Name: Ex Vivoラット脳切片を用いた神経変性疾患の主要なイベントを勉強する方法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 57 s
Description: 学ぶラット脳切片を用いた神経変性疾患の分子メカニズム解析法。同一脳の対称切片で処置群と対照群を比較し、タウリン酸化やアミロイドβ変化を評価する。神経科学研究に有用です。

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この作品会社ニューロ バイオで賄われていた我々 感謝したい博士・ ジョヴァンニ ・ Ferrati、博士セルジオ ・ ロトンド (神経生物)、コメントや原稿にアドバイスを。

すべての動物の研究は、承認されたプロトコルの下で行われています。
注: このセクションで実験プロシージャの間に実行される一連の主なフェーズと推奨される時間間隔が表示される (図 1)。また、プロトコルの説明は脳除去から潜伏期間 (図 2) 後の組織の均質化に至るまで重要なアクションを見せて、説明パネルによって補われます。材料と装置と WB 解析のため後続のフェーズを構築する手順について詳細は、前述の22です。
1. 手術器具、Vibratome 設定と治療準備
注: は、実験の手順を開始する前に次の手順を実行します。
<ol><li>2 つ異なる人工髄液 (aCSFs)、脳をスライスするために使用される 1 つを準備し、29が前述に潜伏ステップのための他。簡単に言えば、2 つの aCSFs の (モル) で働く集中は、「スライス」アプライド: 120 塩化ナトリウム、5 KCl、20 NaHCO3、2.4 CaCl2、2 MgSO4、1.2 KH2PO4、および 10 のブドウ糖。6.7 HEPES 塩と 3.3 HEPES 酸;pH: 7.1。「記録」アプライドしばらく: 124 NaCl、3.7 KCl、26 NaHCO3、2 CaCl2、1.3 MgSO4、1.3 KH2PO4、および 10 のブドウ糖。pH: 7.1。</li>
	<li>ソリューションを混ぜると氷の上に置くし、脳とその後の断面を除去しながら寒さにスライスのアプライドに酸素を送り込みます。部屋の温度 (RT) と供給酸素記録アプライドに保ちます。</li>
	<li>斬首と脳の除去、すなわちギロチン、外科解剖キット (ハサミ、鉗子、羽根) とヘラの郭清のフードの下で楽器を配置します。</li>
	<li>Vibratome パラメーターを設定するには、スライス厚測定 (この準備で 300 μ m) と 7 の周波数と 6 で速度を選択します。その適切な場所に vibratome チャンバーを挿入し、氷とそれを囲みます。</li>
	<li>「スライス」(アプライド) 脳断面中に酸素を送り込むことカーボゲン ・ (95% O2 5% CO2) バルブを開きます。最小流量は 2 mL/分周辺を選択します。</li>
	<li>テストする条件を準備する 2 つの 15 mL チューブを取る。2 μ M (治療群) の濃度で T30 を豊かに「記録」アプライドの 10 mL 1 管 10 mL、「録音」アプライドだけで (コントロール群) のと、他を追加します。渦管し、セットアップ準備段階 (セクション 3) での使用まで氷のそれらを保ちます。</li>
</ol>2. 麻酔、脳領域抽出とスライス
注: この研究で 9 野生型 P14 雄 Wistar ラットが使用されました。脳の抽出とその後スライスを防止または組織の変性過程に少なくとも遅くために (10 分) 内ですぐに実行すべきのでプロトコルの重要な一部を構成します。
<ol><li>誘導室に綿の層にイソフルランの 100%/w の 1.5 mL を追加、中に動物を配置、ふたを閉じる。動物深く麻酔、ペダルの反射の有無を確認するまで待ち、その後、ギロチンを使用して動物の首をはねます。</li>
	<li>冷たい鍋含む内の動物の頭を保つ脳除去の段階アプライドをスライス (図 2 a -C)。</li>
