Name: 急性呼吸窮迫症候群のためのモデルとして豚のオレイン酸注入 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-10-26T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 6 s
Description: 学ぶオレイン酸注入によるブタの急性肺損傷誘導法。エコー誘導下の血管カニュレーションとSeldinger法を用いてARDSモデルを構築し、病態生理の解明と新規治療法の評価に貢献します。

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著者の優れたテクニカル サポート ダグマー Dirvonskis を感謝したいです。

ここで説明したすべての動物実験 (Landesuntersuchungsamt ラインラント = プファルツ、コブレンツ、ドイツ; 承認番号 G14-1-077) 機関および州動物の世話委員会によって承認されているし、のガイドラインに従って実施された、実験動物科学のヨーロッパおよびドイツの社会。27 29 kg、2-3 か月の年齢の麻酔雄豚 (sus イノシシ イエバエ) で実験を行った。
1. 麻酔、気管挿管および機械的人工換気
<ol><li>誤嚥のリスクを軽減、ストレスを軽減する水への無料アクセスを許可するのに麻酔する前に 6 時間、食べ物を与えない。</li>
	<li>鎮静のため注入ケタミン (4 mg kg-1) とアザペロン首には、(8 mg kg-1) の組み合わせ、または豚の臀筋筋肉内注射 (20 G) 針動物動物のボックスの中。 注意: は、動物を操作するときに手袋を使用します。</li>
	<li>アルコールで局所を消毒後耳静脈の末梢静脈カテーテル (20 G) を挿入します。</li>
	<li>フェンタニル (4 μ g kg-1)、プロポ フォール (3 mg kg-1) とアトラクリウムベシル (0.5 mg kg-1) 麻酔導入の静脈内注入します。</li>
	<li>豚には、呼吸が停止したら、担架の上に仰臥位に配置し、包帯で固定します。</li>
	<li>耳のいずれか、または動物の尾にセンサーをクリップして末梢の酸素飽和度 (スポ2) の監視を開始します。</li>
	<li>換気換気犬、サイズ 2、ピーク吸気圧力 20 cm H2O 以下のマスクと豚、肯定的な終わり 5 cm H2O, 14-16 最低の吸入気酸素分画 (FiO2) 呼吸の呼気圧力 (のぞき見)1.0。</li>
	<li>電解質のバランスの取れたソリューションを持続注入を開始 (5 mLkg-1 h-1)、プロポ フォール (8-12 mg kg-1 h-1) とフェンタニル (0.1 0.2 mg kg-1 h-1) 麻酔を維持するために。</li>
	<li>、挿管の準備、動物に適した一般的な気管内チューブ (e.g。、25-30 kg、気管内チューブ内径 (ID) の 6-7 mm) 気管内チューブ イントロデューサーと Macintosh ブレード 4 一般的な喉頭鏡で武装します。 注: 2 人、挿管を考えるのために必要です。</li>
	<li>人 1: 片方の手で舌を抜くし、背側の鼻を押します。</li>
	<li>人 2: 喉頭鏡を挿入し、喉頭蓋が見えてくるまで、いつものように進みます。</li>
	<li>声帯を視覚化する腹側喉頭鏡を引き出します。 注: 時々 喉頭蓋「スティック」柔らかい口蓋へ。この場合、管の先端でそれを動員します。</li>
	<li>声帯からチューブを挿入し、イントロデューサーを抜きます。</li>
	<li>10 ml の空気を注射器でチューブのカフをブロックします。</li>
	<li>人工呼吸器のチューブを接続します。</li>
	<li>カプノグラフィーと両肺聴診の等しい換気二酸化炭素 (CO2) の正規の呼気によるチューブの適切な位置を確認します。</li>
	<li>機械的人工換気を開始 (一回換気量 FiO2 94-9817、呼吸終末二酸化炭素 (etCO 潮汐圧を維持する間末梢の酸素飽和度 (スポ2) を保つために、肯定的なのぞき見 5 cm H20 6 8 mL/kg2) 35-45 mmHG の間)。</li>
</ol>2. 計装
<ol><li>必要な船を catheterizing の大腿骨領域の上肌をストレッチするために包帯で後肢を撤回します。</li>
	<li>3 イントロデューサー シース、セルジンガー針、10 mL シリンジ 5 mL シリンジを準備 (5 Fr、6 Fr、8 Fr) 3 ポートと中心静脈カテーテル、ガイドワイヤーで (7 Fr、30 cm) ガイドワイヤーと肺動脈カテーテル (7, 5 Fr 110 cm)。</li>
	<li>気前よく皮膚消毒拭き手法を適用することで大腿骨領域を消毒します。</li>
	<li>完全に生理食塩水をカテーテルを塗りつぶします。</li>
	<li>右鼠径靱帯と大腿血管スキャン超音波プローブを配置します。</li>
	<li>長い軸の大腿動脈を完全に視覚化するプローブ 90 ° を回します。</li>
	<li>インライン超音波可視化の下で右の大腿動脈を cannulate、セルジンガー針。 注意: 超音波の有無、血管アクセスする異なる方法があります。超音波ガイド下の血管穿刺は、このモデルの必要はありません。</li>
	<li>鮮やかな血が流れ出るを脈動、指導ワイヤーを導入する、針を撤回します。</li>
	<li>大腿静脈を視覚化し、針とラインで超音波可視化と連続吸引の下静脈を cannulate します。</li>
	<li>静脈血が aspirable と、注射器を外し、指導ワイヤーを挿入します。</li>
	<li>針を撤回します。</li>
	<li>超音波で線の位置を確認します。</li>
	<li>動脈のイントロデューサー シースを挿入 (5 Fr) と (Seldinger の手法の詳細については、公開方法18を参照してください) のセルジンガー法による中心静脈カテーテル。</li>
	<li>反対側の動脈、静脈穿刺を繰り返し、上記のように Seldinger´s 技術を用いたイントロデューサー シースを挿入 (動脈 6 Fr、静脈の 8 Fr)。</li>
