Name: マウス心臓の研究のための光シート蛍光顕微鏡 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 42 s
Description: 学ぶ光シート蛍光顕微鏡によるマウス心臓の高速イメージング手法。遺伝子治療後の構造変化や気道の観察に応用でき、発生心臓学や神経学、呼吸器学の研究にも活用可能です。

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著者は、イメージへマウス サンプルを提供するためカリフォルニア大学ロサンゼルス校からグエン ・ テ ・ タオと中野敦に感謝を表したいと思います。この研究は、NIH の HL118650 (Tzung, Hsiai) に、HL083015 (Tzung, Hsiai) に、(N. C. チーと Tzung k. Hsiai.) に HD069305、HL111437 (Tzung, Hsiai n. C. チーし)、HL129727 (Tzung, Hsiai) に、テキサス大学システムは補助金の星 (柱賢への資金によって支えられました。イ)。

動物の使用を含むすべての手続きは、カリフォルニア大学ロサンゼルス、カリフォルニア州で制度検討委員会 (IACUC) によって承認されています。
1. イメージング システム セットアップ
注: は、図 1および図 2を参照してください。
<ol><li>3 波長の連続波 (CW) レーザーを取得: 405 nm、473 nm と 532 nm。場所 2 ミラー (M1、M2) 150 mm 離れてビームに 45 ° のミラー面に合わせて整列します。 注: この手順を実行両面の照明セットアップからレーザーをリダイレクトします。結果のビームは最初のビームと同じ方向になります。</li>
	<li>0 - の光学濃度範囲で、直径 25 mm の虹彩絞り/ピンホール (PH) 直径 50 mm 中性密度フィルター (NDF) を梁を渡す 4.0、ビーム拡大器 (BE) の幅で 30 mm スリット (S) ~ 0 - 6 ミリメートル、およびミラー (M3)、すべては互いから 150 mm を配置。ビームに 45 ° で、ミラー平面が付いているミラーを配置します。</li>
	<li>M3 から 150 mm を配置 50: 50 ビームスプリッターを介してビームを渡します。ビームスプリッターから 150 mm ミラー (M6) を置き、そのミラー平面が 45 ° 前方に放出されるビームになるよう合わせます。反射されたビームを使用して、デュアル照明光シートの片側を形成します。</li>
	<li>ビームスプリッターから 150 mm ミラー (M4) を置き、そのミラー平面は 45 ° ビームスプリッターから 90 ° の角度で生成されたビームになるよう。2 番目のミラー (M5) M4 から 150 mm を置き、そのミラー平面は 45 ° M6 から反射されたビームになるようです。M5 から放出されるビームを使用して、デュアル照明光シートの 2 番目の面を形成します。</li>
	<li>対称的に両面照明システムを設定 (図 1参照)。1 つ円筒レンズ (CL1) [直径 (d); 1 = 焦点距離 (f) = 50 mm] 150 mm M6 デュアル照明 setu の反対側から放出されるビームに沿って 1 つの側面で別の同一円筒レンズ (CL2) M5 から放出されるビームに沿って 150 mmp. ミラーを置く 2 (M7 および M8) 各シリンドリカル レンズに合わせて 90 ° ビームを反映するように 50 mm の距離で。</li>
	<li>色消しレンズのペアを形成します。最初のレンズ、L1 (d; 1 = f = 100 mm)、M7 と第二のレンズ、L2 から 100 mm (d; 1 = f = 60 mm)、L1 から 160 mm。M8 から同じ距離を置いた同一レンズ (L3、L4) とデュアル照明の他の側にこれを繰り返します。</li>