	<li>頭蓋骨に手術の刃で皮膚を切開し、はさみ次の後部から、正中線を使って頭蓋骨をカット、前方 (図 2 a) OBs の上の骨に到達するまで続行します。</li>
	<li>脳 (図 2 b) へのアクセスを持つためにピンセットのペアを使用して頭蓋骨の横に 2 つの側面を引き出します。脳に腹へらを挿入し、優しくスクープ、それとそれは約 5 分 (図 2) のように冷たい「スライス」アプライドでうるおいをしっかりキープ。</li>
	<li>ろ紙上の脳を処分、ブレード (図 2 D) を用いた小脳を切り取る。Vibratome ディスクに垂直に脳を接着剤し断面のチャンバ内挿入、冷たい「スライス」のアプライドでそれ埋めるし、酸素 (図 2 e) を提供。</li>
	<li>切断間隔を調整し、脳断面 (図 2 f) に進みます。上記22内側中隔 (MS)、ブローカー (DBB) と黒 innominata (SI) の斜め帯など、関心の領域を含むセクションを収集します。上から下に、3 つのスライスには、吻側 (R)、(I)、中級、BF (図 2) の尾の (C) 部分が含まれています。</li>
	<li>小さなハサミで正中線に沿って各セクションを分割コントロールと同じ解剖学的平面で扱われる条件として個別に使用 2 つの鏡面 hemislices (図 2 H) を取得します。</li>
	<li>5-10 分の vibratome 室で、hemisections を維持し、ガラス ピペットで記録アプライドを含むバブル鍋にそれらを転送します。常温約 30 分を回復してください。</li>
	<li>記録アプライドだけ (以前に管理グループのための 1.6 の手順で準備) 3 mL で 3 つのガラス容器と扱われたグループの T30 (以前に 1.6 の手順で準備) を豊かにアプライドの 3 ml 3 バイアルを一方で、埋めます。</li>
</ol>3. セットアップ準備
<ol><li>制御グループ (緑枠、図 2 j) の 3 つの連続した hemislices (, 中間, 吻側と尾側の BF 地域を含む) を持つために彼らの対応するガラスの瓶 (図 2 i)、hemisections に転送、治療群 (赤枠、図 2 j) の対応を一致します。</li>
	<li>条件の間の任意の汚染を防ぐために制御 hemislices と処理対応の 2 つの異なるブラシを有する脳組織を転送します。</li>
	<li>対応するふたをオキシジェネイティング針 (21 G) (図 2 j) を提示、各バイアルをシールします。カーボゲン ・ ソース (図 2 K) に装置のメインのチューブを接続します。実験では脳組織と機械的損傷の任意の動きを避けるために 2 mL/min の最小流量では培養期間を通して hemislices に酸素を提供します。5 時間培養を開始します。5 分以内 3.1 3.3 の手順を実行します。 注: こまめにチェック (15-20 分毎) すべてのバイアルに酸素が供給されるかどうかと、その流れは底から組織を動いていません。</li>
</ol>4. サンプルの均質化
<ol><li>孵化後酸素の流れを停止し、バイアル瓶からすべての蓋を削除します。アイス (図 2 L) チューブを維持する換散バッファーの 250 μ L を含む 1.5 mL チューブに適切なブラシを使用して、hemislices に転送します。換散バッファー、PBS 1 をミックスするには、フォスファターゼ、プロテアーゼ阻害剤のカクテルと x で、1: 100 希釈し、サンプル間の汚染を防ぐために異なるすりこぎで組織をホモジナイズしてください。10-15 分内でこれらの操作を完了します。</li>
	<li>遠心分離機の 4 ° C で 5 分間 1,000 x g でライセートの脳上清を新しいチューブに転送し、-80 ° C のサンプル</li>
</ol>5. タンパク質濃度および西部のしみの分析を読む
<ol><li>各サンプルのタンパク質濃度を測定し、その後、上記22として西部のしみの分析試料を準備します。</li>
	<li>蛋白質の表現の治療の効果を評価するための統計分析を実行します。</li>
</ol>

