Name: Ex Vivoショウジョウバエにおける内分泌シグナル伝達する脳の反応を可視化するためのカルシウム イメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-02T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 49 s
Description: 学ぶショウジョウバエ脳のカルシウムイメージング法で内分泌シグナルによる神経応答を可視化する手法です。Drosophila幼虫脳を用いてホルモン制御メカニズムを解析し、神経内分泌学研究に有用です。

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この作品は費補助金科学研究 (15 K 07147、17 K 07419) 日本学術振興会から (洋石本、佐野寛子) (HI) に稲盛財団研究助成金、共同利用・共同研究センターのプログラムでサポートされる発生発達医学分子発生学・遺伝学 (HS) に熊本大学研究所。イメージング システムを使用して彼らの助け、上川内あづさ先生と山田大地さんに感謝します。

1. 幼虫の脳外植片の準備
<ol><li>イメージング室を作る。 注: 脳外植片が係留される安定した記録が必要です。ここでは、低コスト、手作りのイメージング商工会議所は、Ca2 +イメージング システムで使用されます。<ol>
<li>鉗子を使用して、取り付け簡単 (手順 1.3,図 1) を作る幼虫の脳の腹側神経節の凹みを作成するプラスチック製培養皿 (35 mm × 10 mm) の底面の中心を傷つけます。</li>
		<li>、つまようじでくぼみの両側に瞬間接着剤の小さなドロップを配置し、タングステン棒 (径 0.125 mm、6 〜 7 mm 長さ) を接着剤に添付します。</li>
		<li>パテのような再利用可能な接着剤の小さなピースを使用して、作る円形の壁 (10 mm 径、高さ 3 mm) 周囲の凹み (図 1)。 注: 壁の内側の空間が後で満ちるリン酸緩衝生理食塩水 (PBS; 0.14 M NaCl、0.0027 M KCl、0.01 M PO43 -、pH 7.4 ± 0.05 25 ° C で)。</li>
	</ol>
</li>
	<li>動物の準備 注: カルシウム イメージング、カルシウム インジケーター、GCaMP6s は組織特異 GAL4 とUA GCaMP6sの組み合わせを使用して実現されます一般的興味のセル型で表されます。信号が候補受容体を通して仲介されることを確保するため、GCaMP6s も変異受容体の欠陥で表されます。<ol>
<li>野生型と変異体など異なる遺伝子型の実験的比較が必要な場合、GCaMP6 式レベル変動と生理学的な発達段階の違いを避けるために一致テスト幼虫を年齢します。</li>
		<li>食品の表面に産卵を許可する 8 h の標準的なはえの食糧を含む文化バイアルに親のハエ (各性のため 30 ハエ) をしてください。質量 25 ° C と 60-70% の相対湿度で 12 時間の明暗周期下における幼虫の文化。</li>
	</ol>
</li>
	<li>幼虫の脳の解剖<ol>
<li>90-120 h 産卵 (AEL) 後、幼虫を収集し、付着性の食べ物のかすを除去する蒸留水で少なくとも 3 回洗ってください。</li>
		<li>場所 1.5 インチ正方形時計ガラスの幼虫は、氷冷 PBS でいっぱい。 注: 次の 2 つの手順この時計ガラスの解剖顕微鏡下で実行されます。</li>
		<li>幼虫の中央部を優しくつかむ鉗子を使用します。口フックを取得し、別の体の残りの部分から脳を含む幼虫の前方の部分に優しく口フックを引くもう一つの鉗子を使用します。 注: また、外科はさみ使用できます。</li>
		<li>鉗子で前方の先端を押し、幼虫を裏返しします。成虫ディスク、脂肪体、リング腺など、脳に付着した余分な組織を削除します。口器から脳を優しきます。</li>
		<li>200 μ L の PBS をイメージングの商工会議所のパテのような再利用可能な接着剤は、リングの内側に適用されます。パスツール ピペットに PBS で切り裂かれた脳を優しく吸うし、部屋に転送。</li>
	</ol>
</li>
	<li>部屋に脳を設定<ol>
<li>鉗子を使用して、腹側の神経節から伸びる筋線維をつかみます。タングステン線の下に凹みに脳をゆっくり挿入します。</li>
