Name: 実験で多年生の草の根、根、土壌微生物の分離と解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-07-24T13:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 31 s
Description: 学ぶ多年生草本の根、根圏、土壌微生物の分離・解析手法。DNA抽出と多様性解析により、植物遺伝子型と微生物群集の関係を明らかにする標準化されたフィールド実験プロトコルを確立します。

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この原稿の開発は、ルートおよび Rhizobiome 技術革新賞イア 1557417 国立科学財団 EPSCoR センターによってサポートされます。データ コレクションはあったネブラスカ大学リンカーン校、農業研究および開発からの資金で米国農務省からハッチの助成金でサポートされています。我々 はまた、米国農務省-アルスからのサポートを認めるし、サポートが確立し、これらのフィールドを管理する米国農務省国立食品研究所や農業から農業と食品研究イニシアチブ競争グラント号 2011-68005-30411 によって提供されました。

<ol><li>Philippot, L., Raaijmakers, J. M., Lemanceau, P., vander Putten, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Going+back+to+the+roots%3A+the+microbial+ecology+of+the+rhizosphere%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Going back to the roots: the microbial ecology of the rhizosphere.</a> Nature Reviews Microbiology. 11, 789-799 (2013).</li>
<li>Fierer, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embracing+the+unknown%3A+disentangling+the+complexities+of+the+soil+microbiome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Review+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Embracing the unknown: disentangling the complexities of the soil microbiome.</a> Nature Review Microbiology. 15 (10), 579-590 (2017).</li>
<li>Wang, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shifts+in+microbial+communities+in+soil%2C+rhizosphere+and+roots+of+two+major+crop+systems+under+elevated+CO2+and+O3%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Shifts in microbial communities in soil, rhizosphere and roots of two major crop systems under elevated CO2 and O3.</a> Scientific Reports. 7 (1), 15019(2017).</li>
<li>White, L. J., Jothibasu, K., Reese, R. N., Brözel, V. S., Subramanian, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatio+Temporal+influence+of+isoflavonoids+on+bacterial+diversity+in+the+soybean+Rhizosphere%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Plant-Microbe+Interactions%22%5BJournal%5D)">Spatio Temporal influence of isoflavonoids on bacterial diversity in the soybean Rhizosphere.</a> Molecular Plant-Microbe Interactions. 28 (1), 22-29 (2015).</li>
<li>Edwards, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure%2C+variation%2C+and+assembly+of+the+root-associated+microbiomes+of+rice%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Science+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Structure, variation, and assembly of the root-associated microbiomes of rice.</a> Proceedings of the National Academy of Science of the United States of America. 112 (8), E911-E920 (2015).</li>
<li>Lundberg, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+the+core+Arabidopsis+thaliana+root+microbiome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Defining the core Arabidopsis thaliana root microbiome.</a> Nature. 488, 86-90 (2012).</li>
<li>Bougoure, D. S., Cairney, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assemblages+of+ericoid+mycorrhizal+and+other+root-associated+fungi+from+Epacris+pulchella+%28Ericaceae%29+as+determined+by+culturing+and+direct+DNA+extraction+from+roots%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Assemblages of ericoid mycorrhizal and other root-associated fungi from Epacris pulchella (Ericaceae) as determined by culturing and direct DNA extraction from roots.</a> Environmental Microbiology. 7 (6), 819-827 (2005).</li>
<li>Doty, S. L., et al. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007%2FBF03179967">Diazotrophic endophytes of native black cottonwood and willow.</a> Symbiosis. 47 (1), 23-33 (2009).</li>
<li>Gottel, N. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+microbial+communities+within+the+endosphere+and+rhizosphere+of+populus+deltoides+roots+across+contrasting+soil+types%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Distinct microbial communities within the endosphere and rhizosphere of populus deltoides roots across contrasting soil types.</a> Applied and Environmental Microbiology. 77 (17), 5934-5944 (2011).</li>
<li>Xin, G., Glawe, D., Doty, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+three+endophytic%2C+indole-3-acetic+acid-producing+yeasts+occurring+in+Populus+trees%5BTitle%5D)+AND+%22Mycological+Research%22%5BJournal%5D)">Characterization of three endophytic, indole-3-acetic acid-producing yeasts occurring in Populus trees.</a> Mycological Research. 113, 973-980 (2009).</li>
<li>Salter, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reagent+and+laboratory+contamination+can+critically+impact+sequence-based+microbiome+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Biolology%22%5BJournal%5D)">Reagent and laboratory contamination can critically impact sequence-based microbiome analyses.</a> BMC Biolology. 12, 87(2014).</li>
<li>Gohl, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+improvement+of+amplicon+marker+gene+methods+for+increased+accuracy+in+microbiome+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Systematic improvement of amplicon marker gene methods for increased accuracy in microbiome studies.</a> Nature Biotechnology. 34 (9), 942-949 (2016).</li>
<li>Kozich, J. J., Westcott, S. L., Baxter, N. T., Highlander, S. K., Schloss, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+dual-index+sequencing+strategy+and+curation+pipeline+for+analyzing+amplicon+sequence+data+on+the+MiSeq+Illumina+sequencing+platform%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Development of a dual-index sequencing strategy and curation pipeline for analyzing amplicon sequence data on the MiSeq Illumina sequencing platform.</a> Applied Environmental Microbiology. 79 (17), 5112-5120 (2013).</li>
<li>Caporaso, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultra-high-throughput+microbial+community+analysis+on+the+Illumina+HiSeq+and+MiSeq+platforms%5BTitle%5D)+AND+%22ISME+Journal%22%5BJournal%5D)">Ultra-high-throughput microbial community analysis on the Illumina HiSeq and MiSeq platforms.</a> ISME Journal. 6 (8), 1621-1624 (2012).</li>
<li>Lundberg, D. S., Yourstone, S., Mieczkowski, P., Jones, C. D., Dangl, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Practical+innovations+for+high-throughput+amplicon+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Practical innovations for high-throughput amplicon sequencing.</a> Nature Methods. 10 (10), 999-1002 (2013).</li>
<li>RStudio, T. RStudio: Integrated Development for R. RStudio, Inc. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.rstudio.com/">http://www.rstudio.com/</a> (2015).</li>
<li>Edgar, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((UPARSE%3A+highly+accurate+OTU+sequences+from+microbial+amplicon+reads%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">UPARSE: highly accurate OTU sequences from microbial amplicon reads.</a> Nature Methods. 10 (10), 996-998 (2013).</li>
<li>Caporaso, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((QIIME+allows+analysis+of+high-throughput+community+sequencing+data%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data.</a> Nature Methods. 7 (5), 335-336 (2010).</li>
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<li>Simpson, E. H. <a target="_blank" href="https://www.nature.com/articles/163688a0">Measurement of diversity.</a> Nature. 163, 688(1949).</li>
<li>Chao, A. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/4615964">Non-parametric estimation of the number of classes in a population.</a> Scandanavian Journal of Statistics. 11, 265-270 (1984).</li>
<li>Legendre, P. <a target="_blank" href="https://academic.oup.com/jpe/article/1/1/3/1130269">Studying beta diversity: Ecological variation partitioning by multiple regression and canonical analysis.</a> Journal of Plant Ecology. 1 (1), 3-8 (2008).</li>
<li>Oksanen, J., et al. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/228975085_The_Vegan_Package">The vegan package.</a> Community Ecology Package. 10, 631-637 (2007).</li>
<li>Wickham, H. ggplot2: Elegant graphics for data analysis. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWickham%2C+H+%22Ggplot2%3A+Elegant+Graphics+for+Data+Analysis%22">Ggplot2: Elegant Graphics for Data Analysis</a>. , Springer Nature. Switzerland. 1-212 (2009).</li>
<li>Cole, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Ribosomal+Database+Project+%28RDP-II%29%3A+sequences+and+tools+for+high-throughput+rRNA+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">The Ribosomal Database Project (RDP-II): sequences and tools for high-throughput rRNA analysis.</a> Nucleic Acids Research. 33, D294-D296 (2006).</li>
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<li>Fitzpatrick, C. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assembly+and+ecological+function+of+the+root+microbiome+across+angiosperm+plant+species%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Science+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Assembly and ecological function of the root microbiome across angiosperm plant species.</a> Proceedings of the National Academy of Science of the United States of America. 115 (6), E1157-E1165 (2018).</li>
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<li>Paungfoo-Lonhienne, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Turning+the+table%3A+Plants+consume+microbes+as+a+source+of+nutrients%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Turning the table: Plants consume microbes as a source of nutrients.</a> PLoS One. 5 (7), e11915(2010).</li>
<li>Yeoh, Y. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+core+root+microbiome+of+sugarcanes+cultivated+under+varying+nitrogen+fertilizer+application%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">The core root microbiome of sugarcanes cultivated under varying nitrogen fertilizer application.</a> Environmental Microbiology. 18 (5), 1338-1351 (2016).</li>
<li>Bulgarelli, D., Schlaeppi, K., Spaepen, S., Ver Loren van Themaat, E., Schulze-Lefert, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+and+functions+of+the+bacterial+microbiota+of+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Plant+Biology%22%5BJournal%5D)">Structure and functions of the bacterial microbiota of plants.</a> Annual Review of Plant Biology. 64, 807-838 (2013).</li>
<li>Peiffer, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diversity+and+heritability+of+the+maize+rhizosphere+microbiome+under+field+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Science+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Diversity and heritability of the maize rhizosphere microbiome under field conditions.</a> Proceedings of the National Academy of Science of the United States of America. 110 (16), 6548-6553 (2013).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

