Name: ホット スポット領域の変異の包括的かつ同時検出のための単一液滴デジタル ポリメラーゼの連鎖反応 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 23 s
Description: 学ぶdrop-off ddPCR法によるctDNAの高感度検出と定量法。単一反応で複数の遺伝子変異を同時検出し、希少な患者サンプルを節約し、スループットを向上させる。がん診断と液体バイオプシー研究に応用可能。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

この作品は、Institut キュリー SiRIC (グラント インカ DGOS 4654) によって支えられました。著者感謝したいまたキャロライン ヘゴ ビデオへの彼女の貢献のため。

<ol><li>Alexandrov, L. B., Nik-Zainal, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signatures+of+mutational+processes+in+human+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Signatures of mutational processes in human cancer.</a> Nature. 500 (7463), 415-421 (2013).</li>
<li>Amado, R. G., Wolf, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wild-Type+KRAS+Is+Required+for+Panitumumab+Efficacy+in+Patients+With+Metastatic+Colorectal+Cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Wild-Type KRAS Is Required for Panitumumab Efficacy in Patients With Metastatic Colorectal Cancer.</a> Journal of Clinical Oncology. 26 (10), 1626-1634 (2008).</li>
<li>Karapetis, C. S., Khambata-Ford, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((K-ras+mutations+and+benefit+from+cetuximab+in+advanced+colorectal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">K-ras mutations and benefit from cetuximab in advanced colorectal cancer.</a> New England Journal of Medicine. 359 (17), 1757-1765 (2008).</li>
<li>Postel, M., Roosen, A., Laurent-Puig, P., Taly, V., Wang-Renault, S. -F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Droplet-based+digital+PCR+and+next+generation+sequencing+for+monitoring+circulating+tumor+DNA%3A+a+cancer+diagnostic+perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Review+of+Molecular+Diagnostics%22%5BJournal%5D)">Droplet-based digital PCR and next generation sequencing for monitoring circulating tumor DNA: a cancer diagnostic perspective.</a> Expert Review of Molecular Diagnostics. 18 (1), 7-17 (2018).</li>
<li>Saliou, A., Bidard, F. -C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+tumor+DNA+for+triple-negative+breast+cancer+diagnosis+and+treatment+decisions%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Review+of+Molecular+Diagnostics%22%5BJournal%5D)">Circulating tumor DNA for triple-negative breast cancer diagnosis and treatment decisions.</a> Expert Review of Molecular Diagnostics. 16 (1), 39-50 (2015).</li>
<li>Decraene, C., Silveira, A. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+Hotspot+Mutations+Scanning+by+Single+Droplet+Digital+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+chemistry%22%5BJournal%5D)">Multiple Hotspot Mutations Scanning by Single Droplet Digital PCR.</a> Clinical chemistry. 64 (2), 317-328 (2018).</li>
<li>Untergasser, A., Cutcutache, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primer3--new+capabilities+and+interfaces%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">Primer3--new capabilities and interfaces.</a> Nucleic Acids Research. 40 (15), e115(2012).</li>
<li>Snyder, M. W., Kircher, M., Hill, A. J., Daza, R. M., Shendure, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+DNA+Comprises+an+In+Vivo+Nucleosome+Footprint+that+Informs+Its+Tissues-Of-Origin%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cell-free DNA Comprises an In Vivo Nucleosome Footprint that Informs Its Tissues-Of-Origin.</a> Cell. 164 (1-2), 57-68 (2016).</li>
<li>Bidshahri, R., Attali, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+Detection+and+Resolution+of+BRAF+V600+Status+in+Colorectal+Cancer+Using+Droplet+Digital+PCR+and+a+Novel+Wild-Type+Negative+Assay%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Molecular+Diagnostics%22%5BJournal%5D)">Quantitative Detection and Resolution of BRAF V600 Status in Colorectal Cancer Using Droplet Digital PCR and a Novel Wild-Type Negative Assay.</a> The Journal of Molecular Diagnostics. 18 (2), 190-204 (2016).</li>
<li>Attali, D., Bidshahri, R., Haynes, C., Bryan, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ddpcr%3A+an+R+package+and+web+application+for+analysis+of+droplet+digital+PCR+data%5BTitle%5D)+AND+%22F1000Research%22%5BJournal%5D)">ddpcr: an R package and web application for analysis of droplet digital PCR data.</a> F1000Research. 5, (2016).</li>
<li>Forbes, S. A., Beare, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((COSMIC%3A+somatic+cancer+genetics+at+high-resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">COSMIC: somatic cancer genetics at high-resolution.</a> Nucleic Acids Research. 45 (D1), D777-D783 (2017).</li>
</ol>

