Name: 均質な時間分解蛍光共鳴エネルギー転送を用いた測定インスリン分泌の検出 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 30 s
Description: 学ぶ均質な時間分解蛍光共鳴エネルギー転送法を用いて、膵β細胞からのインスリン分泌を迅速かつ正確に定量する方法です。グルコース刺激応答や薬剤効果の評価に適し、2型糖尿病の治療法開発と薬物探索に貢献します。

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1. INS 1E 細胞: メンテナンスとめっき
<ol><li>5% (v/v) 熱不活化牛胎児血清 L-グルタミン, 2 mM 10 mM HEPES、1 mM ピルビン酸ナトリウム、100 U/mL ペニシリン/ストレプトマイシンを添加した INS 1E 細胞加湿 37 ˚C/5% CO2インキュベーターと RPMI 1640 培地で培養を維持します。50 μ M β-メルカプトエタノールのソリューションです。80-90% の合流点に到達するまで、トリプシンし継代またはインスリン分泌の試金のために使用することができます (プレート) あたり 10 mL 完全 RPMI 1640 培地での細胞を培養します。</li>
	<li>
1 日目:メディアを吸引し、予め温めておいた PBS の 5 mL と一度セルを洗ってください。トリプシン (0.025%) の 0.5 mL 希釈 0.5 mL の PBS のセルを trypsinize し、37 ° C で 3-4 分間インキュベートに 1:1 を追加します。15 mL 遠心管にピペットによって 9 mL 完全なメディアおよび転送細胞を加えることによってトリプシンを非アクティブ化します。</li>
	<li>遠心分離によって細胞をペレットし、約 5 mL の新鮮なメディアで再細胞ペレットを中断します。</li>
	<li>再浮遊細胞の 10 μ L を取るし、10 μ L でトリパン ブルー セル実行可能性を確認するための重要な染料を混ぜます。診断この混合物の 10 μ L のライブとデッドのセルをカウントします。生存率レベルは 90% 以上にする必要があります。1 mL あたり 100 万の細胞に新鮮なメディアの再浮遊細胞を希釈します。</li>
	<li>多 L リジンの井戸あたり種子 0.5 mL INS 1E 細胞事前 500,000 細胞/ウェルの密度で、24 ウェル プレートをコーティングしました。</li>
	<li>
2 日目:18-24 h のメディアを削除後めっきと新鮮な RPMI 1640 メディアの 500 μ L/ウェルを追加。セル前の passaging ステップから完全に回復するように別の 24 時間のセルを孵化させなさい。この余分な時間は、細胞の培養皿に広がりを許可します。</li>
</ol>2. インスリン分泌の試金 (3 日目)
<ol><li>KRB バッファーを準備: 132.2 mM NaCl、3.6 mM KCl、5 mM NaHCO3、0.5 mM NaH2PO40.5 mM MgCl2、1.5 mM CaCl2、0.001 g/mL ウシ血清アルブミン (BSA)、pH 7.4。</li>
	<li>細胞からメディアを吸引し、予め温めておいた PBS で 2 回洗ってください。</li>
	<li>グルコース飢餓ステップ 37 ˚C/5% CO2で 1 時間血糖なし 450 μ L/ウェル KRB (含まれている BSA) を追加します。</li>
	<li>グルコース飢餓の段階、準備 200 ミリメートルを含む KRB で薬のシリアル希薄グルコース (10 倍濃度)。<ol>
<li>200 mM グルコース (また最終的なアッセイのグルコース濃度 x 10) を添加した KRB の最終濃度 x 10 で薬物を準備します。場合薬株式 (プラス追加の 10 グルコース x) は、DMSO に DMSO 割合の試金 (DMSO 0.1% 未満の理想的に最終的な割合) を通して一貫性が保たを確認します。</li>
		<li>100 に 100 μ M の最終的なアッセイ薬物濃度範囲を使用してドーパミンやクインピの治療のため薬物を含まない用量反応の最後のポイントで (高いもの低い濃度から)、午後。ブロモクリプチン、薬物のない制御をされている用量反応の最後の点と、22 に 10 μ M の最終的な分析濃度範囲を使用します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>グルコース飢餓後線量応答を生成するアッセイに薬物のシリアル希薄を追加します。</li>
	<li>シリアル希薄を各 50 μ L/ウェルを対応する井戸 (合計アッセイ ボリューム 500 μ L) に追加します。</li>
	<li>グルコース刺激ステップ (20 mM グルコース) の存在下でそれぞれ薬シリアル希釈でセルを 37 ˚C/5% CO で 90 分間インキュベートします2. 。コントロール井戸のセットが含まれます: (1) 任意の新たな薬物と (2) どちらも薬物も (分泌の基礎率を提供する) グルコース刺激される細胞の不在で一人で 20 mM グルコース刺激。</li>
	<li>刺激のステップの後 (直接使用またはストア 4 ° C で) 培養上清を慎重に取り外します。 注: (600 × g、1 分) のさらに 5 分穏やかなの遠心分離ステップをこの時点で導入してアッセイ培養上清中に残っているセルを削除することがあります。</li>
</ol>3. HTRF 測定インスリン分泌に
<ol><li>できればクリア 96 ウェル プレートでアッセイ培養上清 1:10 KRB (BSA) なしでを希釈します。</li>
	<li>HTRF インスリン測定 (表 1) インスリン標準曲線を準備します。</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>標準原液 500 ng/ml</td>