本稿で説明する方法は、科学者が簡単に土壌や植物のメタゲノミクスのフィールドを入力する有効にしてください。長年にわたってこの原稿に記載されている実験を実施して以来私たちの方法を精製しています。1 つの変更は、今、サンプルのフィールドに出かける前にチューブをあらかじめラベル我々 です。当研究室は、バーコード システムとラベル プリンタを使用します。ラベル プリンターだけでなく管がも、すべて追跡し、正しく人間の手書きの気まぐれなしサンプルを識別するために簡単にラベルを保存します。もう一つの重要なポイントは、我々 は、できるだけ早く戻ってフィールドからそれを持って後材料を処理しようです。DNA 分析に使用される土を凍結、滅菌し根を凍結し、フィルター、フィールドから帰国後 12 〜 36 時間以内の根の凍結を目指します。我々 は DNA の抽出のプロトコルのための時間に手を最小化し、導入することができるヒューマン エラーを低減するロボット (Flex のカワセミ、ThermoFisher) を購入したので、DNA 抽出手順は特に土壌と根圏のための多くの手順と時間のかかる方法別の一貫性の向上、土壌、根や根のバッチ処理されます。植物材料を操作するとき、勉強することや様々 な「代表的なサンプル」を取得するルートの種類ルート種類を決定する重要です。維持するルーツし、DNA の抽出を実施が重要である、サンプル抽出 DNA 96 ウェルの入力時間交差汚染がないことを確認は、冷凍状態のまま。考慮するもう一つの重要な要因は、フィールド実験を設計し、完全なを使用して可能な限りデザインを無作為に使用する複製の数26。高磁場変動に起因は、小さな違いを検出する複製の大きい数を持っている必要があります。最後に、私たちの経験からそれは根を掘るときに土が余りにぬれてないかどうかを確認することが欠かせません。土壌水と飽和している場合だけ、動作するように面倒ではないも根を定義し、根から土を削除する非常に困難です。
これらのメソッドの開発初期段階で作られた 1 つの変更ではなく、フィールドでの作業を容易にするためのガスの発電機によって供給 vortexers にアップグレードした根を解放する手でチューブを揺れ標準化されたの面で時間とマナーを各チューブが乱れた。私アンプリコン配列のアプローチの 1 つの制限は、結果の分類の解像度が多い多くの OTUs は科や属のレベルで不明なまたは唯一の知られていることです。データ分析結果の解像度を高めることができるため特に新しいと開発のアプローチを認識する上で重要な研究のこの分野は急速に進化します。
これらのプロトコル、細菌、古細菌、真菌ではなく勉強だけです。同じ DNA サンプル27,28を使用して真菌のコミュニティの調査のため増幅のため異なるプライマーの使用になります。これらのメソッドには、メソッドを単純化できるため大量の機器の購入は不要です。述べる方法ここでは、主に「誰が」、を決定するフィールドは散弾銃の配列方法分離を使用しての機能のテストに対処する可能性があります、関数に関する重要な質問にすぐに展開して微生物、またはシーケンス全体微生物ゲノム。
代表的な結果は、微生物コミュニティを説明する方法を使用して識別される可能性がありますの違いを強調します。データ解析22ベータ多様性アプローチを使用して、サンプルの型との間の組成の違いを示した。これらの違いは、土壌、根圏、endosphere がユニークな微生物群集3を含む他のほとんどの研究で明らかに観察されています。シャノン多様性指数は、豊かさと endosphere、根、および土に各植物種の存在の微生物種の均一性を決定する計算しました。本研究では、他の多くのように、アルファ多様性は土壌、根圏でやや減少していると、endosphere3,5,29の大幅な減少で最高。ここで説明する方法は、endosphere、根、および土の組成の変化を識別するのに適していることが示唆されました。
プロテオ バクテリアの優位性は、endosphere と土壌の30,31,32の研究の一般的な発見です。Endosphere は、プロテオ バクテリアのより高い相対的な豊富な微生物種の低い多様性を一般的には。これはもう一度ここで結果が文献の他の調査結果のものを強調します。本研究では治療効果が大幅に異なるなかったし、治療によって課せられた差は検出する十分な変化を生成するのに十分な大きさではなかったし、このサンプリングの終わりに行われていた、2 つの主要な理由があります、成長期、ときフィールド可能性があります十分な時間が描き下ろしの窒素と同様のレベルに今シーズン末で測られたものであります。時間の長い期間にわたって同様の受精率を使用して、別の研究だけは比較的、マイクロバイ組成の小変化測定33だった。他の研究は、窒素肥料34,35原因真菌と細菌の両方のコミュニティの変更を示しています。
その内細菌叢解析3,32,36の決定に役割を果たす知られている植物種と内で別の植物遺伝子型間群集変動の小さい相違を示されている、単一種37。本研究では種の植物群集組成に差が見つかりました。すべてのサンプル タイプのグラスは、最も明確な微生物組成を持っていたが、種の違いが、endosphere で統計的に有意なだけ登場。根群集組成可能性より複製された分析に利用できる場合があります。
結合されたフィールド、ラボ、およびここで説明されている分析のプロトコル ルート36の endosphere、根、土壌における微生物群集の組成方法別の要因の影響を研究するための強力な方法を提供します。さまざまな農業分野で特に内細菌叢解析を勉強の領域で行われる作業があります。土壌微生物相によって利回りを変更する方法についての重要な質問まだ完全に解明する必要があります。土壌微生物相、タイミングが、マイクロバイを変更する方法、どのように非生物的ストレスの輪作の影響に関する最も基本的な質問でも、マイクロバイを変更は、土壌の種類、マイクロバイを変更するこれらの要因との対話方法、およびあるかどうか特定の作物や米国の地域で普遍的な微生物は、すべての未解決の問題です。これらのメソッドは存在と病原性および有益な細菌の永続性を特定する疫学研究の役に立ちます。植物と微生物 RNA 代謝物データとここで説明する DNA 方法の統合を開始するこれらのメソッドの別の将来水平線になります。追加の改善とより多くの変数のテストは、これらのプロトコルの最適化を行うため重要になります。