	<li>場所ミラー, M9、M10、L2 および L4、レンズから 60 ミリメートル, とビームに沿って。OL1 と OL2 照明目的の場所 (d; 2 = f = 150 mm)、梁に沿って M9、M10 から 150 mm。目的から放出されるビームは、試料のイメージングのための光シートを形成します。</li>
	<li>アクリロニ トリル ・ ブタジエン ・ スチレン (ABS) から試料ホルダーを印刷するのに 3 D プリンターを使用します。カバーのガラスの部分を埋め込む [屈折率 (RI) = 1.4745] 室内には、屈折のミスマッチを最小限に抑えるため、照明ビームに垂直の各側に。対物レンズから放出されるビームの間にチャンバーを均等に配置します。</li>
	<li>ステレオ顕微鏡倍率客観的かつ科学的な相補的金属酸化物半導体 (sCMOS) カメラの照明に垂直な X 1 面 (図 2を参照) をインストールします。</li>
</ol>2. イメージング システム校正
<ol><li>直径 0.53 μ m は、蛍光のポリスチレン ビーズを取得します。</li>
	<li>1: 150, 000 に 1% 低溶融ポインティング agarose が付いて屈折率マッチング ソリューション (リム) のビーズ ソリューションを希釈して蛍光ビーズ サンプルを準備します。30 mm の距離に 12 mm の内径と外径 18 mm のホウケイ酸ガラス管の部分をカットします。 メモ: ホウケイ酸ガラス管は、屈折 (1.47) を一致するように使用されます。</li>
	<li>1% の agarose が付いて希薄ビード サンプルをミックスし、ビーズ/アガロース溶液をピペット ホウケイ酸チューブに。常温 (23 ° C) を固めるアガロースを許可します。</li>
	<li>99.5% グリセロールの解決で (ステップ 1.7) から ABS 室を埋めます。チャンバー内ビーズを含むホウケイ酸ガラス管を配置します。それはデュアル照明システムが作成したガウス ビームの中心部で、イメージング システムの ABS のチャンバーを配置します。</li>
	<li>三次元電動並進ステージを付ける動きと ABS チャンバー内サンプルの向きを制御するホウケイ酸ガラス管 (補足図 1を参照)。</li>
	<li>30 フレーム/秒 (fps) のレートで sCMOS カメラを使用して画像を取得します。モーター コント ローラーを使用して、横方向にサンプル 1 mm を移動し、sCMOS カメラを使用して各 1 mm ピッチで画像を取得します。サンプル全体のイメージまで続行します。</li>
	<li>可視化ソフトウェアを使用して取得した画像をスタック (材料の表を参照してください)。これらのビーズ画像を用いたシステムの点拡がり関数 (PSF) を測定します。画像は、後の手順で処理中にデコンボリューションのこの PSF を使用します。</li>
</ol>3. サンプル準備
<ol><li>P1 野生型マウスと Rosa26 YFP 遺伝子をもつ二重ヘテロ接合体 sarcolipin Cre knockin マウスからの心を解剖 (SlnCre/+;R26YFP 記者/+) P7 で。 注: 安楽死ペントバルビ タールとロビンスらで説明する手法を使用して実行されました。10. 国民の中心、肺および血の協会 (NHLBI)10,11で説明する手法によると郭清を行った。</li>
	<li>前述のケビン成らによってネズミの心のクリア化学を実行します。12。 注: 使用されている化学物質、有毒であるので次の手順が実行ヒューム フードにする必要があります。<ol>
