Name: 電気化学検出の重水素速度論的同位体効果シェワネラ oneidensis氏 1 の細胞外電子輸送 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-16T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min
Description: 学ぶ重水素速度論的同位体効果を用いたShewanella oneidensis MR-1の細胞外電子輸送におけるプロトン輸送の寄与評価法。生細菌を用いた電気化学実験で、膜タンパク質介在の電子伝達メカニズムを解明します。

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この作品の財政上支えられる補助金・特別推進研究の科学振興費助成番号 24000010、17 H 04969、日本社会からの JP17J02602、米国オフィスの海軍研究のグローバル (N62909-17-1-2038)。保は、日本学術振興会特別研究員、プログラムを通じて日本学術振興会での主要な大学院の学校 (メリット) をサポートします。

1. s. oneidensis氏-1 ITO 電極 (図 1) 上の単分子膜バイオ フィルムの形成
注: 他の微生物の電気化学リアクターの汚染を防ぐためには、すべてのメディア、実装、および電気化学リアクターのコンポーネント殺菌を行う事前に。ときにすべてのプロシージャをクリーン ベンチで行うべきs. oneidensis氏 1 セルを使用し、電気化学リアクターを構築します。
<ol><li>S. oneidensis氏 1 細胞の培養 注: s. oneidensis氏 1 の単分子膜バイオ フィルムが形成された ITO 電極条件を以下報告以前4。<ol>
<li>S. oneidensis氏 1 細胞を成長するには、 s. oneidensis氏-1 ルリア ベルターニカミラ (LB) (20 g/L) を有し、15 mL の LB 培地 (20 g/L) 160 rpm で振とうしながら好気性条件で 24 h の 30 ° c になる寒天 (15 g/L) 寒天プレート上に成長のコロニーを追加します。</li>
		<li>6,000 × g , 10 分間の細胞懸濁液を遠心し、15 mL の培地 (pH 7.8) で得られた細胞ペレットを再懸濁します (DM: NaHCO3 【 2.5 g/L CaCl2·2H2O [0.08 g/L]、NH4Cl 【 1.0 g/L MgCl2·6 H2O 【 0.2 g/L 塩化ナトリウム 10 g/L と 2-[4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazinyl] [HEPES; 7.2 g/L] ethanesulfonic 酸) 10 mM 乳酸と 0.5 g/L 酵母エキス、炭素源として補われた、 s. oneidensis氏 - 1 微量元素、それぞれ。</li>
		<li>さらに 160 rpm で振とうしながら 12 h 30 ° C で好気性細胞懸濁液を育成、遠心力場再び 6,000 × g 10 分洗浄で DM 媒体で 2 回結果細胞ペレットの電気化学的前に 6,000 × g で 10 分間遠心分離によって実験。</li>
	</ol>
</li>
	<li>3 電極電気化学リアクター (図 1) の建設<ol>
<li>原子炉の下部に作用電極として ITO 基板を置きます。</li>
		<li>その後、ガラス シリンダー (直径 2 cm)、ポリテトラフルオロ エチレン (PTFE) カバーを挿入します。銀/塩化銀 (飽和 KCl) と白金線に挿入原子炉参照とカウンター電極としてそれぞれ。 注: 空気およびソリューションの漏れを防ぐためには、各コンポーネント間にブチルゴム シートを挿入します。</li>
		<li>10 mM 乳酸を添加した DM の 4.0 mL と 0.5 g/L 酵母エキス電気化学リアクターに追加します。</li>
		<li>電気化学リアクターからの漏れがないことを確認した後、窒素ガスを電気化学リアクター電気化学リアクター内の嫌気的条件を維持するために 20 分以上に流れ込みます。 注: 他の微生物による汚染を防ぐためには、ガスがフィルターされ、電気化学リアクターに流れる前に、。</li>
		<li>電気化学リアクターを電気化学測定装置に接続し、0.4 V を適用 (標準的な水素の電極対彼女) ITO 電極に外部の水循環システムを使用して 30 の ° C で電気化学リアクターの温度を維持します。 注: 外部電界の影響を防ぐためには、電気化学リアクターはファラデーケージの中に配置する必要があります。</li>