マイクロバイ研究理解し、栄養サイクリング、有機物の売り上げ高と、開発の抑制または土壌病原体1,2など生態系プロセスを操作するための重要な含意があります。この分野の調査はまた自然植物群落と農耕の生産性に土壌微生物の影響を理解するための大きな可能性を保持します。自然の生態系における土壌微生物相を当てている多くの研究、植物 endosphere と根圏微生物生態系3に焦点を当てたが少ない。ネブラスカ州の農業は農学上重要な作物が研究の重要なトピックを栽培されてこれらの土壌の研究を行った、国の大部分の風景を支配します。この方法の論文の目的は植物の根が根と endosphere、および最終的にまでの微生物コミュニティを変更する方法を決定するため、生態系の存在の微生物を記述するプロトコルの標準的なセットを研究者に提供するにはこれらの微生物は、土壌の健康と植物の生産性の再生機能を理解します。
ここで紹介した方法は排他的に内部ルートとどのように異なる微生物のルートのすぐ外側から4,5で本稿が微生物を学習を目指しているが他のユーザーによって使用される方法から若干異なります、根。本研究で使用される私アンプリコン シーケンス DNA サンプルで見つかった微生物分類群を識別し、研究者コミュニティがサンプルの種類や治療によって変更する方法を決定することができます。このプロトコルとランドバーグらによって使用される非常に同じようなプロトコルの主な違いの 1 つ6は、超音波処理、代わりにこのプロトコルを使用表面殺菌漂白剤とエタノールと根から根圏を削除します。他のユーザーは効果的に表面殺菌を使用も7,8,9,10。これらのメソッドは、わずかに異なるが、他の方法よりも有利ではありません。これらのメソッドは、十分な人々 と最大約 450 のサンプル土壌、根圏、endosphere に分割されている場合追加 1 日あたりの以上 150 のフィールド プロットを処理する可能性があるため大規模なフィールド実験のため特に適しています。この原稿は、詳細フィールドのサンプル、実験室で材料の処理、抽出し、DNA シーケンスに使用するメソッドについて説明し、結果のシーケンス データを分析する手順の概要について説明します。