<li>リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) 3 × 1 で心を洗い 10 分 x。洗浄した後、4% パラホルムアルデヒド溶液に心を置き、4 ° C でこれらのサンプルを一晩インキュベートします。</li>
		<li>4% アクリルアミド溶液 0.5 %w/v 2, 2'-アゾビス塩酸にサンプルを配置します。4 ° C で一晩インキュベートするサンプルを許可します。一晩インキュベートした後、サンプルを削除し、2-3 h の 37 ° C でそれらを孵化させなさい。</li>
		<li>PBS でサンプルをすすいで 8 %w/v ドデシル硫酸ナトリウムと 1.25 %w/v ホウ酸溶液に配置。彼らが明らかになるまでは、37 ° C でサンプルをインキュベートします。試料の厚みに応じて数時間をかかるでしょう。後、サンプルを削除し、リン酸緩衝生理食塩水 x 1 に 1 日置いてください。</li>
		<li>40 g イオン密度勾配媒体の解決策に一致する屈折の準備 (材料の表を参照してください) 0.02 M のリン酸バッファー (PB) は、0.1% アジ化ナトリウム、Tween 20 と 0.01% の 30 mL で。水酸化ナトリウム 7.5 の pH にソリューションをもたらします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>屈折率 1.46 1.48 と 1% のアガロースのリムにクリアされたサンプルを配置します。ホウケイ酸ガラス管に試料を挿入でき、アガロース室温 (23 ° C) で凝固します。</li>
	<li>三次元電動並進ステージを動きを制御するホウケイ酸ガラス管に接続し、3次元内でサンプルの向き印刷 ABS 商工会議所 (補足図 1を参照)。</li>
</ol>4. 成人の心臓イメージング
<ol><li>2 月野生型 (C57BL/6) マウスの尾静脈に 100 μ L のボリュームの特定の心臓トロポニン T プロモーター (cTnT) と緑色蛍光タンパク質 (GFP) を含む 10 型アデノ随伴ウイルスベクター 9 の12ウイルス (AAV9) x 8.7 を挿入します。 注: AAV9 元らによって記述された手法によると開発されました。13。 これが原因で腎外側延髄カリウム チャネル (ROMK) AAV9 cTnT ROMK GFP を生産にバインドする GFP (材料の表を参照してください)。</li>
	<li>NHLBI11で説明する手法によると年齢の 7.5 ヶ月で成体マウスの心を解剖します。ステップ 3.1 3.3 を使用してサンプルを準備します。</li>
	<li>電動アクチュエータにモーター コント ローラーを接続します。アクチュエータの動きを制御するホウケイ酸ガラス管を付けるし、3次元内でサンプルの向き印刷 ABS 商工会議所。</li>
	<li>サンプルの位置で、デュアル照明システムが作成したガウス ビームの中心です。100 fps のレートで sCMOS カメラを使用して画像を取得します。</li>
	<li>モーター コント ローラーを使用すると、軸方向にサンプル 1 mm を移動し、sCMOS カメラで各 1 mm ピッチで画像を取得します。サンプル全体のイメージまで続行します。 注: システムは、独自に開発した計測器制御ソフトウェアによって制御されます。</li>
	<li>可視化ソフトウェアを使用して取得した画像をスタック (材料の表を参照してください)。これらの画像のスタックと可視化ソフトウェア14を使用して 3次元画像を開発します。取得した画像のスタックのステップ 2.6 から PSF を deconvolve します。心の輪郭を観察し、この輝度に基づく画像を擬似カラーを追加ピクセルのしきい値の輝度値を設定します。</li>
</ol>