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</ol>

著者は、競合する金銭的な利益を宣言します。スーザン ・ a. グリーン フィールドは、創設者兼社長神経バイオ限定、個人所有の会社と会社の株を保有しております。エマヌエーレ ブライとアントネラ Cogoni 神経バイオ株式会社の従業員であります。

特定のアプリケーションの後の彼らの応答を監視、同じ解剖学的面から取得した 2 つの鏡面 hemislices を同期的にテストすることができます確立前のヴィヴォ脳の技術に基づいて、このプロトコルの主要側面条件 (制御または扱われる);したがって、できるだけしっかりと制御実験パラダイムを提供します。神経変性イベント22日中に見られるように時間、線量 - と部位特異的異なる neurochemicals 神経障害に関連する評価の可能性は、本質的な機能を表します。この方法論は、体外で準備、関心領域を取得し、理想的な細胞外コンテキストの作成で精度などの体内の生理環境の利点をリンクします。このプロトコルは広く前のヴィヴォ電気生理学的記録25,26,27光イメージング28,プロ...

広告は (OB)1,2,3、嗅 (EC)、BF、海馬 (HC)、嗅球などの異なった頭脳区域に影響を与える段階的な神経変性障害によって特徴づけられる慢性的な病理 4,5。広告開発の後期の段階は、この病気の約すべての場合6の 70% を占め、認知症の最も一般的なフォームを作り、進行性認知機能の低下に します。初期 AD の原因を理解する広範な試みにもかかわらずない現在、定義された実験的徴候がそれらを解明です。AD の病態も効果的な7,8 を証明している医薬品のターゲットを説明する完全なプロフィールを提供されていないまた、最も人気のある理論 -「アミロイド仮説」- は問わ ,9。
注目されている代替理論神経変性時に発生する初期のメカニズム広告3,10,11に主に影響を受けやすい神経クラスターに関連していることを示唆しています。,12,13,14. OB、HC、EC1615,などの複数の地域が BF、中脳、脳幹、プロジェクト内で包まれてこの異種細胞ハブ。神経細胞の形態、神経伝達物質合成の多様性、にもかかわらず細胞のこのコアは非酵素的関数17,18することも痛みを表現する共通の機能を共有します。シグナリング分子は、Ca2 +線量、可用性、および神経年齢17,18に関連して栄養や有害イベントを受けることができるニューロンにカルシウム (Ca2 +) の流れを仲介する小説としてこの非古典的な役割,19。
神経変性、中に観察された細胞損失かもしれないしたがってこの非酵素的関数17,18,20、関連付けられている痛みの C 末端から切断 30mer ペプチド (T30) に起因するであります。20.、T30 誘導 BF 構造を有するラット脳スライス前のヴィヴォに基づいて新規アプローチを通じて我々 は実証以前の結果は、細胞培養と光イメージング18,21の準備、実施に伴い広告のようなプロファイル22。この新しい手法は時間のタイム ・ ウィンドウのとはいえ、解剖学的から回路保全に至るまで、そのまま組織の特性の多くを維持するための細胞培養よりもより生理的シナリオ提供しています。T30 申請急性反応をモニタリング、神経変性疾患の初期の段階で行われるイベントを探索するこのプロトコルを適用されます。
脳の使い方の文献の大きいボディにもかかわらず神経損傷で暗黙の分子経路を調査するスライスまたはより即時初めて神経新生23,24, このプロトコルを提供し、読み出す敏感な比較脊髄スライスの共通使用。ただし、脳切片の場合、この急性スライス手順できますも採用される特定の工程で発生する主な分子の変化検出神経または神経毒性分子の評価など、いくつかの目的のため免疫組織化学的解析、および中枢神経系の薬理学的アッセイ関連病態です。

<table><tbody><tr><td>塩化ナトリウム(NaCl)</td><td>Sigma-Aldrich, ドイツ</td><td>S7653</td><td>aCSF調製用試薬</td></tr><tr><td>塩化カリウム(KCl)</td><td>Sigma-Aldrich, ドイツ</td><td>P9333</td><td>aCSF調製用試薬</td></tr><tr><td>重炭酸ナトリウム(NaHCO3)</td><td>Sigma-Aldrich, ドイツ</td><td>S5761</td><td>aCSF調製用試薬</td></tr><tr><td>硫酸マグネシウム七水和物(MgSO4 (7H2O))</td><td>Sigma-Aldrich, ドイツ</td><td>63138</td><td>aCSF調製用試薬</td></tr><tr><td>リン酸カリウム一塩基性(KH2PO4)</td><td>Sigma-Aldrich(ドイツ</td>) <td>P5655</td><td>aCSF調製用試薬</td></tr><tr><td>Hepes塩</td><td>Sigma-Aldrich(ドイツ</td><td>) H7006</td><td>aCSF調製用試薬</td></tr><tr><td>Hepes酸</td><td>Sigma-Aldrich(ドイツ</td>) <td>H3375</td><td>aCSF調製用試薬</td></tr><tr><td></td><td>Glucose Sigma-Aldrich(ドイツ)</td><td>G7528</td><td>aCSF調製用試薬</td></tr><tr><td>塩化カルシウム脱水</td>物 <td>Sigma-Aldrich, Germany</td><td>223506</td><td>aCSF調製用試薬</td></tr><tr><td>T30ペプチド</td><td>Genosphere Biotechnologies, France</td><td></td><td>AChE由来ペプチド試験</td></tr>済み <tr><td>外科解剖キット</td><td>World Precision Instruments, USA</td><td>Item #: MOUSEKIT</td><td>脳除去ステップ</td></tr><tr><td>外科用ブレード</td><td>スワン・モートン、英国</td><td>BS 2982</td><td>脳除去ステップ</td></tr><tr><td>濾紙</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック、米国</td><td>11566873</td><td>スライスのための脳の準備</td></tr><tr><td>接着剤</td><td></td><td></td> スライス<td>のための脳の準備</td></tr><tr><td>ビブラートーム</td><td>・ライカ、ドイツ</td><td>VT1000 S</td><td>スライス</td></tr><tr><td>ブラシ</td><td></td><td></td><td>ティッシュハンドリング</td></tr><tr><td>酸素ボンベ</td><td></td><td></td><td>切片化およびインキュベーション段階</td></tr><tr><td>1x リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)</td><td>Fisher Scientific, USA</td><td>BP2438-4</td><td>均質化ステップ</td></tr><tr><td>ホスファターゼ阻害剤</td><td>Fisher Scientific, USA</td><td>1284-1650</td><td>均質化ステップ</td></tr><tr><td>プロテアーゼ阻害剤</td><td>Roche complete PIC, USA</td><td>4693116001</td><td>均質化ステップ</td></tr><tr><td>Pestles</td><td>Starlab, UK</td><td>I1415-5390</td><td>均質化ステップ</td></tr><tr><td>微量遠心分離機</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pierce 660 nm Protein Assay</td><td>Thermo Scientific, USA</td><td>22660</td><td>タンパク質濃度</td></tr></tbody></table>