何人かの著者を葉緑体の検出に関連する 2 つの特許出願 (EP17305920.5、EP18305277.8) の発明者と呼びます。

効率的なドロップオフ ddPCR アッセイを設計、最適化が重要であり、プロトコルを慎重に従う必要があります。プライマーとプローブの各組み合わせが一意の PCR 反応効率。したがって、個々 のアッセイは、貴重な試料を使用する前にコントロールのサンプルを注意深く検証します。最適化、検証、ピーク信号検出を証明し、特異性と感度を評価する重要です。プロトコルに従って、「プローブ 2」によってカバーされる対象領域にあるすべての変異体潜在的尋問されることができます。「プローブ 2」の 5' または 3' 端に位置する突然変異の確認を推奨するそれにもかかわらずドロップオフの試金の効率に影響を与える可能性がありますこれら以来。
ここで紹介した方法は、FFPE 組織、文化や血液の細胞を含む、「組織」の任意の型から抽出した DNA を実行できます。ただし、核酸抽出の質は劇的に ddPCR の結果に影響を与えます。ヘパリン、蛋白質、ヘム、フェノール、プロテアーゼ、コラーゲン、メラニン、洗剤や塩などの PCR 阻害物質があるサンプリングと精製工程中に可能な限り除去します。DdPCR の PCR 阻害物質の影...

何千もの癌の開発に関連する体細胞突然変異は報告された1をされています。これらのうち、いくつかの標的療法2,3の有効性予測マーカー、遺伝のこれらの突然変異のスクリーニングは今日常診療。液滴デジタル PCR (ddPCR) の技術は高い検出精度と突然変異の有無を監視するため、非侵襲的な液体生検4、5と高い互換性。ただし、試金 ddPCR 現在主に先天的な知られている突然変異を検出する設計されています。突然変異が知られている場合、これは深刻な検出ツールとして ddPCR の使用が制限されます。確かに、従来の ddPCR デザインの野生型対立遺伝子 (WT プローブ) を認識し加水分解プローブは突然変異体の対立遺伝子 (MUT プローブ) (図 1 a) を認識し、特定のプローブと競合します。高い親和性プローブは、テンプレートに交配し、対応する遺伝子の性質を示す、その蛍光を解放します。各液滴の得られた蛍光データは、別の次元で WT とムトのプローブによって放出される蛍光を表す散布で視覚化できます。従来の ddPCR の試金のための典型的な結果の概略は、図 1 aに提示されます。この例では、青、雲は水滴、MUT の対立遺伝子が増幅され MUT プローブによって識別されるに対応する赤い雲に対し WT プローブによって識別される WT 対立遺伝子を含んでいる小滴に対応します。反応に読み込まれている DNA の量、に応じて WT とムトの産物を含む二重肯定的な液滴は (緑雲) を表示できます。光の灰色の雲は、空の液滴に対応します。
以来、ほとんどのプラットフォームは、フルオロ (通常 2、5 までが) の限られた数の検出を実現、従来の ddPCR のスループットが制限されています。したがって、複数の隣接する遺伝子変異を有する地域をターゲット技術的に困難な多重 ddPCR 試金または並行各突然変異を対象とする複数の反応の使用の設計が必要です。WT 加水分解プローブの一意のペアを使用してターゲット領域内の遺伝的改変を検出できる可能性があるので、ドロップオフ ddPCR 戦略はこの制限を克服します。ターゲット地域と 2 番目のプローブ (プローブ 2) に隣接する非可変シーケンスは突然変異が、対象地域の WT シーケンスに補足最初のプローブ (プローブ 1) のカバーには、(図 1 b) が期待されています。最初のプローブは、反応における無衝突分子の合計量を定量化中、2 番目のプローブは突然変異体シーケンスにサブ最適な交配によって WT とムトの対立遺伝子を識別します。プローブ 2 は、複数のターゲット地域 (単一または複数のヌクレオチドの置換、削除、等)6の突然変異の種類を識別できます。従来の ddPCR のように光の灰色の雲は、DNA 分子を含まない水滴に対応します。それはこのタイプの試金、WT とムトの雲の最適な分離は WT だけを含んでいる小滴から WT とムトのターゲット遺伝子を含んでいる小滴を区別できないので、反応に読み込まれている DNA の量に依存していることを思い出すことが重要フォーム。したがって、この試金はほとんど水滴が目標とされた遺伝子の 1 つ以上のコピーを含める必要があります。