<ol><li>Richardson, D. S., Lichtman, J. W. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4537058/">Clarifying tissue clearing.</a> Cell. 162 (2), 246-257 (2015).</li>
<li>Lee, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((4-Dimensional+light-sheet+microscopy+to+elucidate+shear+stress+modulation+of+cardiac+trabeculation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">4-Dimensional light-sheet microscopy to elucidate shear stress modulation of cardiac trabeculation.</a> Journal of Clinical Investigation. 126 (5), 1679-1690 (2016).</li>
<li>Huisken, J., Swoger, J., Del Bene, F., Wittbrodt, J., Stelzer, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+sectioning+deep+inside+live+embryos+by+selective+plane+illumination+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Optical sectioning deep inside live embryos by selective plane illumination microscopy.</a> Science. 305 (5686), 1007-1009 (2004).</li>
<li>Huisken, J., Stainier, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+plane+illumination+microscopy+techniques+in+developmental+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Selective plane illumination microscopy techniques in developmental biology.</a> Development. 136 (12), 1963-1975 (2009).</li>
<li>Bakkers, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+as+a+model+to+study+cardiac+development+and+human+cardiac+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Research%22%5BJournal%5D)">Zebrafish as a model to study cardiac development and human cardiac disease.</a> Cardiovascular Research. 91 (2), 279-288 (2011).</li>
<li>High, F. A., Epstein, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+multifaceted+role+of+Notch+in+cardiac+development+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Genetics%22%5BJournal%5D)">The multifaceted role of Notch in cardiac development and disease.</a> Nature Reviews Genetics. 9 (1), 49-61 (2008).</li>
<li>Sachinidis, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+specific+differentiation+of+mouse+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Research%22%5BJournal%5D)">Cardiac specific differentiation of mouse embryonic stem cells.</a> Cardiovascular Research. 58 (2), 278-291 (2003).</li>
<li>Ding, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light-sheet+fluorescence+imaging+to+localize+cardiac+lineage+and+protein+distribution%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Light-sheet fluorescence imaging to localize cardiac lineage and protein distribution.</a> Scientific Reports. 7, 42209(2017).</li>
<li>Tomer, R., Ye, L., Hsueh, B., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advanced+CLARITY+for+rapid+and+high-resolution+imaging+of+intact+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Advanced CLARITY for rapid and high-resolution imaging of intact tissues.</a> Nature Protocols. 9 (7), 1682-1697 (2014).</li>
<li>Robbins, N., Thompson, A., Mann, A., Blomkalns, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+excision+of+murine+aorta%3B+a+versatile+technique+in+the+study+of+cardiovascular+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Isolation and excision of murine aorta; a versatile technique in the study of cardiovascular disease.</a> Journal of Visualized Experiments. (93), e52172(2014).</li>
<li>National Heart, L., Blood Institute, <a target="_blank" href="http://community.parentprojectmd.org/profiles/blogs/standard-operating-procedures-for-duchenne-animal-models">Standard Operating Procedures (SOP's) for Duchenne Animal Models</a>. , (2015).</li>
<li>Sung, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simplified+three-dimensional+tissue+clearing+and+incorporation+of+colorimetric+phenotyping%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Simplified three-dimensional tissue clearing and incorporation of colorimetric phenotyping.</a> Scientific Reports. 6, 30736(2016).</li>
<li>Yuan, Z., Qiao, C., Hu, P., Li, J., Xiao, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+adeno-associated+virus+vector+producer+cell+line+method+for+scalable+vector+production+of+different+serotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">A versatile adeno-associated virus vector producer cell line method for scalable vector production of different serotypes.</a> Human Gene Therapy. 22 (5), 613-624 (2011).</li>
<li>FEI, <a target="_blank" href="https://www.fei.com/software/amira-user-guide/">Amira User's Guide</a>. , Konrad-Zuse-Zentrum fur Informationstechnik. Berlin. 59-138 (2017).</li>
<li>Gao, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+imaging+of+3D+dynamics+in+thickly+fluorescent+specimens+beyond+the+diffraction+limit%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Noninvasive imaging of 3D dynamics in thickly fluorescent specimens beyond the diffraction limit.</a> Cell. 151 (6), 1370-1385 (2012).</li>
<li>Truong, T. V., Supatto, W., Koos, D. S., Choi, J. M., Fraser, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deep+and+fast+live+imaging+with+two-photon+scanned+light-sheet+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Deep and fast live imaging with two-photon scanned light-sheet microscopy.</a> Nature Methods. 8 (9), 757-760 (2011).</li>
<li>Ding, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrating+light-sheet+imaging+with+virtual+reality+to+recapitulate+developmental+cardiac+mechanics%5BTitle%5D)+AND+%22JCI+Insight%22%5BJournal%5D)">Integrating light-sheet imaging with virtual reality to recapitulate developmental cardiac mechanics.</a> JCI Insight. 2 (22), (2017).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