		<li>プル タングステン線は別鉗子を使用すると、(図 1) をイメージングのため適切な位置に脳にもわずかに配置しています。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Ca2 +蛍光画像の取得
注: 脳外植片 PBS 中に浸漬、水浸対物レンズ × 20 を搭載した蛍光顕微鏡を使ってイメージ化 (n. a. = 0.5)。PBS は、脳細胞をアクティブにしません。Z 軸のイメージが必要な場合圧電アクティブ レンズ発動機を対物レンズを搭載します。回転のディスク共焦点ヘッドは、時間分解能を高めるために使用されます。低光イメージングのため電荷結合素子カメラを掛けて電子顕微鏡がマウントされます。GCaMP6s 蛍光イメージング (励起/蛍光: 488/509 nm) 励起発光フィルターとダイクロイック ビーム ・ スプリッターの 488 nm レーザーが必要です (e.g。, 528 ± 38 nm 帯域バンドパス フィルター)。
<ol><li>顕微鏡下で脳外植体を含むイメージングのチャンバーを配置します。</li>
	<li>それが PBS に触れるまでは、対物レンズを下げます。明視野照明下における脳の位置し、焦点に持って来る。蛍光灯に切り替えて、GCaMP6s というラベルの付いたセルにフォーカスを調整します。 注: GCaMP6s の基部の緑の蛍光性が見えるはずです。</li>
	<li>250 ms で集録を開始/水冷モードで適正な取得ソフトウェアを使用して 512 × 512 ピクセルの解像度でフレーム (e.g。、µManager)。16 ビット画像 (ダイナミック レンジ 0 65,535) と CCD カメラのダイナミック レンジ内の蛍光値を取得がない 1000 (任意の単位) より低い露出時間を調整します。 注: GCaMP6s の光退色を最小限に抑える低露光時間を使用ください。露光時間を最適化して、GCaMP6 の発現と検出システムの感度にかかっており各実験でください。それは私たちを用いた実験で 100 ms dilp2 > GCaMP6s です。Z セクションが指定した深さでイメージングに必要ないくつかの z 断面画像は露出時間とフレームの間隔によって取得できます。カメラに十分な空間分解能がある場合は、露出時間を短縮するビニング サイズ (1 つデジタル ピクセルにビンがオンチップ レジスタの数) を増やしてください。</li>
	<li>撮像パラメーターが決まったら、基準信号強度 (F0) を検出するペプチド投与前に、1 分の画像を取る。</li>
	<li>テスト ペプチドを適用します。このため、PBS におけるペプチド溶液 100 μ L を溶解し、最適濃度をもたらす幼虫お風呂に直接ピペットします。 注: ペプチド ソリューションゆっくり注入する必要があります (例えば流率 20 μ L/s) にピペットを使用してバス ソリューション。PBS に溶解した無関係の合成ペプチドは、ネガティブ コントロールとして使用されます。</li>
	<li>数分の GCaMP6s 排出量を記録します。</li>
</ol>3. データ分析
注: 画像データは、ImageJ とオフライン分析されます。時間経過イメージ投射の間を移動する幼虫の脳を引き起こすピペッティングします。したがって、解析の前にシリアルの画像の位置異常を修正必要があります。補正は、ImageJ、プラグイン、TurboReg を次のように使用して実行できます。
<ol><li>解析ソフトウェアを開き、参照イメージとして (ペプチッドのアプリケーション) の前に最初のフレームを使用します。</li>
	<li>プラグインを選択 |登録 |TurboReg。</li>
	<li>ソースとしてシリアル イメージ ファイルとターゲットとして参照イメージを選択します。</li>
	<li>それぞれ剛体(平行変位と画像の回転) と正確性(「高速」は代わりに高速な解析粗いです) を処理方法と品質を確認します。</li>
	<li>バッチ画像処理を開始するをクリックします。</li>
	<li>分析を用いた関心 (ROIs) の複数の領域を選択 |ツール |ROI マネージャー ImageJ で。</li>
	<li>もっとをクリックしてピクセル強度を測定 |マルチ メジャー |OK ROI マネージャー] ウィンドウで。</li>
	<li>計算 ΔF/F0 = (F - F0)/F0、どこ F ROI 強度刺激時と F0は特定の実験的イベントの直前の時間帯での強度 (例えば30 前のフレーム、刺激開始)。</li>
	<li>複数の脳サンプルを使用して、平均と各時点での平均 (SEM) の標準エラーを取得する統計処理を行う実験を繰り返します。</li>
</ol>