<table><tbody><tr><td>K2EDTAの管(色コード:ラベンダー)</td><td>BD</td><td>の367863</td><td>EDTAの管が全血またはEDTA血漿サンプル</td></tr><tr><td>QIAampの循環核酸のキット(手動プロトコル)</td><td>Qiagen</td><td>55114</td><td>人間の血漿からの自由な循環DNAの分離のため</td></tr><tr><td>QIAsymphony DSPの循環DNAのキット(自動化されたプロトコル)</td><td>Qiagen</td><td>937556</td><td>人間の血漿からの自由な循環DNAの分離のため</td></tr><tr><td>QIAsymphony SPシステム</td><td>Qiagen</td><td>9001297</td><td>cfDNA、DNAまたはRNA精製のための完全統合および自動化システム</td></tr><tr><td>QIAvac 24 Plus</td><td>Qiagen</td><td>19413</td><td>最大24個のcfDNAを同時に精製</td></tr><tr><td>Qubit蛍光光度計</td><td>Invitrogen</td><td>Q33226</td><td>Qubit蛍光光度計は、DNA</td></tr><tr><td>QX100またはQX200</td><td>リーダーBio-Rad</td><td>の定量用のベンチトップ蛍光光度計です186-3003または186-4003</td> リーダーは、<td>各液滴の蛍光強度を測定し、液滴が検出器を通過するときのサイズと形状を検出します</td></tr><tr><td>QX100またはQX200液滴発生器</td><td>Bio-Rad</td><td>186-3002または186-4002、それぞれ</td><td>液滴生成に使用される機器</td></tr><tr><td>C1000サーマルサイク</td><td>ラーBio-Rad</td><td>1851196</td><td>モジュール式サーマルサイクラープラットフォームには、C1000タッチサーマルサイクラーシャーシ、96ウェル高速反応モジュール</td></tr><tr><td>プレートシー</td><td>ラーBio-Rad</td><td>181-4000</td><td>PX1&tradeが含まれます。PCRプレートシーラー</td></tr><tr><td>DG8カートリッジホルダー</td><td>Bio-Rad</td><td>186-3051</td><td>液滴発生のための装置内でDG8カートリッジを配置し、保持</td></tr>する <tr><td>液滴発生器カートリッジとガスケット</td><td>Bio-Rad</td><td>186-4007</td><td>マイクロ流体DG8カートリッジは、サンプルとオイルを混合して液滴を生成するために使用されます。DG8ガスケットは、蒸発を防ぎ、液滴形成に必要な圧力を適用するためにカートリッジをシール</td></tr>します <tr><td>PCRスーパーミックス</td><td>Bio-Rad</td><td>186-3010</td><td>ddPCR プローブ用スーパーミックス(dUTPなし)</td></tr><tr><td>96ウェルPCRプレート</td><td>エッペンドルフ</td><td>951020362</td><td>96ウェルセミスカートプレート</td></tr><tr><td>ホイルシール</td><td>Bio-Rad</td><td>181-4040</td><td>ピアス可能なホイルヒートシール</td></tr><tr><td>ddPCRドロップレットリーダー Oil</td><td>Bio-Rad</td><td>186-3004</td> リード液滴生成<td>に使用されるオイル</td></tr><tr>プローブ<td>用オイル</td><td>Bio-Rad</td><td>186-3005</td><td>液滴生成用オイル</td></tr><tr><td>DNA loBind チューブ 1.5 mL</td><td>Eppendorf</td><td>0030 108.051</td><td>Eppendorf LoBind チューブは、サンプルと表面の結合を大幅に減らすことにより、サンプル回収を最大化し</td></tr>ます <tr><td>マルチプレックス I cfDNA リファレンス標準セット</td><td>HORIZON</td><td>HD780</td><td>Multiplex I cfDNA Reference Standards は、体細胞変異を検出する cfDNA アッセイの性能を評価するために使用される、高度に特徴付けられた生物学的に関連する参照材料です</td></tr><tr><td>QUBIT DSDNA HS ASSAY KIT, 500</td><td>Life Technologies</td><td>Q32854</td><td>HS アッセイは、RNA 上の二本鎖 DNA (dsDNA) に対して高い選択性を持ち、10 pg/&micro からの初期サンプル濃度に対して正確になるように設計されています。Lから100 ng /&micro;L</td></tr><tr><td>Qubit Assay Tubes</td><td>Life Technologies</td><td>Q32856</td><td>Qubit Assay Tubesは500 &microです。L 薄肉ポリプロピレンチューブ (Qubit Fluorometer と併用)</td></tr></tbody></table>