LSFM システムとここで説明する手法は、その開発の出生後の大人の段階からイメージ マウスの心臓に光クリアと組み合わせて両面照射ビームを採用しています。伝統的な単一の照明光は光子散乱と吸収より厚くより大きい組織のサンプル1,3から苦しんでいます。両面梁は、サンプルでは、ストライピングや一方的な照明によって生成された画像で見られる他のアーティファクトの影響を最小限に抑えることのより均一な照明を提供します。この手法では、デュアル ガウスビーム8の位置を調整することでイメージを作成することができますサンプルのサイズも大きくなります。これらの梁の最大分離によりイメージング組織サンプル サイズ、大人マウス心臓などに数ミリの単一の照明は、ゼブラフィッシュ、ショウジョウバエの心など小さい心にサンプルのサイズを制限されるに対し.
蛍光イメージング光学的に透明ではない組織では、光散乱生体試料全体に均一ではないかもしれな...

光シート蛍光顕微鏡は、1903 年に最初に開発された技術をされ、遺伝子発現を研究する、また組織サンプル1,2,3の 3 D または 4 D モデルを生成する方法として今日使用されています。このイメージング法は、飛行機だけは探知器によってキャプチャされるようにサンプルの 1 つの平面を照らす光の薄いシートを使用します。キャプチャする、サンプルの軸方向に移動できるし、レイヤー、一度に 1 つのセクションと、取得した画像4の後処理後 3-D モデルをレンダリングします。ただし、吸収と散乱のため LSFM は、いずれかの数ミクロンまたは光学的に透明な1サンプルに制限されています。
LSFM の制限は、ゼブラフィッシュなど、光学的に透明な組織を持っている生物の広範な研究につながっています。人間とゼブラフィッシュ5,6の間保存の遺伝子があるので、心臓発生と分化を含む研究はゼブラフィッシュに行われる。これらの研究は、心筋症6,7に関連する心臓の研究の進歩につながっている、まだ哺乳類などの上位の生物に似たような研究を実施する必要性があります。
哺乳類心筋厚と組織、赤血球、および伝統的な LSFM の方法1の下でサンプルの片面照射により発生するストライピング ヘモグロビンによる吸収の不透明度のための課題します。,8します。 これらの制限を補うために提案した両面イルミネーションと屈折率マッチング ソリューション (リム) と組み合わせてわかりやすくテクニック9の簡易版を使用します。したがって、このシステムは、イメージングが8機の軸方向と横方向で良い品質の解像度を維持しながら 10 mm3 x 10 x 10 より大きいサンプルのためことができます。
このシステムでは、ガラス チューブ内の異なる構成で整理される蛍光ビーズを用いた校正された最初。その後、システムは、出生後、大人のマウスの心のイメージを使用されました。まず、7 日 (P7)、心室、心室壁の厚さ、弁構造肉の存在を明らかにするため出生後マウスの心臓をイメージしました。第二に、Cre 標識心筋と黄色い蛍光蛋白質 (YFP) 1 日 (P1) に出生後マウスの心臓を用いた心筋細胞に区別するとセルを識別するために調査しました。最後に、遺伝子療法8後腎外側延髄カリウムの存在 (ROMK) チャンネルを観察する 7.5 ヶ月で成体マウスをイメージしました。