	</ol>
</li>
	<li>(図 1および図 2) s. oneidensis氏 1 セルの電気化学的栽培<ol>
<li>手順 1.1 600 1.43 の光学密度で得られた懸濁液の細胞密度を調整 10 mM 乳酸と 0.5 g/L 酵母によって補われる DM の nm (外径600) を抽出します。 注: 正しい外径600を得るためには、OD600 ≦ 0.8 細胞懸濁液を調整 1.43 に OD600前に紫外可視分光光度計に適用します。</li>
		<li>注射器を使って注入ポートを介して電気化学リアクターに細胞懸濁液 0.3 mL を追加: 原子炉で OD600は 0.1 に変更します。 注: 外径600 0.3 mL 細胞懸濁液の添加外径600ソリューション 4.3 ml 4.0 mL 中結果を含む電気化学リアクターに 1.43 を = = 0.1。別のボリュームとその他の原子炉を使用している場合、細胞密度の計算が必要です。</li>
		<li>25 h ITO 電極に (彼女) と 0.4 V で潜在的なアプリケーションを続行します。 注: ITO 電極上の単分子膜バイオ フィルムの形成、作り出された電流を示す偏差が図 2の 50% 未満の場合ことを確認します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 10 mM 乳酸 (図 3) と新鮮な DM 媒体と上澄みの交換
<ol><li>潜在的なアプリケーションを停止し、電気化学リアクターをポテンショスタットと水循環システムから外します。</li>
	<li>10 ミリメートルと新鮮な DM 媒体と上澄みの交換乳酸します。<ol>
<li>10 mM 乳酸 20 分以上で DM を含む媒体から酸素を取り除くボトルに窒素ガスを流れ。</li>
		<li>ゆっくりと流れる下、注射器を使用して電気化学反応器内培養上清を削除 (図 3 a, b) の窒素ガス。 注: 窒素ガスによる ITO 電極上のバイオ フィルムを破損しないよう、ガスは液体表面上フローする必要があります。</li>
		<li>注射器 (図 3 c) を使用して 10 mM 乳酸を含む新鮮な DM の 4.0 mL を追加します。 注: ITO 電極上のバイオ フィルムを破損しないよう、電気化学リアクターの壁に沿って媒体をゆっくりと挿入します。濡れているバイオ フィルムを保つためには、上清を除去した後すぐに媒体を追加する必要があります。上清を除去した後の中の最大 1 分の注入は、 s. oneidensis氏 1 のバイオから現在の生産には影響しません。</li>
		<li>電気化学リアクターの壁に付着した上清のすべてを削除する電気化学リアクターを傾けます。</li>
		<li>合計で 3 回の手順 2.2.2-2.2.4 を繰り返します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>ガスの流れを停止し、電気化学リアクターを 303 K で ITO 電極に 0.4 V (彼女) の対を適用するもう一度、ポテンシオスタットに接続</li>
</ol>3. EET プロセス (図 4) に KIE を測定する重水素水の添加
<ol><li>S. oneidensis氏 1 の単分子膜バイオ フィルムから現在の生産は安定している、急速に増加しませんを確認します。電流が急激に増加、現在安定して ± 5% 増加 10 分以上までを待ちます。 注:4を既に報告されている、他の微生物の系統の混入しない ITO 電極上の単分子膜バイオ フィルムの形成が rdna 塩基配列と ITO 電極上のバイオ フィルムの走査型電子顕微鏡像で確認をしました。EET プロセスによる速度制限の確認、往復の電子メディエーター 100 μ M アントラキノン-1-スルホン酸 (α-AQS) などの追加の効果を監視します。代表結果のセクションを参照してください、詳細については、15を参照します。</li>
	<li>濃度は 0.5% (v/v) D2O 原子炉のような注射器を使用して電気化学リアクターに無酸素 50% (v/v) D2O の 40 μ L を追加します。 注: D2O 添加によるバイオ フィルムへの損傷を防ぐため、注入 D2O drop-wise。</li>
	<li>安定し、現在待って、その後 D2O 4.0% (v/v) を追加します。 注: KIE 値 (D2O と H2O の存在下で現在の生産に対する比率) を得るためには、同じ現在の生産における H2O 添加量の効果を確認します。</li>
</ol>