<table><tbody><tr><td>Dneasy PowerSoil HTP 96 キット</td><td>Qiagen/MoBio</td><td>12955-4</td><td>土壌および根圏用抽出キット</td></tr><tr><td>Dneasy PowerPlant HTP 96 キット</td><td>Qiagen/MoBio</td><td>13496-4</td><td>根用抽出キット</td></tr><tr><td>D-ハンドル 掘削ショベル、101 cm L</td><td>Fiskars</td><td>9669</td><td></td></tr><tr><td>ラピッド ティラー、40 cm L</td><td>Truper</td><td>34316</td><td></td></tr><tr><td>ジップロック バッグ、17.7 cm x 19.5 cm</td><td>ジップロック</td><td></td><td>NA</td></tr><tr><td>クーラー</td><td>任意の</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>ウォッシュパン</td><td>任意の</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>プラスチックバケツ</td><td>任意の</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>手袋(作業および実験室)</td> <td>任意の</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>直径20cm土壌ふるい#8、2360 &mu;mメッシュサイズ</td><td>デュアルマニュファクチャリング株式会社、シカゴIL</td><td>US8-8FS</td><td></td></tr><tr><td>直径20センチメートルソイルふるい#4、4750&mu;mメッシュサイズ</td><td>デュアルマニュファクチャリング株式会社、シカゴIL</td><td>US8-4FS</td><td></td></tr><tr><td>ポータブル発電機</td><td>ホンダブランドはうまく機能します</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>滅菌セルストレーナー100&mu;mメッシュサイズ</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>22-363-549</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4&middot;H2O</td><td>VWR</td><td>0823</td><td></td></tr><tr><td>Na2HPO4</td><td>VWR</td><td>0404</td><td></td></tr><tr><td>シルウェット L-77</td><td>リーマンシード</td><td>VIS-30</td><td>界面活性剤</td></tr><tr><td>オートクレーブ</td><td>NA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>乾燥オーブン</td><td>NA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>スケール</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>CLOROX - 家庭用強度</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>任意の</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>液体窒素</td><td>任意の</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>ドライアイスペレット</td><td>任意の</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>エタノール</td><td>任意の</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>11 cm 精密ファインポイントピンセット</td><td>フィッシャー</td><td>17456209</td><td></td></tr><tr><td>18 cm ストレートポイント試料鉗子</td><td>VWR</td><td>82027-436</td><td></td></tr><tr><td>13.5 cm 剪定ばさみ</td><td>Fiskars</td><td>9921</td><td></td></tr><tr><td>2 mL チューブ</td><td>任意の</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>15 mL PP コニカルチューブ</td><td>MIDSCI</td><td>C15B</td><td></td></tr><tr><td>50 mL PP コニカルチューブ</td><td>MIDSCI</td><td>C50B</td><td></td></tr><tr><td>超純水</td><td>ミリポアシグマ</td><td>Milli-Q Integral, Q-POD</td><td></td></tr><tr><td>Qubit 2.0 蛍光光度計</td><td>Invitrogen</td><td>Q32866</td><td></td></tr><tr><td>Qubit dsDNA HS Assay Kit</td><td>Invitrogen</td><td>Q32854</td><td>除去されたサンプルのDNA定量用</td></tr><tr><td>QuantiFluor dsDNA System</td><td>Promega</td><td>E2670</td><td>DNA定量用</td></tr><tr><td>96ウェルブラック、クリアフラットボトムプレート</td><td>Corning</td><td>3631</td><td></td></tr><tr><td>pPNA PCR Blocker</td><td>PNA Bio</td><td>PP01-50</td><td></td></tr><tr><td>mPNA PCR Blocker</td><td>PNA Bio</td><td>MP01-50</td><td></td></tr><tr><td>微生物模擬コミュニティからのゲノムDNA B (Even Low Concentration) v5.1L, for 16s rRNA Gene sequencing</td><td>BEI Resources</td><td>HM782D</td><td></td></tr><tr><td>プレート用接着剤</td> 8ウェルストリップ <td>VWR</td><td>89134-434</td><td></td></tr><tr><td>ステンレススチールビーズ、直径3.2mm</td><td>Next Advance</td><td>SSB32</td><td></td></tr><tr><td>1 ml アッセイブロック (Qiagen/MoBio Dneasy用DNA抽出プレート)PowerPlant HTPキット)</td><td>CoStar</td><td>3959</td><td></td></tr>帯<tr><td>電防止PP計量漏斗、土壌/根圏</td><td>TWDトレードウィンド用小サイズ、INC</td><td>ASWF1SPK</td><td></td></tr><tr><td>帯電防止PP計量漏斗、根/葉</td><td>TWDトレードウィンズ</td>用サイズx-小、INC <td>ASWFXSCS</td><td></td></tr><tr><td>Genie 2 Digital Vortex</td><td>Scientific Industries</td><td>SI-0236</td><td></td></tr><tr><td>50 mLチューブ</td><td>用ボルテックスアダプター科学産業</td><td>SI-H506</td><td></td></tr><tr><td>乳鉢 (100 mL) と乳棒</td><td>任意の</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>金属マイクロスパチュラ</td><td>VWR</td><td>80071-672</td><td></td></tr><tr><td>使い捨て帯電防止マイクロヘラ</td><td>VWR</td><td>231-0106</td><td></td></tr><tr><td>ブラウン 紙袋 2# (10.95 cm x 6.19 cm x 20 cm)</td> <td>Duro</td><td>18402</td><td></td></tr><tr><td>5424 2 mL チューブ用遠心分離機</td><td>Eppendorf</td><td>22620461</td><td></td></tr><tr><td>96ウェルプレート用遠心分離機</td><td>Sigma4-16S</td><td>81510</td><td></td></tr><tr><td>50mLチューブ用遠心分離ローター</td><td>Sigma4-16S</td><td>12269 - バイオセーフ</td><td></td></tr><tr><td>KAPA HiFi DNAポリメラーゼ</td><td>Kapa Biosystems</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

