピンします。</li>
	<li>空気の泡を回避しながら上澄みを除去し、基底膜マトリックスで再懸濁しますが均質になるまで混ぜます。</li>
	<li>広いチップ ピペットを使用して、プレートのウェルあたり 50 μ L で基底膜マトリックスとし、37 ° C、20 分インキュベートします。</li>
	<li>十分な mFGO 成長媒体を追加 (高度なダルベッコ修飾イーグル媒体/F12 培 2 mM L グルタミン、1% ペニシリン/ストレプトマイシン、10 mM HEPES 緩衝液、1 mM n-Acteylcystine、1 x N2、1 x B27、50 %wnt エアコン中 20% R spondin 完備100 ng/mL 骨形成タンパク質阻害剤、10 nM ガストリン、表皮の成長因子の 50ng/mL、10 ng/mL の線維芽細胞成長因子 10、10 μ M Y-27632 ROCK 阻害剤と培) バブルが水没します。</li>
	<li>37 ° C、5% CO2加湿細胞文化のインキュベーターで培養します。メディアのすべての 4-5 日を変更します。</li>
</ol>3. コラーゲン コーティング 2 D 転送用
注: は、特に指定しない限り、滅菌のティッシュ文化フードのすべての手順を実行します。コラーゲン 3 D オルガノイドを単層に転送する前に 24 時間をコーティングを開始します。氷上ラット尾コラーゲンを維持し、光から保護されています。コラーゲンをコーティングしたプレートは、2 週間までに適しています。コーティング プレートをすぐに使用していない場合、は、板パラフィルムで 4 ° c まで必要なストアをラップします。
<ol><li>50 μ g/mL の 20 mM 酢酸を使用してラット尾コラーゲンを希釈します。</li>
	<li>希釈したコラーゲンと井戸の表面が十分にカバーします。標準 12 ウェル プレートの 1 つにも、コラーゲンの約 1 mL でコートします。無菌フードに室温で一晩おきます。</li>
	<li>Ca2 +/Mg2 +1 mL で 2 回洗浄-ウェルあたり DPBS を無料、常温無菌フードで 2 h の覆いを取られたまま。</li>
</ol>4. 基底膜マトリックス コーティング 2 D 転送用
注: は、特に指定しない限り、滅菌のティッシュ文化フードのすべての手順を実行します。基底膜マトリックス 3 D オルガノイドを単層に転送する前に 2 h をコーティングを開始します。氷の上の基底膜マトリックスを維持します。コーティング プレートがすぐに使用、長期間の保存ことはできません。
<ol><li>1:10 で細胞培養グレードの水を 15 mL の円錐管の基底膜マトリックスを希釈比。氷の上を希釈します。</li>
	<li>標準的な 12 ウェル プレートの各ウェルに 100 μ L の希釈の基底膜マトリックスを追加ピペットを使用しています。コート用の井戸の中で希薄化後の基底膜マトリックス細胞スクレーパーを使用して、均等に。</li>
	<li>37 ° C 1 時間インキュベートします。</li>
	<li>ピペットを使用して残留水を削除し、3 D オルガノイドを転送する前に 1 時間室温で乾燥します。</li>
</ol>5. 3D m/hFGOs の 2D 胃上皮細胞単分子膜への転送
<ol><li>後 3 D マウス- またはひと由来 FGOs 6-7 日間培養した、3 D オルガノイドの 2D 単分子膜への転送を開始します。 メモ: 必要な単分子膜の各ウェルの勧め 300 そのまま organoids または 300 organoids から派生した単一のセルを使用します。堅牢な文化でそれはおよそ 150 organoid/井戸 12 よく培養プレート内を取得する予定です。</li>
	<li>プレートは、転送する前にコーティングされていることを必ず。 注意: 基底膜マトリックス コーティング プレートは半透明のジェル層を持っている、しかし、コラーゲンをコーティングしたプレートはコーティングの明らかな兆候がないです。</li>