	<li>監視装置に適したトランスデューサー システムに動脈イントロデューサ シースと中心静脈カテーテルを接続します。</li>
	<li>大気中に 3 つの方法活栓を開いて、雰囲気 (ゼロ) に対して侵襲的モニタリングを調整し、モニターのすべてをゼロを押します。</li>
	<li>血行動態を測定する 3 活栓を戻す。</li>
	<li>血行動態を監視を開始します。</li>
	<li>右心房の高さにすべての圧力トランスデューサーを配置します。</li>
	<li>プロポ フォールの投与を切り替える (8-12 mg kg-1 h-1) とフェンタニル (0.1 0.2 mg kg-1 h-1) 麻酔を維持するために中心静脈ラインのポートの 1 つに。</li>
</ol>3 酸素分圧 (pO2) の超高速測定
注: pO2超高速 pO2プローブの測定-測定は義務ではありませんが、pO2 にリアルタイムの変更を可視化することができます。
<ol><li>ソフトウェアNeoFox ビューアーを開き、[オプション] をクリックします。</li>
	<li>校正タブを選択し、オープン校正ボタンをクリックします。</li>
	<li>校正ファイルを選択し、開くとダウンロード] をクリックします。</li>
	<li>はいをクリックしてポップアップ ウィンドウを確認します。</li>
	<li>オプションダイアログを開きます。</li>
	<li>一点校正を校正タブを選択してクリックします。</li>
	<li>温度フィールドにフィールド酸素は21%温度を入力します。</li>
	<li>使用現在タウとダウンロードをクリックします。その後、はいをクリックしてポップアップ ウィンドウを確認します。</li>
	<li>PO2左動脈イントロデューサー シースからの超高速測定用のプローブを挿入します。</li>
</ol>4. 肺動脈カテーテルを挿入します。
<ol><li>損傷の肺動脈カテーテルのバルーンを確認してください。</li>
	<li>監視装置に適したトランスデューサー システムに接続します。</li>
	<li>雰囲気とモニターには「 0 」を押してください。 3 つの方法活栓を開いて、肺動脈圧の雰囲気 (0) に対して監視を調整します。</li>
	<li>肺動脈圧を測定する 3 つの方法活栓を引き返します。</li>
	<li>肺動脈圧の監視を開始します。</li>
	<li>左静脈イントロデューサー シース (バルーンのデフレート) を介して肺動脈カテーテルを挿入します。</li>
	<li>肺動脈カテーテルは、イントロデューサー シースを通過した、空気の 1 mL と、バルーンを膨らませます。</li>
	<li>肺動脈カテーテルを進める、典型的な波形 (静脈、右心房、右心室、肺動脈、肺毛細血管楔入圧) を監視します。肺動脈カテーテルのすべてのポートを通じて血液を吸引する可能性がある場合は、バルーンとチェックを縮小します。 注: 肺動脈カテーテルを挿入する方法の詳細な手順は、以前の文書19を参照してください。</li>
</ol>5. 肺傷害の誘導
<ol><li>オレイン酸溶液を調製: 0.1 mL kg-1オレイン酸 20 mL の注射器し、3 方法活栓に接続します。</li>
	<li>別の 20 mL シリンジに血液 2 mL を取る、生理食塩水を両方シリンジ 20 mL の合計ボリュームに追加します。</li>
	<li>3 方法活栓にも 2 回目の注射器を接続します。 注意: は、オレイン酸を使用して場合、手袋、眼の保護を使用します。</li>
	<li>ボーラス注入 (10 μ G/ml)、連続的な注入では、ノルエピネフリン (0.1 mg/mL) を準備します。</li>
	<li>中心静脈カテーテルのポートの 1 つにそれを起動することがなくノルエピネフリン注射器のポンプを接続します。</li>
	<li>超高速 pO2を開始-測定。</li>
	<li>肺傷害の誘導の前にすべての関連するパラメーターの値 (基準) を記録します。</li>
	<li>1.0 F私O2を設定し、肺リクルートメント手技を行います (プラトー圧 40 cm H2O 10 s)。</li>
	<li>3 方法活栓を肺動脈カテーテルの近位のポートに接続します。</li>
	<li>他のすべての時間を混合し、3-方法-活栓経由に 1 つの注射器からそれを繰り返し注入して徹底的にオレイン酸と血液/生理食塩水の混合物を混ぜます。</li>
	<li>均一なエマルジョンは、エマルジョンの 2 mL を注入され、混合を続行します。 注: 混合を停止すると、乳剤が、親油性と親水性の部分に分けることができます。</li>
	<li>密接にオレイン酸の注入後血行動態を監視し、手元のノルエピネフリンを維持します。必要に応じて、ボーラス注入 (10-100 μ g) または平均血圧 60 mmHg 以上を保つために継続的な注入とノルエピネフリンを与えます。</li>
	<li>ソリューションごとの 3 分の 2 mL の注入、動脈の酸素分圧 (パオ2) までを繰り返す/FiO2-比が 200 mmHg 以下です。</li>
	<li>注射器がパオ2/FiO2の前に空の場合-比は 100 と 200 の mmHg の間、手順 5.1 2 より多くの注射器を準備します。</li>
	<li>30 分待って、パオ2/FiO2の再評価-比。まだ 200 mmHg、手順を繰り返します 5.5-5.8 までパオ2/FiO2-100 と 200 の mmHg の間比が落ちる。</li>
	<li>場合はパオ2/FiO2-比は 100 と 200 の mmHg の間、30 分待って、もう一度確認します。</li>
	<li>それは 200 mmHg 以下永続的実験/治療を開始、それ以外の場合手順 5.1 2 より多くの注射器を準備し、手順 5.5 5.9 を繰り返します。</li>
	<li>ARDS ネットワーク20からの提案によると換気を設定します。</li>
</ol>6. 実験と安楽死の末
<ol><li>深い麻酔では動物を安楽死さらに継続的な麻酔とプロポ フォールの 5 分注入 200 mg と 40 モルの塩化カリウムを待つフェンタニル 0.5 mg を注入。</li>
</ol>