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<li>Feng, Y., Ueda, A., Wu, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modified+minimal+hemolymph-like+solution%2C+HL3.1%2C+for+physiological+recordings+at+the+neuromuscular+junctions+of+normal+and+mutant+Drosophila+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurogenetics%22%5BJournal%5D)">A modified minimal hemolymph-like solution, HL3.1, for physiological recordings at the neuromuscular junctions of normal and mutant Drosophila larvae.</a> Journal of Neurogenetics. 18 (2), 377-402 (2004).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

Ca2 +イメージング法は、ここで説明した脳のホルモンの機能をテストするための便利なシステムです。生体内で、脳は様々 な内分泌腺からホルモンを受け取ります。さらに、脳は常に自発神経活性化を引き起こす感覚情報を昇順を認識します。この前のヴィヴォシステムは、このようなノイズを排除し、生体内イメージングより良い信号/ノイズ比が得られます。このシステムは、単独または組み合わせて分子をテストできます。ペプチド ホルモンに加えて天然または合成化合物を含む任意の水溶性分子は脳外植体に適用できます。
Ca2 +イメージング、脳外植片が係留される必要があります。ポイントの低融点アガロースこの目的のため作られたゲルのマトリックスまたはフィブリンが従来の16,17。これらのゲルのマトリックスがサンプルを安定保持できる、30 ° C 以上に組織を加熱するただし、この温度は、昆虫などの poik...