実験で多年生の草の根、根、土壌微生物の分離と解析

Isolation and Analysis of Microbial Communities in Soil, Rhizosphere, and Roots in Perennial Grass Experiments

植物や土壌のマイクロバイ研究は理解役割微生物を農業生産性の再生にとって、ますます重要になっています。本稿の目的は、急速に土壌、根圏、およびレプリケートされたフィールド試験の endosphere のサンプルおよび微生物サンプルの種類、治療、および植物遺伝子型が原因で発生する可能性の変化を分析する方法の詳細を提供することです。これらのメソッドを示すために使用実験は、レプリケートされたフィールド プロットを含む 2 つの純粋な暖かい季節の草 (キビ virgatumとアンドロポゴン gerardii)と低多様性草の混合物 (a. gerardii, Sorghastrumカメムシタケ、とBouteloua curtipendula)。簡単に言えば、植物が出土、さまざまな根のカットしリン酸バッファーに置かれます、根圏を収集するを振っています。根は、氷と表面殺菌漂白剤とエタノール (エタノール) に研究室に運ばれます。根は濾過し、遠心分離によって集中されます。ルートボールの周りから土砂がビニール袋に置かれ、DNA の抽出のための少量の土の撮影場所の研究室に持って来られます。DNA は根、土壌と根から抽出および 16S rRNA 遺伝子の V4 の地域のためのプライマーで増幅し。Amplicons シーケンスし、バイオインフォマティクスのツールをオープン アクセスと分析します。これらのメソッドは、サンプルの種類、治療法、原因微生物群集の多様性と構成がどのように変化をテストする研究者を許可する、植物の遺伝子型。統計モデルと一緒にこれらのメソッドを使用して、代表的な結果を示す根、根、および土の微生物コミュニティの重要な違いがあります。紹介した方法フィールドのサンプルを収集、分離、抽出、定量化、増幅、DNA をシーケンスする方法についての完全なセットを提供し、微生物群集の多様性とレプリケートされたフィールド試験で組成を分析します。