<ol><li>Ashbaugh, D. G., Bigelow, D. B., Petty, T. L., Levine, B. E. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/4143721">Acute respiratory distress in adults.</a> The Lancet. 2 (7511), 319-323 (1967).</li>
<li>Brower, R. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ventilation+with+lower+tidal+volumes+as+compared+with+traditional+tidal+volumes+for+acute+lung+injury+and+the+acute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Ventilation with lower tidal volumes as compared with traditional tidal volumes for acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome.</a> The New England Journal of Medicine. 342 (18), 1301-1308 (2000).</li>
<li>Briel, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Higher+vs+lower+positive+end-expiratory+pressure+in+patients+with+acute+lung+injury+and+acute+respiratory+distress+syndrome%3A+systematic+review+and+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Higher vs lower positive end-expiratory pressure in patients with acute lung injury and acute respiratory distress syndrome: systematic review and meta-analysis.</a> JAMA. 303 (9), 865-873 (2010).</li>
<li>Bellani, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology%2C+Patterns+of+Care%2C+and+Mortality+for+Patients+With+Acute+Respiratory+Distress+Syndrome+in+Intensive+Care+Units+in+50+Countries%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Epidemiology, Patterns of Care, and Mortality for Patients With Acute Respiratory Distress Syndrome in Intensive Care Units in 50 Countries.</a> JAMA. 315 (8), 788-800 (2016).</li>
<li>Chiumello, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+support+in+patients+with+acute+respiratory+distress+syndrome%3A+an+expert+opinion%5BTitle%5D)+AND+%22Critical+Care%22%5BJournal%5D)">Respiratory support in patients with acute respiratory distress syndrome: an expert opinion.</a> Critical Care. 21 (1), 240(2017).</li>
<li>Barnes, T., Zochios, V., Parhar, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Re-examining+Permissive+Hypercapnia+in+ARDS%3A+A+Narrative+Review%5BTitle%5D)+AND+%22Chest%22%5BJournal%5D)">Re-examining Permissive Hypercapnia in ARDS: A Narrative Review.</a> Chest. , (2017).</li>
<li>Matute-Bello, G., Frevert, C. W., Martin, T. R. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18621912">Animal models of acute lung injury.</a> American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 295 (3), 379-399 (2008).</li>
<li>Kobayashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thromboxane+A2+exacerbates+acute+lung+injury+via+promoting+edema+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Thromboxane A2 exacerbates acute lung injury via promoting edema formation.</a> Scientific Reports. 6, 32109(2016).</li>
<li>Tian, X., Liu, Z., Yu, T., Yang, H., Feng, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ghrelin+ameliorates+acute+lung+injury+induced+by+oleic+acid+via+inhibition+of+endoplasmic+reticulum+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Life+Sciences%22%5BJournal%5D)">Ghrelin ameliorates acute lung injury induced by oleic acid via inhibition of endoplasmic reticulum stress.</a> Life Sciences. , (2017).</li>
<li>Kamuf, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endexpiratory+lung+volume+measurement+correlates+with+the+ventilation%2Fperfusion+mismatch+in+lung+injured+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Respiratory+Research%22%5BJournal%5D)">Endexpiratory lung volume measurement correlates with the ventilation/perfusion mismatch in lung injured pigs.</a> Respiratory Research. 18 (1), 101(2017).</li>
<li>Du, G., Wang, S., Li, Z., Liu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sevoflurane+Posttreatment+Attenuates+Lung+Injury+Induced+by+Oleic+Acid+in+Dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesia+%26+Analgesia%22%5BJournal%5D)">Sevoflurane Posttreatment Attenuates Lung Injury Induced by Oleic Acid in Dogs.</a> Anesthesia & Analgesia. 124 (5), 1555-1563 (2017).</li>
<li>Prat, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low-Dose+Heparin+Anticoagulation+During+Extracorporeal+Life+Support+for+Acute+Respiratory+Distress+Syndrome+in+Conscious+Sheep%5BTitle%5D)+AND+%22Shock%22%5BJournal%5D)">Low-Dose Heparin Anticoagulation During Extracorporeal Life Support for Acute Respiratory Distress Syndrome in Conscious Sheep.</a> Shock. 44 (6), 560-568 (2015).</li>
<li>Goncalves-de-Albuquerque, C. F., Silva, A. R., Burth, P., Castro-Faria, M. V., Castro-Faria-Neto, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+Respiratory+Distress+Syndrome%3A+Role+of+Oleic+Acid-Triggered+Lung+Injury+and+Inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Mediators+of+Inflammation%22%5BJournal%5D)">Acute Respiratory Distress Syndrome: Role of Oleic Acid-Triggered Lung Injury and Inflammation.</a> Mediators of Inflammation. 2015, (2015).</li>
<li>Schuster, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ARDS%3A+clinical+lessons+from+the+oleic+acid+model+of+acute+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Respiratory+and+Critical+Care+Medicine%22%5BJournal%5D)">ARDS: clinical lessons from the oleic acid model of acute lung injury.</a> American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 149 (1), 245-260 (1994).</li>
<li>Goncalves-de-Albuquerque, C. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oleic+acid+induces+lung+injury+in+mice+through+activation+of+the+ERK+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Mediators+of+Inflammation%22%5BJournal%5D)">Oleic acid induces lung injury in mice through activation of the ERK pathway.</a> Mediators of Inflammation. 2012, 956509(2012).</li>