臓器器官のコミュニケーションは、環境の変化に対処するための恒常性を維持するための進化上保存された戦略です。人間、内分泌腺からホルモン直火のさまざまな循環に。これらのホルモンの多くは代謝過程と1,2を供給など基本的な動作を調節する脳の視床下部をターゲットします。多くのホルモンは、哺乳類のモデルを使用して発見されています。しかし、彼らの行動は、彼らが参加、特に interorgan ネットワークのメカニズムはほとんど不明します。
キイロショウジョウバエは、臓器器官のコミュニケーションを研究するための有用なモデルとして登場しました。昆虫では、多くの生理学的なプロセスはホルモンによって制御されます。成長と変容に着目した初期の研究では、大型の昆虫を使用しました。これらの研究で削除または特定の臓器の移植は、臓器間のシグナリング分子の存在を予言その後、幼若ホルモン (JH)、Prothoracicotropic ホルモン (PTTH) とエクダイソン生化学的精製3,4,5をだった。細胞内情報伝達の大家族は、昆虫のライフ サイクル6、7の中に様々 な生理学的なイベントに関与すると考えられます。これらのペプチドのほとんどは、特定の Gpcr が従来のアプローチを使用して識別するために最初に困難な G タンパク質共役受容体 (Gpcr) に関する法律します。ショウジョウバエゲノム シーケンス8の出版物は、他の昆虫に見られる彼らの相同性に基づくショウジョウバエ生理活性ペプチドの同定に有効な画期的なだった。さらに、いくつかのペプチド受容体は、Gpcr 細胞・培養技術を用いた GPCR リガンド結合アッセイを使用してゲノムの予測から同定された.次に、発現解析は、これらのペプチド受容体によって誘発される臓器に経路を予測しました。特に、推定ペプチド受容体の多くは脳で脳はペプチド ホルモン9の主要なターゲットであることを示唆するいると表現されます。また、ショウジョウバエで高度な遺伝学的ツールは、ペプチド GPCR の組み合わせの生理的な役割の同定に貢献しました。例えば、GAL4 と LexA ベースのバイナリ転写システム時空間制御された方法では遺伝子ノックダウンまたは過剰発現を有効。 にします。酵母で識別される転写因子 GAL4 を上流活性化シーケンス (UAS) と呼ばれる特定のシス配列にバインドします。GAL4/UAS システム ドライバー ライン提供組織固有または段階における発現 GAL4 とレスポンダー ライン ドライブ shRNA 発現する構造や興味の遺伝子の上流の UAS を運ぶ。LexA/LexAop システムは、同様のメカニズムに基づいています。組織特異ペプチド ノックダウンおよび組織固有の GPCR ノックダウン動物の表現型解析は、ペプチド GPCR シグナル モードおよびアクションのサイトに関する情報を表示できます。ただし、遺伝的データによってだけ達することができる結論は制限されます。その一方で、特定のペプチド ホルモンの推定の対象は、組織または細胞の種類に絞られて、一度ペプチド GPCR シグナリングを介した臓器にコミュニケーションを明らかにする前のヴィヴォカルシウム器官外植体のイメージングを使用できます。Gq 共役 GPCR の活性化、ER10からの Ca2 +の放出による細胞内 Ca2 +濃度が増加します。脳神経の活性化はまた細胞内 Ca2 +濃度を高めます。このような Ca2 +増加はカルシウム センサー GCaMP は、Ca2 +蛍光発光11の結果の存在下での構造変化を経るによって検出できます。
この記事では、カルシウム イメージングを用いたショウジョウバエの脳外植片を説明します。特定のニューロンを作動するペプチドの機能をテストするテスト ペプチドは GCaMP 表現脳植に適用され、共焦点顕微鏡による蛍光の変化を監視します。GPCR が関与し、GPCR に欠けている突然変異体の脳を使用して同じアッセイを行って確認します。イメージングと遺伝学の組み合わせは、ペプチドによる臓器器官のコミュニケーションに関する正確な情報を提供しています-Gpcr。 可能な変更およびこのプロトコルのアプリケーションについても説明します。