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</ol>

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我々 の全細胞の電気化学的分析タンパク質電気化学と比較していくつかの技術的な利点があります。蛋白質の浄化には、多段階の時間のかかる手続きが必要ですが、本全体セル手法で自己組織化バイオ フィルム形成細胞培養後 1 日は。OM cの安定した相互作用を達成するために - 假と電極、必要がありますのみ殺菌と電極表面のクリーニングOM cを定位しながら、電極上にアタッチ蛋白質4、例えば、 S の oneidensis氏-1 の向きを本質的に整理のため電極の修飾は必要ありません - 同じ方向25假,26,27します対照的に、タンパク質の電気化学反応は敏感に蛋白質の酸化還元サイトと、電極間の距離によって影響を受ける。したがって、浄化された蛋白質は慎重に指向28,<sup clas...

S. oneidensis氏 1、 Geobacter sulfurreducens 、PCA など、金属還元微生物菌株が発見されて以来そのままの細菌の細胞の酸化還元タンパク質を直接特徴付けるため電気化学的手法が近年します。外膜 c 型チトクロム複合体 (OM c 假) セル外観1,2,3,4、5の露出があります。OM c- 假は、呼吸鎖から細胞外に位置する固体基板上への電子輸送を仲介します。このトランスポートは、細胞外の電子輸送 (EET)1,6と呼ばれ、新興のバイオ テクノロジー、微生物燃料電池6などの重要なプロセスです。したがって、基になる EET の速度論と機構、および微生物生理学へのリンクを理解する OM c -假を用いて調べた細胞電気化学4、7顕微鏡と組み合わせて8,9、分光10、11、および分子生物学2,4。対照的に、EET 関連する陽イオン輸送など陽子 EET 細胞内動態の影響を調査する方法確立されているやっとのこと重要な役割を持つ細菌の膜を渡るプロトン輸送にもかかわらずシグナリング、恒常性とエネルギー生産12,13,14。本研究で、細胞電気化学測定法を使用しての率制限ステップの id を必要とするs. oneidensis氏 1 セルの EET 動力学に関するプロトン輸送の影響を調査する手法について述べる微生物現在生産15。
関連付けられた EET のプロトン輸送の貢献を評価する直接方法の 1 つは重水素同位体効果 (キエです)。KIE 電子転送速度16プロトン輸送の影響を表す重水素イオン、プロトンの交換時に電子伝達速度の変化として観察可能であります。KIE 自体の理論定着させてきた電気化学測定法を用いた精製酵素17。しかし、以来、 s. oneidensis氏-1 の現在の生産の結果、複数の多様なと変動プロセス18から、レート制限プロセスとして EET を識別できない単に 1 つ。EET と相まってプロトン輸送過程の KIE を観察する我々 は OM cを介して電子輸送によって微生物の現在の生産が制限されることを確認する必要があります - 電極に假。この目的のため最適 pH と KIE 測定前に温度条件を電子供与体として乳酸の高濃度を含む新鮮な培地と培養上清中のソリューションを置き換えこの交換は、2 つの役割を提供しています: (1) これに EET と比較して上流の代謝プロセスのレートを強化、(2) 作業電極 ( s. oneidensis氏 1 の単分子膜バイオ フィルムから発売清スイミング セルの省略インジウム スズ添加酸化物 (ITO) 電極)。提示の詳しいプロトコルを新しい実務を維持し、EET プロセスが、律速段階であることを確認します。