<table><tbody><tr><td>CWレーザー</td><td>レーザーグローテクノロジー</td>ズ <td>LMM-GBV1-PF3-00300-05</td><td>蛍光色素の励起</td></tr><tr><td>中性光フィルター</td><td>Thorlabs</td><td>NDC-50C-4M</td><td>システムに入る光の量を制御</td></tr><tr><td>無彩色ビームエキスパンダー</td><td>Thorlabs</td><td>GBE05-A</td><td>光のビームを拡大</td></tr><tr><td>メカニカルスリット</td><td>Thorlabs</td><td>VA100C</td><td>ビーム</td></tr><tr>の幅を制御<td>ビームスプリッター</td><td>Thorlabs</td><td>BS013</td><td>デュアルイルミネーションビームを形成</td></tr><tr><td>1倍対物レンズ付き実体顕微鏡</td><td>オリンパス</td><td>MVX10</td><td>サンプル観察に使用</td></tr><tr><td>ORCA-Flash4.0 LT sCMOSカメラ</td><td>浜松ホトニクス</td><td>C11440-42U</td><td>画像キャプチャに使用</td></tr><tr><td>アクリロニトリルブタジエンスチレン(ABS)</td><td>Stratasys</td><td>uPrint</td><td>サンプルホルダーの3Dプリントに使用した材料</td></tr><tr><td>蛍光ポリスチレンビーズ</td><td>Spherotech Inc</td><td>PP-05-10</td><td>イメージングシステムのキャリブレーションに使用</td></tr><tr><td>ホウケイ酸ガラスチューブ</td><td>コーニング</td><td>パイレックス7740</td><td>サンプル埋め込み用チューブ</td></tr><tr><td>グリセロール</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>BP229-4</td><td>サンプルチャンバーの充填</td></tr><tr><td>リン酸塩緩衝生理食塩水</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>BP39920</td><td>マウス心臓用リンス溶液</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>RT-15700</td><td>第1インキュベーション溶液</td></tr><tr><td>アクリルアミド</td><td>和光ケミカルズ</td><td>AAL-107</td><td>マウス心臓用第2インキュベーション溶液用2,2'-アゾビス二塩酸塩と混合</td></tr><tr><td>2,2'-アゾビス二塩酸塩</td><td>ワコーケミカルズ</td><td>VA-044</td><td>マウス心臓</td></tr><tr><td>用第2インキュベーション溶液用アクリルアミドと混合ドデシル硫酸ナトリウム&nbsp;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>71725</td><td>マウス心臓用第3回核注入液用ホウ</td></tr>酸混合 <tr><td></td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>A74-1</td><td>マウス心臓用第3注入液用ドデシル硫酸ナトリウム</td></tr>混合 <tr><td>Sigma D2158</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D2158</td><td>屈折率マッチング溶液としてPB、Tween-20、アジ化ナトリウムと混合</td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Sigma Aldrich</td><td>11332465001</td><td>屈折率マッチング溶液としてSigma D2158、PB、およびアジ化ナトリウムと混合</td></tr><tr><td>アジ化ナトリウム</td><td>Sigma</td><td>Aldrich S2002</td><td>屈折率マッチング溶液としてSigma D2158、PB、Tween-20と混合</td></tr><tr><td>GFPベクターでタグ付けされた心臓特異的トロポニンTプロモーターを持つアデノ随伴ウイルスベクター9</td><td>Biolabs VB2045</td><td></td>は、ROMK DCサーボモーターアクチュエーターThorlabs<td>に結合するとGFPを発現</td></tr>します<tr><td></td><td></td><td>Z825B</td><td>ライトシート内の軸方向へのサンプルの移動に使用</td></tr><tr><td>K-Cube ブラシ付きDCサーボモータコントローラ</td><td>Thorlabs</td><td>KDC101</td><td>モータアクチュエータに接続し、アクチュエータの動きを制御します</td></tr><tr><td>Amira</td><td>FEIソフトウェア</td><td>N/A</td><td>2Dおよび3D画像を生成するための視覚化ソフトウェア</td></tr></tbody></table>

マウス心臓の研究のための光シート蛍光顕微鏡

Light-sheet Fluorescence Microscopy for the Study of the Murine Heart

光シート蛍光顕微鏡は、ミリメートル単位にマイクロメータから高軸分解能高速イメージ獲得のため広く使用されています。伝統的な光シート テクニックには、単一の照明ビーム直交サンプル組織での使用が含まれます。単一の照明ビームを駆使して生産される大型サンプルの画像はストライプまたは成果物を含めるし、組織によって光の吸収と散乱のため低解像度に苦しみます。本研究では両面照射ビームと簡略化された透明度の光学マウスの心法をクリアします。これらのテクニックは、心の底から脂質を除去することによってより深いイメージングを可能にして、イメージング、10 × 10 × 10 mm3以上の大規模なフィールドを作り出します。その結果、この方法により心室の大きさを定量化、心臓の系統を追跡し心臓特異的蛋白と十分なコントラストを持つ成体マウス心に出生後からイオン チャネルの空間分布をローカライズし、解像度。