ex vivoラット脳切片を用いた神経変性疾患の主要なイベントを勉強する方法

An Alternative Approach to Study Primary Events in Neurodegeneration Using Ex Vivo Rat Brain Slices

基になる神経変性を処理するプライマリを反映して信頼性の高いモデル動物の開発を試みる多くの研究にもかかわらずいくつかの非常に幅広く受け入れられてまいりました。ここでは、新しいプロシージャをよく知られている前のヴィヴォ脳スライス テクニックから、近い体内適応を提案する-として細胞の変性をトリガーする初期のイベントを調査するための体外の準備よりシナリオのようなアルツハイマー病 (AD) で観測されました。このバリエーションは、シンプルで簡単に再現できる手順を実行し、選択した脳の領域と、ローカル機能を生理学的環境での解剖学的研究の保存を有効にするで構成されています。別の解剖学的領域は、サイト、線量、および時間依存的で問題の治療法と複数の実験を実行する機会を提供すること、同じ脳から入手できます。この方法論に関連する成果に影響を与えることができる潜在的な制限を組織、すなわち、スライスとインキュベーションのステップおよび切片厚中の解剖学的な整合性の維持保全に関連します。生化学的および免疫組織化学的解析に影響を与えることができます。このアプローチは、生理学的または病理学的条件、薬物スクリーニング、または用量反応アッセイに関与する分子機構の探索など、さまざまな目的に流用できます。最後に、このプロトコルはまた動物行動学で採用数を減らすことができます。ここで報告されたアプリケーションが最近説明し、含む、前脳基底部 (BF)、広告で主に影響を受ける脳の領域の一つであるラット脳スライス前のヴィヴォの最初の時間のためにテストします。具体的には、それはアセチルコリンエステラーゼ (AChE) の C 末端から派生した有毒ペプチド投与がトリガー、BF の前後軸に沿った発現の広告のようなプロファイルを求める可能性が実証されています。alpha7 ニコチン性受容体 (α 7-nAChR) など、広告の変更蛋白質は、タウ (p-タウ) とアミロイド β (a β) にリン酸化。

ここで提示されたプロトコルは、α 7-nAChR、p の式のサイト依存的に有毒ペプチド、T30 の管理が変調を示します-タウ ・ BF 含むセクション (図 3 a) で a β。ニコチン性受容体と比べてそのコントロール、吻側治療 hemislice の大幅な増加を示しています (スライス 1、 p = 0.0310) (図 3 b)、中間のスライスは 2 つの条件 (変更を明らかにしない中スライス 2、 p = 0.1195) (図 3 b)。後部セクションはそのコントロール側で大幅な削減は T30 露出部分に存在 (スライス 3、 p = 0.0476) (図 3 b)。T30 申請 p タウ レベルが大幅に側に一致するコントロールに対して前歯で増加 (スライス 1、 p...