<table><tbody><tr><td>ガラスシリンダー</td><td>N/A</td><td>N/</td><td>A カスタムメイド、電気化学反応器</td></tr><tr><td>PTFEカバーとベース</td>として使用 <td>N/A</td><td>N/A</td><td>カスタムメイド、電気化学反応器のカバーと基礎として使用</td></tr><tr><td>ブチルゴム</td><td>N/A</td><td>N/</td><td>A カスタムメイド、電気化学反応器の各コンポーネントの間に挿入</td></tr><tr><td>セプタ</td>ム<td>GL科学</td><td>3007-16101</td><td>電気化学反応器の注入口として使用</td></tr><tr><td>インジウムスズドープ酸化物(ITO)電極</td><td>ジオマテック</td><td>No.0001</td><td>作用電極として使用、5&Omega;/sq</td></tr><tr><td>Ag/AgCl KCl飽和電極</td><td>北斗電工</td><td>HX-R5</td><td>参照電極として使用、 &Phi;0.30mm</td></tr><tr><td>プラチナ線</td><td>Nilaco Cooporation</td><td>PT-351325</td><td>対極として使用</td></tr><tr><td>Luria-Bertani (LB) Broth, Miller</td><td>Becton, Dichkinson and Company</td><td>244620</td><td>S. oneidensis MR-1</td></tr><tr><td>Bacto Agar</td><td>Becton, Dichkinson and Company</td><td>214010</td><td></td></tr><tr><td>アントラキノン-1-スルホン酸 (&alpha;-AQS)</td><td>TCI</td><td>A1428</td><td></td></tr><tr><td>フラビンモノヌクレオチド (FMN)</td><td>和光</td><td>184-00831</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>和光</td><td>191-01305</td><td>特定媒体に使用 (DM)</td></tr><tr><td>CaCl2 & middot; 2H2O</td><td>和光</td><td>031-00435</td><td>DMに使用</td></tr><tr><td>NH4Cl</td><td>和光</td><td>011-03015</td><td>DM</td></tr><tr><td>に使用MgCl<サブ>2</サブ> &ミッドドット;6H2O</td><td>和光</td><td>135-00165</td><td>DM</td></tr><tr><td>NaCl</td>に使用 <td>和光</td><td>191-01665</td><td>DM</td></tr><tr><td>2-[4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジニル]エタンスルホン酸(HEPES)</td>に使用同<td>人堂</td><td>346-08235</td><td>DM</td></tr><tr><td>乳酸ナトリウム溶液</td>に使用 <td>和光</td><td>195-02305</td><td></td></tr><tr><td>バクト酵母エキス</td><td>ベクトン・ディッキンソン・アンド・カンパニー</td><td>212750</td><td></td></tr><tr><td>酸化重水素(D、99.9%)</td><td>ケンブリッジアイソトープラボラトリーズ社</td><td>DLM-4-PK</td><td>速度論的同位体効果実験用添加剤</td></tr><tr><td>インキュベーター</td><td>東京リカキカイ</td><td>LTI-601SD</td><td>予備栽培</td></tr><tr><td>用シェーカー</td><td>タイテック</td><td>NR-3</td><td>予備栽培</td></tr><tr><td>用オートクレーブマシン</td>用 タ<td>カラトミー精工(株)</td><td>LSX-500</td><td>電気化学反応器と培地の滅菌に使用</td></tr><tr><td>クリーンベンチ</td><td>SANYO</td><td>MCV-91BNF</td><td>電気化学反応器と培地が他の微生物で汚染されるのを防ぐために使用されます</td></tr><tr><td>遠心分離機セパレーター</td><td>エッペンドルフ</td><td>5430R</td><td>回転速度 最大6000回;gは窒素</td></tr><tr><td>ガス発生装置</td><td>プエク(株)が必要です。</td><td>PNTN-2</td><td>窒素ガスボンベ ガス発生器の代わりにも使用可能</td></tr><tr><td>紫外可視分光器</td><td>島津</td><td>製作所 UV-1800</td><td>細胞密度の最適化に使用</td></tr><tr><td>ポテンショスタット</td><td>バイオロジック</td><td>VMP3</td><td>バイオフィルム形成や動力学同位体効果実験に使用</td></tr><tr><td>サーマルウォーターサーキュレーター</td><td>AS ONE</td><td>TR-1A</td><td>電気化学反応器の温度維持に使用</td></tr><tr><td>ファラデーケージ</td><td>北斗電工</td><td>HS-201S</td><td>電気化学実験用</td></tr></tbody></table>

電気化学検出の重水素速度論的同位体効果シェワネラ oneidensis氏 1 の細胞外電子輸送

Electrochemical Detection of Deuterium Kinetic Isotope Effect on Extracellular Electron Transport in Shewanella oneidensis MR-1

