Name: 脱皮ホルモン受容体を介した特異遺伝子スイッチ意図的な堅牢性、可逆性、ごくわずかな水漏れしたためと遺伝子発現の (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-07T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 21 s
Description: 学ぶ、テブフェノザイド誘導によるpEUI(+)遺伝子スイッチを用いたHEK 293細胞でのトランスジェン発現制御法。この技術は、細胞・分子生物学における遺伝子機能の時間的・強度的制御研究に貢献します。

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著者は、貴重なコメントや原稿の徹底的な読み込みのため S Y チェ (大学校) をありがとうございます。この作品は、忠南大学校の研究基金によって支えられました。

1. 遺伝子 Subcloning
<ol><li>PEUI(+) の MCS の認識、適切な制限の酵素のサイト (またはサイト) を選択し、目的の方向 (図 1) の興味の遺伝子を subclone します。 注: EGFPまたはフラグ エピトープ タグ アンキリンリピート ドメイン 13A (ANKRD13A) 遺伝子のシーケンスや結紮-独立したクローニング法19T4 DNA ポリメラーゼを用いた pEUI(+) ベクターの EcoRI サイトだった subcloned。</li>
	<li>EcoRI で 37 ° C で 1 時間の pEUI(+) をリニア化します。ミックス 50 ng/μ L の 40 ng/μ L の PCR 増幅EGFPまたはANKRD13Aと pEUI(+) を線形し、T4 DNA ポリメラーゼ (1 U) (RT) 前に室温で 10 分間氷の上潜伏 1 分と追加 10 μ L の 100 μ L に直接反応混合物の反応次の変換の DH10B 有能なセルを実験します。 注: pEUI(+) (図 1 b) の MCS に追加されましたいくつかの制限酵素認識部位が、お勧めします EcoRI サイトにターゲット遺伝子を subcloning 結紮独立クローン技術19,20を使用しています。</li>
	<li>シーケンスによる挿入を確認し、トランスフェクションに適した DNA 精製キットを使用して DNA を浄化します。</li>
</ol>2. トランスフェクションと Teb の治療
<ol><li>5-10% ウシ胎児血清 (FBS) と抗生物質 (100 U/mL ペニシリン, 100 μ g/mL ストレプトマイシン) 補われるダルベッコ変法イーグル培地 (DMEM) の 5 mL の新鮮な継代の HEK293 細胞を含む 4 細胞培養皿 (直径 60 mm) を準備します。以下、「培」または単に「培」は、FBS と抗生物質 DMEM を表します。37 ° C で HEK293 細胞を維持します。</li>
	<li>1 μ g の精製 DNA をトランスフェクション試薬の 3 μ L を使用して 50-60% の密度を HEK293 細胞に transfect します。トランスフェクション試薬を加える (FBS、抗生物質なし DMEM) の希釈液 200 μ L の DNA を含んでいます。室温で 30 分間反応混合物の培養後 HEK 293 細胞培養皿上に混合物を追加します。、Transfection のため 2 つの料理を使用し、他の 2 つのコントロールとして放置のまま。</li>
	<li>トランスフェクションの 12-24 時間後に、トランスフェクションのサンプルの 1 つと非 transfected コントロールの 1 つに Teb (最終濃度 0.2 - 10 µmol) を追加します。未処理の実験的コントロールとその他の 2 つのサンプルをまま。 注: Teb 原液 (ジメチルスルホキシドに溶解し 50 mM) は、細胞培養液、DMEM、またはリン酸緩衝生理食塩水 (PBS) 培養細胞実験的パラメーターに応じて追加する前に適切な濃度で希釈できます。しかし、水溶液中における溶解 Teb の低度のため媒体の Teb の高濃度マスター ミックスの準備を避ける代わりに、完全な細胞培養液を必要な濃度で新鮮な培 Teb に置き換えます。</li>