体内と体外の実験の利点を組み合わせてさらに神経変性疾患の基になる初期のイベントに対する洞察を提供することができますし、確立されたex vivo脳法に基づく手法を提案します。また、同じ解剖学的平面の処理と未処理のグループの直接の比較のためのユニークな機会を表します。

Ex Vivoラット脳切片を用いた神経変性疾患の主要なイベントを勉強する方法

Despite&#160;numerous studies that attempt to develop reliable animal models&#160;which reflecting the primary processes underlying neurodegeneration, ...

この手順の全体的な目標は、同じ解剖面から得られた 2 つの鏡面半スライスを同時に調査し、治療後の影響を監視することです。この方法は、神経変性プロセスに関与する主要な分子に影響を与える主要なイベントなど、分子神経科学分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、神経変性イベントの根底にある分子カスケードを提供し、媒体で実行できることです。この方法は、神経変性で発生する主要なイベントに関する洞察を提供できますが、さまざまな障害の動物モデルや他の臓器や組織の特性を調査するためにも適用できます。まず、2種類の人工脳脊髄液を準備します。1つは脳のスライスに使用され、もう1つはインキュベーションステップに使用されます。スライスACSFを準備した後、溶液を混合して氷の上に保ちます。同様に、記録ACSFを準備しますが、室温で保管してください。両方の溶液を酸素化します。次に、解剖フードで斬首と脳の除去のための器具を準備します。次に、ビブラトームパラメータを設定します。必要に応じてスライスの厚さを設定します。300ミクロンなど。周波数を 7 に、速度を 6 に設定します。次に、ビブラトームチャンバーを挿入し、氷で囲みます。脳の切片化のために、カルボゲン弁を開いてスライスACSFを酸素化します。最小流量は毎分約2ミリリットルを選択します。次に、2本の15ミリリットルチューブで、tusの状態を準備します。コントロールとして、記録ACSFの10ミリリットルを1つのチューブにロードします。もう一方には、処理を施した10ミリリットルの録音用ACSFをロードします。この場合、T30の2マイクロモル。両方のチューブをボルテックスし、必要になるまで氷の上に保ちます。外科用ブレードで頭蓋骨の上の皮膚を切開します。次に、はさみを使用して、嗅球の上の骨の後部から正中線に沿って頭蓋骨を切ります。次に、鉗子を使用して頭蓋骨の両側を横方向に引っ張り、脳にアクセスします。へらを腹側に脳に挿入します。そっとすくい取り、氷のように冷たくスライスしたACSFで約5分間水分を補給します。冷たいACSFで休んだ後、脳を濾紙に移します。そして、小脳を取り除いた後、ビブラトームディスクに脳を垂直に接着します。次に、氷冷スライシングACSFで満たされたセクショニングチャンバーに移します。次に、チャンバー溶液への酸素の流れを開始します。その後、切断間隔を調整し、脳の切片化を進めます。関心のある領域を含むセクションを、標準的な方法を使用して収集します。次に、各セクションを正中線に沿って小さなハサミで慎重に分割し、2つの鏡面半スライスを取得します。コントロールと治療された状態に半スライスの各ペアを使用してください。分割した後、半切片をビブラトームチャンバーで5〜10分間休ませます。残りの後、ガラスピペットを使用して半切片を室温で記録ACSFを含むバブリングポットに静かに移します。次に、半切片を約30分間回復させてから続行します。休憩中に、対照群には3ミリリットルの記録用ACSFを、治療群にはT30を豊富に含む3ミリリットルのACSFを3本のガラスバイアルにロードします。30分間の休憩後、5分以内にサンプルを浴に移します。まず、ブラシを使用して、連続するヘミスライスを制御溶液にロードします。次に、別のブラシを使用して、反対側の半切片を治療液に移します。次に、サンプルにカルボゲンを送達するための21ゲージの針を含むプラスチックストッパーでバイアルを密封します。毎分2ミリリットルなどの最小限の流量で酸素を供給し、脳組織の動きが組織に機械的損傷を与えるのを防ぎます。これでセットアップは完了です。次に、5時間のインキュベーションを開始します。インキュベーション後、酸素の流れを止め、バイアルのキャップを外します。次に、適切なブラシを使用して、氷上に保持された250マイクロリットルの溶解バッファーを含む1.5ミリリットルのチューブに半スライスを静かに移します。次に、別々の乳棒を使用して、各組織を均質化します。6つのサンプルすべてについて、10〜15分以内に転写および均質化のステップを完了します。次に、均質化されたサンプルを重力の1, 000倍で摂氏4度で5分間遠心分離します。スピン後、上清を新しいチューブに移し、サンプルをマイナス80°Cで保存します。毒性ペプチドT30を、半切片を含むバジル前脳に投与すると、組織に3つの部位特異的な影響が見られました。α7ニコチン受容体の発現、タウのリン酸化、アミロイドベータの発現を調節しました。ニコチン受容体は、吻側で治療された半スライスで有意な増加を示しましたが、中間スライスでは2つの状態の間に変化は見られませんでした。後部では、T30の露出部分に有意な減少が見られました。リン酸化タウレベルは、前部で有意に増加しました。一方、他の2つのバジル前脳部分は、条件間で有意な差を示していません。アミロイドβは、吻側および中部半肉片におけるT30曝露後に有意に増強された。しかし、コダルスライドでは、アミロイドβの発現に測定可能な影響はありませんでした。このテクニックを習得すると、適切に実行すれば7時間以内に完了できます。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