直接cの電気化学的検出-細菌の外膜に埋め込まれているシトクロム複合体を入力 (外膜c-シトクロム複合体; を入力OM c- 假) が最近セル外部へ呼吸の鎖からの細菌の電子輸送を特徴付ける新規細胞分析法として登場、細胞外の電子輸送 (EET) と呼ばれます。経路と EET 反応の間に電子流の動態を調べた、一方 EET に関連付けられている陽イオン輸送の影響を調べる全細胞の電気化学的手法はまだ確立されていません。本研究では、重水素同位体効果 (キエ) EET の OM cを調べる生化学的手法の例 - 假モデル微生物、シェワネラ oneidensis氏-1, を使用して、説明します。OM cを介して EET - 假微生物の現在の生産の率制限ステップとして機能する場合、EET プロセスに KIE を取得できます。そのため、D2O は、加算の前に上澄みが上流の代謝反応の速度をサポートし、ユニフォームから浮遊性のセルを削除する電子供与体の十分な量が含まれている新鮮なメディアに置き換えられました作用電極上の単分子膜バイオ フィルム。レート制限を確認する方法は、微生物の現在の生産のステップ - 假 OM cを介して EET として述べる。プロトン輸送の動力学を調査するため細胞の電気化学的アッセイの我々 の手法は、他の電気活性微生物系統に適用できます。

(彼女) と 0.4 V で潜在的なアプリケーションの 25 時間後単分子膜バイオ フィルムは ITO ガラス、走査型電子顕微鏡や共焦点顕微鏡4で確認された以前の作用電極に形成されました。単分子膜バイオ フィルムの形成の間にs. oneidensis氏 1 から現在の生産の代表的な時間コースを図 2に示します。現在の生産は現在の間隔で変更される単分子膜バイオ フィルムが均一に形成される場合など偏差図 2の値から 50% 以上を示しません。
(彼女と 0.4 V 代謝過程の速度を最大化し、単分子膜バイオ フィルム (図 3) を洗って 10 mM 乳酸と新鮮な DM と上澄みの交換後安定した陽極電流 (約 10 ...

ここで全細胞外膜シトクロムシェワネラ oneidensis氏-1 複合体を介して細胞外の電子輸送の速度へのプロトン輸送の貢献を研究する電気化学実験のプロトコルを提案する.

Direct electrochemical detection of c-type cytochrome complexes embedded in the bacterial outer membrane (outer membrane c-type cytochrome complexes; OM ...