	<li>37 ° C で 12 48 h の Teb 処理と未処理細胞を養う</li>
	<li>挿入EGFPを使用して蛍光顕微鏡 (図 2) の EGFP 発現を分析します。そうでなければ、免疫ブロット分析法のための細胞を収穫します。<ol>
<li>免疫ブロット分析法の氷冷 PBS で 2 回細胞を洗い、それから細胞スクレーパーを使用してそれらをこすり。</li>
		<li>セルを重ね、18-25 ° C (RT) で 2 分間 21,000 × g で 15 mL の円錐管に収穫を回転させます。</li>
		<li>PBS を完全に破棄した後の冷えた哺乳類タンパク質抽出試薬 0.5 mL を追加 (M-ごと)、プロテアーゼ阻害剤 (プロテアーゼ阻害剤のカクテル 100 の 5 μ L) 場合は、60 mm ディッシュに培養される細胞ペレットと一緒に。</li>
		<li>再ピペッティングのいくつかのラウンドでセルを中断し、18-25 ° C (RT) で 15 分の浮遊細胞をインキュベーションしています。</li>
		<li>細胞の 4 ° C で 10 分間 21,000 x g でライセートをスピンします。</li>
		<li>新鮮な 1.5 mL 遠心チューブに水溶液上澄みを転送します。</li>
		<li>イムノブロット、次の標準的なプロトコルに適切な抗体培養上清を分析します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. pEUI(+) 遺伝子スイッチのゲノムの統合と安定した HEK293 細胞ラインの生成
<ol><li>トランスフェクション試薬の 15-30 μ L を使用して 90 mm 直径細胞培養皿の 50-60% の合流は、HEK293 細胞に遺伝子の精製 pEUI(+) の 5-10 μ g を transfect します。トランスフェクション試薬を加える (FBS、抗生物質なし DMEM) の希釈液 500 μ L の DNA を含んでいます。室温で 30 分間反応混合物の培養後 HEK 293 細胞培養皿上に混合物を追加します。</li>
	<li>後、成長し、37 ° C で 24-48 時間 (ピューロマイシン) なし非選択性培下ピューロマイシン耐性遺伝子産物を表現する形質転換細胞を許可します。</li>
	<li>新鮮で培養皿からセルを切り離して考えます。培養液を破棄した後に予め温めておいた PBS (37 ° C) の形質転換細胞をすすぎ、0.25% トリプシン/エチレンジアミン四酢酸 (EDTA) の 1 つの mL を追加、37 ° C で 1 分間インキュベート予め温めておいた培 (10 mL、37 ° C) を追加することによってトリプシン/EDTA を焼入れ後 18-25 ° C で 2 分間 21,000 × g で 15 mL の円錐管に遠心分離によって続いて細胞スクレーパーを使用してセルを収穫します。</li>
	<li>予め温めておいた培 (37 ° C) および 90 mm 新鮮な細胞培養皿に転送セルの 10 mL の 50 mL で、形質転換細胞は再中止します。ピューロマイシン治療前に、の 50-60% の confluency まで 37 ° C で細胞の培養 (一般に、これは約 24-48 時間かかる)。</li>
	<li>37 ° c、3-4 週間 3 μ G/ml ピューロマイシンを添加した細胞培養液で形質転換細胞を養います。選考期間中、選択圧を維持するために 2 〜 3 日ごとピューロマイシン (3 μ g/mL) を含む培養液を変更します。セルになると完全に合流、ピューロマイシンを含む培養液中で、3.3 3.4 の手順を次に、それらを分割します。必要でない場合は、培養液の残りのセルを破棄します。 注: ピューロマイシン選択条件は、特定の細胞型の実験確立する必要があります。細胞培養; ピューロマイシンの 3 μ g/mL を使いました。これは非 transfected HEK293 細胞死を誘発するのに十分だった。</li>