<li>Ballard-Croft, C., Wang, D., Sumpter, L. R., Zhou, X., Zwischenberger, J. B. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22244649">Large-animal models of acute respiratory distress syndrome.</a> The Annals of Thoracic Surgery. 93 (4), 1331-1339 (2012).</li>
<li>O'Driscoll, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BTS+guideline+for+oxygen+use+in+adults+in+healthcare+and+emergency+settings%5BTitle%5D)+AND+%22Thorax%22%5BJournal%5D)">BTS guideline for oxygen use in adults in healthcare and emergency settings.</a> Thorax. 72, Suppl 1 90(2017).</li>
<li>Ettrup, K. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basic+surgical+techniques+in+the+Gottingen+minipig%3A+intubation%2C+bladder+catheterization%2C+femoral+vessel+catheterization%2C+and+transcardial+perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Basic surgical techniques in the Gottingen minipig: intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion.</a> Journal of Visualized Experiments. (52), 2652(2011).</li>
<li>Russ, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lavage-induced+Surfactant+Depletion+in+Pigs+As+a+Model+of+the+Acute+Respiratory+Distress+Syndrome+%28ARDS%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Lavage-induced Surfactant Depletion in Pigs As a Model of the Acute Respiratory Distress Syndrome (ARDS).</a> Journal of Visualized Experiments. (115), 53610(2016).</li>
<li>Brower, R. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Higher+versus+lower+positive+end-expiratory+pressures+in+patients+with+the+acute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Higher versus lower positive end-expiratory pressures in patients with the acute respiratory distress syndrome.</a> The New England Journal of Medicine. 351 (4), 327-336 (2004).</li>
<li>Hartmann, E. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+respiratory+rate+and+end-expiratory+pressure+variation+on+cyclic+alveolar+recruitment+in+an+experimental+lung+injury+model%5BTitle%5D)+AND+%22Critical+Care%22%5BJournal%5D)">Influence of respiratory rate and end-expiratory pressure variation on cyclic alveolar recruitment in an experimental lung injury model.</a> Critical Care. 16 (1), (2012).</li>
<li>Hartmann, E. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhalation+therapy+with+the+synthetic+TIP-like+peptide+AP318+attenuates+pulmonary+inflammation+in+a+porcine+sepsis+model%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Pulmonary+Medicine%22%5BJournal%5D)">Inhalation therapy with the synthetic TIP-like peptide AP318 attenuates pulmonary inflammation in a porcine sepsis model.</a> BMC Pulmonary Medicine. 15, 7(2015).</li>
<li>Julien, M., Hoeffel, J. M., Flick, M. R. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/3949648">Oleic acid lung injury in sheep.</a> Journal of Applied Physiology. 60 (2), 433-440 (1986).</li>
<li>Wiener-Kronish, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+of+pleural+effusions+to+increased+permeability+pulmonary+edema+in+anesthetized+sheep%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Relationship of pleural effusions to increased permeability pulmonary edema in anesthetized sheep.</a> Journal of Clinical Investigation. 82 (4), 1422-1429 (1988).</li>
<li>Yahagi, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+molecular+weight+dextran+attenuates+increase+in+extravascular+lung+water+caused+by+ARDS%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Emergency+Medicine%22%5BJournal%5D)">Low molecular weight dextran attenuates increase in extravascular lung water caused by ARDS.</a> American Journal of Emergency Medicine. 18 (2), 180-183 (2000).</li>
<li>Eiermann, G. J., Dickey, B. F., Thrall, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polymorphonuclear+leukocyte+participation+in+acute+oleic-acid-induced+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Review+of+Respiratory+Disease%22%5BJournal%5D)">Polymorphonuclear leukocyte participation in acute oleic-acid-induced lung injury.</a> The American Review of Respiratory Disease. 128 (5), 845-850 (1983).</li>
<li>Townsley, M. I., Lim, E. H., Sahawneh, T. M., Song, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+chemical+and+high+vascular+pressure+injury+in+isolated+canine+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Interaction of chemical and high vascular pressure injury in isolated canine lung.</a> Journal of Applied Physiology. 69 (5), 1657-1664 (1990).</li>
<li>Young, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sodium+nitroprusside+mitigates+oleic+acid-induced+acute+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22The+Annals+of+Thoracic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Sodium nitroprusside mitigates oleic acid-induced acute lung injury.</a> The Annals of Thoracic Surgery. 69 (1), 224-227 (2000).</li>
<li>Katz, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catalase+pretreatment+attenuates+oleic+acid-induced+edema+in+isolated+rabbit+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Catalase pretreatment attenuates oleic acid-induced edema in isolated rabbit lung.</a> Journal of Applied Physiology. 65 (3), 1301-1306 (1988).</li>
<li>El-Haddad, H., Jang, H., Chen, W., Soubani, A. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+ARDS+Severity+and+Etiology+on+Short-Term+Outcomes%5BTitle%5D)+AND+%22Respiratory+Care%22%5BJournal%5D)">Effect of ARDS Severity and Etiology on Short-Term Outcomes.</a> Respiratory Care. 62 (9), 1178-1185 (2017).</li>
<li>Wang, H. M., Bodenstein, M., Markstaller, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Overview+of+the+pathology+of+three+widely+used+animal+models+of+acute+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22European+Surgical+Research%22%5BJournal%5D)">Overview of the pathology of three widely used animal models of acute lung injury.</a> European Surgical Research. 40 (4), 305-316 (2008).</li>
</ol>