<table><tbody><tr><td>タングステンロッド</td><td>AMシステム、スクイム、ワシントン州、米国</td><td>717000</td><td></td></tr><tr><td>Blu Tack</td><td>Bostik、パリ、フランス</td><td>3049100</td><td>パテのような再利用可能な接着剤</td></tr><tr><td>時計ガラス、正方形、1 5/8</td><td>in Carolina Biological Supply Company、バーリントン、ノースカロライナ州、米国</td><td>742300</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>TAKARA Bio Inc.、草津、滋賀、日本</td><td>T900</td><td>リン酸塩緩衝塩</td></tr><tr><td>CCHa2</td><td>SCRUM Inc., Tokyo, Japan</td><td></td><td>Custum-synthesized peptide</td></tr><tr><td>Ghrerin</td><td>Peptide institute Inc., 大阪, 日本</td><td>4372-s</td><td></td></tr><tr><td>Nociceptin</td><td>Peptide institute Inc., 大阪, 日本</td><td>4313-v</td><td></td></tr><tr><td>Axio Imager A2</td><td>Carl Zeiss, Oberkochen, Germany</td><td>Axio Imager A2</td><td>蛍光顕微鏡</td></tr><tr><td>Objective W N-Achroplan 20x/0.5 M27</td><td>Carl Zeiss,オーバーコッヘン、ドイツ</td><td>420957-9900-000</td><td>水浸対物レンズ</td></tr><tr><td>P-725 PIFOC 対物レンズ</td> 長距離 <td>Physik Instrumente GmbH & Co. KG, カールスルーエ,</td><td>ドイツ N/A</td><td>圧電式レンズムーバー</td></tr><tr><td>共焦点スキャナーユニット CSU-W1</td><td>横河電機株式会社, 東京, 日本</td><td>CSU-W1</td><td>スピニングディスク共焦点ヘッド</td></tr><tr><td>ImagEM C9100-13</td><td>浜松ホトニクス 静岡県静岡市</td><td>C9100-13</td><td>EM-CCD カメラ</td></tr><tr><td>OBIS 488 nm LS 60 mW</td><td>Coherent, Santa Clara, CA, USA</td><td></td><td>1178770 488-nm レーザー</td></tr><tr><td>488/568/647 nm 横河電機ダイクロイックビームスプリッター</td><td>Semrock, Rochester, NY, USA</td><td>Di01-T405/488/568/647-13x15x0.5</td><td>ダイクロイックビームスプリッター</td></tr><tr><td>528/38 nm BrightLine シングルバンドバンドパスフィルター</td><td>Semrock, Rochester, NY, USA</td><td>FF01-528/38-25</td><td>発光フィルター</td></tr><tr><td>&マイクロ;マネージャー</td><td>Open Imaging, Inc.</td><td>N/A</td><td>https://micro-manager.org</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>U.S. National Institutes of Health</td><td>N/A</td><td></td></tr> <tr><td>https://imagej.nih.gov/ij/ TurboReg</td><td>Philippe Th&eacute;venaz, Biomediccal Imaging Group, スイス連邦工科大学ローザンヌ</td>校 <td>N/A</td><td>http://bigwww.epfl.ch/thevenaz/turboreg/</td></tr></tbody></table>

ex vivoショウジョウバエにおける内分泌シグナル伝達する脳の反応を可視化するためのカルシウム イメージング

Ex Vivo Calcium Imaging for Visualizing Brain Responses to Endocrine Signaling in Drosophila

内分泌シグナルによる臓器に通信たとえば、脳に周囲からは恒常性を維持するために不可欠。内分泌研究のためのモデルとして、キイロショウジョウバエ、遺伝学的ツールとゲノム情報が洗練された、これがますます使用されています。この資料では、ショウジョウバエ脳外植体のカルシウム イメージング法について説明します。このメソッドは、脳にホルモンの直接シグナルを検出できます。多くのペプチッド ホルモン行動を通じて G タンパク質共役受容体 (Gpcr) が活性化は、細胞内 Ca2 +濃度の増加を引き起こすことが知られています。神経活性化は、細胞内の Ca2 +濃度 Ca2 +流入の Ca2 +細胞質網状質 (ER) に格納されているリリースからも高めます。カルシウム センサー、GCaMP は、これらの Ca2 +変更を監視できます。この方法で GCaMP は関心のニューロンで表現され GCaMP 表現する幼虫の脳は解剖、養殖前のヴィヴォ。テストのペプチドが脳植に適用されますし CCD カメラを装備して回転ディスク共焦点顕微鏡を用いた GCaMP の蛍光変化を検出する.このメソッドを使用すると、任意の水溶性分子をテストことができますと適切な蛍光インジケーターを使用して神経の活性化に関連付けられている様々 な携帯電話イベントをイメージすることができます。また、他のショウジョウバエや他の動物の臓器を画像に、イメージングのチャンバーを変更すると、このメソッドを使用できます。

このプロトコルを使用すると、ペプチド ホルモン、CCHa2、インスリン産生細胞脳 (IPCs) の活性化を調べた。GCaMP6s とラベル付けされた野生型脳の IPCs dilp2 -GAL412 (ルイグソン博士からの贈り物) とUA GCaMP6s13 (キム博士からの贈り物) の組み合わせを使用します。合成 CCHa2 ペプチドと扱われた幼虫の脳外植体と GCaMP6s からの蛍光は、リアルタイムで記録されました。この実験では、1 つの焦点平面から画像を得た。各 IPC クラスターを含む約 14 セル14、および 3 から 6 セルまでの信号が検出されました。GCaMP6s 信号強度は CCHa2 管理 (図 2A、映画 1) に劇的に増加しました。野生型の脳はグレリンやノシセプチンに明らかな反応...