	<li>クローニング シリンダーを使用して個々 のコロニーから細胞を収穫し、製造元の指示に従ってください。<ol>
<li>細胞培養液を破棄します。予め温めておいた (37 ° C) 浮遊細胞を削除する PBS で 2 回プレートをすすいでください。</li>
		<li>滅菌鉗子を使用すると、個々 のコロニーにクローニング シリンダーを設定します。</li>
		<li>各シリンダーに 0.35% トリプシン/EDTA の 0.2 mL を追加します。</li>
		<li>セルがデタッチされると、シリンダーに予め温めておいた (37 ° C) 培養液を数滴を追加するまでは、1 分の 37 ° C で皿を孵化させなさい。</li>
		<li>それぞれのシリンダーから培養液 2 mL と 1 μ G/ml の各ウェルにピューロマイシン 6 ウェル プレートの個々 の井戸にセルを転送します。 注: 細胞がコンフルエントになると、文化をスケール アップ。クローンが設けることができるようになりました。</li>
	</ol>
</li>
	<li>ピューロマイシンの 1 μ G/ml を添加した細胞培養液中の個々 のクローンを維持します。</li>
	<li>イムノブロットと遺伝子の発現レベルを分析することによって 24 時間テストの Teb 治療 (最終濃度、10 μ M) への感度、Teb にクローンの応答をテストすることによって、個々 のコロニーを検証します。目的のクローン (またはその複製) を選択します。遺伝子の誘導レベルを分析する前に Teb 扱われ、37 ° C で 12-48 時間培養培地で未処理のサンプルを栽培してください。2.5.1 - 2.5.7 の手順」の手順に従って、免疫ブロットを遺伝子の発現レベルを測定できます。</li>
</ol>4. Teb の枯渇
<ol><li>Teb 自由な媒体 Teb 含む細胞培養液に置き換えて Teb 刺激を癒します。 注: 最初新しい培養皿上に細胞を再シードすることがなく成長媒体を交換することをお勧めします。残留 Teb はプラスチックの皿に固執する表示され、遺伝子の強力な背景表現を引き出すでしょう。新しい培養プレート上のセルを再シード、前に数回培地または PBS で収穫された細胞をすすいでください。<ol>
<li>新鮮で培養皿からセルを切り離して考えます。培地を含む Teb を破棄した後リンスの Teb 刺激細胞に予め温めておいた PBS (37 ° C) で 2 回、0.25% トリプシン/EDTA の 1 つの mL を追加、37 ° C で 1 分間インキュベート予め温めておいた Teb 無料培養液 (10 mL、37 ° C) を追加することによってトリプシン/EDTA を焼入れ後 18-25 ° C で 2 分間 21,000 × g で 15 mL の円錐管に遠心分離によって続いて細胞スクレーパーを使用してセルを収穫します。</li>
		<li>予め温めておいた Teb 無料培 (37 ° C) と 3 つの 60 mm 新鮮な細胞培養皿に転送セルの 5 mL の 50 mL のセルを再停止します。それぞれ 24、48、および 72 h の 37 ° C での細胞を培養します。</li>
		<li>異なる時点で細胞を収穫し、免疫ブロットを使用して遺伝子の発現レベルを測定します。 注意: これらの実験条件下での遺伝子発現の検出不可能な Teb 自由な文化媒体 (図 3) のセルの約 3 日後文化なりました。イムノブロット 2.5.7 2.5.1 - の手順に従って導入遺伝子の発現レベルを測定できます。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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</ol>