			<td>シリアルの希薄</td>
			<td>[インスリン] ng/ml の作業</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 7</td>
			<td>30 μ l 在庫 + 140 μ l KRB</td>
			<td>150</td>
		</tr>
<tr>
<td>スタンダード 6</td>
			<td>30 μ l STD 7 + 45 μ l KRB</td>
			<td>60</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 5</td>
			<td>30 μ l STD 6 + 45 μ l KRB</td>
			<td>24</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 4</td>
			<td>30 μ l STD 5 + 45 μ l KRB</td>
			<td>9.6</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 3</td>
			<td>30 μ l STD 4 + 45 μ l KRB</td>
			<td>3.84</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 2</td>
			<td>30 μ l STD 3 + 45 μ l KRB</td>
			<td>1.54</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 1</td>
			<td>30 μ l STD 2 + 45 μ l KRB</td>
			<td>0.61</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 0</td>
			<td>45 μ l KRB</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="3">注: STD 入荷 500 ng/ml</td>
		</tr>
</tbody></table>表 1。インスリン標準曲線にシリアルの希薄。
<ol start="3"><li>標準曲線のサンプルや希釈アッセイ培養上清を HTRF プレートに追加します。96 ウェルまたは試金ボリュームに再調整することは念頭に置きつつ、384 ウェル プレート形式の HTRF によって分泌されたインスリンの測定が行えます。使用 10 μ L/ウェルの 384 ウェル白い低ボリューム、丸底プレートに 5 μ L/ウェルまたは 96 ウェル ハーフ エリア プレート サンプル (材料の表を参照してください)。</li>
	<li>抗体検出バッファーにミックスを準備 (材料の表を参照) で 1:2 ドナー (cryptate)/アクセプター (XL-665) 比。 注: さらに HTRF 測定についての詳細は、製造元から入手できます。</li>
	<li>(96 ウェル プレート アッセイ フォーマット) の 30 μ L/ウェルまたは 15 μ L/ウェル (384 ウェル プレート アッセイ フォーマット) のために試金する抗体のミックスを追加します。</li>
	<li>プレートを密封し、室温で孵化させなさい。</li>
	<li>2 h、4 h、または一晩インキュベート後プレートをプレート リーダーと適切な HTRF 光モジュールを使用する抗体と読む (337 665 620 nm) (材料表と製造元の指示を参照してください)。60 μ s で統合開始を設定し、ウェルあたり 400 μ s で積分時間使用 200 点滅します。 注: これらのパラメーターは、特定のリーダーの使用に基づいていた。620 で読み出し nm と 665 nm がさまざまな楽器と異なる場合があります。これは 665/620 比を使用をお勧めする理由の一つです。この比の計算、リーダーにリーダーから任意の潜在的な違いは正規化され、HTRF 測定に使われる道具に関係なく、一貫した値を提供します。</li>
</ol>4. データの解析と標準化
<ol><li>レシオ メトリックの外挿によって試金井戸のインスリン濃度を計算する第 2 順序 2 次多項式曲線 (図 2) の蛍光測定 (665 nm/620 nm)。</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57531/57531fig2.jpg"> 図 2: インスリン標準曲線。既知濃度のヒトインスリン株式は、インスリン標準曲線の生成に使用されました。結果として得られる HTRF 比 (665 nm/620 nm) インスリン濃度に対してプロットしました。データが第 2 順序の 2 次多項式曲線にベスト フィット (R2 = 0.99996)。これは、代表的な標準曲線です。誤差 = SEM.<a href="/files/ftp_upload/57531/57531fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<ol start="2"><li>Ng/ml 分泌されるインスリンの推定データ、(リガンド濃度の増加への応答で分泌されるインスリン) を % 最大のインスリン分泌の試金井 (20 mM グルコースだけで条件) の平均値に正規化します。</li>
	<li>内陸変動を計算するのに単一の実験からカーブ フィット (R2) を使用します。実験中、個々 の R2値を近似曲線の平均の標準誤差の計算をできるように実験内の重複に由来します。</li>
	<li>プレート境界のバリエーションを確認するには、集合的な曲線の R2値の平均値の標準誤差を計算するのに少なくとも 3 つの個々 の実験からのデータを使用します。</li>
</ol>