	<li>直接ピペット 1 mL 滅菌 Ca2 +/Mg2 +によってプレートから 3 D の基底膜マトリックス気泡を取り除く-バブルの中心に DBP を無料します。</li>
	<li>ピペットを使用して、細胞培養試験管に基底膜マトリックスと organoid 混合物を収集します。チューブあたり 2 つの基底膜マトリックス バブルの比で収集します。40 x g と 4 ° C で 5 分間遠心</li>
	<li>上澄みを除去真空システムを使用して、可能な限り多くの基底膜マトリックス。Ca2 +/Mg2 +4 mL で再懸濁します-無料の DBP、上清を除去、2-3 回繰り返します。全体における転送プロトコル、5.10 のステップに進みます。手順 5.7 単一細胞懸濁液のプロトコルのために進みます。</li>
	<li>37 ° c 細胞剥離液をあらかじめ暖かいし、各試験管に 1 mL を追加します。軽くチューブを反転または上下にピペットでピペッティングで混ぜます。37 ° C で 10 分間インキュベートします。</li>
	<li>Ca2 +/Mg2 +2 mL を追加-各試験管に直接 DBP を無料します。</li>
	<li>26 G 針を使用し、混合物を 2-3 回注射器します。単一のセルを視覚的に確認します。Organoids またはセルのクラスターがある場合、1-2 回以上を注射器します。</li>
	<li>40 x g で 4 ° C で 5 分間遠心2 D の FGO メディアでペレットを再懸濁します (2D マウス FGO 成長培地:胎児の子牛の血清は、10 mM 2 mM L-グルタミン 10 mM ペニシリン/ストレプトマイシン、10% を添加した高度なダルベッコ改変イーグル培地/F12 培地 HEPES 緩衝液、1 x N2、1 x B27、10 nM ガストリン、50 ng/mL 上皮成長因子、1 μ M TGF-β 阻害剤、および 10 μ M Y-27632 ROCK 阻害剤を添加しました。人間 FGO 成長媒体の 2 D:高度なダルベッコ改変イーグル培地/F12 培地添加 2 mM L グルタミン、1% ペニシリン/ストレプトマイシン、10 mM HEPES 緩衝液、10% 胎児の子牛の血清は、10 mM ニコチンアミド、1 x N2、1 x B27、50 mg/mL 50 ng/mL 上皮成長カナマイシンを添加しました。要因と 10 μ M Y-27632 ROCK 阻害剤、1 μ M TGF-β 阻害剤)。</li>
	<li>プレート コーティング プレートに再懸濁。37 ° C でプレートを孵化させなさいメディアを交換毎 4 日またはそれ以前場合はメディアが黄色に変わります。単層は、フォームに約 4 日が必要です。</li>
</ol>6. スクラッチ傷アッセイ 2D 胃上皮細胞膜を使用して
<ol><li>文化が 100% の confluency に達したら、単層をスクラッチかみそりの刃を使用します。</li>
	<li>室温で 15 分間 3.7% のホルムアルデヒドを使用して単分子膜を修正します。室温で 20 分間 0.5% 非イオン性洗剤/PBS を permeabilize します。</li>
	<li>次に室温で 1 時間 2% ロバ血清単分子膜をブロックし、H+K+の 1: 1000 希釈と孵化-4 ° c、一次抗体を一晩で atp アーゼを 0.1% 非イオン性洗剤/PBS で洗浄し、ロバの 1: 100 希釈でインキュベート抗マウス 488 二次抗体とヘキスト細胞核の 10μg/mL 1 時間室温で染色します。</li>
	<li>2D 胃ひと由来の単層培養で粘膜表面のピット細胞を識別し、ハリエニシダ(UEAI) FITC 共役の 20 μ g/mL で細胞を染色します。共焦点顕微鏡の単分子膜をイメージ。</li>
	<li>すべてのいくつかの h. ゼロ、患者間の変動と、単分子膜の品質に応じて 24-48 h の上皮再傷の画像を取る。</li>
</ol>