本稿では、ショウジョウバエの脳のカルシウム イメージング前のヴィヴォのプロトコルについて説明します。この方法で天然または合成化合物は、脳の特定の神経細胞をアクティブにする能力をテストするバッファーに適用できます。

Ex Vivoショウジョウバエにおける内分泌シグナル伝達する脳の反応を可視化するためのカルシウム イメージング

Organ-to-organ communication by endocrine signaling, for example, from the periphery to the brain, is essential for maintaining homeostasis. As a model ...

この方法は、内分泌学分野だけでなく、内分泌信号に対する脳の応答をレビューする研究など、神経科学分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この手法の主な利点は、他の組織から分離された脳に対する内分泌信号の直接的な影響を調べることができることです。この手順を開始するには、鉗子を使用してプラスチック製の培養皿の下部中央を引っ掻き、解剖後に幼虫の脳の腹側神経節を簡単に取り付けるためのへこみを作成します。つまようじで、へこみの両側に瞬間接着剤を少し滴下し、接着剤にタングステンロッドを取り付けます。次に、パテのような再利用可能な接着剤の小片を使用して、へこみを囲む円形の壁を作ります。幼虫の脳を解剖するには、産卵後90〜120時間で幼虫を集め、蒸留水で少なくとも3回洗って付着した食物の残骸を取り除きます。次に、氷のように冷たいPBSで満たされた正方形の1インチ半の時計ガラスに幼虫を置きます。一対の鉗子を使用して、幼虫の中央部分をそっとつかみます。別の鉗子を使用して、口のフックをそっとつかんで引っ張り、脳を含む幼虫の前部を体の他の部分から分離します。次に、鉗子で前部の先端を持ち、幼虫を裏返します。想像椎間板、脂肪体、リング腺など、脳に付着している無関係な組織を取り除きます。脳を口の部分からそっと分離します。その後、イメージングチャンバー内で事前に準備した接着リングの内側に200マイクロリットルのPBSを塗布します。PBSで解剖した脳をパスツールピペットに優しく吸引し、イメージングチャンバーに移します。イメージングチャンバーで、腹側神経節から伸びる筋線維をつかみ、タングステンワイヤーの下のへこみに脳をそっと挿入します。次に、タングステンワイヤーを少し引き上げて、脳をイメージングの正しい位置に配置します。カルシウム蛍光画像を取得するには、脳外植片を含むイメージングチャンバーを顕微鏡下に置きます。対物レンズをPBSに触れるまで下げ、明視野照明の下で脳を配置して焦点を合わせます。蛍光灯に切り替えて、GCaMP成功標識細胞の焦点を調整します。250 ms/フレームで、水冷モードで512 x 512ピクセルの解像度で集録を開始します。次に、露光時間を調整して、CCDカメラのダイナミックレンジ内の蛍光値を取得しますが、16ビット画像で任意の単位1000を超えないようにします。イメージングパラメータを決定したら、ペプチド投与の1分間前に画像を撮影して、ベースラインシグナル強度を検出します。続いて、調製したペプチド溶液100マイクロリットルを幼虫浴にピペッティングすることにより、試験ペプチドを直接適用します。GCaMP 成功の放出を数分間記録します。データ解析を行うには、解析ソフトウェアを開き、ペプチド適用前の最初のフレームを参照画像として使用します。次に、[Plugins]、[TurboRe

ex-vivo-calcium-imaging-for-visualizing-brain-responses-to-endocrine

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

我々は生きているの触角葉で匂い誘発カルシウム応答を測定し、分析するための確立された技術を記述する...