ホット スポット領域の変異の包括的かつ同時検出のための単一液滴デジタル ポリメラーゼの連鎖反応

Single Droplet Digital Polymerase Chain Reaction for Comprehensive and Simultaneous Detection of Mutations in Hotspot Regions

液滴デジタル ポリメラーゼの連鎖反応 (ddPCR) は、ナノサイズの水-油の個々 の反作用の数千にサンプル分別に基づく高感度の量的なポリメラーゼの連鎖反応 (PCR) 法です。最近では、ddPCR は循環腫瘍 (葉緑体) DNA 検出の最も正確で重要なツールとなっています。標準的な ddPCR 技術の主要な限界の 1 つは、特定加水分解プローブ各対立遺伝子のバージョンを認識し、必要な反応あたり上映することができます変異数の制限です。別の方法、ドロップオフの ddPCR では、プローブで検出し、対象地域における潜在的すべての遺伝的変化を定量化するの 1 つのペアだけが必要なので、スループットが向上します。ドロップオフの ddPCR は、単一の反作用で突然変異の大きい数を検出の利点と従来の ddPCR の試金に匹敵する感度を表示します。コスト効率の高い、貴重な試料を節約、変異をアプリオリに知られていないとき検出ツールとして使用することができます。

概念実証研究 FFPE 組織やドロップオフ ddPCR 戦略6を使用して癌から血漿検体でKRASエクソン 2 変異 (コドン 12 と 13) とegfr 遺伝子エクソン 19 削除を調べた。
KRASドロップオフ プローブは、複数人間癌11既知のKRAS変異の 95% 以上あるのエクソン 2 のKRAS遺伝子の変異を含む 16 bp の領域を尋問しました。基準プローブは 20 bp の長さと位置 3 bp 下流。2 最も頻繁に変異したKRASのアミノ酸を含む細胞から抽出した DNA を用いて我々 の分析を最適化する: G12V (c.35GT、SW480) と G13D (c.38GA、HCT 116)。
<p class="jove_con...

ここでは、ドロップオフ ddPCR と加水分解プローブの一意のペアを使用して単一の反作用で対象地域の複数の遺伝子の変異を正確に定量化するためのプロトコルを提案する.