我々 は本レポートに関する利害の対立があります。

バイナリの遺伝子発現のスイッチを使用しての主な欠点は同時に目的セルに 2 つの独立したプラスミド (ドライバーとエフェクター) を提供する必要があります。これはプラスミドと誘導1,2,3スイッチの矛盾した応答の結果の不平等な配分につながることができます。2 ベクター システムの別の欠点は、抗生物質の選択の 2 つのラウンドの最小が有望な細胞を識別するために必要なことです。したがって、生物学の研究で使用する 1 つのユニットを構成する遺伝子誘導カセットが求められてきました。PEUI(+) 特異遺伝子発現のスイッチは、transgene 刺激に必要なすべての規制ユニット装備 1 つのベクトルに含まれます。したがって、遺伝子、pEUI(+) で subcloned 誘導レベルはトランスフェクション実験と化学インデューサの投与量でトランスフェクションする DNA 量に依存しています。さらに、我々 はさらにANKRD13A遺伝子<sup cla...

いくつかの異なる遺伝子のスイッチは、正確に遺伝子発現細胞培養および動物モデル、成功1,2,3の度合いを調節する能力について検討しています。潜在的な遺伝子のスイッチ システムを含む、いくつかの厳格な条件を満たす必要があります: 遺伝子、誘導、プロモーターのごくわずかな水漏れしたため、transgene の可逆性の用量と時間依存応答性の正確な方向式インデューサの除去や細胞および研究室動物1,2,3に許容インデューサ毒性レベルを介して活性化。テトラサイクリン4、5ラパマイシン6,7、8ミフェプリストン9,10を含むいくつかの小分子誘導を悪用されています。エクダイソン11,12,13,14。一般に、これらのシステムは、2 つまたは 3 つの離散式ユニットを含む、少なくとも 2 つのプラスミドを必要とする、1 つまたは 2 つの構成; 転写活性を得るために小分子インデューサをバインド規制要素 (インデューサ プラスミッド)別プラスミド (エフェクター プラスミッド) インデューサ バインド規制要素へのアクセスを可能にする規制 DNA 領域の制御の下で遺伝子を含みます。バイナリ システムの主な欠点は、ターゲット セル (インデューサとエフェクター) 2 つのベクトルの併用導入を必要とすることです。一時的な遺伝子発現実験の 2 種のプラスミドの同時トランスフェクション必然的を生成する単独でインデューサか、エフェクターをトランスフェクトしたまたは co transfected ない均等にするセルの人口。さらに、バイナリ システムでは、時間がかかり、骨の折れるである安定したセルラインを確立する抗生物質選択の少なくとも 2 つのラウンドが必要です。したがって、遺伝子発現に必要なすべてのコンポーネントを組み合わせることと 1 つのベクトルに規制が単一のセルにすべての必要な要素の随伴表現を保証し、遺伝子発現の調節を可能にする理想的だろう小分子誘導と治療を通じて
バイナリの遺伝子スイッチの欠点を克服するためには、キイロショウジョウバエEcR 遺伝子誘導システム15を使用して特異遺伝子スイッチ我々 最近開発。エクジソンは、順番 DNA 規制要素3,11EcR のバインディングを誘導する EcR/ウルトラスピラクル (USP) ヘテロダイマーにバインドするときに遺伝子発現を仲介します。脊椎動物のレチノイド X 受容体 (RXR)、昆虫、USP のオーソログがアクティブな転写活性化因子16を形成する EcR を募集します。したがって、脊椎動物の細胞または組織の遺伝子発現のターゲット、EcR と RXR 必要があります共発現同時に脱皮ホルモンまたはそのアゴニストによって刺激されて前に。以来、EcR 遺伝子スイッチのヘテロ二量体の機能は、内因性の RXR レベル、Padidamらによって影響があります。異種 GAL4 DNA 結合、単純ヘルペス ウイルス蛋白質 vmw65 置き換え EcR DNA 結合と活性化ドメイン (VP16) 活性化ドメイン融合内因性 RXR に応答しなくなったし、ホモを形成した EcR リガンド結合ドメイン転写活性17を得よう。EcR ベース遺伝子のスイッチは、ホモを形成し、エクジソン アゴニスト、Teb16のない状態で細胞質に局在 GvEcR と組み合わせて最小限 VP16 活性化ドメインから成るキメラ蛋白質を構築することでさらに改善されました。 18。Teb にバインディングによって、GvEcR、内局細胞質からに変更ゼブラフィッシュ E1b 10 タンデム併用最小プロモーターから成るハイブリッド プロモーターの反復上流活性化配列 (UASs) を開始するを認識する核、16ターゲット遺伝子のトランスクリプション。
以前に報告した EcR 遺伝子を簡素化するスイッチ16,18、刺激的な発現のためすべての必要な要素を装備し、指定の単一ベクトルにシステムのバイナリの機能を結合我々新しく生成されたベクトル pEUI(+) (GenBank 受入番号: KP123436、図 1 a)15。EcoRI、PmlI、NheI、BmtI、AfeI、および AflII の認識シーケンスが (図 1 b) UAS を繰り返す多重クローニング サイト (MCS) 続いて E1b 最小プロモーターの横にある 10 のタンデムのエフェクター GvEcR ドライバー (ドライバー以下) への応答で構成されます。選択を容易にするためにさらに、トランスフェクション細胞の SV40 プロモーターに駆動されるピューロマイシンN-アセチルのトランスフェラーゼ (PAC) 遺伝子は安定したセルライン (図 1) を維持するためにドライバーとエフェクターの間置かれました。
PEUI(+) を用いた遺伝子発現の非定常かつ安定的な変調のための詳しいプロトコルについて述べる。また、脱皮ホルモンのアゴニストとして Teb の正しく使用するための詳細な手順を提供します。