代表的な結果はこの原稿で提示来る 2012 年にミード近くネブラスカ大学リンカーン校農学部農場設置現場から、トウモロコシ大豆の回転として管理されたサイト、実験する前にね.研究サイトは、土の 3 種類に位置していたが、土質の変更をすべて課せられた治療に起因していたかのようにデータが行った。
現場 2 つ、純粋な含まれている、大きなブルーステム、indiangrass (S. カメムシタケ) および 'ビュート' sideoats grama (を含む低多様性草の混合物と同様、スイッチ グラス (P. virgatum cv 自由) と大きなブルーステム (A. gerardii) の略B. curtipendula)。3 つの暖かい季節の草のプロットは、3 回がレプリケートされたランダム化完全ブロック デザイン。3 つの異なった草のプロットにネストされたいた 56 (N1)、112 (N2) kg N ha、2 つの窒素 (N) 施肥治療尿素の-1 。生育期の終わりにマイクロバイ サンプリング時に、含まれている土 (平均 ± SD) 8.0 ± 1.1 ppm 硝酸塩プロットと受精 112 kg N ハ-1と 6.8 ± 0.7 (平均 + SD) プロットの ppm 硝酸塩と受精 56 kg N ハ-1。プロットは、年に一度受精されていた。プロットは主要なプロット (8000 m2)、N トリートメントとして示された暖かい季節の草は分割プロット (4000 m2).大きなブルーステム '大当たり' と '金鉱' の 50: 50 のブレンドとして種を取られた、Indiangrass 'スカウト' と '戦士' の 50: 50 のブレンドとしてシードだった。プロットは、2012 年に植えられた、最初の N アプリケーションが 2013 年春に発生しました。
土壌と根のサンプリングは、2014 年 9 月 15 日に実施されました。3 複製 (図 1) と分割プロット無作為化デザインとして設定されたフィールドに以下の作業を行った。Endosphere のサンプルは次のとおりすべての平均のシーケンス深さ: 4871 ± 5711 (平均 ± SD) 根: 40726 ± 14684、土: 38184 ± 9043。記載されている、メソッドを使用して、これらの実験の変化の最大の源の一つは、サンプルの種類 (図 2) の間にある微生物の違いです。この代表的なデータセット、根と土壌が (図 2 a) endosphere よりも互いに構成で類似する表示されます。しかし、そこがまた非常に重要な (p = 0.001) 根と土 (図 2 b) の群集組成の違い。サンプルの種類によって分析これらの実験で占めて全変動 26% であった。
アルファ多様性解析の結果、endosphere の微生物は、土壌および根圏 (図 3) と比べてサンプル多様性の低かった。あらゆるコンパートメントにおける草種の多様性の唯一の大きな違いは、大きなブルーステムの endosphere サンプルとスイッチ グラス、スイッチ グラスの有意に高い微生物種の多様性 (図 3) を有するとの間でした。相対的な豊富な分析 (図 4) は、プロテオ バクテリア続いてアクチノ バクテリアのすべてのサンプル タイプの優位性を強調表示します。Endosphere Bacteriodetesの大きな相対的な豊かさを持っていたに対し、土壌および根圏はアシドバクテリウム門とクロロフレクサス門によってまた支配されます。
この実験では、2 N 施肥量と生育、したがって治療の効果があったかどうかを判断するデータ分析を行った。治療効果は全変動の 12% を占めているが、叙階の 2 つの治療に見える異なる (図 5) 有意差は認められなかった。これは、これらのデータセットではなく目視検査や定性的な判断のための統計解析の重要性を強調表示します。
植物細胞および土壌のマイクロバイの植物影響の違いは、制約の調整法を用いた, 可視化されました。種などの特定の変数のサンプル間の大幅に異なる群集組成の結果かどうかをテストするのには PERMANOVA を用いた統計的な差異を調べた.すべてのサンプルの型を一緒に行った、非常に有意差が微生物群集組成 (図 6) の植物種のために発見されました。この実験では、植物種による変化量 6.7% であった。最後に、各サンプルの種類は、サンプルの種類は重要な植物種の効果を駆動する可能性がありますを決定する個別に行った。Endosphere でのみ有意差があった (p = 0.001) (図 7) の異なる植物の群集組成の間。その他のサンプルの種類、種の効果は個別に分析するとき重要なでした。それは根圏 (18%) と土 (15%) に低下したに対し、endosphere の種によるパーセント変動 27% であった。これはさらに、個別に各組織の種類の分析の重要性を強調表示します。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57932/57932fig1.jpg"> 図 1: 実験設計の例です。ネブラスカ大学リンカーン校東ネブラスカ研究、ミード、ねー近くのエクス テンション センターにある現場の 3 通の無作為化の完全なブロック設計を示す実験的フィールド デザイン完全なサイトの説明は、結果を参照してください。N1 は低 (56 kg N ha-1尿素) と N2 (112 kg N ハ-1尿素) 適用されたより高い窒素率です。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57932/57932fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57932/57932fig2.jpg"> 図 2: 2014 年の多年生の草のサンプリングからの土、根、endosphere を含む別のサンプル タイプで微生物の組成を比較するベータ多様性解析します。ブレイ カーティス非類似度行列を生成する QIIME1.9.1 の Python スクリプトを使用して分析を行った。ブレイ カーティス非類似度行列に基づく主座標分析 (PCoA) は RStudio で可視化しました。PCoA1 と PCoA2 は、PCoA の分析によって説明される最初と二番目に大きい分散を示します。PERMANOVA 統計的分析を行った、サンプル型の意義し、 p値は、右上隅に表示されます。数字の各シンボルは、各サンプルの全体の群集を表しています。(A) Endosphere、根と土壌サンプルの型が同時に分析されました。87 のすべてのサンプルは、サンプルあたり 486 シーケンスに希薄だった。(B)根と土のサンプルを同時に分析されました。59 のすべてのサンプルは、8231 シーケンスで希薄だった。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57932/57932fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57932/57932fig3.jpg"> 図 3: アルファ多様性解析と endosphere、根圏土壌にそれぞれの種にシャノン インデックスを使用します。分析は、Python スクリプトを使用して、QIIME1.9.1 で行った。真空は、endosphere、根、および土質サンプル サンプルあたり 486、17154 および 8231 シーケンスでそれぞれ行われていた。ボックスは 25 そして第 75 百分位数を示します (最初と第 3 四分位数)。ボックス内の水平の線は中央値と赤を表しますプラス平均を表示します。ひげの 1.5 倍以上四分位範囲に落ちた (黒いドットとして表示されます)、外れ値を除くデータの範囲を示す (n = sideoats grama ミックスどこを除いて各サンプルの 6 n = 5)。全 5 種、endosphere でのシャノン インデックスは根と土壌の両方よりも低かった。非パラメトリック ウィルコクソンの順位和検定を用いて種間の意義し、種の違いは箱の上に示されていた。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57932/57932fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57932/57932fig4.jpg"> 図 4: endosphere、根、および土の門レベルの相対的な豊かさ。種類の異なるサンプル間で微生物の門の豊かさを比較するサンプルを分析した (n = 29 サンプルの種類ごとに)。乙表から QIIME1.9.1 で Python スクリプトを使用して分析を行った。円グラフ内の異なる色を示す門。割合は、サンプルの種類ごとに各門の相対的な豊かさを示します。門情報はリボソームのデータベース プロジェクトの分類 (RDP)25を使用して注釈が付けられました。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57932/57932fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57932/57932fig5.jpg"> 図 5: すべてのサンプル型の制約の要因と治療を用いた解析します。治療の間の群集組成の違いがあったかどうかを決定する (CAP) 主座標分析の標準分析を行った。N 治療法、 nの N1 = 42 (56 kg N ha-1) およびn = N2 の 45 (112 kg N ハ-1)。ブレイ カーティス非類似度行列は、QIIME1.9.1 で python スクリプトを使用して生成されました。ブレイ カーティス非類似度行列に基づくキャップは RStudio に要因として治療の制約によって行われました。治療の違いは有意し、 p値は、右上隅に表示されるかどうかを決定する PERMANOVA の解析を行った。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57932/57932fig5large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57932/57932fig6.jpg"> 図 6: すべてのサンプル型の制約の要因としての植物種を用いた解析します。すべてのサンプル タイプの種の植物群集組成の違いがあったかどうかを決定する分析を行った。主座標調整とすべてのサンプル型 (endosphere、根、および土壌) のキャップの分析が行われたブレイ カーティス非類似度行列を使用します。ブレイ カーティス非類似度行列は QIIME1.9.1 で Python スクリプトを使用して生成されました。ブレイ カーティス非類似度行列に基づくキャップは RStudio の要因としての植物種の制約によって行われました。PERMANOVA 統計的分析を行った種の植物、意義し、P 値は、右上隅に表示されます。数字の各シンボルは、そのサンプルの全体の群集を表します。n = nを除くすべてのサンプル タイプにそれぞれの種に対して 18 = sideoats grama ミックス 15。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57932/57932fig6large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57932/57932fig7.jpg"> 図 7: 制約の要因としてサンプルの種類ごとに個別に種を用いたキャップ解析の例です。主座標調整とキャップ各サンプル タイプ (endosphere、根、および土) 解析ブレイ カーティス非類似度行列を使用して。各サンプルの種類は、486、17154、それぞれ、endosphere、根圏土壌サンプル当たり 8231 読み取りし、希薄だった。種は、叙階を制約する要因として使用されました。PERMANOVA 統計的分析を行った各サンプル タイプにおける植物種の意義し、 p値は、右上隅に表示されます。図の各シンボルは、各サンプルの全体の群集を表します。サンプル サイズがn = 29 各サンプルの種類、 n = 6 sideoats grama ミックスを除く各サンプル タイプでそれぞれの植物種 (n = 5)。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57932/57932fig7large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