すべての著者は金融やその他の利害を開示ないです。

この資料では、重症 ARDS のさまざまな側面を研究するためのモデルとしてオレイン酸による肺傷害の 1 つの方法について説明します。エマルジョン23,24,25,26,27,28 の異なる温度、異なる注射部位別エマルジョンと他のプロトコルもあります。 ,29。本手法では、肺の機能の再現性と安定した悪化を提供しています。オレイン酸の効果は用量依存、パオ2/FiO2の個々 のしきい値を定義する必要がある-比率、希望に応じて研究、オレイン酸この比率を達成するために必要な量を見つけます。
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急性呼吸窮迫症候群 (ARDS) は広く研究されています最初の説明から約 50 年前集中治療症候群1。この研究の病態生理の理解につながった、ARDS 患者ケア向上と結果2,3の結果の開発を引き起こします。それにもかかわらず、ARDS の患者の死亡率の約 35-40% と非常に高いまま4,5,6。ICU 入試の約 10% および機械的人工換気を必要とする ICU 患者の 23% は ARDS のためという事実は、この分野における更なる研究との関連を強調します。
動物モデルは、病態生理学的変化と異なった種類の病気のための潜在的な治療法を検討する研究で広く使用されます。ARDS は複雑であるためこの疾患を模倣する単一の動物モデルですが7のさまざまな側面を表す別のモデルがありません。1 つの確立されたモデルは、オレイン酸注入 (OAI)-肺傷害を誘発します。このモデルは、さまざまな動物、羊12犬11、豚10ラット9マウス8などに使用されています。オレイン酸は不飽和脂肪酸と健康な人間の13体の最も一般的な脂肪酸です。人間の脂肪組織や細胞膜プラズマ13の存在です。13血流を介して運ばれながら生理、それはアルブミンにバインドされます。血流中の脂肪酸の増加されたレベルは異なる病態と血清脂肪酸レベル13でいくつかの疾患の相関の重要度に関連付けられます。オレイン酸 ARDS モデルは、外傷患者14に見られるように脂質塞栓による ARDS を再現する試みで開発されました。オレイン酸は、肺13とトリガーの好中球の集積のための15、炎症性仲介人の生産の16、および細胞死13生得免疫受容体に対する直接的な効果を持っています。生理的に、オレイン酸は急速に進んで低酸素血症、肺動脈圧と肺血管外水分の蓄積の増加を誘導します。さらに、低血圧、心筋抑制7を誘導します。このモデルの欠点は、中心静脈アクセスの必要性、不審な機械論的妥当性および急速な低酸素血症や心臓うつ病による潜在的な致命的な進行状況です。他のモデルに比べてこのモデルの利点は、小規模および大規模な動物、ARDS、オレイン酸の注入後の ARDS 急性発症の病態生理学的メカニズムの有効な再現性で使いやすさとを勉強することは、ARDS を分離ような全身性炎症なし、多くの他の敗血症は7をモデル化します。次の記事では、豚のオレイン酸による肺傷害の詳細な説明を与えるし、肺機能の妥協点の安定性を評価する代表的なデータを提供します。OAI による肺傷害のための異なるプロトコルがあります。プロトコルは、ここで確実に急性肺障害を誘発することが用意されています。