<table><tbody><tr><td>pEUI(+)</td><td>TransLab</td><td></td><td>特許ライセンスはTransLab株式会社に譲渡されました&nbsp;</td></tr><tr><td>Gene-Fect Transfection 試薬</td><td></td><td>TransLab TLC-001</td><td></td></tr><tr><td>HEK293</td><td>ATCC</td><td>CRL-1573</td><td></td></tr><tr><td>テブフェノジド</td><td>フルーカ</td><td>31652</td><td></td></tr><tr><td>クローニングシリンダー</td><td>シグマ</td><td>CLS31668</td><td></td></tr><tr><td>ピューロマイシン</td><td>コーニング</td><td>58-58-2</td><td></td></tr><tr><td>抗生物質</td><td>Gibco</td><td>15240-062</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン-EDTA</td><td>Welgene</td><td>LS015-01</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Welgene</td><td>LM001-05</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>Welgene</td><td>S001-01</td><td></td></tr><tr><td>細胞培養皿</td><td>SPL ライフサイエンス</td><td>11090</td><td></td></tr><tr><td>マウス FLAG M2</td><td>Sigma</td><td>F3165</td><td></td></tr><tr><td>抗αチューブリン抗体</td><td>Calbiochem</td><td>CP06</td><td></td></tr><tr><td>クローニングシリンダー</td><td>Sigma</td><td>CLS31668</td><td></td></tr><tr><td>NucleoBond Xtra Midi</td><td>Macherey-Nagel</td><td>740410.1</td><td></td></tr><tr><td>M-PER 哺乳類タンパク質 抽出試薬</td><td>Thermo Fisher</td><td>78505</td><td></td></tr><tr><td>100X プロテアーゼ阻害剤 Cock.III</td><td>のT&私は</td><td>BPI-9200</td><td></td></tr></tbody></table>

脱皮ホルモン受容体を介した特異遺伝子スイッチ意図的な堅牢性、可逆性、ごくわずかな水漏れしたためと遺伝子発現の

An Ecdysone Receptor-based Singular Gene Switch for Deliberate Expression of Transgene with Robustness, Reversibility, and Negligible Leakiness

遺伝子発現の精密制御が望ましい生物学的および臨床的研究です。ただし、現在失業遺伝子スイッチのバイナリの機能は、単一のセルに同時に 2 つの治療式単位の転送を必要とするため、遺伝子治療のためのシステムの実用的なアプリケーションが制限されます。遺伝子組み換え式システムを簡素化し、1 つのベクトルで遺伝子発現モジュールの完全なセットを包括的な pEUI(+) として示される遺伝子スイッチを生成されます。新開発の特異遺伝子のスイッチは非常に GAL4 DNA 結合ドメインの構成と変更された EcR (GvEcR)、変更されたショウジョウバエ脱皮ホルモン受容体 (EcR) と同様、GAL4 DNA 結合ドメインと融合した最小限 VP16 活性化ドメイン時間と用量依存的に化学インデューサの管理に対応。PEUI(+) ベクターは、生物学的研究と前臨床研究遺伝子発現の制御を改善するための強力なツールです。ここでは、変調テブフェノジド (Teb) 処理による pEUI(+) ベクトルを用いた非定常かつ安定的な発現のための詳しいプロトコルを提案する.また、Teb の化学誘導としての使用に関する重要なガイドラインを紹介します。

GvEcR ベースの特異遺伝子のスイッチは、図 1 aに描かれています。PEUI(+) ベクトルは、Teb で処理による遺伝子発現の調節用に最適化されました。PEUI(+) のエフェクター地域、10xUAS と最小プロモーターに続いて EcoRI、PmlI、NheI、BmtI、AfeI、および AflII の制限酵素認識部位を含む MCS、E1b で構成します。SV40 多信号は、MCS (図 1 b) 後ろに追加されました。PAC遺伝子は、ピューロマイシン耐性を付与する pEUI(+) のドライバーとエフェクターの間に挿入されました。
PEUI(+) の水漏れしたため、活動を評価する私たち subcloned EGFP MCS の EcoRI サイトに (pEUI(+)-EGFP)、一過性プラスミ...