<ol><li>Taniguchi, C. M., Emanuelli, B., Kahn, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Critical+nodes+in+signalling+pathways%3A+Insights+into+insulin+action%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Critical nodes in signalling pathways: Insights into insulin action.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 7 (2), 85-96 (2006).</li>
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</ol>

INS 1E 細胞を気前よく提供、ニコラ ・ ピエール (生物検定 Cisbio) 有益な助言と博士ピエール Maechler (ジュネーブの大学) に感謝します。この作品は、国防総省 (Z.F. にグラント PR141292) とジョン ・ f ・財団 (Z.F.) にピッツバーグのナンシー A. Emmerling 基金からの資金によって支えられました。

ここで説明した HTRF インスリン アッセイ培養細胞系からのインスリン分泌を測定するための迅速で効率的なシステムを提供しています。その最も重要な利点は、この試金は高い信号対雑音比のための低バック グラウンド信号を提供しています。また、HTRF 信号は、長期間安定したことを確認した (> 24 h)7。それにもかかわらず、のでインスリン結合モノクローナル抗体迅速分析への付加の後でバインド飽和に到達、抗体の結合の動力学は周囲温度やインスリンの分泌レベルの変動による影響は。したがって、我々 は (2 h、4 h、一晩) 抗体は完全飽和に達しているし、HTRF 信号は最も堅牢な7を正確に識別するために複数の時点でアッセイ プレートを読みます。私たちも最近示されているインスリン抗体は大幅プロインスリン c-ペプチドと交差反応を行う成熟インスリン7の非常に特定であることを示唆します。
アッセイの最適化の重要なステップは、インスリン分泌の広いダイナミッ...