<table><tbody><tr><td>3方向ストップコックブルー</td><td>Becton Dickinson Infusion Therapy AB ヘルシンボリ、スウェーデン</td><td>394602</td><td></td></tr><tr><td>3方向ストップコックレッド</td><td>Becton Dickinson Infusion Therapy AB ヘルシンボリ、スウェーデン</td><td>394605</td><td></td></tr><tr><td>Atracurium</td><td>Hikma Pharma GmbH , Martinsried</td><td>4262659</td><td></td></tr><tr><td>Canula 20 G</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain</td><td>301300</td><td></td></tr><tr><td>Datex Ohmeda S5</td><td>GE Healthcare Finland Oy, Helsinki, Finland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Desinfection</td><td>Sch&uuml;lke &Mayr GmbH, Germany</td><td>104802</td><td></td></tr><tr><td>Endotracheal tube</td><td>Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malaysia</td><td>112482</td><td></td></tr><tr><td>気管内チューブ紹介剤</td><td>R&uuml;sch</td><td>5033062</td><td></td></tr><tr><td>Engstr&ouml;m Carestation</td><td>GE Heathcare, Madison USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fentanyl</td><td>Janssen-Cilag GmbH, Neuss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gloves</td><td>Paul Hartmann, Germany</td><td>9422131</td><td></td></tr><tr><td>Incetomat-line 150 cm</td><td>Fresenius, Kabi Germany GmbH</td><td>9004112 Ketamine</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Hameln Pharmaceuticals GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Laryngoscope</td><td>Teleflex Medical Sdn. Bhd.、マレーシア</td><td>671067-000020</td><td></td></tr><tr><td>論理圧力監視システム</td><td>Smith-Medical Germany GmbH</td><td>MX9606</td><td></td></tr><tr><td>Logicath 7 Fr 3-lumen 30cm</td><td>Smith-Medical Germany GmbH</td><td>MXA233x30x70-E</td><td></td></tr><tr><td>Masimo Radical 7</td><td>Masimo Corporation Irvine、Ca 92618 USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>換気犬用マスク</td><td>Henry Schein、ドイツ</td><td>730-246</td><td></td></tr><tr><td>Neofox</td>キット <td>オーシャンオプティクス Largo, FL USA</td><td>Neofox-Kit-Probe</td><td></td></tr><tr><td>Norepinephrine</td><td>Sanofi- Aventis, Seutschland GmbH</td><td>73016</td><td></td></tr><tr><td>Oleic</td><td>acid Applichem GmbH Darmstadt, Germany</td><td>1,426,591,611</td><td></td></tr><tr><td>Original Perfusor syringe 50ml Luer Lock</td><td>B.Braun Melsungen AG, Germany</td><td>8728810F</td><td></td></tr><tr><td>PA-Katheter Swan Ganz 7,5 Fr 110cm</td><td>Edwards Lifesciences LLC, Irvine CA, USA</td><td>744F75</td><td></td></tr><tr><td>経皮的シースイントロデューサーセット 8.5 und 9 Fr, 10 cm with integral semostasis valve/sideport</td><td>Arrow international inc. Reading, PA, USA</td><td>AK-07903</td><td></td></tr><tr><td>Perfusor FM Braun</td><td>B.Braun Melsungen AG, Germany</td><td>8713820</td><td></td></tr><tr><td>Potassium</td><td>chloride Fresenius, Kabi Germany GmbH</td><td>6178549</td><td></td></tr><tr><td>Propofol 2%</td><td>Fresenius, Kabi Germany GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Saline</td><td>B.Braun Melsungen AG, Germany</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sonosite Micromaxx Ultrasoundsystem</td><td>Sonosite Bothell, WA, USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stainless Macintosh Size 4</td><td>Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malaysia</td><td>670000</td><td></td></tr><tr><td>Sterofundin</td><td>B.Braun Melsungen AG, Germany</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stresnil 40mg/ml</td><td>Lilly Germany GmbH, Abteilung Elanco Animal Health</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Syringe 10 mL</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain</td><td>309110</td><td></td></tr><tr><td>Syringe 2 mL</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain</td><td>300928</td><td></td></tr><tr><td>Syringe 20 mL</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain</td><td>300296</td><td></td></tr><tr><td>Syringe 5 mL</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain</td><td>309050</td><td></td></tr>静脈<tr><td>カテーテル 22G</td><td>B.Braun Melsungen AG, Germany</td><td>4269110S-01</td><td></td></tr></tbody></table>