の臭気誘発応答のカルシウムイメージングショウジョウバエ触角葉

このビデオでは、GCaMPを使用したショウジョウバエニューロンのin...

ショウジョウバエ In Vivoカルシウムイメージング:神経活動の機能イメージング法

このビデオは、ハエのシナプス局在カルシウムセンサーを使用したin...

インビボDrosophila melanogasterにおけるシナプス局在カルシウムセンサを用いたカルシウムイメージング

出典: Ishimoto, H. et.al., Ex Vivo Calcium Imaging for Visualizing Brain responses to Endocrine Signaling in Drosophila. J. Vis. Exp. (2018)...

神経ペプチドに対するショウジョウバエの脳応答を研究するための Ex vivo カルシウムイメージング

Source：&lt;a style='text-decoration:none;' href='https://app.jove.com/v/53705/in-vivo-functional-brain-imaging-approach-based-on-bioluminescent'&gt;ラーク、A. R.、 et. al., 生物発光カルシウム指標GFP-aequorinに基づく生体内機能脳イメージングアプローチ。 J. Vis. Exp. (2016)このビデオは、緑色蛍光タンパク質-イクオリン生物発光を使用したカルシウムダイナミクスのリアルタイムイメージングを示しています。 ショウジョウバエの...

ショウジョウバエの脳構造におけるカルシウム過渡現象の研究のための生物発光イメージング

ショウジョウバエの前脚と吻には、味覚感覚ニューロンの豊富なレパートリーが含まれています。ここでは、カルシウムイメージングを使用して、味覚フェロモンの外因性の適用による生きたハエの前脚と吻の感覚ニューロンからの生理学的応答を測定する方法を紹介します。...

の生理反応を測定します<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;ライブカルシウムイメージングを使用して脂質フェロモンの感覚ニューロン

ここでは、生物発光レポーターを使用してアプローチを-imaging小説のCa 2+を提示します。このアプローチは、Ca 2+に結合し、励起光の必要性を排除し、光を発する融合構築物のGFPエクオリンを使用しています。重要なことは、この方法は、長い連続撮影、脳深部構造へのアクセス、高時間分解能を可能にします。...

生物発光カルシウムインジケーター、GFPエクオリンに基づいて生体内脳機能イメージングのアプローチで

この記事では、 ショウジョウバエの卵活性化の間のCa 2+を可視化するための適応性のex vivoでのプロトコルについて説明します。...

内イメージングカルシウム<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;卵活性化で

ここでは、ショウジョウバエの学習と記憶の文脈で、前および/または後のカルシウムを視覚化できるプロトコルを提示する。シナプス的に局在するカルシウムセンサを用いた生体内カルシウムイメージングでは、この種の連想学習の根底にあるシナプス可塑性が決定され得るように、古典的な嗅覚調節パラダイムと組み合わされる。...

ショウジョウバエメラメラノガスターにおける学習誘発シナプス可塑性の生体内光学カルシウムイメージング

ここでは、てんかん様活性をモニターするために、GCaMP6を発現する成虫ショウジョウバエのex...

Ex Vivo(エクス・ビボ )てんかんのショウ ジョウバエ モデルに対するカルシウムイメージング

ショ ウジョウバエ 幼虫の嗅覚ニューロンのカルシウムイメージングプロトコルを提示し、固定化に局所組織接着剤を使用します。この方法により安定性が向上し、信頼性の高い in vivo および ex vivo 実験が容易になります。カスタム R...

3齢ショウジョウバエmelanogaster幼虫における嗅覚回路ニューロンの生体内および生体外カルシウムイメージング

学ぶショウジョウバエ脳のカルシウムイメージング法で内分泌シグナルによる神経応答を可視化する手法です。Drosophila幼虫脳を用いてホルモン制御メカニズムを解析し、神経内分泌学研究に有用です。

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