ここで説明する手法は深いイメージング深さと十分な解像度の画像 (図 1) とより大きい画像ボリュームを達成するためにマウス心臓組織サンプルの光クリアと組み合わせて両面照射ビームを使用しました。システムを校正するため、蛍光ビーズ イメージング システム内でガラス管の中に置かれました。ビーズがイメージ x y 平面、y-z 平面で可視化し、x-z 平面にしてポイントを取得広がるシステム8関数 (PSF)。システム校正制作 d横≈ の横方向の解像度 2.8 μ m と dXZ ≈ 17.4 μ m と dYZ ≈ 17.9 μ m 埋め込み中8としてグリセロールを使用するときの軸方向の解像度。
校正用、蛍光ビーズが使用された後、イメージング...

この研究は、マウスの心を研究するのに光クリアと組み合わせて両面イルミネーション ライト シート蛍光顕微鏡 (LSFM) 法を使用します。

Light-sheet fluorescence microscopy has been widely used for rapid image acquisition with a high axial resolution from micrometer to millimeter scale. ...

この技術の主な利点は、マウスの心臓のいずれかの迅速なイメージングを可能にすることです。そして、遺伝子治療後の空気チャネルの存在を観察するために使用することができる。この方法は、発達の心臓病に関する洞察を提供することができますが、神経学や肺科学などの他のシステムにも適用できます。一般的に、大人のマウス心臓のイメージングを取り付けることは困難であり、共焦点および反転顕微鏡のような他の伝統的な技術とは異なるため、個人はこの技術に苦労します。405ナノメートル、473ナノメートル、532ナノメートルの3波長の連続波レーザーを配置します。次に、ミラー1を貼り付け、梁に45度のミラー面に合わせます。これにより、レーザーは、両面照明の設定を形成するビームスプリッターに向かって導きます。次に、50ミリメートル径の中性密度フィルタ、ビームエキスパンダー、および直径25ミリメートルのピン穴を通してビームを通過し、すべて互いに150ミリメートル配置する。50-50ビームスプリッターを通してビームを通過し、ピンホールから150ミリメートルを配置します。次に、ビームスプリッターから150ミリメートルのミラーを90度で前方ビームに配置し、ミラー面がビームに対して45度の角度になるように位置合わせします。次に、ミラー2から100ミリメートルのミラーを配置し、ミラー面がミラー2から反射したビームに対して45度の角度になるように位置合わせします。この反射ビームを使用して、デュアル照明ライトシートの片側を形成します。ビーム スプリッターの反対側に、ミラー平面が前方方向に放出される梁に対して 45 度になるように、ミラーを 5 つ配置します。ミラー5から放出されるビームを使用して、デュアル照明ライトシートの2番目の側を形成します。次に、全身的な方法で両面照明システムを設定します。ミラー3から250ミリメートル離れた円筒レンズを配置し、別の同一の円筒レンズをミラー5から150ミリメートル離れたデュアル照明設定の反対側に置きます。次に、2つのミラーを、それぞれ円筒レンズに沿って、90度のビームを反射するために50ミリメートルの距離に置きます。ライトシートの両側に、1枚のレンズから一対の二重体を形成し、最初のレンズは前のミラーから100ミリメートルに配置され、直径1インチ、焦点距離100ミリメートルを有する。2番目のレンズはレンズ1から160ミリメートル、直径1インチ、焦点距離60ミリメートルを配置する必要があります。次に、照明目標を1と2つの150ミリメートルを前のアクロマティックダダレットから配置し、ビームに合わせて配置します。目的から放出されたビームは、サンプルを撮像するためのライトシートを形成する。まず、0.53マイクロメートルビーズ溶液を1~150,000の予温屈折率マッチング溶液で希釈し、1%低融解性アガロースを用いて蛍光ビーズサンプルを調製します。次に、内径12ミリメートルのホウケイ酸ガラスチューブを、外径18ミリメートルの30ミリメートルに使用します。