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</ol>

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現在のプロトコルは、スクラッチ傷のアッセイに使用することができます人間とマウス由来胃上皮膜の確立を詳しく述べる。プロトコルは居住者の幹細胞主の人間 (またはマウス) から分離組織の概念に依存、修正されたプロトコルが Schlaermannら7で初めて公開されます。特に、合流を確立するここのプロトコルを最適化して胃の上皮単層的に表現する主要な細胞体内の胃上皮内で見つけることができる系統を偏光します。胃潰瘍の修復は、組織再上皮化、再生・増殖9,10,11を含む複雑なプロセスです。特に、私たちの研究室は、胃上皮の再生が再生胃腺内潰瘍縁に鎮痙ポリペプチド/トレフォイル因子 (TFF) 2 表現する化生 (SPEM) の出現と一致することを報告しています。12,13</sup...

スクラッチ傷の試金の使用は、修復と再生1,2,3,4,5,6を研究するための一般的な方法です。提案された方法論は、特に胃の再生とピロリ菌の植民地化を研究するために使えます。過去には、胃癌細胞株は、ヘリコバクター ・ ピロリ(ピロリ菌) 感染症1,2を研究する手段として使用されている、最近胃癌まで AGS 細胞などの細胞が支持された1 ,2,3,4。胃癌細胞培養の制限の 1 つは胃上皮細胞の多様性を要約する彼らの失敗です。この制限に対処しようとするには、ここでは確立とひと-マウス由来の主な 3 次元腺胃 organoids (FGOs) の転送に実証最初修正法に基づく創傷治癒の試金のための胃上皮単層Schlaermannらによって記述されました。7を示すことから派生した胃の上皮膜せん断 3 D 胃 FGOs または FGO 単一細胞胃上皮密接に表す偏極細胞構成を保持体内。胃癌細胞株は、このテクニックが表示されますセル構成を示すか、ことを考える現在のプロトコルは代替のスクラッチ傷の測定法にはない利点です。この方法論は、単分子膜はできる全体 organoids や解離 organoids から単一細胞懸濁液から確立されたと基底膜マトリックスを使用してメッキまたはコラーゲン ・ コーティングという最適化されています。このプロトコルの全体的な目標は、organoid 派生小説創傷治癒の試金のための胃上皮単層培養を確立することです。

