2018年9月7日
本稿では elisa 法を用いたマウスの T に依存し、T 独立免疫グロブリン (Ig) アイソタイプを特徴付けるためのプロトコルについて述べる.このメソッドは、単独で使用またはフローと組み合わせてフローサイトメトリーは T に依存し、T 独立した抗原免疫したマウスの B 細胞の Ig アイソタイプ応答の違いを識別するために研究者をできるようになります。
この方法は、抗原免疫によって誘導される依存性および非依存性の抗体応答、ならびにB細胞の活性化および胚中心反応に関する免疫学分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この手法の主な利点は、マウスのB細胞活性化と体液性免疫を直接比較することで、信頼性と定量的なIgアイソタイプ反応測定を提供することです。TNP多糖類の免疫には、マウス1匹あたり1ミリリットルのインスリン注射器に100マイクロリットルの新たに調製した抗原溶液を装填し、下臓器注射を避けるために各動物の右下象限に針を約30度の角度で挿入します。
すべてのマウスを注射したら、動物をケージに戻して、特定の病原体のない施設に収容します。適切な実験時点で、眼窩後出血により免疫した各動物から150〜200マイクロリットルの血液を採取し、サンプルを室温で1〜2時間凝固させます。インキュベーションの終了時に、凝固した血液サンプルを遠心分離し、各血栓の上部から透明な血清を滅菌済みの1.5ミリリットルの微量遠心チューブに移します。
2回目の遠心分離後、残留血栓を除去し、50マイクロリットルの血清を個々の滅菌1.5ミリリットルの微量遠心チューブに移し、摂氏マイナス80度で保存します。めっきする前に、個々の96ウェルイムノプレートに、総血清Igアイソタイプ用のマウスIgアイソタイプ特異的捕捉抗体、TNP特異的Igアイソタイプ用のTNP-38BSA抗原、または高親和性TNP特異的Igアイソタイプ用のTNP-3BSA抗原をコーティングし、コーティングしたプレートを摂氏4度で一晩インキュベートします。翌朝、ウェルあたり200マイクロリットルの洗浄バッファーでプレートを2回洗浄します。
洗浄バッファーを廃棄し、プレートをペーパータオルの山で軽くたたいて乾かします。次に、ウェルあたり200マイクロリットルのブロッキングバッファーでプレートをブロックし、室温で1時間のインキュベーションを行います。プレートがブロッキングされている間に、適切な標準液と血清希釈液、およびブロッキングバッファーを、示されているようにウェルあたり150マイクロリットルの別の未処理の96ウェルプレートに調製します。
次に、示されているようにELISAプレートを洗浄バッファーで洗浄し、希釈したIgアイソタイプ標準試料と血清サンプルをそれぞれ100マイクロリットルをELISAプレートの適切なウェルに加えます。4°Cで一晩インキュベートした後、示されているようにプレートを洗浄し、ブロッキングバッファーで希釈した適切なアルカリホスファターゼ標識アイソタイプ特異的抗体100マイクロリットルを各ウェルに加え、室温で1〜2時間のインキュベーションを行います。インキュベーションの終わりに、プレートを洗浄し、調製したばかりの基質溶液100マイクロリットルを各ウェルに加えます。
室温で次の数分間にわたって進行する反応を監視します。反応が分析に十分な堅牢性を持つようになったら、プレートをマイクロプレートリーダーにセットし、設定をクリックして波長を405ナノメートルに設定します。[OK]をクリックし、[テンプレート]をクリックして、96ウェルプレートの設定に従って、適切なブランクウェル、標準ウェル、および不明なウェルを割り当てます。
次に、最も濃縮された標準試料が約1、1.5、2、および2.5の光学密度に達したら、読み取りをクリックしてプレートを読み取り、各分析後に結果のデータファイルを保存します。免疫化がない場合、IgM、IgG2a、IgG2b、IgG3、およびIgAの基礎血清レベルの上昇は、性別および年齢が一致したB-TRAF3の同腹仔対照動物と比較して、B細胞特異的TNF受容体関連因子3またはB-TRAF3ノックアウトマウスで観察されます。TNP多糖類またはTNP-KLHによる免疫の7日後、免疫に対する胸腺非依存性Igアイソタイプ応答の分析により、骨髄系細胞特異的TRAF3ノックアウトマウスでは、同腹仔対照と比較して、胸腺非依存性TNP特異的IgG3レベルが有意に高く、胸腺依存性TNP特異的IgG2bレベルが上昇していることが明らかになりました。
さらに、TNP-KLH免疫に対する胸腺依存性マウスの一次応答および記憶応答の評価は、T細胞特異的TRAF3ノックアウトマウスにおいて、胸腺依存性IgM一次応答の部分的な減少およびIgG1一次および記憶応答の欠陥が存在することを示しています。この手順を試行する際、ELISAには通常、標準曲線の線形範囲によって定義される検出限界があるため、サンプルの複数回の希釈が必要になる場合があることを覚えておくことが重要です。この手順に続いて、フローサイトメトリーやLスポットなどの他の補完的な方法を実行して、特定の実験環境における抗体応答を包括的に理解することができます。
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本論文では、ELISAを用いてマウスにおけるT細胞依存性およびT細胞非依存性の免疫グロブリン(Ig)アイソタイプ応答を特性評価するためのプロトコルについて述べる。この手法により、抗原免疫後のB細胞介在性Igアイソタイプ応答における差異を特定することが可能となる。
このプロトコルにより、バイオ医薬品の研究者はマウスモデルにおいて胸腺依存性および胸腺非依存性の免疫グロブリン・アイソタイプ応答を定量的に解析することができ、B細胞の活性化と体液性免疫に関するメカニズム的な知見を得ることが可能です。信頼性の高いアイソタイプ特異的なELISA測定を提供することで、ワクチンおよび免疫調節剤の開発における標的バリデーションや予測的なリスク低減を支援します。本法をフローサイトメトリーなどの補完的なアッセイと組み合わせることで、トランスレーショナルな連続性が向上し、初期の創薬パイプラインにおけるgo/no-go判断に寄与します。
この手法は、初期のターゲット検証からリード化合物の同定、そして前臨床評価に至る創薬の連続的なプロセスに適合します。特に、アイソタイププロファイリングによって機能的な結果が予測される免疫調節剤やワクチンの開発において有用です。