フィールドから植物の根の発掘だけでなく、土壌、根圏、endosphere に試料の加工は、DNA の抽出とデータ分析の方法を含め、詳細に説明します。本稿は、土壌、endosphere、および根圏内細菌叢解析の研究にこれらの技術を使用する他の研究室を有効にするのに設計されています。

Plant and soil microbiome studies are becoming increasingly important for understanding the roles microorganisms play in agricultural productivity. The ...

この方法は、サンプルの種類、処理、植物の遺伝子型に応じて微生物群集の多様性がどのように変化するかなど、土壌、根圏、根の内部微生物叢分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。この手法の主な利点は、大量のサンプル数と複製が必要なフィールド実験に適していることです。この手順を実演するのは、私と、私の研究室の大学院生で研究技術者のステファニー・フットレルです。プロトコールを開始するには、ウォッシュパンとバケツに植物サンプルの詳細を付箋でラベル付けします。ラベルの付いたバケツをプロットに運び、洗面皿を現場の確立されたワークステーションに置いておきます。プロット内の異なる領域から、プロットごとに2つの植物をランダムに選択して収集します。次に、シャベルで30センチメートルの深さまで土を突き刺して、植物を土に固定している側根のいずれかを切り取ります。シャベルを活用して植物の根を掘り、ラベル付きのバケツに根球を置きます。バケツを現場のワークステーションに戻します。根を振って、スペードまたはハンドヘルド分げつを使用して根から土を取り除きます。手袋を着用し、処理ステーションの近くに根を置きます。根を振った後、洗面皿で土を混ぜ、手持ちの分げつで土の塊を砕きます。土のサンプルを入れますamp破片のないラベル付きの17.7 x 19.5cmのジッパー収納バッグに入れ、氷の上に置きます。剪定はさみを70%エタノールで滅菌します。滅菌ハサミを使用して、植物ごとに約4〜6本の根と各根の長さが約9〜12センチメートルのさまざまな根を切り取ります。切除した根を、Silwet L-77などの界面活性剤を含む35ミリリットルのオートクレーブ滅菌リン酸塩緩衝液を含む標識された50ミリリットルのチューブに入れます。チューブを2分間振って、根茎を根の表面から解放します。発電機とボルテクサーで揺れを改善します。70%エタノールで滅菌した鉗子で、チューブから根を取り除き、ペーパータオルで短時間拭き取り、ラベル付きの新しい50ミリリットルのチューブに入れます。根圏を含むチューブと根を含むチューブの両方を氷の上に置きます。畑で根を集めた50ミリリットルのチューブに、約35ミリリットルの50ミリリットルと0.01%トゥイーン20を加えます。チューブを30〜60秒間渦巻きまたは振とうします。漂白剤を注ぎ、35ミリリットルの70%エタノールを加え、根をさらに30〜60秒間渦巻きまたは振とうします。振とうした後、70%エタノールを注ぎ、35ミリリットルの滅菌超純水とボルテックスを加えるか、サンプルを1分間振とうします。水ですすぎのステップをさらに2回繰り返して、根が滅菌された超純水で合計3回のすすぎを受けるようにします。乾いた清潔なペーパータオルで根を拭き取り、サンプルごとに清潔なペーパータオルを使用します。滅菌鉗子と剪定はさみを使用して、根を約5ミリメートルの断片に切り、切断した根を清潔なラベル付きの15ミリリットルの円錐形チューブに入れ、さらに処理されるまでサンプルを摂氏マイナス80度で保存します。フィールドからの根圏サンプルを含む50ミリリットルのチューブを20〜30秒間振とうして、サンプル全体を再懸濁します。滅菌済みの100ミクロンメッシュセルストレーナーを使用して、再懸濁したサンプルを新しい50ミリリットルのチューブにろ過します。次に、チューブを室温で5分間、3, 000倍gで遠心分離します。すぐに上澄みを注ぎ、捨てます。根圏ペレットを氷上の50ミリリットルのチューブに入れます。次に、界面活性剤を含まない1.5ミリリットルの滅菌リン酸緩衝液を根圏ペレットに加え、それらをボルテックスしてサンプルを再懸濁します。懸濁液を清潔でラベル付きの2ミリリットルのマイクロチューブにピペットで移します。チューブを室温で2分間、gの15,871倍で回転させます。すぐに上澄みを注ぎ、清潔なペーパータオルでチューブを排出します。ペレットは、さらに処理されるまで摂氏マイナス20度で保管します。滅菌済みの金属ヘラを使用して、DNA抽出用の約3グラムの土壌を清潔でラベル付けされた2ミリリットルのチューブに充填し、小さな根片や破片を避けます。各サンプル間で金属スパチュラを70%エタノールですすいでください。この土壌サンプルは摂氏マイナス20度で保管します。清潔な洗濯鍋で、土の袋を積み重ねたふるいに空にし、大きいふるいを小さなふるいの上に置き、両方のふるいを通して手動で土をふるいにかけます。ブラシを使用して、サンプル間のふるいを慎重に清掃します。100〜125グラムのふるいにかけた土を17.7×19.5センチメートルのジッパー付き袋に入れておき、将来の土壌物理化学的およびテクスチャー分析に備えます。土の袋を摂氏4度に置いて、短期保存します。次に、液体窒素をきれいなへらときれいな乳鉢でプラスチックビーカーに注ぎます。凍ったティッシュを乳鉢に入れ、乳棒で微粉末に挽きます。粉砕中に液体窒素を絶えず添加して、サンプルを凍結状態に保ちます。へらを使用して、粉砕された組織を清潔なラベル付きの2ミリリットルのチューブに移し、次に組織を摂氏マイナス80度で保存します。70%エタノールと1%家庭用漂白剤で作業エリアを拭きます。マイナス20°Cの貯蔵庫から土壌サンプルを取り出し、氷のバケツで解凍します。シーリングマットカバーを96ウェル抽出プレートから取り外し、カバーを2つのペーパーワイプの間に配置して、使用しないときは清潔に保ちます。プレートの12列を粘着性の8ウェルPCRストリップで覆い、汚染を防ぎます。無菌の風袋、スケールの上のサイズの小さい重量を量る漏斗および土の200から250ミリグラムを量る。粘着剤ストリップを慎重に持ち上げ、充填された計量漏斗のネックを適切なウェルに置き、土壌サンプルを適切なウェルにそっと導きます。粘着ストリップを交換してウェルを覆います。このプロセスをウェルごとに繰り返し、サンプルごとに新しい滅菌漏斗を使用します。抽出プレートのシーリングマットカバーを元に戻し、DNA抽出の準備が整うまでプレートをマイナス20°Cで保管します。マイナス20°Cの貯蔵庫から根圏サンプルを取り出し、氷のバケツで解凍します。前のセクションで行ったようにDNA抽出プレートを準備します。きれいなペーパーワイプをはかりに置き、滅菌済みの金属ヘラをはかりに風袋引きします。スパチュラを使用して、サンプルチューブから根圏ペレットの一部を慎重にすくい取ります。根圏サンプルの200〜250ミリグラムの重量を量ります。粘着ストリップを慎重に持ち上げて、抽出プレートの最初のウェルを明らかにします。充填されたヘラをウェルに角度をつけ、滅菌爪楊枝で根圏材料を適切なウェルにこすり落とします。金属ヘラを水ですすぎ、続いてサンプル間に70%エタノールをすすぎます。最後に、プレートが充填されるまで、プレートのすべてのウェルに対してこのプロセスを繰り返し、抽出ブランクコントロールとして1つのウェルを空にします。この代表的なデータセットでは、サンプルタイプ間で非常に有意な違いがあり、根圏と土壌は根よりも互いに組成が類似しているように見えます。さらなる分析により、根圏と土壌の間の微生物群集の構成にも非常に有意な違いがあったことが示されています。アルファ多様性分析は、内部圏の微生物群集が土壌および根圏の群集よりも低かったことを示しています。イネ科植物種間の多様性の唯一の有意な違いは、ビッグブルーステムとスイッチグラスのエンドスフィアサンプル間でした。相対存在量分析では、すべてのサンプルタイプでプロテオバクテリアが優勢であり、続いて放線菌が優勢であることが強調されています。土壌と根圏はアシドバクテリアとクロロフレキシが優勢ですが、根はバクテリオデテスが相対的に豊富に存在していました。すべてのサンプルタイプのPERMANOVA分析により、植物種による微生物群集の構成に非常に有意な違いがあることが明らかになりました。このビデオを見れば、土壌、エンドスフェア、および根圏マイクロバイオームの研究で使用する一連の手順を実行する方法について十分に理解できるはずです。この教育ビデオの一部に資金を提供してくださったネブラスカ州EPSCoRおよび全米科学財団EPSCoR研究インフラストラクチャプログラムトラック1に感謝します。