<table><tbody><tr><td>Advanced Dulbecco's modified Eagle/F12 medium (basal media)</td><td>Life Technologies</td><td>12634-010</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX (L-glutamine)</td><td>Life Technologies</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>Thermo Scientific</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>Amhotericin B/Gentamicin</td><td>Thermo Scientific</td><td>R01510</td><td></td></tr><tr><td>Kanamycin</td><td>Thermoフィッシャー</td><td>RO1510</td><td></td></tr><tr><td>HEPES バッファー</td><td>Σ Aldrich</td><td>H0887</td><td></td></tr><tr><td>n-アセチルシスチン</td><td>Σ Aldrich</td><td>A9165</td><td></td></tr><tr><td>N2</td><td>Life Technologies</td><td>17502-048</td><td></td></tr><tr><td>B27</td><td>Life Technologies</td><td>12587-010</td><td></td></tr><tr><td>BMP Inhibitor (Noggin)</td><td>Pepro Tech</td><td>250-38</td><td></td></tr><tr><td>Gastrin</td><td>Tocris</td><td>3006</td><td></td></tr><tr><td>EGF</td><td>Pepro Tech</td><td>315-09</td><td></td></tr><tr><td>FGF10</td><td>Pepro Tech</td><td>100-26</td><td></td></tr><tr><td>ニコチンアミド</td><td>Σ Aldrich</td><td>N0636</td><td></td></tr><tr><td>Y-27632 ROCK Inhibitor</td><td>Σ Aldrich</td><td>Y0503</td><td></td></tr><tr><td>TGF-&beta;阻害剤</td><td>Tocris</td><td>2939</td><td></td></tr><tr><td>Ca2+/Mg2+ -free DPBS</td><td>Fisher</td><td>21-031CV</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's modified Eagle Medium (DMEM)</td><td>Life Technologies</td><td>12634-010</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>FBS</td><td></td><td></td></tr><tr><td>OPTIMEM</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.22&micro;Mフィルター</td><td>フィッシャー</td><td>099-720-004</td><td></td></tr><tr><td>37 &deg;C ウォーターバス</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>コラゲナーゼ タイプ 1</td><td>ワージントン&nbsp;</td><td></td><td></td>LS004214</tr><tr><td>ウシ血清アルブミン</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A9418</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes (ティッシュペーパー)</td><td>Fischer Scientific</td><td>06-666C</td><td></td></tr><tr><td>125 mL 丸底フラスコ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 in (25 mm) 攪拌棒</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ラバーセプタム</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>滅菌ガーゼ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>攪拌機</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>リングスタンド</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>リングスタンドクランプ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>滅菌ペトリ皿</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>長さ1.5Gの18G針</td><td>サーモフィッシャー</td><td>305196</td><td></td></tr>長さ<tr><td>3.5の20Gの脊髄針</td><td>サーモフィッシャー</td><td>405182</td><td></td></tr><tr><td>12ウェル細胞培養処理プレート</td><td>Midwest Scientific</td><td>92012</td><td></td></tr>成長<tr><td>因子の減少、フェノールレッドフリーのマトリゲルTM （基底膜マトリックス)</td><td>フィ</td><td>ッシャーCB-40230C</td><td></td></tr><tr><td>滅菌カミソリブレードワイド</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>チップピンセット</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>湾曲止血鉗子</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>200&micro;L ワイドピペットチップ</td><td>サーモフィッシャー</td><td>02-707-134</td><td></td></tr><tr><td>5 mL 細胞培養試験管</td><td>フィッシャー</td><td>14-956-3C</td><td></td></tr><tr><td>ゴムホース</td><td></td><td></td><td></td>付き酸素タンク</tr><tr><td>1 g D-ソルビトール</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ショ糖</td><td>フィッシャー</td><td>SS-500</td><td></td></tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>解剖トレイ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ロッキングテーブル</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ラットテール コラーゲン 1型</td><td>ライフテクノロジー</td><td>A10483-01</td><td></td></tr><tr><td>細胞培養グレード 氷酢酸</td><td>フィッシャー</td><td>A38-212</td><td></td></tr><tr><td>細胞培養グレード水</td><td>コーニング</td><td>25-055-CV</td><td></td></tr><tr><td>2ウェルチャンバースライド</td><td>サーモフィッシャー</td><td>155380</td><td></td></tr><tr><td>12ウェルトランズウェル(ポリエステルメンブレンインサート)</td><td>Corning</td><td>3460</td><td></td></tr><tr><td>セルスクレーパー</td><td>Corning</td><td>353086</td><td></td></tr><tr><td>Accutase(細胞剥離液)</td><td>Stemcell Technologies</td><td>7920</td><td></td></tr><tr><td>263/8 Gシリンジ</td><td>サーモフィッシャー</td><td>309625</td><td></td></tr><tr><td>カミソリ刃</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lセル</td><td>Wnt3a産生細胞株であるL細胞は、Hans Clevers博士(Hubrecht Institute for Developmental Biology and Stem Cell Research、オランダ)から贈り物として贈られました。&nbsp;</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>HEK-293T Rspondin分泌細胞</td><td>改変されたHEK-293T R-スポンディン分泌細胞株は、Jeff Whitsett博士(シンシナティ小児病院医療センターおよびシンシナティ大学医学部、シンシナティ、米国&nbsp;)から入手しました。&nbsp;&nbsp;</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>HK-ATPase Primary Antibody</td><td>Invitrogen</td><td>SC-374094</td><td></td></tr><tr><td>E-Cadherinn</td><td>SantaCruz</td><td>sc-59778</td><td></td></tr><tr><td>UEA1</td><td>Sigma Aldrich</td><td>L9006</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Thermo Fisher</td><td>H3570</td><td></td></tr><tr><td>Alexafluor 488 secondary antibody (Donkey anti-mouse 488 secondary antibody)</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>R37114</td><td></td></tr></tbody></table>

再生の研究のための主な胃上皮単層培養のマウスおよびひと由来

Mouse- and Human-derived Primary Gastric Epithelial Monolayer Culture for the Study of Regeneration

胃の傷の修復のin vitro研究は通常細胞拡散および移行のスクラッチ傷アッセイの胃癌細胞株の使用を含みます。このような試金の 1 つの重要な制限は、携帯電話型の同種の品揃えです。修復は、いくつかの細胞のタイプの相互作用を要求する複雑なプロセスです。したがって、細胞のサブタイプに欠けている文化を研究する場合は修復プロセスを理解し、克服する必要があります懸念です。胃におけるモデルという携帯型の異種のコレクションは密接に胃の上皮やその他のネイティブの組織の生体を反映この問題を軽減するかもしれない。ここでは、小説で人間から派生したスクラッチ傷生体外の試金を示したマウスの 3 次元 organoids どちらかそのまま organoids やの単一細胞懸濁液として、胃上皮単層に移すことが分離したかorganoids。プロトコルの目的は、胃の再生を研究する新しいスクラッチ傷アッセイ システムで使える organoid 派生胃上皮膜を確立することです。