Droplet digital polymerase chain reaction (ddPCR) is a highly sensitive quantitative polymerase chain reaction (PCR) method based on sample fractionation ...

この方法は、循環腫瘍DNAを分析する癌の診断ツールとして使用することができる。この技術は、単一の反応におけるクラスター突然変異の領域における複数の遺伝的変化を尋問する。これは貴重な患者のサンプルを救うのに役立つ。この方法は、その突然変異プロファイル上の腫瘍負担に対する洞察を提供することができる。また、qPCRの代替として分子解析に適用して、核酸標的配列の絶対定量化を得ることもできます。7ミリリットルのEDTAチューブで血液サンプルを収集します。2つのチューブは、プラズマの約4ミリリットルを収集することをお勧めします。血液サンプルを遠心分離し、血液から3時間以内に820倍の重力で10分間血液サンプルを遠心分離し、赤血球、白血球、血漿を分離する。サンプリングと遠心分離の間の時間は、白血球から放出されたDNAで汚染されていない高級なT細胞フリーDNAを得るために重要です。遠心分離後、血清ピペットを使用して、白血球層に触れることなく上清を採取する。およそ2ミリリットルのプラズマは、通常、EDTAチューブあたり回収される。プラムを2つのミリリットルチューブに移した後、16,000倍の重力でアリコートを15°Cで10分間遠心分離し、細胞の破片を取り除く。慎重にペレットを乱すことなく、プラズマを収集し、2ミリリットルの極低温管に転送します。必要になるまでマイナス80°Cで保管してください。まず、400マイクロリットルのプロテイナーゼKを50ミリリットルのチューブに加えます。次に、抽出キットから1マイクログラムのキャリアRNAを含む4ミリリットルの血漿と3.2ミリリットルのACLリシスバッファーを加えます。チューブを閉じ、30秒間渦を混ぜて均質な溶液を得る。その後、摂氏60度で30分間インキュベートします。インキュベーション後、7.2ミリリットルのバッファーACBをライセートに加えて、循環核酸とシリカ膜への結合を最適化する。15~30秒間渦を混ぜます。その後、氷の上にチューブを5分間インキュベートします。カラムと20ミリリットルのエクステンダーを真空ポンプに取り付けます。真空吸引を可能にするために未使用部分を閉じます。チューブを一時的に遠心した後、慎重にチューブエクステンダーに混合物を導入します。その後、真空ポンプのスイッチを入れ、ライセートを完全に柱に引き抜きます。チューブエクステンダーを取り外して捨てます。次に、600マイクロリットルのバッファACW1をカラムに塗布します。バッファ ACW1 がカラムを通して引き出された場合、750 マイクロリットルの ACW2 バッファを加え、最後に 750 マイクロリットルの 96 ~ 100%エタノールを加えます。次に、カラムをきれいな2ミリリットルの回収チューブに入れ、遠心分離機をフルスピードで3分間入れてエタノールを除去します

single-droplet-digital-polymerase-chain-reaction-for-comprehensive

Research

JoVE Journal

Genetics

遺伝学

このビデオでは、デジタルポリメラーゼ連鎖反応またはdPCRによって標的核酸を検出するための乳化ナノ液滴を生成する手順を段階的に紹介します。...

Droplet Digital Polymerase Chain Reaction:希少腫瘍変異検出のためのナノDroplet PCR反応作製法

このビデオは、DNAサンプルのインデル変異を特定する際のデジタル液滴ポリメラーゼ連鎖反応の役割を示しています。ddPCRの高精度と感度により、サンプル中に存在するまれな変異を、低レベルでも正確かつ一貫して検出することができます。ゲノムのさまざまな領域におけるインデル変異を同定し、定量化することができ、突然変異のメカニズムとこれらの突然変異の機能的影響について貴重な洞察を得ることができます。...