急性呼吸窮迫症候群のためのモデルとして豚のオレイン酸注入

Oleic Acid-Injection in Pigs As a Model for Acute Respiratory Distress Syndrome

急性呼吸窮迫症候群は、2.2% と集中治療室患者の 19% の間で及ぶ発生率と関連する集中治療病気です。最後の十年にわたって治療が進歩したにもかかわらず、ARDS 患者はまだ 35 と 40% の間の死亡率を苦しみます。まだ、ARDS の患者の結果を改善するためにさらなる研究の必要性があります。1 つの問題は、急性呼吸窮迫症候群の複雑な病態をまねることができる単一の動物モデルがないが、それのさまざまな部分を勉強するいくつかのモデルが存在します。オレイン酸注入 (OAI)-誘発肺傷害は換気戦略を研究するための確立されたモデル動物における肺力学と換気/血流分布。OAI は、大幅な低下ガス交換肺力学の劣化と歯茎硬キャピラリー ・ バリアの破壊につながります。このモデルの欠点は、このモデルのより小さい動物モデルを中心に挑戦する中心静脈アクセスの必要性論争機構の関連性です。概要、OAI による肺の損傷は小規模および大規模な動物で再現可能な結果をもたらす、それ故に ARDS を勉強の最適モデルを表します。それにもかかわらず、さらなる研究が ARDS のすべての部分を模倣し、今日ある別のモデルに関連付けられている問題を欠いているモデルを見つけることが必要です。

パオ2/FiO2-オレイン酸 (図 1) の分別されたアプリケーション後比率が減少します。提示における 0.185 ± 0.01 ml kg-1オレイン酸肺傷害の誘導の必要があります。すべての動物を示した肺損傷、それ以上の時間での品種の誘導後障害酸素コース。1 と 3 は動物、ほとんど変動が; 1 つのレベルにとどまっています。動物 2、4 の動物は一定の上昇を示している間、最後に、減少続く、初期の増加を遵守します。それにもかかわらず、我々 は 6 h 後 4 のすべての動物に酸素でマークされた障害を見つけます。したがって、パオ2/FiO2を密接に監視する必要は-肺傷害を誘導しながら比。我々 は、超高速 pO2を使用して-パオ2リアルタイム21の増減を監視するプローブ。別のオプションは、SpO2</sub...

この記事ではオレイン酸の中央静脈注射による豚の急性肺傷害を誘発するプロトコルを提案します。これは急性呼吸窮迫症候群 (ARDS) を研究するための動物モデルを確立です。

The acute respiratory distress syndrome is a relevant intensive care disease with an incidence ranging between 2.2% and 19% of intensive care unit ...

この方法は、この疾患の新しい治療オプションの開発と評価のためにARDS中に起こる病態生理学的変化に関する重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、ヒトARDSで観察された基本的な病理学的変化を再現することです。超音波誘導器械使用のために、実験豚の右のりうる靭帯に超音波の調査を置き、大腿骨の血管をスキャンする。プローブを90度回して長い軸で大腿動脈を完全に視覚化し、セルディンガーの針を使用して、インライン超音波視覚化の下で右大腿動脈をカニュール化します。明るい血液を脈動させると、誘導ワイヤーを導入し、針を引き込みます。超音波で視覚化することによって、セルディンガーのワイヤーの位置が正しいことを確認してください。大腿静脈を視覚化し、針で連続的な吸引でインライン超音波撮影の下で静脈をカニューレート.静脈血が吸引可能な場合は、セルディンガーのワイヤーを挿入し、針を引き込みます。セルディンガーの技術を使用して、5フランス語の動脈導入者シースと必須の静脈カテーテルを挿入し、対応する三方ストップコックを戻します。肺動脈カテーテルを挿入する前に、それが正常に動作していることを確認し、左静脈導入者シースを介して挿入します。肺動脈カテーテルが導入者の鞘を通過した場合、気球を1ミリリットルの空気で膨らませ、典型的な波形をモニタリングしながら肺動脈カテーテルを進める。次に、バルーンを収縮させ、血液が肺動脈カテーテルのすべてのポートを通して吸引できるかどうかを確認します。次に、右動脈導入者鞘を通して部分酸素圧の超高速測定のためにプローブを挿入する。肺損傷を誘発するには、1キログラム当たり0.1ミリリットルのオレイン酸で20ミリリットルの注射器を1つ、2ミリリットルの注射器を2ミリリットルの新しい血液でロードする。血液で注射器に生理食塩水を加え、両方の注射器の総容量20ミリリットルにし、両方の注射器を三方ストップコックに接続します。ノルエピネフリンシリンポンプを中央静脈カテーテルの1つのポートに接続し、超高速の偏酸素圧測定を開始します。関連するすべてのパラメータのベースライン値を記録し、インスパイアされた酸素の割合を 1.0 に設定します。肺の募集の操縦を行い、肺動脈カテーテルの近位ポートに三方向の停止コックを接続します。次に、オレイン酸と血液生理食音の混合物を注入し、1つの注射器からもう一方の注射器から他の注射器に繰り返し、三方ストップコックを介して溶液を徹底的に混合する。均質なエマルジョンが達成されたら、2ミリリットルのエマルジョンを中央静脈カテーテルに注入し、混合を続ける。注射後の血行力学を注意深く監視し、ノルエピネフリンを10~100マイクログラムボーラス注射として与え、平均動脈圧を60ミリメートル以上の水銀を維持する必要があります。2ミリリットルのオレイン酸溶液