このプロトコルの全体的な目標は、重水素速度論的同位体効果の検出により、細菌の細胞外電子輸送速度に対するプロトン輸送の寄与を観察することです。私たちの方法は、プロトン輸送が外膜c型シトクロムを介して細菌から電極への細胞外電子輸送またはEETの速度論に及ぼす影響を明らかにします。私たちのアッセイは、精製された酵素ではなく生きた細菌を使用したため、EETのネイティブプロトン管理を反映しています。しかし、私たちの課題は、他の細胞プロセスからのノイズを取り除くことでした。KIEと呼ばれる重水素速度論的同位体効果は、関連する電子輸送プロセスに対するプロトン輸送の寄与を調べるための最良の手法の1つです。Shewanella MR-1細胞を増殖させるには、寒天プレート上で増殖させた細胞の1コロニーを15ミリリットルのLB培地に移します。細胞を摂氏30度で24時間、好気性条件で160rpmで振とうしながら増殖させます。細胞懸濁液を重力の6, 000倍で10分間遠心分離します。次に、得られた細胞ペレットを15ミリリットルの指定培地に再懸濁し、炭素源として10ミリモルの乳酸を補充し、細胞の微量元素として1リットルあたり0.5グラムの酵母抽出物を補充します。さらに細胞懸濁液を摂氏30度で好気的に培養し、160rpmで振とうしながら12時間、6,000倍の重力で10分間再び遠心分離します。得られた細胞ペレットをDM培地で2回、遠心分離により10分間、重力6, 000倍で電気化学実験の前に洗浄します。3電極電気化学反応器を構築するには、反応器の底部に作用電極としてITO基板を置きます。続いて、ガラスシリンダーとポリテトラフルオロエチレンカバーを挿入し、対電極として白金線を挿入します。次に、参照電極として塩化銀電極を反応器に挿入します。次に、10ミリモルの乳酸と1リットルあたり0.5グラムの酵母抽出物を添加した4ミリリットルのDMを電気化学反応器に加えます。電気化学反応器からの漏れがないことを確認した後、窒素ガスを電気化学反応器に20分以上流し込み、電気化学反応器内の気密状態を維持します。電気化学反応器をポテンショスタットに接続し、ITO電極に正0.4ボルトを印加し、外部水循環システムを使用して電気化学反応器の温度を摂氏30度に保ちます。電気化学培養を行うには、まず、懸濁液の細胞密度を600ナノメートルで光学密度1.43に調整し、DMに10ミリモルの乳酸と1リットルあたり0.5グラムの酵母抽出物を添加します。シリンジを使用して、0.3ミリリットルの細胞懸濁液を注入ポートを通じて電気化学反応器に加えます。リアクタの OD 600 が 0.1 に変わります。正の0.4ボルトでITO電極に電位印加を25時間続けます。電位アプリケーションを停止し、電気化学反応器をポテンショスタットと水循環システムから切断します。10ミリモル乳酸を含むDMの入ったボトルに窒素ガスを20分かけて流し、培地から酸素を除去します。次に、非常にゆっくりと穏やかに、流れる窒素ガスの下で注射器を使用して、電気化学反応器内からすべての上清を取り除きます。次に、注射器を使用して、10ミリモルの乳酸を含む4ミリリットルの新鮮なDMを追加します。電気化学反応器を傾けて、反応器の壁にあるすべての上清を取り除きます。これらの手順を合計 3 回繰り返します。ガスの流れを止め、電気化学反応器をポテンショスタットに再度接続し、303ケルビンでITO電極に正の0.4ボルトを印加します。Shewanella MR-1の単層バイオフィルムからの現在の生産量が安定しており、急激に増加しないことを確認します。電流が急激に増加する場合は、電流が10分間で5%増加して安定するまで待ちます。非常にゆっくりと穏やかに、40マイクロリットルの無酸素性50容量パーセントD2Oをシリンジを使用して電気化学反応器に追加し、濃度が反応器内の0.5容量パーセントD2Oになるようにします。D20添加によるバイオフィルムの損傷を防ぐために、D2Oを滴下して注入します。電流が安定するのを待ち、続いてD2Oを最大4.4体積パーセントまで加算して、現在の生成とD2OとH2Oの存在の比率であるKIE値を求めます。同じ量のH2O添加が現在の生産に及ぼす影響を確認します。ここで、実線はD2O添加によって誘発される微生物電流変化の代表的な結果です。D2Oを添加すると、10秒以内に微生物電流が急激に減少したのに対し、H20は点線で示すように電流減少がほとんどありませんでした。D2Oによる電流減少が外膜シトクロムを介した電子輸送によるものであることを確認するために、拡散型電子メディエーターを用いた。ここでは、100マイクロモルのα-AQSの追加により、現在の生産量が5倍以上増加し、現在の生産量はD2Oの追加の影響を受けませんでした。これらの結果は、代謝反応の速度論が十分に速く、細胞外電子移動プロセスが速度制限的であることを示しています。これを評価する別の方法は、フラビン分子を電気化学反応器に添加することです。フラビン添加による即時の陽極電流の増加は、外膜シトクロムを介した電子輸送プロセスによる速度制限を示しています。このビデオを見れば、細胞外電子輸送プロセスに対する運動学的同位体効果を調べる方法について十分に理解できるはずです。速度論的同位体効果をうまく得るための最も重要なポイントは、外膜シトクロムを通る電子輸送が電流生成速度を制限する条件を明らかにし、確認することです。この動画では、この状態を確認するために、フラビンの添加による電流変化の観察と、α-AQSなどの拡散性の追加メディエーターの添加による電流変化の観察方法の2つを紹介しました。レート制限が確認されると、このシステムは重水素実験だけでなく、外膜シトクロムの生化学的特性評価にも使用できます。さらに、このプロトコルは、細胞外電子輸送プロセスが律速制限的である限り、他の電気活性微生物の検査にも適用できる可能性があります。私たちの方法論は、in vivoで外膜シトクロムを介した細胞外電子輸送プロセスを調査するための基本的かつ一般的な手法を提供します。

electrochemical-detection-deuterium-kinetic-isotope-effect-on

Research

JoVE Journal

Biochemistry

生物化学

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学ぶ重水素速度論的同位体効果を用いたShewanella oneidensis MR-1の細胞外電子輸送におけるプロトン輸送の寄与評価法。生細菌を用いた電気化学実験で、膜タンパク質介在の電子伝達メカニズムを解明します。

電気化学検出の重水素速度論的同位体効果シェワネラ oneidensis氏 1 の細胞外電子輸送

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