標的遺伝子のインデル変異検出のためのデジタル液滴ポリメラーゼ連鎖反応

このビデオでは、デュプレックスデジタルPCR(ddPCR)技術を示しています。これは、従来のPCR技術の修正版で、2つの異なる遺伝子マーカーを同時に検出するのに役立ちます。1つのPCR反応をナノリットルサイズの乳化液滴に分割し、それぞれに増幅し、液滴画分から異なる色の蛍光増幅シグナルを検出することで、標的配列の初期濃度を算出します。...

デュプレックスデジタルPCRによるデュアル遺伝マーカーの同時定量

このビデオでは、融解温度分析に基づいて、さまざまな配列長のDNA断片の長さ多型を決定するための高分解能融解PCR技術について説明します。...

変異型DNA配列の配列変動を決定するための高分解能メルティングPCR

このビデオでは、DNAサンプルの単一塩基変異を検出するためのチップインチューブ形式のデジタルPCRの有用性を示しています。1つのPCR反応を独立したPCR反応として作用するチャンバーに分割し、チャンバー内の増幅されたターゲットからの蛍光シグナルの検出を使用して、サンプル中のバリアント対立遺伝子の周波数を計算します。...

Chip-in-a-TubeベースのデジタルPCRによる単一ヌクレオチドバリアントの定量

野生型ブロッキングPCRとそれに続く直接シーケンシングは、さまざまなサンプルタイプにおける低頻度の体細胞突然変異を高感度に検出する方法を提供します。...

低周波体細胞変異の検出のための高感度な方法として直接配列決定と組み合わせるPCRをブロックする野生型

ここでは、患者の生体液(生体流体)に存在する循環DNAにおける腫瘍体細胞変異を検出するプロトコルを提示する。当社の液滴デジタルポリメラーゼ連鎖反応(dPCR)ベースの方法は、腫瘍変異アレーリン周波数(MAF)の定量化を可能にし、腫瘍応答の診断および時間的モニタリングに最小限に侵襲的な補体を促進する。...

患者の生体流体における腫瘍関連循環DNAの検出とモニタリング

このプロトコルは、gRNA誘導Cas9切断およびDNA修復後の標的部位における非相同性端結合(NHEJ)事象の同定および定量化に関する分析を含む、DNA抽出からデジタル液滴PCR(ddPCR)の実験的セットアップまでのステップを提供する。この方法の他の用途としては、多型検出や遺伝子編集バリアント検証などの用途が挙げられる。...

遺伝子組み換えアノフェリン蚊集団におけるインデル変異を検出するデジタル液滴PCR

この記事では、血管免疫芽球性リンパ腫におけるサンガーシーケンシングに基づく低周波検出法の応用について紹介します。この方法を他の病気に適用するための基礎を提供します。...

低頻度体細胞突然変異の検出のためのサンガーシーケンシングと組み合わせた野生型ブロッキングPCR

液体クロマトグラフィー/質量分析によってフグ種を遺伝子型決定するための改良されたポリメラーゼ連鎖反応 - 制限断片長多型法が記載されています。逆相シリカモノリスカラム消化アンプリコンを分離するために使用されます。この方法は、ベース組成物を同定するのに有用であるオリゴヌクレオチドのモノアイソトピック質量を、解明することができます。...

液体クロマトグラフィー/質量分析法による有毒フグの改善されたポリメラーゼ連鎖反応 - 制限断片長多型ジェノタイピング

学ぶdrop-off ddPCR法によるctDNAの高感度検出と定量法。単一反応で複数の遺伝子変異を同時検出し、希少な患者サンプルを節約し、スループットを向上させる。がん診断と液体バイオプシー研究に応用可能。

ホットスポット領域の変異の包括的かつ同時検出のための単一液滴デジタルポリメラーゼの連鎖反応

さらに動画を探す

ホット スポット領域の変異の包括的かつ同時検出のための単一液滴デジタル ポリメラーゼの連鎖反応

さらに動画を探す

ホットスポット領域の変異の包括的かつ同時検出のための単一液滴デジタルポリメラーゼの連鎖反応