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ここでは、土壌、根圏、ルート endosphere 内細菌叢解析・増幅シーケンス...

探索ルート マイクロバイ: 土、根、およびルート Endosphere から細菌群集のデータを抽出

ここでは、種の存在を定量化し、植物の根の初期植民地化時および異なる成長環境への移動後の細菌の空間分布を可視化するための水耕植物成長アッセイについて説明する。...

浮遊水耕システムにおけるアラビドプシス・タリアナ根の細菌の植民地化と維持のモニタリング

我々は、米(Oryza sativa L.)をモデル種として使用して湿地環境から無傷の根と周囲の根球土壌をサンプリング、保存、および切除するためのプロトコルを記述する。保存後、このサンプルは、放射光蛍光X線(XRF)化学種分イメージングなどの元素イメージング技術を使用して分析することができます。...

元素イメージングのための湿地根と根層圏を保存する方法

グリホサートベースの製品(GBP)は、世界中で最も一般的な広域スペクトル除草剤です。本稿では、GBPがマイクロバイオームに与える影響を定量化するための一般的なガイドラインを、フィールド実験からバイオインフォマティクス解析まで紹介します。...

グリホサートベースの製品がマイクロバイオームに及ぼす潜在的な影響の定量化

昆虫病原性真菌コロニーは、 テネブリオ 餌、 ガレリア...

土壌試料からの昆虫病原性菌類の分離方法の比較

このプロトコルは、植物の根に土壌媒介微生物を接種するための戦略の詳細な要約を提示する。真菌 Verticillium longisporum および Verticillium...

植物の根に土壌媒介微生物を感染させる接種戦略

ここでは、さまざまな根圏土壌から相乗的な多種バイオフィルムコミュニティを確立するための迅速かつ標準化された手順を紹介します。これは、複雑な根圏土壌微生物叢を調査し、シミュレートするために設計された独自のプロトコルです。...

根圏土壌からの多種バイオフィルム群集構築へのアプローチ

JenaTron - 草原の生態系機能に対する植物の歴史と土壌の歴史の影響を研究するための実験的アプローチ

学ぶ多年生草本の根、根圏、土壌微生物の分離・解析手法。DNA抽出と多様性解析により、植物遺伝子型と微生物群集の関係を明らかにする標準化されたフィールド実験プロトコルを確立します。

実験で多年生の草の根、根、土壌微生物の分離と解析

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