ここでは、テブフェノジド処理による pEUI(+) 特異遺伝子スイッチを用いた遺伝子発現の調節のためのプロトコルを提案する.

Precise control of transgene expression is desirable in biological and clinical studies. However, because the binary feature of currently employed gene ...

この実験の全体的な目標は、化学誘導剤テブフェノジドの投与によって導入遺伝子の発現を調節することです。この方法は、目的の遺伝子の発現を目的の時間に目的の強度で刺激する必要がある場合など、細胞生物学および分子生物学分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、導入遺伝子発現に必要なすべての要素を単一のベクター内で組み合わせることにより、化学誘導剤テブフェノジドの投与によって導入遺伝子発現を刺激できることです。テキストプロトコルに従ってEGFPまたはANKRD13A導入遺伝子をサブクローニングした後、5〜10%FBSおよび抗生物質を添加した5ミリリットルのDMEMに新たに継代したHEK293細胞を含む4つの細胞培養皿を調製します。これらは以下、培地と呼ばれます。セルを摂氏37度に保ちます。細胞が50〜60%の密度に達したら、DNAを含む200マイクロリットルの希釈液に3マイクロリットルのトランスフェクション試薬を追加します。反応液を室温で30分間インキュベートした後、混合物をHEK 293細胞に加えます。トランスフェクションには2つのディッシュを使用し、他の2つはコントロールとして未処理のままにします。細胞を摂氏37度で12〜24時間インキュベートします。インキュベーション後、トランスフェクションしたサンプルの1つとトランスフェクションしていないコントロールの1つにTebを添加します。他の 2 つのサンプルは、実験コントロールとして未処理のままにします。プレートを12〜48時間インキュベートします。EGFPインサートを使用する場合は、蛍光顕微鏡でEGFP発現を解析します。それ以外の場合、イムノブロッティングのために細胞を回収するには、氷冷PBSを使用して細胞を2回すすぎます。次に、セルスクレーパーを使用してプレートからそれらを取り出し、15ミリリットルの円錐管に移します。次に、チューブを21,000倍g、摂氏18〜25度で2分間回転させます。次に、PBSを廃棄した後、0.5ミリリットルの氷冷哺乳類タンパク質抽出試薬(M-PER)とプロテアーゼ阻害剤をペレットに加えます。数回のピペッティングで細胞を再懸濁します。次に、細胞懸濁液を摂氏18〜25度、室温で15分間インキュベートします。細胞ライセートを21,000倍のgおよび摂氏4度で10分間回転させる。次に、水性上清を新しい1.5ミリリットルの微量遠心チューブに移し、適切な抗体で免疫ブロッティングして分析します。Teb刺激を消光するには、Tebを含む培地を細胞から取り出し、予め加温したPBSを使用して細胞を2回すすぎます。次に、0.25%トリプシン/ EDTAを1ミリリットル加え、細胞を摂氏37度で1分間インキュベートします。10ミリリットルの温めたTebフリーの培地を細胞に加え、セルスクレーパーを使

an-ecdysone-receptor-based-singular-gene-switch-for-deliberate

Research

JoVE Journal

Genetics

遺伝学

のために導入遺伝子を産生する能力...

の生産 C.エレガンス</emとRecombineering経由>トランスジーン galK選択可能なマーカー

形質の表現型変異は、シス調節エレメント（CRE）のシーケンスを制御する遺伝子の発現パターンの変異に起因することができます。キイロショウジョウバエで使用するために派生メソッドは、定量的に変更されたり、天然に存在するCREの亜種によって媒介遺伝子発現の空間的および時間的パターンのレベルを比較することができます。...