主要な蛋白同化ホルモン、インスリンによるエネルギー代謝の調節を微調整します。インスリンが合成・増加細胞外グルコース レベルに応じて膵 β 細胞が発表しました。リリースされたインシュリンはインシュリン敏感なティッシュ1,2によりブドウ糖の取り込みをトリガーします。生理学的に、これはグルコースの取り込みを調節するインスリンの分泌が続く、食後後のグルコース濃度の上昇にリンクされます。グルコース恒常性の障害がインスリン抵抗性で最高潮に達する代謝障害につながる、最終的に、2 型糖尿病2,3、4を発症。
インスリン分泌が広く研究されていますがその分子機構、ままかり。調査の重要な分野は、インスリン分泌 β 細胞5,6,7,8で新規変調器の識別されています。これらの研究では、グルコース刺激とインスリン分泌の結合関係の理解を深める必要があります。したがって、正確に監視し、グルコース刺激によるインスリン分泌 (GSIS) のレベルを定量化することが不可欠でした。までに、ただし、メソッド数が限られていたインスリン分泌細胞や膵島を用いた GSIS の定量化できます。インスリンのタグ付きの放射性同位元素と抗体を利用したラジオイムノアッセイ (RIA) であります。このアプローチの主な制限には、取り扱いや放射性物質の処分のための安全性の問題が含まれます。また、このメソッドは労働集約的な複数の長い洗濯とインキュベーションの手順を含みます。酵素結合抗体法 (ELISA) は、インスリン検出のための抗体を利用して別のコストがかかり、労働集約的なアプローチです。抗体の親和性のインスリンの認識効率の変化はこのメソッドの要因を制限しているし、結果の再現性に影響を与えることができます。ELISA も RIA は、高スループット実験のために設計されました。AlphaScreen、均質なアッセイ検出とインスリン分泌のレベルを測定するために使用します。AlphaScreen 技術は、周囲の酸素の化学発光の生成に終って化学発光の種と反応することができます酸素の励起一重項状態への変換に基づいています。試金は同種、RIA、ELISA に関連付けられている洗濯の手順の多くは除去されます。しかし、反応の性質により信号が不安定は、アッセイの読み出しに影響を与える可能性があります制限要因です。(TR 挟撃、Heyduk および同僚の9によって開発された、インスリン分子上の異なるエピトープを 2 つの独立した抗体の結合に基づくインスリン測定に同種別のアプローチ。抗体が短い相補単鎖 DNA オーバーと各二重に化学的にリンクの鎖 DNA です。インスリン抗体の結合は、一緒にそれらをもたらす、二重鎖 DNA 二重につながります。各抗体はそれぞれのドナーやアクセプタ fluorophore に関連付けられても、DNA 密生相のアソシエーションをもたらします一緒にこれらの同時蛍光共鳴エネルギー移動 (FRET) を生成します。TR-挟撃の潜在的な制限の 1 つは、ただし、フレット自体にかかっています。フレット反応中にバック グラウンド蛍光を急速に消費することができないことは、背景の蛍光性の比較的高いレベルと信号対雑音比アッセイ内につながる可能性があります。したがって、高スループット方法で GSIS を定量化するため、堅牢で信頼性の高い、費用対効果分析のため、まだ必要があります。
生物物理学の最近の進歩は、均質な時間分解蛍光エネルギー共鳴の転送 (HTRF) を用いたアッセイの開発に結実しています。具体的には、内のエネルギー移動のアッセイがありますフレット ベースとして記述されていたより正確に、HTRF に依存は、ドナーとアクセプター間エネルギーの非放射伝達発光エネルギー共鳴転送 (LRET)10種11,12,13。蛍光のタイミング重要であるこの区別またはフレットと LRET ゲートの同じ種類を利用できますより多くの LRET、それは異なるフレット インタラクションを焼入れです。また、ユウロピウムなど化合物の希土類元素ランタノイド cryptate の使用または HTRF でテルビウム cryptate が長い蛍光半減12,14を生成します。これはドナー励起と受容体 (すなわち、時間分解法) からの放出の測定間の遅延時間 (μ 秒) の導入のユニークな利点を提供しています。この遅延は、アクセプター発光蛍光の測定前に放散する背景の蛍光性のための十分な時間をことができます。その結果、読み出しが非特異蛍光を解放し、したがって、高い信号対雑音比を達成 (図 1)。さらに、HTRF の同種の性質は、elisa 法や RIA ベースの方法より迅速アッセイを重視、非連結の種を洗浄する洗浄手順の必要性を排除します。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57531/57531fig1.jpg"> 図 1: HTRF インスリン検出のメカニズムの概略図。2 つ独立して生成されたモノクローナル抗体は具体的に認識し、別々 のサイトでインスリン バインドします。これらの抗体はユウロピウム cryptate ドナーまたは XL665 アクセプター共役系します。620 で排出で 337 nm 結果をドナー励起 nm。結果として得られるエネルギー移動の原因で波長が長く、665 を出力する XL665 nm。<a href="/files/ftp_upload/57531/57531fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
ここで、詳細なプロトコルを提供 HTRF ベースのアプローチを使用して、INS 1E 細胞から情報科学研究科のレベルを判断する、インスリノーマ細胞ライン15をラット、確立されたインスリン分泌 β 細胞由来します。さらに、この試金はインスリン分泌の分子の調節物質の薬理学的プロファイルを識別するため使用する場合があります。ドーパミン D2を調べるこの HTRF ベース インスリン アッセイを適用-国際学研究科受容体規制のような。増加研究は、神経伝達物質ドーパミンが GSIS8,16,17,18,19,20,の重要な制御因子であることを明らかにしました。21,22ドーパミンがドーパミン D2アクションを介して負オートクリン/パラクリン的 GSIS を影響-膵細胞のベータ8の表面に表現の受容体 (D2、3D、D4受容体) のように。,16,19. この試金を使用して、我々 は情報科学研究科の負の調節因子としてドーパミンの役割を確認し、ことを示すドーパミン D2-受容体作動薬のブロモクリプチンとクインピまた、GSIS を減らすような。