Organoids はコーパス/人間の体またはマウス胃組織 (図 1 a) の眼底のいずれかから派生しました。それぞれ、コラゲナーゼや胃組織の人間またはマウス由来の EDTA 消化後腺が基底膜マトリックスに埋め込まれ、6-7 日間 (図 1 a) 培養します。図 1 bは、ひと由来胃 organoids (huFGOs) 基底膜マトリックス コーティング室スライド胃上皮単層 (huGEM) に転送されているの形成を示しています。4 日間培養後合流 huGEMs はスクラッチ傷の試金 (図 1 b) に使用されました。画像は、(図 2) 24 時間の期間にわたって文化の中で傷の閉鎖を示した huGEM の時間経過の分析から収集されます。
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ここを確立する、2 次元の単分子膜に 3 D オルガノイドを転送する人間およびマウス由来 3 次元 (3 D) 胃 organoids、およびメソッドを培養するためのプロトコルについて述べる。再生研究の新規スクラッチ傷アッセイとして胃上皮単層の使用を述べる。

In vitro studies of gastric wound repair typically involves the use of gastric cancer cell lines in a scratch-wound assay of cellular proliferation and ...

この培養システムの全体的な目標は、創傷治癒アッセイにおける再生の研究のために、マウスまたはヒト由来の初代胃単層を作製することです。この方法は、損傷に対する胃上皮細胞の再生メカニズムなど、胃領域における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、まず、初代マウスまたはヒト由来の胃細胞から生成された創傷治癒アッセイにおける細胞移動と再生の研究、および大規模な実験のための第2世代のヒト由来胃オルガノイドの研究です。この方法は、胃上皮の再生に関する洞察を得ることができますが、ヘリコバクターピロリ感染や上皮免疫細胞共培養などの他のシステムにも適用できます。その手順を実演するのは、私の研究室の大学院生であるEmma Tealです。まず、準備した組織をカルシウムマグネシウムフリーDPBSで満たされた大きなプラスチック容器に集めます。プラスチック容器は使用するまで氷の上に置いておきます。次に、鉗子の助けを借りて、100ミリリットルのカルシウムマグネシウム遊離DPBSを含む滅菌ビーカーで組織を約30秒間激しく洗浄します。次に、滅菌ガーゼを使用して、上皮から粘液層を拭き取ります。次に、大きな鉗子を使用して組織の筋肉層をしっかりと保持し、次に大きな湾曲した止血鉗子を使用して、上皮を力でスクラップします。削り取った上皮を滅菌ポリスチレンシャーレに保管します。組織の消化を最適化するには、上皮組織を細かく刻みます。次に、抗生物質を添加したカルシウムマグネシウムフリーDPBSで組織を洗浄します。何度も洗って血を取り除きます。洗濯物は廃ビーカーに捨ててください。次に、洗浄した上皮断片を、25ミリメートルの攪拌子と予め加温したインキュベーション培地を備えた125ミリリットルのガラス丸底フラスコに集めます。組織の破片を収集した後、丸底フラスコをセプタムで密封します。次に、クランプを使用してセットアップをリングスタンドに固定します。次に、20ゲージの脊椎針を中隔に挿入します。セプタムをゴム製のホースで酸素タンクに接続します。10〜15本の流出針を中隔に挿入して破裂を防ぎ、酸素流出のスイッチを低くします。この後、攪拌板の上で摂氏37度のウォーターバスを30〜45分間校正します。キャリブレーションが完了したら、セットアップをウォーターバスに入れます。15分間のインキュベーション後、腺が解離していないか確認します。所望のインキュベーション時間の後、血清ピペットを使用して15ミリリットルの予熱したDMEMF12をインキュベーション培地に加える。次に、滅菌ガーゼを通して得られた腺混合物を4本の15ミリリットルの円錐管でろ過します。次に、濾液を氷上で15分間インキュベートします。これにより、グランドが円錐管の底に落ち着くことができます。血清学的ピペットを使用して、腺懸濁液の上部から40ミリリット

mouse-human-derived-primary-gastric-epithelial-monolayer-culture-for

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

このビデオでは、ヒトの眼底組織から胃上皮細胞を分離する方法について説明しています。単離された上皮細胞は、胃生理学および病態生理学におけるそれらの調節役割を研究するためのin...