E18ラット脳の器官型スライス培養

この記事では、ラットと脳の老化とアルツハイマー病などの加齢に伴う神経変性疾患、関連付けられているシナプスの変化の研究のためのトランスジェニックマウスから海馬切片を調製するための手順の概要を説明します。...

老化とアミロイド病理の間にシナプス変化の研究のためのラットおよびトランスジェニックマウスからの急性海馬スライスの準備

この報告書は、添付されたシナプス前boutonsを保持する個々の実行可能な神経細胞の機械的な分離のためのテクニックを示しています。...

シナプス伝達とイメージシナプス前終末を研究するために齧歯類の脳スライスからの神経細胞のVibrodissociation

このビデオでは、神経変性を模倣するために、神経毒性ペプチドを用いてラットの脳半スライスを調製し、治療する手順を実演しています。このプロトコルでは、同じ解剖面内でコントロールスライスと治療スライスを直接比較することにより、神経変性イベントを分析できます。...

神経毒性ペプチドによるラット冠状スライスの治療

神経細胞の膜輸送を動的に原形質膜タンパク質の可用性と大幅に影響を与える神経伝達を制御します。今日まで、成体ニューロンにおけるニューロンのエンドサイトーシス輸送を測定するために挑戦してきた。ここでは、急性の脳切片における表面タンパク質発現のex vivoでの急速な変化を測定するための非常に効果的な、定量的な方法を記載している。...

脳スライスビオチン：<em&gt;生体外</emアダルトニューロンにおいて地域固有の細胞膜のタンパク質輸送を測定するために&gt;の取り組み

我々は、興奮毒性媒介性脳損傷に関与する分子メカニズムを調べるために使用できる脳切片モデルを開発した。この技術は、生存可能な成熟した脳組織を生成し、部分的に無傷の神経回路、細胞間相互作用、およびシナプス後区画を維持しながら、実験に必要な動物の数を減少させる。...

脳Microslicesの興奮毒性刺激<em&gt;インビトロ</em&gt;脳卒中のモデル

我々は、新生ラット脳組織を処理して、神経終末におけるシナプス小胞分布の morphometric...

Ultrastructural のための新生ラット脳組織の調製 Morphometric 神経末端におけるシナプス小胞分布の解析

このプロトコルは、自発的な鋭波波リップル活性を示すマウスからの水平海馬内皮質(HEC)スライスの調製を記述する。スライスは、簡略化されたインターフェース保持室でインキュベートされ、記録は、組織の酸素化とネットワークレベルの活動の自発的な出現を促進するために、流れの速い人工脳脊髄液と水没条件下で行われます。...

急性マウス脳スライスによる、海馬ネットワーク活動の調査

マウスの下-中間海馬からの急性スライスを調製するためのプロトコルを提示する。この横断的な準備を、記録の質と記録されたニューロンの形態学的特徴の保存の観点からコロナスライスと比較する。...

成体マウスのデンテート・ジラスにおける全細胞記録と神経再建のための、逆海馬からの急性スライスの作製

このプロトコルは、 その場で 軸索の成長および成長円錐ダイナミクスを研究するための簡単で堅牢な方法を実証する。 これは、生体外で...

その場で 急性 エクスビボ 胚性脳スライス培養における軸索成長および成長円錐ダイナミクスの可視化

学ぶラット脳切片を用いた神経変性疾患の分子メカニズム解析法。同一脳の対称切片で処置群と対照群を比較し、タウリン酸化やアミロイドβ変化を評価する。神経科学研究に有用です。

Ex Vivoラット脳切片を用いた神経変性疾患の主要なイベントを勉強する方法

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