<table><tbody><tr><td>96ウェルホワイトハーフエリアプレート</td><td>Greiner Bio-One</td><td>82050-042</td><td></td></tr><tr><td>384ウェルホワイト少量丸底プレート</td><td>コーニング</td><td>15100157</td><td></td></tr><tr><td>インスリンハイレンジキット</td><td>Cisbio Bioassays</td><td>62IN1PEH&nbsp;</td><td>10,000テストHTRFベースのインスリンアッセイキット</td></tr><tr><td>PHERAstar FSXプレートリーダー</td><td>BMG Labtech</td><td>FSX</td><td>HTRFベースのアッセイ読み取りに適合したプレートリーダー</td></tr><tr><td>プレートシーラー</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>DY992</td><td>抗体がインキュベートしている間にプレートをシールする</td></tr><tr><td>血球計算盤</td><td>ハウサーサイエンティフィック</td><td>3100</td><td></td></tr><tr><td>RPMI ミディアム 1640 (1x)</td><td>Gibco&nbsp;</td><td>11875-093</td><td>[+] L-グルタミン</td></tr><tr><td>トリプシン0.05%&nbsp;</td><td>Corning</td><td>25-052-CI</td><td>0.53 mM EDTA、(-) 重炭酸ナトリウム</td></tr><tr><td>DPBS (ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水)</td><td>Corning</td><td>21-031-CV</td><td>カルシウムとマグネシウムを含まない</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>Corning</td><td>35-010-CV</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Gibco&nbsp;</td><td>156-30-080</td><td></td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム</td><td>Gibco&nbsp;</td><td></td><td></td>11360070</tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン溶液 100x</td><td>Corning</td><td>30-002 CT</td><td></td></tr><tr><td>2-メルカプトエタノール</td><td>Sigma</td><td>M1348</td><td></td></tr><tr><td>トリパン ブルーステイン (0.4%)</td><td>Gibco&nbsp;</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>ドーパミン塩酸塩</td><td>Σ</td><td>8502</td><td></td></tr><tr><td>ブロモクリプチン メシル酸塩</td><td>Tocris</td><td>427</td><td></td></tr><tr><td>(-)-Quinpirole 塩酸塩</td><td>Tocris</td><td>1061</td><td></td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン</td><td>Calbiochem</td><td>12659</td><td></td></tr><tr><td>ポリ-L-リジン</td><td>Σ</td><td>P4832</td><td></td></tr><tr><td>グルコース Σ</td><td></td><td>G7021</td><td></td></tr><tr><td>DMSO(ジメチルスルホキシド)</td><td>シグマ</td><td>276855</td><td></td></tr></tbody></table>

均質な時間分解蛍光共鳴エネルギー転送を用いた測定インスリン分泌の検出

Homogeneous Time-resolved F&#246;rster Resonance Energy Transfer-based Assay for Detection of Insulin Secretion