oleic-acid-injection-pigs-as-model-for-acute-respiratory-distress

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

麻酔したブタにおける反復肺洗浄液は、ヒト急性呼吸窮迫症候群（ARDS）の主要な側面に似た肺損傷を引き起こします。この目的のために肺を繰り返し、37℃で0.9％食塩水でlavagedされます。プロトコルの目標は、ARDSの研究のためのガス交換と血行動態の再現性の緩和です。...

急性呼吸窮迫症候群（ARDS）のモデルとして、ブタにおける洗浄によって誘発される界面活性剤枯渇

ハロゲン化剤、イヨフルランおよびセボフルランで沈下を受ける子豚における塩酸誘発急性呼吸窮迫症候群(ARDS)のモデルを、吸入集中治療セデに使用される装置を通じて説明する。このモデルは、肺損傷および修復に関するハロゲン化剤の生物学的メカニズムを調べるのに使用することができる。...

集中治療室型装置による急性呼吸窮迫症候群の豚モデルにおけるハロゲン化剤の送達

本プロトコルは、急性呼吸窮迫症候群(ARDS)を模倣するためにオレイン酸を使用するマウスの肺損傷モデルについて記述する。このモデルは、浮腫の炎症性メディエーターを増加させ、肺コンプライアンスを低下させます。オレイン酸は、この生理学的形態が塞栓症のリスクを回避するため、塩の形態(オレイン酸)で使用されます。...

オレイン酸誘発性急性呼吸窮迫症候群モデルマウス

麻酔をかけた成体ブタの肺動脈にオレイン酸を連続的に注入すると、急性呼吸不全が誘発され、急性呼吸代償不全時の制御実験が可能になります。...

オレイン酸の持続注入による急性呼吸不全のブタモデル

我々は低圧吸引を使用して気管支鏡検査および気管支肺胞洗浄のための研究手法を説明します。技術が肺の気管支表面から免疫細胞を採取するために使用される。局所麻酔薬と軽度の意識下鎮静（ミダゾラム）が使用されます。被験者はよく手順を容認し、最小限の副作用を経験する。...

研究のための気管支肺胞洗浄（BAL）、適切なサンプル利回りの取得

連続的な12誘導心電図（ECG）モニタリングが疑われる急性冠症候群（ACS）患者のうち、無症候性の場合であっても、一過性心筋虚血を識別することができます。この記事では、ホルター·デバイスを使用して、患者のモニタリングを開始するオフライン解析のための心電図データをダウンロードする方法と、一過性虚血を識別するために心電図ソフトウェアを利用するために私達の方法を記述する。...

連続ST部分の解析を使用した疑いのある急性冠症候群（ACS）患者において一過性心筋虚血を検出するための研究法

本研究は、肺の自然免疫応答を高め、マウスの急性肺炎球菌性肺炎に対する防御を与えるために舌下免疫療法を使用することの利便性を示しています。...

代替として舌下免疫療法は、急性呼吸器感染症に対する保護を誘導するために

このプロトコルは、ヒトで観察される酸性肺炎の病因に密接な忠実度を持つマウスに急性肺損傷を誘発します。私たちは、最大の急性非致死性低pH肺損傷を生成し、開腹気管切開と円周方向の圧力解放を組み合わせて、げっ歯類とヒトの解剖学的呼吸構造の違いを説明します。...

最大急性非致死肺損傷における急性肺損傷の結果のオープン気管切開胃酸吸引マウスモデル

この研究は、アレルギー性鼻炎および/または喘息を有する中国南部の患者のコホートにおいて、花粉アレルゲンに対する感作性を研究するための成分分析アプローチを使用するプロトコルを記載している。...

アレルギー性鼻炎および/または喘息を有する中国南部の草花花粉アレルゲンに関する研究のための成分分析による診断アプローチ

このプロトコルでは、マウスの眼球の表面に耐摩耗性を与えるし、創傷の治癒過程をその後に従うメソッドについて説明します。ハイパーカプニア...

角膜上皮摩耗眼はりのモデルとして角膜創傷治癒

学ぶオレイン酸注入によるブタの急性肺損傷誘導法。エコー誘導下の血管カニュレーションとSeldinger法を用いてARDSモデルを構築し、病態生理の解明と新規治療法の評価に貢献します。

急性呼吸窮迫症候群のためのモデルとして豚のオレイン酸注入

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