の定量的比較シス</emトランスジェニックで> -調節エレメント（CRE）の活動キイロショウジョウバエ</em

出典: ベレンズ、C. ほか。 誘導性発現システムを応用して、細菌病原性因子が細胞内シグナル伝達に干渉する様子を研究すること。 J. Vis. Exp.

細菌エフェクタータンパク質を発現する細胞への誘導性遺伝子発現系のトランスフェクション

このビデオは、マウスモデルにおけるテトラサイクリン、またはTet-On遺伝子発現システムを示しています。テトラサイクリン誘導体であるドキシサイクリンの存在下では、逆テトラサイクリン制御トランスアクチベータータンパク質からなるTet-Onシステムが活性化され、目的の遺伝子を発現します。...

インビボでの誘導性Tet-On調節可能なシステムベースの遺伝子発現:マウスモデルにおける標的遺伝子転写活性化のためのテトラサイクリン誘導遺伝子発現システム

このプロトコルは、同族のGFPレポーターおよびフローサイトメトリーを経由してGFPの発現を刺激するATFS能力を定量化した人工転写因子（ATFS）を迅速に構築するための実験的な手順を説明します。...

迅速な合成およびGFPベースの記者との化学的に活性化する転写因子のスクリーニング

ここで述べられている方法は、抗アポトーシス細菌のエフェクタータンパク質の活性を解剖するために、定義されたステップでアポトーシスシグナル伝達カスケードを誘導するために使用されます。この方法は、アポトーシス促進性または毒性タンパク質の誘導性発現、または他のシグナル伝達経路との干渉の解剖にも使用できます。...

誘導発現系を適用すると、細胞内シグナル伝達と細菌の病原性因子の干渉を研究するために、

異種発現しているシステムを介してイオンチャネルを研究することは、生物医学研究の中核技術となっています。本稿では、誘導性プロモーターの制御下で、一過性トランスフェクションを行うことにより厳密に制御イオンチャネルの発現を達成するために、時間効率的な方法を提示します。...

誘導性一過性トランスフェクションを介して制御可能なイオンチャネルの発現

ショウジョウバエの遺伝子の最初のコーディングのエクソンを転写ドライバーと置き換えることにより組織特異的転写、バイナリ システムを生成する方法を紹介します。CRISPR/Cas9 ベースのメソッド交換遺伝子の内因性の規制の下での転写活性化シーケンスを配置、その結果遺伝子特定の時空間パターンを排他的に transctivator...

ショウジョウバエのゲノム編集による組織固有のバイナリ転写システムを生成するための効率的な戦略

このプロトコルでは、生きた動物の細胞強化lacリプレッサーとテト活性化システムを使用して興味の内因性遺伝子のトランスクリプションを条件付きで制御できるモデル...

体内の内因性遺伝子操作のリモート制御システムのアプリケーション

光応答性哺乳動物細胞を確実に制御するには、光遺伝学的方法の標準化が必要です。この目標に向けて、本研究では、ネガティブフィードバック光遺伝学遺伝子回路を用いた光誘導遺伝子発現の研究を標準化するための遺伝子回路構築、細胞工学、光遺伝学的装置操作、検証アッセイのパイプラインをケーススタディとして概説する。...

哺乳類細胞における安定した光遺伝学的遺伝子回路を確実にエンジニアリングおよび制御

本研究では、3DプリントされたLEDアレイを用いたハイスループット実験を行い、HEK293T細胞における光誘導性遺伝子発現を最適化する方法を紹介します。...

哺乳類の遺伝子発現を制御するための光誘導システムの迅速な最適化

学ぶ、テブフェノザイド誘導によるpEUI(+)遺伝子スイッチを用いたHEK 293細胞でのトランスジェン発現制御法。この技術は、細胞・分子生物学における遺伝子機能の時間的・強度的制御研究に貢献します。

脱皮ホルモン受容体を介した特異遺伝子スイッチ意図的な堅牢性、可逆性、ごくわずかな水漏れしたためと遺伝子発現の

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