インスリン分泌の検出だけでなく代謝の研究のように規制の分泌機構の解明にとって重要です。多数のインスリン アッセイは、何十年も存在している、けれども均一時間分解蛍光共鳴エネルギー伝達 (HTRF) 技術の最近の出現が大幅これらの測定に簡略化します。これは、急速なコスト効果の高い、再現、および堅牢な光学測定時間分解蛍光共鳴エネルギー移動を容易にする長期的な排出量と明るい蛍光物質を抗体に依存です。また、HTRF インスリン検出は高スループット スクリーニングの試金の開発の影響を受けやすいです。ここ HTRF を使用して INS 1E 細胞、ラット インスリノーマ細胞ラインでインスリン分泌を検出します。これはインスリンとグルコース刺激による変化の基底のレベルを推定することができます。さらに、このインスリン検出システムを [グルコース刺激によるインスリン分泌 (GSIS) の負の調節因子としてのドーパミンの役割を確認します。同様に、他のドーパミン D2-受容体アゴニスト、クインピ、ブロモクリプチン、濃度依存的に GSIS を減らすような。我々 の結果は、GSIS、その薬理学的プロファイルで多数の薬の役割を決定する際に HTRF インスリン測定形式の有用性を強調表示します。

定義済みの濃度 (図 2) の浄化されたヒトインスリン標準を使用してインスリン標準曲線を生成することによって、インスリン HTRF 測定を検証しました。レシオ メトリック蛍光測定値を推定することができること標準的な曲線の世代薬物治療 (図 2) への応答で分泌されたインスリン レベルを決定します。カーブ フィットの内陸のバリエーションが少なかった (R2 = 0.99996 ± 5.0 x 10-5) されたプレート境界の変化 (R2 0.947 ± 5.5 x 10 =-5; n = 3 プレート)。
我々 は次に、INS 1E 細胞からのインスリン分泌の基底のレベルを決定しました。24 ウェル プレート形式の...

ここでは、提案する均質な時分割フレット (HTRF) 細胞から分泌されるインスリンの急速な検出のための効率的な方法として。

The detection of insulin secretion is critical for elucidating mechanisms of regulated secretion as well as in studies of metabolism. Though numerous ...