胃底腺の分離:ヒトの胃組織から眼底腺を分離する方法

このビデオは、マウスの網膜から単離されたミュラーグリア(MG)細胞の培養を示しています。網膜は、消化酵素を使用して単一細胞懸濁液に解離されます。次に、MG細胞の増殖とニューロン細胞の死滅を促進する成長因子を持つ培地で細胞を増殖させます。死んだ神経細胞は継代中に除去され、MG細胞はさらなる分析のために増殖されます。...

マウス網膜から得られたMüllerグリア細胞培養の確立

幹細胞由来の培養物は、感染症をモデル化する大きな可能性を秘めています。ここでは、成体幹細胞に由来するマウスおよびヒト胃オルガノイドの培養について説明する。オルガノイドには、胃病原体であるヘリコバクター・ピロリをマイクロインジェクションします。...

感染症のためのモデルとしてのオルガノイド：人間の文化とマウス胃オルガノイドとピロリ菌のマイクロインジェクション

このプロトコルは、混合、マウス小腸の細胞の単離および培養を記載しています。これらの一次腸の培養物は、多くの技術を使用して、腸ペプチド分泌の根底にあるシグナル伝達経路の研究を可能にします。...

腸ホルモン分泌の研究と腸内分泌細胞の生細胞イメージングを対象ネズミ小腸の混合初代培養

ここでは、乳癌、がん細胞同様単球とコラーゲン分解、免疫細胞の動員、セルなど成果の直接的/間接的相互作用の研究としての形態を分析する三次元培養法について述べる侵略、および炎症の癌関連のプロモーション。...

単球と細胞外マトリックスの主要な乳癌細胞間コミュニケーションを分析抽出 (ECME)-ベースの三次元システム

我々は、1)レンチまたはレトロウイルス伝達のための磁気ナノ粒子を使用して腸内オルガノイドを効率的に設計し、2)工学的オルガノイドから凍結切片を生成するステップバイステップの指示を説明する。このアプローチは、下流の効果を調査するためにオルガノイドの遺伝子発現を効率的に変更するための強力なツールを提供します。...

凍結断面化のための磁気ナノ粒子転写ウイルスベクターを用いた一次マウス腸オルガノイドの遺伝子工学

本プロトコルでは、腸内窩から直接マウスの一次上皮結腸単層を生成する方法を説明する。透過性フィルター上にコンフルエント単層を生成する実験的アプローチ、傷創傷治癒および生化学的研究のためのコンフルエント単層、免疫蛍光分析のためのまばらでコンフルエントな単層を提供する。...

腸管内窩からのネズミ原発結上皮単層の生成

マウス網膜から得られたミュラーグリア初代培養物は、マイクロRNA処理後の網膜前駆細胞へのグリア変換を研究するための非常に堅牢で信頼性の高いツールです。単一分子または組み合わせは、 その後のin vivo...

マイクロRNA処理後のマウスミュラーグリアの再生可能性を研究するための初代細胞培養

胃患者由来オルガノイドは研究での利用が増加しているが、標準化された播種密度を持つ単一細胞消化物からヒト胃オルガノイドを生成するための正式なプロトコルが不足している。このプロトコルは、上部内視鏡検査中に得られた生検組織から胃オルガノイドを確実に作成するための詳細な方法を提示します。...

良性胃体および外皮上皮の生検からの患者由来胃オルガノイドの確立と特性評価

パイエル板を覆う特殊な濾胞関連上皮におけるM細胞は腸管関連リンパ系組織における粘膜免疫監視に重要な役割を果たす。ここでは、M細胞による細菌のトランスサイトーシスのために評価方法を説明...

M細胞による細菌の取り込みを評価するパイエル板腸管ループアッセイを連結したマウスのアプリケーション

学ぶ胃上皮単層培養法を用いたマウスおよびヒト由来の再生研究。この手法により、傷治癒アッセイで細胞遷移と再生メカニズムを詳細に解析でき、Helicobacter pylori感染などの胃疾患研究にも応用可能です。

再生の研究のための主な胃上皮単層培養のマウスおよびひと由来

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