ホウケイ酸チューブ中のビーズアガロース溶液をピペットし、アガロースを室温で固化させます。さて、3DプリントABSチャンバーに99.5%のギルセロール溶液を充填します。ビーズを含むホウケイ酸ガラスチューブをチャンバーの中に置きます。3D電動トランスレーショナルステージをホウケイ酸ガラスチューブに取り付けて、ABSチャンバ内のサンプルの動きと向きを制御します。次に、カスタム設計のソフトウェアを使用して、毎秒30フレームのレートでsCMOSカメラを使用して画像を取得します。モーターコントローラを使用して、サンプルを横方向に1ミリメートル移動し、サンプル全体が画像化されるまで、1ミリメートルずつ画像を取得します。可視化ソフトウェアを使用して取得した画像を積み重ね、これらのビーズ画像を使用してシステムのポイントスプレッド機能を測定します。pH 7.5 の屈折率マッチングソリューションを使用し、1%のアガロースをマッチング溶液に溶解します。クリアした成人マウスの心臓サンプルを屈折率マッチング溶液に入れ、1%のアガロースを溶解します。次いで、試料をホウケイ酸ガラスチューブに挿入し、アガロースを室温で固化させます。3D プリント ABS チャンバ内でサンプルの動きと向きを制御するために、3D 電動トランスレーショナル ステージをホウケイ酸ガラスチューブに取り付けます。サンプルをガウスビームの中心に配置し、デュアル照明システムで作成します。次に、sCMOSカメラの取得速度を毎秒30フレームに設定します。モーターコントローラを使用して、サンプルを軸方向に1ミリメートル移動し、1ミリメートルずつ画像を取得します。サンプル全体がイメージ化されるまで続けます。視覚化ソフトウェアを使用して、取得した画像をスタックします。これらのイメージ スタックを使用して 3-D イメージを開発します。これを実現するために、先に決定した点広がり関数をデコンボルブし、取得した画像スタックに利用します。最後に、ピクセルしきい値の強度値を設定して、心臓の輪郭を観察し、このグレースケールの強度に基づいて画像に疑似色を追加します。出生後1日目には、弁、心房、心室、孔雀の筋肉、および線維柱を視覚化することができます。7日目の出生後には、特徴はさらに定義されています。心房、心室、心室腔の寸法、心室の壁の厚さはすべて明らかです。心臓内の心筋細胞分化を研究するために、異種性ノックインマウスを心筋細胞を示すためにクレラベルを付けた。ラベル付けされたセルは、各平面方向にここに示されています。3 つの平面がマージされ、心臓の 3D レンダリングが作成されました。インセット内の赤い丸の領域は、透明度の技術を受け、ホウケイ酸ガラスチューブに挿入された後、2つの半透明のマウスの心臓を示しています。出生後マウスの研究に加えて、イメージングシステムは、成体マウスの心臓を研究するためにも使用することができる。ここでは、GFP のタグ付き ROMK チャンネルは 7.5 か月で表示されます。これらは主に心室壁に見られた。一度習得すると、このテクニックは1〜2分で行うことができます。この手順を試みるとき、チューブ内のサンプルの周りのすべての気泡を除去することが重要です。画像スタックの自動セグメンテーションなどの他の方法は、心血管損傷および再生に関連する追加の質問に答えるために実行することができる。その開発後、この技術は、マウスの出生後および成人発達段階における心臓アーキテクチャを研究するために研究者によって使用された。

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

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生理学的および病理学的圧力の条件に心臓弁組織を施すことのできる周期的圧力のバイオリアクターを設計されています。...

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学ぶ光シート蛍光顕微鏡によるマウス心臓の高速イメージング手法。遺伝子治療後の構造変化や気道の観察に応用でき、発生心臓学や神経学、呼吸器学の研究にも活用可能です。

マウス心臓の研究のための光シート蛍光顕微鏡

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