この手順の全体的な目標は、インスリン分泌細胞から分泌されるインスリンのレベルを誘導し、正確に定量化することです。この方法は、膵臓ベータ細胞におけるグルコース刺激インスリン分泌の主なメカニズムなど、糖尿病分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、グルコース刺激に応答したインスリン分泌を正確かつ迅速に定量化し、分泌に対する潜在的な薬物効果を検出できることです。この技術の意味は、薬物誘発性代謝機能障害のメカニズムをよりよく理解することを可能にするため、2型糖尿病の治療と創薬にまで及びます。この方法は、不死化ベータ細胞株からのインスリン分泌に関する洞察を得ることができますが、無傷の膵島などの他のシステムにも適用できます。一般的に、この方法に不慣れな人は、複数の細胞処理ステップと薬物調製のために苦労します。この方法のアイデアを最初に思いついたのは、インスリン分泌に対するドーパミン作動薬の作用を調査するための迅速なアッセイを考え出したいと思ったときでした。細胞の繊細な性質と、実験間のアッセイの一貫性を確保するための精度の重要性のために、細胞の取り扱いステップを学ぶのが難しいため、この方法の視覚的なデモンストレーションは非常に重要です。まず、テキストプロトコルで概説されているように、INS-1E細胞を増殖させます。細胞が目的のコンフルエントに達したら、培地を吸引します。細胞を5ミリリットルのリン酸緩衝生理食塩水で洗浄します。次に、0.5ミリリットルの025%トリプシンを細胞に加え、細胞をインキュベーターに3〜4分間摂氏37度で放置します。トリプシンを不活性化するには、9ミリリットルの完全培地を追加します。次に、細胞を15ミリリットルの遠心チューブに移します。次に、細胞を遠心分離してペレットを形成します。遠心分離後、ペレットを5ミリリットルの新鮮な培地に溶解します。再懸濁した細胞を10マイクロリットルをチューブからピペットで取り出し、10マイクロリットルのトリパンブルーバイタル色素と混合して生存率を評価します。次に、血球計算盤を使用して、生きている細胞と死んだ細胞の数を数え、細胞の90%が生きていることを確認します。カウント後、新鮮なRPMI 1640培地にミリリットルあたり100万個の細胞を加え、次にポリ-L-リジンコーティングされた24ウェルプレートの各ウェルに500,000個のINS-1E細胞の0.5ミリリットルを播種します。プレートをインキュベーターに丸1日置いておきます。翌日、培地を取り出し、各ウェルに500マイクロリットルの新鮮なRPMI 1640培地を追加します。プレートをさらに24時間インキュベートして、細胞がウェル表面に広がるようにします。アッセイを行うには、まずKRBバッファーを調製し、次に各ウェルから培地を吸引し、予め加温したリン酸緩衝生理食塩水で2回洗浄します。次に、各ウェルにウシ血清アルブミンを添加し、グルコースは添加しない450マイクロリットルのKRBバッファーを追加します。培養プレートを摂氏37度、二酸化炭素5%に1時間放置します。KRB緩衝液中で薬物の段階希釈液を調製し、最終濃度200ミリモルグルコースの10倍を添加します。グルコース飢餓ステップの後、対応する各ウェルで50マイクロリットルの段階希釈薬物をピペットで掴みます。グルコース刺激のために、20ミリモルグルコースの存在下でそれぞれの段階希釈薬物を追加します。.次に、細胞を摂氏37度で90分間インキュベートします。刺激が終わったら、上清を回収し、標識された1.5ミリリットルの遠心分離管に移します。採取した各上清10マイクロリットルを96ウェルプレートに移します。各ウェルに90マイクロリットルのKRBを添加して、1対10の希釈比を達成します。希釈液を混合して均質性を確保します。次に、HTRFインスリンアッセイのインスリン標準曲線を取得します。次に、標準的なインスリンサンプルと希釈したアッセイ上清をそれぞれ10マイクロリットルを96ウェルプレートに加えます。抗体ミックスを1〜2ドナーで調製し、検出バッファー中の比率を受け入れます。抗体ミックスを調製した後、96ウェルプレートの各ウェルに30マイクロリットルを加えます。プレートを密封し、室温でインキュベートします。インキュベーション後、抗体ミックスを入れたプレートをプレートリーダーで読み取ります。読み取りには665ナノメートルと620ナノメートルの適切なHTRF光学モジュールを使用し、各ウェルに200回のフラッシュを使用します。まず、インスリンの検量線をプロットして、アッセイサンプルからインスリンの実際の値を推定します。標準曲線は、得られたレシオメトリック蛍光測定値が、事前定義された標準ヒトインスリン濃度の関数として有意に増加することを示しています。次に、INS-1E細胞からのインスリン分泌の基礎レベルを、20ミリモルグルコースの存在下または非存在下で研究します。プロットから、グルコースの存在下で細胞がインスリン1ミリリットルあたり約100ナノグラムを分泌することを示しています。興味深いことに、インスリンレベルは、グルコースがない場合、ミリリットルあたり約15ナノグラムでほぼ半分です。次に、細胞を、20ミリモルグルコースを含むドーパミン濃度の増加した存在下でインキュベートします。分泌されるインスリンは、各ウェルからの最大インスリンの割合の平均値に正規化されます。プロットは、ドーパミンがGSISを阻害することを示しており、それによってGSISにおけるドーパミン作動性受容体の機能的重要性を示しています。このプロットは、2型糖尿病治療薬であるブロモクリプチンが、ドーパミンよりもGSISの誘導に強力であることを示しています。このプロットは、キンピロールの濃度が増加すると、D2アゴニストはブロモクリプチンよりも効率は劣りますが、GSISの刺激においてドーパミンと同様の効力を示すことを示しています。一度習得すると、このテクニックは適切に実行されれば4〜5時間で完了します。この手順を試すときは、慎重かつ一貫してピペットを振ることを忘れないでください。この手順に続いて、サイクリックAMP HDRFアッセイなどの他の機能アッセイを実行して、ダウンストリームシグナル伝達に対するドーパミン作動性薬物の影響などの追加の質問に答えることができます。その開発後、この技術は、代謝の分野の研究者が不死化細胞株と膵島の両方で他の内分泌分泌経路を探索する道を開きました。このビデオを見れば、HDRFを使用して細胞からのインスリン分泌を正確に測定する方法を十分に理解できるはずです。

homogeneous-time-resolved-frster-resonance-energy-transfer-based

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

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均質な時間分解蛍光共鳴エネルギー転送を用いた測定インスリン分泌の検出

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