2018年8月8日
ここで自動光学カメラ顕微鏡を用いた細胞移行、生体外でテストする手順をについて説明します。スクラッチのアッセイは、傷の閉鎖が一定期間続いている広く使用されています。光学顕微鏡は細胞遊走の信頼性の高い、格安の検出を可能にします。
この手法の主な利点は、自動光学顕微鏡で細胞をリアルタイムで見ることができることです。この治療の意味は、移動がこれらの疾患で重要な役割を果たす慢性創傷または癌の治療にまで及びます。まず、HaCaT細胞のコンフルエント培養物を、洗浄ごとに5ミリリットルの滅菌マグネシウムおよびカルシウムを含まないPBSで2回洗浄します。
次に、細胞を1ミリリットルのトリプシンとともに摂氏37度のインキュベーターで5〜8分間インキュベートします。光学顕微鏡で剥離を確認した後、FBSを添加した9ミリリットルの培地で酵素反応を停止します。そして、細胞を培地とFBS濃度の250マイクロリットルあたり4番目の細胞の7.5倍に希釈します。
次に、丸底の48ウェル組織培養プレートの各ウェルに250マイクロリットルの細胞を播種し、プレートを左右にゆっくりとスライドさせて、細胞がウェル底全体に均等に分布するようにします。次に、プレートを細胞培養インキュベーターに移します。培養物が90〜95%のコンフルエントに達したら、各ウェルの上清を、1ミリリットルあたり10マイクログラムのマイトマイシンCを補充した250マイクロリットルの新たに調製した培地に交換し、プレートをさらに2時間インキュベーターに戻します。
インキュベーションの終わりに、細胞を250マイクロリットルのPBSで洗浄し、250マイクロリットルの新鮮なPBSを各ウェルに加えます。次に、200マイクロリットルのマイクロピペットチップを使用して、各セル単層に1つの垂直スクラッチを作成します。すべての単層に傷がついたら、各ウェルのPBSを目的のペプチド刺激物で250マイクロリットルに交換し、蓋をそのままにしてプレートを光学カメラシステムに取り付けます。
光学カメラを設定するには、取得ウィンドウを開き、創傷治癒を選択します。プレートタイプを選択し、使用していないウェルの選択を解除します。次に、イネーブルをクリックし、ウェルの1つを右クリックして、細胞の位置に合うようにフォーカスを調整します。
画像間隔の下の画像の期間を設定し、希望の期間に合わせて繰り返し回数を設定します。次に、適切な解析タイプを選択します。次に、[開始]をクリックして細胞のイメージングを開始します。
創傷が発生すると、皮膚細胞は増殖し始め、創傷床を横切って移動して創傷を閉じますが、その過程は光学カメラを通して観察することができます。48時間のインキュベーション後、内皮増殖因子治療は、未処理のコントロールウェルで38%、ラクトフェリンおよびラクトフェリシン培養でそれぞれ33および62%の閉鎖と比較して、創傷のほぼ95%の閉鎖を誘発します。最初のスクラッチからのギャップ幅の変化から決定された創傷閉鎖の割合も、各成長刺激についてプロットできます。
このビデオでは、健康な細胞の単層に作られた傷を横切るケラチノサイトの移動を研究するための簡単で効率的なプロトコルについて説明します。このアッセイで使用される細胞はHaCaT細胞ですが、マイクロタイタープレートの底部に付着している限り、他の細胞株、真菌、さらには細菌にもこの方法を適用できます。
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本記事では、自動光学カメラ顕微鏡を用いたin vitroでの細胞遊走能試験の手順について解説します。経時的な細胞遊走を観察するための信頼性の高い手法として、スクラッチアッセイに焦点を当てます。
細胞遊走アッセイは、創傷治癒や腫瘍学における治療候補薬剤の評価に不可欠ですが、従来のスクラッチアッセイではエッジアーティファクトや手動解析によるボトルネックが課題となっていました。本最適化プロトコルでは、カチオン介在性の細胞蓄積を排除し、自動イメージングを統合することで再現性の課題を解決し、一貫した定量的な遊走リードアウトを可能にしています。この手法は、遊走促進および抑制化合物に関する信頼性の高いリアルタイムデータを提供することで、初期段階のターゲット検証およびメカニズムのデリスキング(リスク低減)を支援します。
この手法はディスカバリー・コンティニュアムに適合しており、初期ディスカバリーにおける仮説検証をサポートするとともに、測定可能な遊走抑制または促進を通じて定量的なリード化合物の同定を可能にします。